Name: Mysi model nieodwracalnej i odwracalnej jednostronnej niedrożności moczowodu (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-20T15:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 5 s
Description: Poznaj model mysiej jednostronnej niedrożności moczowodu do badania uszkodzenia i regeneracji nerek. Technika obejmuje nieodwracalne i odwracalne UUO z analizą histologiczną zmian strukturalnych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Niniejsze badanie było wspierane przez granty z Kidney Research UK (ST4/2011), Cunningham Trust (CT11/14), Mrs AE Hogg Charitable Trust for Kidney Research oraz Renal Endowment Fund of the Royal Infirmary of Edinburgh.

Ogólne wytyczne: Eksperymenty na zwierzętach były przeprowadzane zgodnie z wytycznymi i przepisami nałożonymi przez Ustawę o zwierzętach (procedury naukowe) z 1986 roku. Ten protokół i towarzyszący mu protokół wideo są przeznaczone zarówno dla standardowego UUO, jak i R-UUO, który może być wykonywany na wielu odmianach myszy. Na załączonym filmie obie procedury są wykonywane na samcach myszy C57BL/6 w wieku 8 tygodni. Dane przedstawione w sekcji wyników reprezentatywnych uzyskano od samców myszy FVB/n.
UWAGA: Ten protokół i towarzyszący mu film szczegółowo opisują, jak wykonać standardowe UUO i R-UUO z wykorzystaniem lewego moczowodu, jednak te same techniki można łatwo zastosować do prawego moczowodu.
1. Przygotowanie zwierząt i laparotomia
<ol>
	<li>Wszystkie zabiegi wykonuj za pomocą sterylnych (autoklawowanych) narzędzi i materiałów eksploatacyjnych.</li>
	<li>Wstrzyknąć dootrzewnowo chlorowodorek ketaminy (70 mg / kg) i chlorowodorek medetomidyny (1 mg / kg) w celu znieczulenia myszy. Uwaga: Czas trwania powstałej płaszczyzny znieczulenia wynosi 4 godziny i nie jest wymagane znieczulenie dodatkowe.</li>
	<li>Potwierdź głębokość znieczulenia poprzez utratę odruchów, np. uszczypnięcie palca u nogi.</li>
	<li>Usuń wszystkie włosy otaczające obszar nacięcia i przygotuj skórę brzucha do zabiegu poprzez zastosowanie rozcieńczonego roztworu chlorheksydyny.</li>
	<li>Umieść mysz na podgrzewanej podkładce chirurgicznej w pozycji leżącej na plecach i przymocuj kończyny do podkładki za pomocą taśmy klejącej o niskiej przyczepności.</li>
	<li>Podczas zabiegu należy monitorować mysz pod kątem oznak oparzeń termicznych w wyniku podgrzanej podkładki chirurgicznej. Jeśli to możliwe, użyj nieelektrycznego źródła ciepła.</li>
	<li>Podawać leki przeciwbólowe przez podskórne wstrzyknięcie chlorowodorku buprenorfiny (0,06 mg/kg) i stosować lubrykant do oczu, aby zapobiec wysuszeniu rogówki.</li>
	<li>Wykonaj laparotomię w linii środkowej i nacięcie jałowej linii białej za pomocą nożyczek oddzielających tkanki, aby uzyskać dostęp do jamy otrzewnej.</li>
	<li>Ułóż mysz i włóż retraktor colibri do nacięcia.</li>
</ol>
2. Jednostronna niedrożność moczowodu
<ol>
	<li>Za pomocą wysterylizowanych patyczków kosmetycznych odsłaniamy lewy moczowód poprzez przemieszczenie jelit w kierunku prawej strony jamy brzusznej i przykrywamy je zwilżonymi zasłonami.</li>
	<li>Za pomocą kleszczy kątowych odizoluj i podnieś lewy moczowód.</li>
	<li>Aby utworzyć niedrożność moczowodu, należy dwukrotnie podwiązać lewy moczowód czarnym plecionym jedwabnym szwem 6/O w dowolnym miejscu między pęcherzem moczowym a miednicą nerkową. W przypadku długoterminowych eksperymentów należy stosować wchłanialny szew do wszystkich operacji jamy brzusznej. Alternatywnie do moczowodu można przyłożyć klips podwiązujący.</li>
	<li>Aby odizolować pęcherz moczowy od moczowodu, podziel moczowód między dwa szwy.</li>
	<li>Ostrożnie włóż jelita do jamy otrzewnej.</li>
	<li>Postępuj zgodnie z krokami wymienionymi w sekcji 4 – Rekonwalescencja i opieka pooperacyjna, aby zamknąć nacięcie i odwrócić znieczulenie.</li>
</ol>
3. Przygotowanie do odwracalnej jednostronnej niedrożności moczowodu
<ol>
	<li>Przygotuj mysz do zabiegu chirurgicznego i odizoluj lewy moczowód zgodnie z opisem w krokach od 1.1 do 2.2 powyżej.</li>
	<li>Aby utworzyć niedrożność moczowodu, którą można odwrócić, należy dwukrotnie podwiązać lewy moczowód czarnym plecionym jedwabnym szwem 6/O w pobliżu pęcherza. Pozostaw jeden koniec górnego szwu długi, ponieważ zostanie on użyty do zakotwiczenia miękkościennej plastikowej rurki w miejscu wokół moczowodu.</li>
	<li>Wykonaj podłużną szczelinę w miękkościennej plastikowej rurce o długości 5 mm, tak aby można ją było rozchylić, aby umożliwić przyłożenie jej do moczowodu. Można użyć dowolnej rurki silikonowej z tworzywa sztucznego o miękkich ściankach o średnicy wewnętrznej 1 mm i średnicy zewnętrznej 2 mm.</li>
	<li>Delikatnie umieść miękkościenną plastikową rurkę wokół moczowodu. Upewnij się, że długi szew wyłania się ze środka szczeliny w rurce po jej zamknięciu wokół moczowodu.</li>
	<li>Umieść pleciony jedwabny szew o długości 6/O wokół miękkościennej rurki otaczającej moczowód i zawiąż raz. Teraz umieść długi koniec szwu, wyłaniający się ze środka szczeliny w rurce, wzdłużnie w poprzek rurki tak, aby leżał na wierzchu wcześniej zawiązanego szwu.</li>
	<li>Zawiąż szew znajdujący się wokół rurki dwukrotnie, aby zakotwiczyć rurkę i długi koniec szwu w okolicy moczowodu. 
	Uwaga: Aby zapobiec tworzeniu się zrostów na moczowodzie i miękkościennym plastikowym drensie, na obszar wokół rurki można nałożyć roztwór zmniejszający przyczepność.</li>
	<li>Ostrożnie włóż jelita do jamy otrzewnej.</li>
</ol>
4. Rekonwalescencja i opieka pooperacyjna
<ol>
	<li>Zamknij otrzewną ściegiem kocowym za pomocą czarnego plecionego jedwabnego szwu 5/O i przybliż skórę za pomocą metalowych spinek do skóry.</li>
