-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Procedura rejestracji poligraficznej do pomiaru snu u myszy
Procedura rejestracji poligraficznej do pomiaru snu u myszy
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Polygraphic Recording Procedure for Measuring Sleep in Mice

Procedura rejestracji poligraficznej do pomiaru snu u myszy

Full Text
25,121 Views
08:45 min
January 25, 2016

DOI: 10.3791/53678-v

Yo Oishi1, Yohko Takata1, Yujiro Taguchi2, Sayaka Kohtoh2, Yoshihiro Urade1, Michael Lazarus1

1International Institute for Integrative Sleep Medicine (WPI-IIIS),University of Tsukuba, 2Public Sector/Medical Solutions,Kissei Comtech Co., Ltd

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Zapis elektroencefalogramu (EEG) i elektromiogramu (EMG) u swobodnie zachowujących się myszy jest kluczowym krokiem do skorelowania zachowania i fizjologii ze snem i czuwaniem. Opisany w niniejszym dokumencie protokół eksperymentalny zapewnia przewodowy system do pozyskiwania zapisów EEG i EMG u myszy.

Ogólnym celem tej procedury rejestracji poligraficznej jest określenie stanu czujności myszy i zmierzenie czasu spędzonego w stanie czuwania, snu z szybkimi ruchami gałek ocznych lub snu bez szybkich ruchów gałek ocznych. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w prawie każdej dziedzinie neuronauki, która stara się skorelować zachowanie i fizjologię z aktywnością neuronów korowych u zachowujących się zwierząt. Główną zaletą tej techniki jest to, że może rejestrować wiele węzłów, elektroencefalogram i elektromiogram oraz może być łączona z innymi implantami mózgu, takimi jak włókna światłowodowe i kaniule infuzyjne.

Wizualna demonstracja tej metody jest bardzo ważna, ponieważ implantacja elektrody musi być wykonana prawidłowo, a jakość elektrody jest niezwykle krytyczna dla oceny stanów fizycznych. Procedurę zademonstruje Yohko Takata, doktor habilitowany z mojego laboratorium. Przed rozpoczęciem wysterylizuj wszystkie narzędzia chirurgiczne w sterylizatorze z gorącymi kulkami.

Gdy potwierdzisz, że mysz jest znieczulona przez uszczypnięcie palca u nogi, zgol włosy na głowie i szyi. Następnie przymocuj dom do ramy stereotaktycznej i przymocuj głowę między dwoma nausznikami. Następnie nałóż maść okulistyczną na oczy, aby zapobiec wysuszeniu.

Kontynuuj oczyszczanie ogolonej skóry peelingami na bazie alkoholu i jodu. Następnie przetnij wzdłuż linii środkowej skalpelem, aby odsłonić czaszkę i przymocuj skórę z boku za pomocą klipsów, aby utrzymać otwarte pole operacyjne. Za pomocą frezu z węglików spiekanych z wiertłem 0,8 milimetra wykonaj dwa otwory.

Umieść jeden otwór nad czołową częścią kory mózgowej. Umieść drugi otwór nad obszarem ciemieniowym prawej półkuli. Następnie za pomocą śrubokręta jubilerskiego wkręć w otwory rejestrujące EEG ze stali nierdzewnej.

Wkręć za pomocą zaledwie dwóch do dwóch i pół obrotu, aby uzyskać znieczulenie zewnątrzoponowe nad korą. nie powinny się poruszać po włożeniu. To bardzo ważne.

Teraz przymocuj zespół elektrod kołkami do góry do czaszki. Elektrody muszą być przymocowane prosto. Użyj bawełnianego wacika, aby zabezpieczyć pozycję elektrody i przyklej elektrodę za pomocą cyjanoakrylanu, a następnie cementu dentystycznego.

Następnie wykonaj małe otwory w mięśniu czworobocznym i włóż do nich elektrodę EMG. Następnie zszyj skórę jedwabną nicią o średnicy 0,1 milimetra. Teraz wyjmij mysz z ramki stereotaktycznej i umieść ją na poduszce grzewczej.

