RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/52727-v
Sachi Horibata1, Tommy V. Vo2, Venkataraman Subramanian3, Paul R. Thompson3, Scott A. Coonrod1
1Department of Baker Institute for Animal Health,Cornell University, 2Department of Molecular Biology and Genetics,Cornell University, 3Department of Biochemistry and Molecular Pharmacology,University of Massachusetts Medical School
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Tutaj dokumentujemy użycie testu tworzenia kolonii miękkiego agaru do testowania wpływu inhibitora enzymu deiminazy peptydyloargininowej (PADI), BB-Cl-amidyny, na rak piersi rak piersi w badaniach in vitro.
Ogólnym celem tej procedury jest ilościowe określenie wpływu leczenia na zdolność komórek do proliferacji w matrycach półstałych, ponieważ zwiększona zdolność jest cechą charakterystyczną geniczności guza komórkowego za pomocą miękkiego testu agarowego, geniczność guza mierzy się poprzez zdolność komórki do tworzenia kolonii w półstałym żelu AROS. Ponieważ nieprzekształcone komórki nie są w stanie szybko rozmnażać się w tym środowisku, półstały żel AROS jest konstruowany przez wykonanie najpierw 0,6% dolnej warstwy AROS. Następnie nad dolną warstwą dodaje się komórkę zawierającą 0,3% warstwę żelu AROS.
W tym teście komórki eksperymentalne są traktowane inhibitorem peptydylu, argininy, dazy lub enzymu pad opracowanego przez dr Subramaniana. Co tydzień dodawana jest dodatkowa warstwa odżywcza, która jest żelem 0,3% aros z leczeniem lub bez. Ostatnim krokiem jest policzenie liczby kolonii większych niż 70 mikrometrów do analizy.
Ostatecznie mikroskopia odwrócona służy do pokazania różnicy w liczbie kolonii między grupą kontrolną a grupą leczoną. Cześć, nazywam się Achi Huta. Jestem doktorantem w laboratorium Dr. Scotta Krosa w Baker Institute for Animal Health.
Na Uniwersytecie Cornell test tworzenia miękkich kolonii tygrysów może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie biologii raka, takie jak ocena genicity guza szerokiej gamy komórek rakowych pod kątem ich wrażliwości na leki, hormony i wiele innych schorzeń leczenia. Rozpocznij tę procedurę od przygotowania 3%dwa hydroksyetylo aros do czystej, suchej szklanej butelki o pojemności 100 mililitrów. Dodaj 0,9 grama dwóch hydroksyetyloaros, a następnie 30 mililitrów wody destylowanej.
Podgrzej mieszaninę w kuchence mikrofalowej przez 15 sekund i delikatnie zamieszaj. Powtarzaj ten krok, aż proszek AROS całkowicie się rozpuści. Następnie należy sterylizować butelkę z roztworem w autoklawie przez 15 minut.
Pozwól roztworowi agros ostygnąć do temperatury pokojowej. Zanim przejdziesz dalej, użyj wstępnie podgrzanych kilku pipet pięciomililitrowych i 10-mililitrowych w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza, aby zapobiec zastyganiu aros w pipecie. W przypadku częściowego obchodzenia się poluzuj pokrywkę butelki i podgrzewaj w kuchence mikrofalowej gotowy roztwór 3%2% HYDROKSYETYLU aro przez 15 sekund.
Następnie delikatnie zamieszaj roztwór i wstaw do kuchenki mikrofalowej przez kolejne 15 sekund. Zachowaj ostrożność podczas wirowania roztworu ARO, ponieważ roztwór unosi się pod wpływem powietrza i może się rozlać, jeśli w butelce mikrofalowej znajdują się resztki stałego żelu. Przez kilka kolejnych sekund trzymaj butelkę zawierającą roztwór ARO w łaźni wodnej o temperaturze 45 stopni Celsjusza podczas kolejnych kroków, aby zapobiec przedwczesnemu zestaleniu się roztworu agro.
Następnie przenieś 12 mililitrów podgrzanego podłoża za pomocą pipet Prewarm do sterylnej stożkowej probówki o pojemności 50 mililitrów. Natychmiast dodaj trzy mililitry 3% roztworu aros i delikatnie odwróć stożkową rurkę, aby wymieszać aros z podłożem. Następnie delikatnie dodaj dwa mililitry tej mieszaniny do każdej studzienki sześciodołkowej płytki hodowlanej, nie tworząc żadnych pęcherzyków powietrza.
Inkubować sześciodołkową płytkę hodowlaną poziomo na płaskiej powierzchni w temperaturze czterech stopni Celsjusza przez jedną godzinę, aby mieszanina mogła zestalić się. Po zestaleniu się mieszaniny umieść płytkę w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza na 30 minut. Dolna warstwa jest teraz gotowa do użycia.
Trudnym aspektem tej procedury jest upewnienie się, że wszystkie komórki są rozmieszczone równomiernie i że stopiona skorupa agra nie zestala się przed dodaniem do każdej studzienki, aby zapewnić, że seltz jest zmieszany z pożywką przed dodaniem płynnego żelu rolniczego. Dodatkowo rury są wcześniej podgrzewane, aby zapobiec zastyganiu roztworów podczas przenoszenia. Aby przygotować warstwę zawierającą komórkę, najpierw trypsyna oczka MCF 10 DCIS i rozcieńczyć je do stężenia 40 000 komórek na mililitr, a następnie pobrać osiem mililitrów pożywki za pomocą wstępnie ciepłych pipet i przenieść do sterylnej stożkowej probówki o pojemności 50 mililitrów.