	<li>Aby zminimalizować ryzyko infekcji pooperacyjnej, nałóż na skórę brzucha środek antyseptyczny, taki jak roztwór jodu/alkoholu.</li>
	<li>Częściowo odwrócone znieczulenie chlorowodorkiem atipamezolu (2 mg/kg) podskórnie.</li>
	<li>Płyny należy podawać we wstrzyknięciu podskórnym 1 ml podgrzanej soli fizjologicznej.</li>
	<li>Monitoruj mysz, aż odzyska przytomność.</li>
	<li>Pozwól myszy dojść do siebie w ogrzewanym pudełku utrzymywanym w temperaturze 29 °C przez 24 godziny. Można również podać zwilżone jedzenie, aby zachęcić do przyjmowania płynów i składników odżywczych.</li>
	<li>Pozostaw mysz do odzyskania sił, aby wywołać pożądany poziom niedrożności, zwykle 7 dni.</li>
	<li>W przypadku długotrwałych eksperymentów regeneracyjnych należy zapewnić bieżące leki przeciwbólowe. Jeśli mysz ma być w rekonwalescencji dłużej niż 7 dni, należy usunąć klipsy skórne 7 dni po zabiegu.</li>
	<li>Po wywołaniu pożądanego poziomu niedrożności należy albo odwrócić UUO, jak opisano poniżej, albo poddać mysz eutanazji przez zwichnięcie szyjki macicy i pobrać nerki do analizy histopatologicznej.</li>
</ol>
5. Odwracalna jednostronna niedrożność moczowodu
<ol>
	<li>Aby wykonać zabieg R-UUO, należy przygotować mysz, która została przygotowana do zabiegu R-UUO, do zabiegu zgodnie z opisem w krokach od 1.1 do 1.7.</li>
	<li>Jeśli występują, usuń klipsy skórne i podziel lub usuń szwy w otrzewnej, aby uzyskać dostęp do jamy brzusznej. Uwaga: Jeśli moczowód został zatkany w długotrwałym eksperymencie, klipsy do skóry powinny zostać usunięte 7 dni po aplikacji.</li>
	<li>Przygotuj mysz i odizoluj lewy moczowód zgodnie z opisem w krokach od 1.8 do 2.2.</li>
	<li>Za pomocą kleszczy pod kątem uwolnij miękkościenną plastikową rurkę z wszelkich błoniakowatych tkanek, które mogły się utworzyć.</li>
	<li>Przeciąć skalpelem szew przytrzymujący plastikową rurkę wokół zatkanego moczowodu i usunąć rurkę.</li>
	<li>Potwierdź udane UUO, oceniając obecność wodonercza w lewej nerce, nerka również powinna wydawać się blada.</li>
	<li>Podziel moczowód między szwy.</li>
	<li>Umieść pozostałą długość moczowodu, przymocowanego do nerki, na małym kawałku sterylnej gazy. Zostanie to wykorzystane do zebrania osadu moczowego i martwych komórek, które spłyną z moczowodu i miedniczki nerkowej po usunięciu szwu.</li>
	<li>Podziel moczowód powyżej, ale w pobliżu szwu i pozwól nerce spłynąć na gazę. Pozostaw dolny szew, najbliżej pęcherza, nienaruszony. Ma to na celu zapewnienie, że mocz nie będzie wyciekał z pęcherza do jamy otrzewnej.</li>
	<li>Po opróżnieniu moczowodu i miedniczki nerkowej nałóż długi szew jedwabny w kolorze czarnym 6/O na koniec pozostałej długości moczowodu. Zostanie to wykorzystane do wspomożenia zespolenia moczowodu z pęcherzem moczowym wykonanego później.</li>
	<li>Postępuj zgodnie z poniższymi krokami, aby zespoleć pozostałą długość moczowodu z pęcherzem moczowym:
	<ol>
		<li>Obróć moczowód tak, aby leżał przed swoim pierwotnym położeniem i leżał nad nerką.</li>
		<li>Umieścić pojedynczy szew sczepiający z monofilamentu poliamidowego 9/O w odległości 2 mm od końca moczowodu tak, aby wychodził w kierunku pęcherza moczowego. Należy zwrócić uwagę, aby szew pozostał w płaszczu mięśniowym i nie dostał się do światła moczowodu. Szew sczepiany zostanie użyty do zakotwiczenia moczowodu w pęcherzu moczowym.</li>
		<li>Aby utworzyć kanał przez pęcherz, przełóż igłę 21G po przekątnej przez pęcherz tak, aby wychodziła w kierunku przedniej (brzusznej) ściany pęcherza.</li>
		<li>Oprzeć igłę z oczkiem w skosie igły 21G. Za pomocą igły 21G należy przeprowadzić igłę z oczkiem przez pęcherz moczowy. Igła z oczkiem zostanie użyta do wprowadzenia moczowodu przez pęcherz moczowy.</li>
		<li>Przeciągnąć szew sczepiający 9/O, nałożony na moczowód w kroku 5.11.2, przez pierwsze nacięcie w pęcherzu moczowym i na zewnątrz przez ścianę pęcherza przylegającą do punktu wejścia. Gdy moczowód zostanie przepuszczony przez pęcherz moczowy, zostanie on przywiązany, aby zakotwiczyć moczowód w pęcherzu.</li>
		<li>Umieścić długi szew jedwabny 6/O w kolorze czarnym plecionym nałożony na koniec moczowodu w kroku 5.10 przez igłę z oczkiem.</li>
		<li>Ostrożnie wyjąć igłę z oczkiem z pęcherza moczowego, upewniając się, że moczowód jest również przeciągnięty przez pęcherz.</li>
		<li>Gdy moczowód wyłoni się z pęcherza, wyjmij igłę z oczkiem i przyłóż zacisk do długiego szwu na końcu moczowodu, aby zapobiec cofnięciu się do pęcherza.</li>
		<li>Aby zakotwiczyć moczowód w pęcherzu moczowym, należy zawiązać szew 9/O z monofilamentu poliamidowego, nałożony w kroku 5.11.5.</li>
		<li>Nałożyć dodatkowe pojedyncze szwy opaskowe z monoamidu 9/O zgodnie z opisem w krokach 5.11.2 i 5.11.5 w dwóch miejscach wokół punktu wejścia, aby mocno zakotwiczyć moczowód w pęcherzu moczowym.</li>
		<li>Używając tylnej części otwartych nożyczek, lekko odepchnij ścianę pęcherza do tyłu, aby odsłonić więcej wyłaniającego się moczowodu.</li>
		<li>Podziel moczowód powyżej długiego szwu znajdującego się na końcu moczowodu. Moczowód powinien cofnąć się do trzonu pęcherza moczowego. Zwykle obserwuje się mocz wypływający z otworu w pęcherzu, potwierdzając otwarte światło moczowodu.</li>
		<li>Zamknąć ranę wylotową w pęcherzu moczowym szwem monofilamentowym z poliamidu 9/O.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Ostrożnie włóż jelita do jamy otrzewnej.</li>
	<li>Zapewnij opiekę pooperacyjną zgodnie z opisem w krokach od 4.1 do 4.8.</li>
	<li>Pozwól myszy dojść do siebie, aż nerka zostanie zdekompresowana, zwykle 7 dni.</li>
	<li>W eksperymentalnym punkcie końcowym należy poddać mysz eutanazji przez zwichnięcie szyjki macicy i pobrać nerki do analizy histopatologicznej.</li>
</ol>

<ol><li>Chevalier, R. L., Forbes, M. S., Thornhill, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ureteral+obstruction+as+a+model+of+renal+interstitial+fibrosis+and+obstructive+nephropathy%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+Int%22%5BJournal%5D)">Ureteral obstruction as a model of renal interstitial fibrosis and obstructive nephropathy.</a> Kidney Int. 75, 1145-1152 (2009).</li>
<li>Kipari, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nitric+oxide+is+an+important+mediator+of+renal+tubular+epithelial+cell+death+in+vitro+and+in+murine+experimental+hydronephrosis%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Nitric oxide is an important mediator of renal tubular epithelial cell death in vitro and in murine experimental hydronephrosis.</a> Am J Pathol. 169, 388-399 (2006).</li>
<li>Henderson, N. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Galectin-3+expression+and+secretion+links+macrophages+to+the+promotion+of+renal+fibrosis%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Galectin-3 expression and secretion links macrophages to the promotion of renal fibrosis.</a> Am J Pathol. 172, 288-298 (2008).</li>
<li>Kitamoto, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+liposome+clodronate+on+renal+leukocyte+populations+and+renal+fibrosis+in+murine+obstructive+nephropathy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Sci%22%5BJournal%5D)">Effects of liposome clodronate on renal leukocyte populations and renal fibrosis in murine obstructive nephropathy.</a> J Pharmacol Sci. 111, 285-292 (2009).</li>
<li>Tapmeier, T. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reimplantation+of+the+ureter+after+unilateral+ureteral+obstruction+provides+a+model+that+allows+functional+evaluation%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+Int%22%5BJournal%5D)">Reimplantation of the ureter after unilateral ureteral obstruction provides a model that allows functional evaluation.</a> Kidney Int. 73, 885-889 (2008).</li>
<li>Cochrane, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Renal+structural+and+functional+repair+in+a+mouse+model+of+reversal+of+ureteral+obstruction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Soc+Nephrol%22%5BJournal%5D)">Renal structural and functional repair in a mouse model of reversal of ureteral obstruction.</a> J Am Soc Nephrol. 16, 3623-3630 (2005).</li>
<li>Puri, T. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+kidney+disease+induced+in+mice+by+reversible+unilateral+ureteral+obstruction+is+dependent+on+genetic+background%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Renal+Physiol%22%5BJournal%5D)">Chronic kidney disease induced in mice by reversible unilateral ureteral obstruction is dependent on genetic background.</a> Am J Physiol Renal Physiol. 298, F1024-F1032 (2010).</li>
<li>Heikkila, J., Holmberg, C., Kyllonen, L., Rintala, R., Taskinen, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+risk+of+end+stage+renal+disease+in+patients+with+posterior+urethral+valves%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Long-term risk of end stage renal disease in patients with posterior urethral valves.</a> J Urol. 186, 2392-2396 (2011).</li>
<li>Ravanan, R., Tomson, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+history+of+postobstructive+nephropathy%3A+a+single-center+retrospective+study%5BTitle%5D)+AND+%22Nephron+Clin+Pract%22%5BJournal%5D)">Natural history of postobstructive nephropathy: a single-center retrospective study.</a> Nephron Clin Pract. 105, c165-c170 (2007).</li>
<li>Bascands, J. L., Schanstra, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Obstructive+nephropathy%3A+insights+from+genetically+engineered+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+Int%22%5BJournal%5D)">Obstructive nephropathy: insights from genetically engineered animals.</a> Kidney Int. 68, 925-937 (2005).</li>
<li>Park, H. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postobstructive+regeneration+of+kidney+is+derailed+when+surge+in+renal+stem+cells+during+course+of+unilateral+ureteral+obstruction+is+halted%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Renal+Physiol%22%5BJournal%5D)">Postobstructive regeneration of kidney is derailed when surge in renal stem cells during course of unilateral ureteral obstruction is halted.</a> Am J Physiol Renal Physiol. 298, F357-F364 (2010).</li>
<li>Manson, S. R., Niederhoff, R. A., Hruska, K. A., Austin, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endogenous+BMP-7+is+a+critical+molecular+determinant+of+the+reversibility+of+obstruction-induced+renal+injuries%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Renal+Physiol%22%5BJournal%5D)">Endogenous BMP-7 is a critical molecular determinant of the reversibility of obstruction-induced renal injuries.</a> Am J Physiol Renal Physiol. 301, F1293-F1302 (2011).</li>
<li>Manson, S. R., Niederhoff, R. A., Hruska, K. A., Austin, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+BMP-7-Smad1%2F5%2F8+pathway+promotes+kidney+repair+after+obstruction+induced+renal+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">The BMP-7-Smad1/5/8 pathway promotes kidney repair after obstruction induced renal injury.</a> J Urol. 185, 2523-2530 (2011).</li>
<li>Chaves, L. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contrasting+effects+of+systemic+monocyte%2Fmacrophage+and+CD4%2B+T+cell+depletion+in+a+reversible+ureteral+obstruction+mouse+model+of+chronic+kidney+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Dev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Contrasting effects of systemic monocyte/macrophage and CD4+ T cell depletion in a reversible ureteral obstruction mouse model of chronic kidney disease.</a> Clin Dev Immunol. 2013, 836-989 (2013).</li>
<li>Haque, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Longitudinal+changes+in+MRI+markers+in+a+reversible+unilateral+ureteral+obstruction+mouse+model%3A+preliminary+experience%5BTitle%5D)+AND+%22J+Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Longitudinal changes in MRI markers in a reversible unilateral ureteral obstruction mouse model: preliminary experience.</a> J Magn Reson Imaging. 39, 835-841 (2014).</li>
<li>Bai, Z. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arterially+transplanted+mesenchymal+stem+cells+in+a+mouse+reversible+unilateral+ureteral+obstruction+model%3A+in+vivo+bioluminescence+imaging+and+effects+on+renal+fibrosis%5BTitle%5D)+AND+%22Chinese+Med+J%22%5BJournal%5D)">Arterially transplanted mesenchymal stem cells in a mouse reversible unilateral ureteral obstruction model: in vivo bioluminescence imaging and effects on renal fibrosis.</a> Chinese Med J. 126, 1890-1894 (2013).</li>
<li>Chaabane, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Renal+functional+decline+and+glomerulotubular+injury+are+arrested+but+not+restored+by+release+of+unilateral+ureteral+obstruction+%28UUO%29%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Renal+Physiol%22%5BJournal%5D)">Renal functional decline and glomerulotubular injury are arrested but not restored by release of unilateral ureteral obstruction (UUO).</a> Am J Physiol Renal Physiol. 304, F432-F439 (2013).</li>
<li>Thornhill, B. A., Burt, L. E., Chen, C., Forbes, M. S., Chevalier, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variable+chronic+partial+ureteral+obstruction+in+the+neonatal+rat%3A+a+new+model+of+ureteropelvic+junction+obstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+Int%22%5BJournal%5D)">Variable chronic partial ureteral obstruction in the neonatal rat: a new model of ureteropelvic junction obstruction.</a> Kidney Int. 67, 42-52 (2005).</li>
<li>Thornhill, B. A., Chevalier, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variable+partial+unilateral+ureteral+obstruction+and+its+release+in+the+neonatal+and+adult+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Variable partial unilateral ureteral obstruction and its release in the neonatal and adult mouse.</a> Methods Mol Biol. 886, 381-392 (2012).</li>
</ol>