Natychmiast dodaj dwa mililitry 3% aros do stożkowej probówki i delikatnie odwróć, aby wymieszać aros z podłożem. Unikaj tworzenia się pęcherzyków. Następnie weź dwa mililitry komórek i potraktuj je dwumikromolową chloraminą BB w DMSO lub samym DMSO jako kontrolę po zabiegu, wymieszaj komórki z 0,6% aros w rozcieńczeniu jeden do jednego, aby uzyskać końcowe stężenie jednej mikromolowej chloraminy BB.
Następnie weź jeden mililitr mieszaniny komórek aros i delikatnie dodaj do dolnej warstwy sześciodołkowej płytki hodowlanej. Umieść sześciodołkową płytkę hodowlaną poziomo na płaskiej powierzchni w temperaturze czterech stopni Celsjusza na co najmniej 15 minut, aby umożliwić zestalenie się wierzchniej warstwy. Po zestaleniu się mieszaniny umieść płytkę w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza na tydzień przed dodaniem warstwy zasilającej.
Rozpocznij przygotowanie warstwy karmienia od podgrzewania w kuchence mikrofalowej gotowego 3% roztworu dwuwodorowodorkowego aro, jak poprzednio, i zrównoważenia butelki z roztworem agro w łaźni wodnej o temperaturze 45 stopni Celsjusza, wymieszaj jeden mililitr 3% roztworu agro z dziewięcioma mililitrami ciepłej pożywki do 50-mililitrowej stożkowej rurki i delikatnie odwróć, aby wymieszać aros z podłożem. Unikaj tworzenia się pęcherzyków powietrza. Po potraktowaniu mieszaniny chloraminą BB delikatnie dodać jeden mililitr mieszaniny do każdej studzienki z sześciodołkowej płytki hodowlanej zawierającej dolną i miękką warstwę.
Następnie umieść sześciodołkową płytkę hodowlaną poziomo na płaskiej powierzchni w temperaturze czterech stopni Celsjusza na co najmniej 15 minut, aby mieszanina mogła się zestalić. Po zestaleniu się warstwy podajnika umieść płytkę w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza. Bader, powtarzaj tę procedurę karmienia co tydzień, nakładając jeden mililitr 0,3% roztworu do obróbki pożywki agros na istniejącą warstwę podajnika, aby uzupełnić komórki nową pożywką, aż do zaobserwowania tworzenia kolonii.
Po dwóch i pół tygodnia wzrostu komórek w miękkim agarze liczy się liczbę kolonii w każdym dołku. Używając mikroskopu świetlnego w celu ułatwienia oceny ilościowej, wydrukuj siatkę na przezroczystości i przymocuj siatkę do płytki sześciodołkowej, aby pomóc zlokalizować miejsce, w którym znajdują się komórki podczas liczenia. Wielkość kolonii jest określana ilościowo na podstawie średnicy każdej kolonii i będzie się różnić, wstępnie zdefiniuj referencyjną wielkość kolonii, aby określić, które kolonie zostaną ocenione.
Na przykład w tym przypadku w analizie danych uwzględniane są kolonie o wielkości 70 mikrometrów lub większej. Po policzeniu uszczelnij sześciodołkową płytkę hodowlaną paraformem, aby zapobiec wysychaniu żeli. Próbki należy przechowywać w temperaturze czterech stopni Celsjusza, aby zapobiec dalszemu tworzeniu się kolonii i do przyszłego liczenia.
Wyniki pokazują, że chloramina BB znacząco hamuje tworzenie kolonii pochodzących z komórek MC 10 DCIS w obecności inhibitora podkładki. Nastąpiło zmniejszenie zarówno tworzenia kolonii, jak i wielkości kolonii w porównaniu z kontrolą DMSO. Wielkość kolonii komórek MCF 10 DCIS traktowanych chloraminą BB mieściła się głównie w zakresie od 20 do 100 mikrometrów.
Podczas gdy wielkość kolonii do kontroli DMSO wykazywała większy zakres od 70 do 150 mikrometrów po dwóch i pół tygodniu wzrostu, kolonie większe niż 70 mikrometrów zostały policzone i przeanalizowane. W grupie kontrolnej DMSO znajdowało się średnio około 3 500 kolonii, podczas gdy w grupie leczonej chloraminą BB zaobserwowano tylko około 2000 kolonii. Po dwóch i pół tygodniach miękkiego rolnictwa oznacza to 44% spadek średniego tworzenia kolonii w obecności jednej mikromolowej BB Chloraminy, co wskazuje na znaczne zahamowanie nowotworowe komórek raka piersi przez inhibitor podpaski.
Próbując wykonać tę procedurę, należy pamiętać o wcześniejszym podgrzaniu wszystkich odczynników i sprzętu, aby uniknąć zestalenia się roztworów podczas obchodzenia się z roztworem i dziękuję za oglądanie.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
09:18
Related Videos
22.4K Views
07:31
Related Videos
5K Views
04:11
Related Videos
3.5K Views
03:31
Related Videos
2.7K Views
08:01
Related Videos
113.5K Views
13:38
Related Videos
12.6K Views
12:22
Related Videos
8.9K Views
08:12
Related Videos
5.4K Views
09:44
Related Videos
5K Views
07:03
Related Videos
5K Views