Autorzy nie mają do ujawnienia żadnych konkurencyjnych ani sprzecznych interesów.

Niedrożność nerek może wpływać na nerki natywne lub przeszczepione i powodować uszkodzenie nerek i bliznowacenie. Model R-UUO ma znaczenie dla chorób u ludzi, ponieważ u pacjentów często występuje niedrożność dróg nerkowych wtórna do przerostu gruczołu krokowego, tylnych zastawek cewki moczowej itp., która wymaga dekompresji u pacjentów często pozostawionych ze znaczną resztkową niewydolnością nerek, która nie ma obecnie opcji leczenia i może ostatecznie prowadzić do schyłkowej niewydolności nerek. 8,9 Przedst...

Ogólnym celem opisanego tutaj eksperymentalnego modelu jest wywołanie nefropatii obturacyjnej poprzez jednostronną niedrożność moczowodu (UUO), która może być albo nieodwracalna (UUO), albo odwracalna (R-UUO). Przedstawiono prosty nieodwracalny model UUO, w którym lewy moczowód jest trwale zablokowany przez podwiązanie szwem lub przez zastosowanie klipsa podwiązującego. Powoduje to znaczne poszerzenie moczowodu wraz ze zmniejszonym przepływem krwi przez nerki i filtracją kłębuszkową. Histologia nerek wykazuje poszerzenie kanalików oraz coraz cięższe śródmiąższowe zapalenie i zwłóknienie nerek. Nieodwracalne UUO jest użytecznym modelem i zostało przyjęte przez wielu badaczy w badaniach zarówno nad zapaleniem nerek, jak i zwłóknieniem. 1-4 Chociaż nieodwracalny model UUO wymaga pewnej wiedzy chirurgicznej, jest stosunkowo prosty i często wykorzystywany do poszukiwania wglądu w patogenezę śródmiąższowego uszkodzenia nerek i wynikającego z niego zwłóknienia. Zaprezentowano również rzadziej stosowany model R-UUO, wykorzystujący modyfikację metody pierwotnie opisanej przez Tapmeiera i wsp. 5 Model R-UUO ma duży potencjał w przyszłości w zakresie badania procesów zapalnych i immunologicznych, regeneracji komórek i tkanek, a także późniejszej przebudowy tkanek po usunięciu szkodliwego bodźca. 
Bardziej wymagający model R-UUO był używany przez ograniczoną liczbę badaczy, a niektóre grupy stosowały znacznie inną technikę chirurgiczną niż opisana tutaj6,7, choć z interesującymi wynikami. W przedstawionym modelu R-UUO moczowód jest podwiązany w celu wywołania całkowitej niedrożności moczowodu przez okres wystarczający do wywołania pożądanego poziomu uszkodzenia i zwłóknienia: w opisanej tu metodzie wybrano 7 dni UUO. Niedrożność moczowodu zostaje odwrócona, a nerka może ulec dekompresji przez okres określony przez badacza, zanim myszy zostaną pozbawione, a nerka usunięta do analizy: w opisanej tutaj metodzie wybrano 7 dni dekompresji, chociaż wybrano dłuższy okres, gdyby badano ustąpienie stanu zapalnego i zwłóknienia. Chociaż opisana tutaj metoda wymaga znacznej wiedzy chirurgicznej, ma kilka zalet w porównaniu z innymi modelami R-UUO. Zastosowanie rurki z tworzywa sztucznego o miękkich ściankach do niedrożnego moczowodu zapobiega nadmiernemu poszerzeniu moczowodu, co ułatwia późniejszą manipulację i zespolenie moczowodu. Ponadto w opisywanym modelu R-UUO moczowód jest podzielony, co pozwala na usunięcie wszelkich zalegających osadów i zanieczyszczeń z moczem. Potwierdza to, że pozostałe światło moczowodu jest udrożnione i opatentowane przed zespoleniem z pęcherzem moczowym. 
Eksperymenty wykorzystujące zarówno nieodwracalne, jak i odwracalne modele UUO mogą dostarczyć badaczom potężnego wglądu w molekularne i komórkowe mechanizmy zarówno urazu, jak i późniejszego ustąpienia i regeneracji. Tak więc opisany tutaj model R-UUO byłby bardzo istotny dla badaczy zainteresowanych pozapalną przebudową tkanek i tym, jak można to modulować.

<table><tbody><tr><td>nożyczki preparacyjne</td><td>Narzędzia do nauki</td><td>14072-10</td><td></td></tr><tr><td>Nożyczki sprężynowe &ndash; proste</td><td>Narzędzia do nauki</td><td>15000-10</td><td></td></tr><tr><td>Kleszcze zębate</td><td>Narzędzia do nauki o napięciu</td><td>11021-12</td><td></td></tr><tr><td>Kleszcze kątowe x 2</td><td>Narzędzia do nauki</td> prostej <td>00649-11</td><td></td></tr><tr><td>Kleszcze proste</td><td>Narzędzia do nauki</td><td>prostej 00632-11</td><td></td></tr><tr><td>Zwijacz drutu Colibri 3 cm</td><td>Fine Science Tools</td><td>17000-03</td><td></td></tr><tr><td>Uchwyt na igły Castroviejo z zamkiem</td><td>Fine Science Tools</td><td>12565-14</td><td></td></tr><tr><td>Aplikator do spinania ran</td><td>Fine Science Tools</td><td>12031-07</td><td></td></tr><tr><td>Klipsy do ran 7 mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>12032-07</td><td></td></tr><tr><td>Castroviejo mikro uchwyt na igły z zamkiem</td><td>Fine Science Tools</td><td>12060-01</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop piko OPMI</td><td>Carl Zeiss</td><td>S100</td><td></td></tr><tr><td>Elektroka grzewcza</td><td>Cozee Comfort</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>6/O jedwabny szew pleciony</td><td>Harvard Apparatus</td><td>72-3287</td><td></td></tr><tr><td>9/O Szew dafilonowy (poliamidowy)</td><td>B-Braun</td><td>G1111434</td><td></td></tr> 5<tr><td>/O pleciony jedwabny szew</td><td>Harvard Apparatus</td><td>51-7680</td><td></td></tr><tr><td>Zwykła igła skośna, 1 cal, 21G</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>305175</td><td></td></tr><tr><td>1 ml końcówka strzykawki</td><td>Czeki papierowe Becton, Dickinson and Company</td><td>300184</td><td></td></tr><tr><td>Wypall</td><td>Kimberley-Clark</td><td>L40</td><td>Sterylizowane (autoklaw)</td></tr><tr><td>Patyczki z waty</td><td>Johnson and Johnson</td><td>n/a</td><td>Sterylizowane (autoklaw)</td></tr><tr><td>Zwykłe serwety</td><td>Guardian</td><td>CB03</td><td>Sterylizowane (autoklaw)</td></tr><tr>Rurki <td></td><td></td><td>z gumy silikonowej o miękkich ściankach</td><td>Rurki silikonowe - średnica wewnętrzna 1,0 mm; średnica zewnętrzna 2,0 mm; grubość ścianki 0,6 mm</td></tr> <tr><td>(Lacri-Lube) Biała miękka parafina 57,3%, olej mineralny 42,5% i alkohole lanolinowe 0,2%</td><td>Allergan Ltd</td><td>21956GB10X</td><td></td></tr><tr><td>(Videne) Jod powidonu 10%</td><td>Ecolab Ltd</td><td>PL 04509/0041</td><td></td></tr><tr><td>(Vetalar V) Chlorowodorek ketaminy</td><td>Pfizer Animal Health</td><td>Vm 42058/4165</td><td>100mg/ml roztwór</td></tr> <tr><td>(Domitor) Chlorowodorek medetomidyny</td><td>Orion Pharma</td><td>Vm 06043/4003</td><td>1mg/ml</td></tr> <tr><td>(wetergezyjny) Chlorowodorek bupernorfiny</td><td>Alsto Animal Health</td><td>Vm 00063/4002</td><td>0,3 mg/ml</td></tr> <tr><td>(Antisedan) Hydrochoryd atipamezolu</td><td>Orion Pharma</td><td>Vm 06043/4004</td><td>5mg/ml</td></tr> <tr><td>(Adept) 4% Icodextrin</td><td>Baxter</td><td></td><td>Roztwór redukujący przyczepność</td></tr><tr><td>NaCl 0,9%</td><td>Baxter</td><td>FKE1323</td><td></td></tr></tbody></table>

mysi model nieodwracalnej i odwracalnej jednostronnej niedrożności moczowodu

A Murine Model of Irreversible and Reversible Unilateral Ureteric Obstruction

Niedrożność nerek może wpływać na nerki natywne lub przeszczepione i powodować uszkodzenie nerek oraz bliznowacenie. Przedstawiono model nefropatii obturacyjnej wywołanej jednostronną niedrożnością moczowodu (UUO), która może być nieodwracalna (UUO) lub odwracalna (R-UUO). W nieodwracalnym modelu UUO moczowód może być niedrożny przez różne okresy czasu w celu wywołania coraz cięższego zapalenia nerek i bliznowacenia śródmiąższowego zwłóknienia. W odwracalnym modelu R-UUO moczowód jest niedrożny w celu wywołania wodonercza, rozszerzenia kanalików i stanu zapalnego. Po upływie odpowiedniego czasu niedrożność moczowodu zostaje chirurgicznie odwrócona poprzez zespolenie przerwanego, wcześniej niedrożnego moczowodu z pęcherzem moczowym, aby umożliwić całkowitą dekompresję nerki i przywrócenie przepływu moczu do pęcherza. Nieodwracalny model UUO został wykorzystany do zbadania różnych aspektów zapalenia i bliznowacenia nerek, w tym patogenezy choroby i testowania potencjalnych terapii przeciwzapalnych lub przeciwzwłóknieniowych. Bardziej wymagający model R-UUO został wykorzystany przez niektórych badaczy i oferuje znaczny potencjał badawczy, ponieważ umożliwia badanie procesów zapalnych i immunologicznych oraz przebudowy tkanek w uszkodzonej i zbliznowaciałej nerce po usunięciu szkodliwego bodźca. W rezultacie, model R-UUO oferuje badaczom możliwość zbadania rozwiązania zapalenia nerek wraz z kluczowymi aspektami naprawy tkanek. Te modele eksperymentalne mają znaczenie dla chorób u ludzi, ponieważ u pacjentów często występuje niedrożność dróg nerkowych, która wymaga dekompresji i często pozostają ze znaczną resztkową niewydolnością nerek, która nie ma obecnie opcji leczenia i może prowadzić do ostatecznej niewydolności nerek.

Wygląd nerki ulega wyraźnej zmianie po wystąpieniu niedrożności moczowodu; z czasem staje się ona bledsza i napięta w badaniu palpacyjnym (Rycina 1). Dochodzi do narastającego rozszerzenia miedniczki nerkowej oraz moczowodu powyżej miejsca niedrożności. Wraz z wydłużeniem czasu trwania nefropatii obturacyjnej nerka staje się coraz bardziej zanikowa, a przewlekła niedrożność prowadzi do znacznego ścieńczenia kory i rdzenia nerki. Po usunięciu niedrożności moczowodu kolor nerki staje się ciemniejszy w miar...

Mysi model nieodwracalnej jednostronnej niedrożności moczowodu (UUO) jest prezentowany razem z modelem odwracalnego UUO, w którym niedrożność moczowodu jest łagodzona przez zespolenie przerwanego moczowodu z pęcherzem moczowym. Modele te umożliwiają badanie stanu zapalnego i bliznowacenia nerek, a także przebudowy tkanek.

Mysi model nieodwracalnej i odwracalnej jednostronnej niedrożności moczowodu

Obstruction of the kidney may affect native or transplanted kidneys and results in kidney injury and scarring. Presented here is a model of obstructive ...

Niniejszy film przedstawia mysi model neuropatii obturacyjnej indukowanej jednostronnym zamknięciem moczowodu, która może być nieodwracalna lub odwracalna. Przedstawiono dane histologiczne ukazujące powstałe uszkodzenie strukturalne oraz jego regenerację po przywróceniu drożności. Ten schemat obrazowy ilustruje główne etapy tego modelu. Tutaj widzimy lewą nerkę, moczowód i pęcherz moczowy.Standardową jednostronną niedrożność moczowodu indukuje się poprzez podwiązanie moczowodu. Z czasem moczowód ulega rozszerzeniu, a nerka rozwija wodniczkę.Aby ograniczyć nadmierne rozszerzenie moczowodu, nerka z czasem staje się wodobrzuszna, a następnie zostaje odblokowana w punkcie czasowym odpowiednim dla badania. W siódmym dniu eksperymentu usuwa się rurkę o miękkich ściankach, a moczowód zostaje przecięty tuż nad poziomem podwiązania. Odblokowany moczowód zostaje poddany anastomozie z pęcherzem moczowym w celu umożliwienia odpływu moczu, a nerka zazwyczaj ulega dekompresji w ciągu kilku dni.Model jednostronnego zatoru moczowodu, określany jako UUO, może być wykorzystywany do badania rozwoju uszkodzeń tkanek i włóknienia po nefropatii zatorowej. Odwracalny model zatoru moczowodu, skrócona nazwa RUUO, może służyć do pogłębienia wiedzy na temat przebudowy tkanek, która może nastąpić po urazie. Poniżej przedstawiono schemat typowego eksperymentu obejmującego zarówno procedury UUL, jak i nasze procedury UUL.Myszy poddawane są UUL w dniu zerowym, a siedem dni później myszy są albo uśmiercane w celu oceny stopnia uszkodzenia, albo dokonuje się odblokowania moczowodów, aby przeprowadzić RUUR. Następnie nerki poddawane są dekompresji przez siedem dni przed pobraniem tkanek.Tkankę można ocenić pod kątem uszkodzeń strukturalnych, nacieku makrofagów, akumulacji miofibroblastów oraz włóknienia. Poniżej przedstawiono typowe przygotowanie chirurgiczne. Procedura jest wykonywana przy użyciu sterylnych narzędzi i materiałów jednorazowych z autoklawu, rozmieszczonych w sterylnym polu operacyjnym.W przypadku operowania wielu zwierząt narzędzia powinny być sterylizowane między zabiegami za pomocą sterylizatora koralikowego lub dla każdego zabiegu należy użyć nowego zestawu narzędzi. Operatorzy noszą sterylną kitle, maskę, czepek i rękawiczki. Ta ośmiotygodniowa samiec myszy C 57 black 6 została znieczulona poprzez doszpryznaczne wstrzyknięcie ketaminy, chlorowodorku i ksylazyny.Głębokość znieczulenia potwierdzono brakiem reakcji na uciśnięcie palca u nogi. Pole operacyjne ogolono i zdezynfekowano za pomocą rozcieńczonego roztworu chlorheksydyny. Zastosowano smarowanie oczu w celu zapobiegania wysychaniu rogówki.Przeciwbólowy chlorowodorek buprenorfiny został podany za pomocą zastrzyku podskórnego. Pyszczek został umieszczony na sterylnym, przykrytym podgrzewanym podłożu chirurgicznym, a kończyny unieruchomiono za pomocą nożyczek do rozdzielania tkanek; wykonano laparotomię w linii środkowej oraz nacięcie wzdłuż beznaczyniowego liniowego łokcia. W następnym rozdziale szczegółowo opisano sposób wykonania nieodwracalnego UUOA, po czym do nacięcia wprowadzono retraktor calibra, a mysz przykryto sterylnymi draperiami.Jelitka zostają odsunięte i przykryte zwilżoną jałową gazą, aby odsłonić lewy moczowód. Moczowód zostaje odsłonięty i wyizolowany za pomocą pęsety kątowej w celu wywołania niedrożności. Moczowód zostaje podwiązany dwukrotnie przy użyciu czarnej plecionej nici jedwabnej o rozmiarze 6-0.Moczowód może zostać zablokowany w dowolnym miejscu między pęcherzem a miedniczką nerkową. Następnie moczowód zostaje podzielony pomiędzy szwy. W kolejnym rozdziale szczegółowo opisano sposób wykonania odwracalnej niedrożności moczowodu.Jest to pierwszy etap procedury RUUL. Moczowód zostaje odsłonięty i wyizolowany za pomocą pęsety kątowej w celu wywołania niedrożności. Moczowód zostaje podwiązany dwukrotnie przy użyciu czarnej plecionej nici jedwabnej 6.0.Moczowód należy zamknąć blisko pęcherza, aby zachować odpowiednią długość moczowodu do wykonania anastomozy z pęcherzem. Podczas procedury cofania, szwy zostają przycięte, lecz jeden pozostaje długi do późniejszego użycia, a następnie odcina się kawałek miękkiej plastikowej rurki o długości około pięciu milimetrów. Następnie wykonuje się podłużne nacięcie, tak aby można było ją rozchylić i nałożyć wokół moczowodu.Plastikowa rurka o miękkiej ściance powinna mieć średnicę wewnętrzną 1 mm i średnicę zewnętrzną 2 mm. Rurkę o miękkiej ściance umieszcza się ostrożnie wokół mocznika, upewniając się, że po zamknięciu długa nitka szewna wystaje ze środka nacięcia. Następnie wokół rurki przekłada się i zawiązuje odcinek czarnej plecionej nici jedwabnej o rozmiarze 6-0.Następnie długą nitkę chirurgiczną wychodzącą ze środka cewki włącza się do kolejnego wiązania. Wykonuje się to w celu pewnego zamocowania mocznika i cewki na miejscu. Cewka wokół mocznika zapobiegnie nadmiernemu rozszerzeniu mocznika pod koniec obu procedur UUO i RUUO.Jelitach zostają przywrócone na miejsce, a następnie zszywa się otrzewną i zamyka skórę za pomocą metalowych klipsów. W miejscu operowanego obszaru stosuje się również jod. Znieczulenie jest częściowo odwracane poprzez podskórną injekcję aamaz.Wodorochlorek i płyny podaje się podskórnie w objętości 1 ml ogrzanej soli fizjologicznej. Myszy monitoruje się do momentu odzyskania przytomności, a następnie pozostawia im się możliwość ogrzania w inkubatorze utrzymywanym w temperaturze 29°C przez 24 godziny. W dniach następujących po niedrożności moczowodów w nerkach rozwija się wodomiączka.Myszy można uśmiercić w różnych punktach czasowych podczas fazy urazu lub po zniesieniu niedrożności. W następnym rozdziale szczegółowo opisano, jak przeprowadzić zniesienie niedrożności, co stanowi drugi etap procedury RUUO. Mysz zostaje poddana znieczuleniu i przygotowana zgodnie z wcześniejszym opisem.Metalowe klamry do skóry zostają usunięte i wykonuje się laparotomię. Szwy otrzewne są usuwane, a otrzewną można delikatnie otworzyć za pomocą pęsety ząbkowanej do szczurów. Następnie przygotowuje się mysz i odsłania lewy moczowód, zgodnie z wcześniejszym opisem, używając pęsety kątowej.Moczowód oraz miękka plastikowa rurka są izolowane od otaczających tkanek. Szwy utrzymujące miękką rurkę na miejscu zostają przecięte skalpelem, a następnie usunięte. Następnie ostrożnie usuwa się miękką plastikową rurkę, co ujawnia rozszerzony moczowód.Moczowód w miejscu niedrożności jest kruchy i może ulec przerwaniu powyżej przeszkody, co miało miejsce w tym klipie. Jednak szwy umieszczone wcześniej blisko pęcherza podczas pierwszego etapu UUO pozostaną nienaruszone, co zapewni, że mocz nie będzie wyciekać z pęcherza do jamy otrzewnowej. Pod moczowód kładzie się kawałek sterylnej gazy, aby zebrać osad moczowy, który wypłynie z wcześniej niedrożnego moczowodu.Pozostała długość odblokowanego mocznika musi zostać odpompowana aż do uzyskania przejrzystego moczu, aby upewnić się, że światło mocznika zostało oczyszczone z wszelkich zanieczyszczeń. Po opróżnieniu mocznika i miedniczki nerkowej, na końcowym odcinku mocznika aplikuje się długą, czarną, plecioną nicią jedwabną o rozmiarze 6-0. Służy ona jako pomoc przy późniejszym zespoleniu mocznika z pęcherzem.Następnie moczowód jest odwijany tak, aby znajdował się przed swoją pierwotną pozycją i spoczywał na nerce. Na końcu moczowodu umieszcza się pojedynczy szew z nano poliamidowej nici monofilamentowej. Należy zadbać o to, aby szew pozostał w warstwie mięśniowej i nie wniknął do światła moczowodu.Szew służy do zakotwiczenia moczowodu w pęcherzu; następnie, aby przygotować pęcherz do anastomozy, tworzy się kanał przez pęcherz, wprowadzając igłę 21 G ukośnie przez pęcherz. Igła 21 G jest następnie wykorzystywana do przeprowadzenia igły z oczkiem przez pęcherz. Wcześniej umieszczony w moczowodzie szew Nino jest następnie przeciągnięty przez pierwsze nacięcie w pęcherzu i wyprowadzony przez ścianę pęcherza w sąsiedztwie punktu wejścia, aby przeprowadzić moczowód przez pęcherz.Długą szuturę 6-0 umieszczoną na końcu mocznicy przeciąga się przez ucho igły. Następnie igłę powoli wycofuje się przez pęcherz, upewniając się, że mocznica również zostaje wciągnięta do wnętrza pęcherza. Po umieszczeniu mocznicy w pęcherzu, szutury nano umieszczone w mocznicy i ścianie pęcherza zostają zawiązane, aby trwale i pewnie zakotwiczyć mocznicę w odpowiednim miejscu.Nakłada się drugi szew otax. Ponownie przeprowadza się go przez moczowód, upewniając się, że pozostaje on w obrębie warstwy mięśniowej, następnie przez nacięcie pęcherza i na zewnątrz przez ścianę pęcherza. Następnie wiąże się go w podobny sposób.Trzeci szew nano tax jest umieszczany w tylnej części pęcherza. Następnie, za pomocą grzbietów otwartych nożyczek, ścianę pęcherza lekko odsuwa się do tyłu, aby odsłonić odcinek moczowodu. Następnie moczowód zostaje przekrojony powyżej szwu płucnego.Pomalowany moczowód zostanie następnie cofnięty pod kątem do pęcherza. Wykorzystuje się cztery pęsety, aby upewnić się, że moczowód został w pełni cofnięty do pęcherza. Na koniec ranę wyjściową w pęcherzu zamyka się szwem jednowłóknistym poliamidowym o rozmiarze 9-0; przed zamknięciem należy upewnić się, że moczowód jest stabilnie zakotwiczony w pęcherzu.Zaszyć otrzewną i skórę zgodnie z wcześniejszym opisem, a następnie zapewnić opiekę pooperacyjną zgodnie z wcześniejszym opisem. W niniejszym badaniu wszystkim myszom z UUO pozwolono na siedmiodniową rekonwalescencję w celu odbarczenia odblokowanej nerki, choć można badać wcześniejsze lub późniejsze punkty czasowe. Poniżej przedstawiono dane ilustrujące wygląd nerek zablokowanych i odblokowanych oraz wynikające z tego uszkodzenia.Rysunek ten przedstawia wygląd natywnych nerek, miedniczek nerkowych i moczowodów w modelu U-U-L-U-U-O w porównaniu z nerką natywną. Nerka z UUO poddana obstrukcji przez siedem dni wykazuje cechy wodniaka oraz ma blady kolor. Po siedmiu dniach od odbarczenia, nerka z RUO uległa dekompresji, a miedniczka nerkowa i moczowód powróciły do rozmiarów i koloru zbliżonych do nerki natywnej.Należy zauważyć, że moczowód w modelu IUO jest krótszy od moczowodów w modelu UUO i nerek natywnych ze względu na technikę destrukturyzacji oraz anastomozę z pęcherzem moczowym. Rysunek ten przedstawia reprezentatywne obrazy przekrojów nerek barwionych H i E z nerek natywnych, UUO oraz RUUO. Zdrowe śródmiąższ nerek prawidłowych składa się z przekrojów poprzecznych zwartych, zdrowych kanalików.Liczba kanalików wskazanych czarnymi strzałkami wykazuje znaczne rozszerzenie w siódmej dobie. Po QUL w probówce kontrolnej rozszerzenie jest wyraźnie mniejsze w siódmej dobie po odwróceniu UUL. Przedstawiony tutaj model mysi nefropatii obturacyjnej jest indukowany jednostronną obstrukcją moczowodu, która może być nieodwracalna lub odwracalna.Opisany tutaj model odwracalny umożliwia usunięcie niedrożności moczowodu oraz wykonanie anastomozy moczowodu z pęcherzem w celu pełnego przywrócenia przepływu moczu. Wynikająca z tego dekompresja nerki pozwala na badanie przebudowy tkanek w eksperymentach po urazie. Połączenie modeli nieodwracalnej i odwracalnej nefropatii obturacyjnej dostarcza badaczom cennych informacji na temat procesów chorobowych oraz wpływu interwencji terapeutycznych na rozwój uszkodzeń i następującą po nich przebudowę tkanek.

a-murine-model-irreversible-reversible-unilateral-ureteric

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Model mysiego nieodwracalnego i odwracalnego jednostronnego zaparcia moczowodów

Ten film pokazuje procedurę generowania modelu myszy z jednostronną niedrożnością moczowodu. Zabieg polega na przecięciu jednego z moczowodów myszy w celu utrudnienia przepływu moczu.

Mysi model jednostronnej niedrożności moczowodu: zabieg chirurgiczny mający na celu zablokowanie przepływu moczu z nerki w modelach mysich

Opisujemy metodę oceny ekspresji mikroRNA w nerkach myszy z jednostronną niedrożnością moczowodu (UUO) za pomocą ilościowej reakcji łańcuchowej polimerazy z odwrotną transkrypcją. Protokół ten jest odpowiedni do badania profili ekspresji mikroRNA nerek u myszy z UUO oraz w kontekście innych stanów patologicznych.

Ilościowa ocena ekspresji mikroRNA PCR w czasie rzeczywistym w nerce myszy z jednostronną niedrożnością moczowodu

Tutaj prezentujemy protokół z wykorzystaniem mikroskopii 2-fotonowej u szczurów z Monachium Wistar Fromter z powierzchniowymi kłębuszkami nerkowymi w celu ilościowego określenia wpływu przedłużonej niedrożności moczowodu na dynamikę i funkcję kłębuszków nerkowych.

Wykorzystanie mikroskopii 2-fotonowej do ilościowego określenia wpływu przewlekłej jednostronnej niedrożności moczowodu na procesy kłębuszkowe

Obecny protokół opisuje krok po kroku, powtarzalny model jednostronnej niedrożności moczowodu.

Niedojrzały mysi model odwracalnej jednostronnej niedrożności moczowodu

Ten protokół opisuje metodę wywoływania jednostronnej niedrożności moczowodu (UUO) u myszy w celu zbadania postępu zwłóknienia tkanek w nefropatii obturacyjnej. Obejmuje zabiegi chirurgiczne, opiekę pooperacyjną i metody oceny zwłóknienia.

Model jednostronnej niedrożności moczowodu do badania zwłóknienia śródmiąższowego nerek

Niniejszy artykuł zawiera szczegółowe instrukcje, które umożliwią badaczom wykonanie odwracalnej jednostronnej niedrożności moczowodu u myszy przy użyciu ustandaryzowanego modelu, który umożliwia analizę długoterminowych wyników strukturalnych i funkcjonalnych po odwróceniu przedłużonej niedrożności moczowodu.

Mysi model do oceny długoterminowych wyników strukturalnych i funkcjonalnych po odwróceniu przedłużającej się jednostronnej niedrożności moczowodu

Cholestaza jest stanem klinicznym często spotykanym zarówno w praktyce chirurgów, jak i gastroenterologów. Stworzenie odwracalnego modelu cholestazy u szczura może być trudne ze względu na niewielki rozmiar oraz specyficzną anatomię hepatopankreatobiliarnej tych zwierząt. Niniejszy artykuł wideo prezentuje sposób stworzenia odwracalnego modelu cholestazy.

Tworzenie odwracalnego modelu cholestazy u szczura

Opisano niezawodną i powtarzalną metodę wywoływania jednostronnego urazu rdzenia kręgowego w odcinku szyjnym przy użyciu impaktora Infinite Horizon. Metoda ta wykorzystuje specjalnie zaprojektowaną ramę i zacisk do stabilizacji kręgosłupa. Standaryzowana procedura oraz biomechaniczne parametry urazu pozwalają na uzyskanie wystarczających i trwałych obrażeń.

Model kontuzyjny jednostronnego urazu rdzenia kręgowego w odcinku szyjnym z wykorzystaniem urządzenia Infinite Horizon Impactor

Uraz chirurgiczny wywołuje odpowiedź zapalną. Wiadomo, że cytokiny i ligandy endogenne modulują wielkość zawału mięśnia sercowego po niedokrwieniu i reperfuzji. Przedstawiamy zmodyfikowany model niedokrwienia i reperfuzji u myszy z zamkniętą klatką piersiową, wykorzystujący obciążniki wiszące w celu zminimalizowania efektów torakotomii.

Mysi model zamkniętoklatkowy niedokrwienia i reperfuzji mięśnia sercowego

Mysi model gojenia się ran skórnych, który może być używany do oceny związków terapeutycznych w warunkach fizjologicznych i patofizjologicznych.

Mysi model gojenia się ran

Poznaj model mysiej jednostronnej niedrożności moczowodu do badania uszkodzenia i regeneracji nerek. Technika obejmuje nieodwracalne i odwracalne UUO z analizą histologiczną zmian strukturalnych.

Mysi model nieodwracalnej i odwracalnej jednostronnej niedrożności moczowodu

Przeglądaj więcej filmów