Podać myszy dootrzewnowe wstrzyknięcia ampicyliny i meloksykamu i monitorować mysz aż do odzyskania pozycji mostkowej. Następnie trzymaj mysz w spokoju. Tydzień po wszczepieniu elektrod przenieś mysz do eksperymentalnej klatki w dźwiękoszczelnej komorze nagraniowej.

Przymocuj zespół elektrody EEG/EMG w myszy do nagrywającego podłączonego do pierścienia ślizgowego. Podłącz konwertera AD do filtra sygnału EEG/EMG amplifier podłączony do pierścienia ślizgowego. Użyj konwertera AD, aby przekonwertować sygnał na sygnał cyfrowy 128 Hz, a na koniec nagrać sygnał do komputera.

Przyzwyczaj mysz do dwóch do trzech dni w komorze nagraniowej. Jeśli zapis EEG/EMG obejmuje podawanie leków, delikatnie dotykaj myszy każdego dnia, tak jak w tych, w których podawano lek. Następnie uruchom oprogramowanie do rejestracji EEG/EMG.

Aby rozpocząć, kliknij kartę Informacje o pliku danych i kliknij pole obok nazwy pliku. Wprowadź nazwę pliku i kliknij przycisk Zapisz. Następnie z zakładki Warunek zapisu wybierz wszystkie kanały EEG/EMG, które mają być rejestrowane.

Wybierz również opcję Częstotliwość próbkowania na tej karcie. Teraz w zakładce Informacje o kanale sprawdź, czy wybrane kanały są wyświetlane poprawnie. Po potwierdzeniu rozpocznij nagrywanie, wybierając najpierw zakładkę Ustawienia timera.

Następnie kliknij monitor, aby wyświetlić EEG i EMG. Jeśli sygnały są wyświetlane poprawnie, ustaw czas rozpoczęcia i zakończenia nagrania w obszarze Zegar główny. Następnie kliknij przycisk Monitor, aby rozpocząć nagrywanie.

Teraz rejestruj sygnały w warunkach wyjściowych i różnych warunkach leczenia przez kilka dni. Po zakończeniu eksperymentu poddaj mysz eutanazji pentobarbitalem. Uruchom oprogramowanie do analizy EEG/EMG.

Otwórz surowe dane EEG/EMG, które są plikiem KCD. Kliknij kartę Uśpienie i ustaw czas epoki na 10 sekund. Następnie wybierz Multi-screening, aby automatycznie ocenić wszystkie dziesięć drugich epok w trzech etapach na podstawie amplitud EEG i EMG oraz na podstawie analizy widma mocy EEG.

Następnie kliknij na zakładkę Warunek FFT dla EEG. Tam ustaw parametry do analizy spektralnej mocy. Użyj 256 punktów odniesienia odpowiadających co dwie sekundy EEG, użyj funkcji okna hamminga i użyj średnio pięciu widm na epokę.

Następnie kliknij przycisk OK.Teraz kliknij przycisk Rozpocznij klasyfikowanie, aby rozpocząć automatyczne sprawdzanie. Następnie otwórz zapisane dane, które są zapisane w formacie pliku RAF i sprawdź wyniki automatycznego sprawdzania. W razie potrzeby popraw wyniki, jeśli nie spełniają standardowych kryteriów.

Aby dokonać korekty, kliknij i przytrzymaj lewy przycisk myszy na nieprawidłowo punktowanej epoce i przeciągnij kursor po ciągu błędnie punktowanych epok. Zwolnij lewy przycisk myszy i wybierz prawidłowy stan zachowania w wyskakującym okienku. W warunkach wyjściowych myszy wykazywały wyraźny rytm dobowy snu i czuwania zgodny z ich nocnym charakterem.

Podczas 12-godzinnego okresu świetlnego myszy spędzały średnio 6,7 godziny snu NREM i 0,9 godziny snu REM. Natomiast podczas 12-godzinnego okresu ciemności dominowała czuwanie. Zarejestrowano również inne pomiary.

Obejmowały one rozkład epok snu, ich średni czas trwania i przejścia fazowe dla każdego stanu czujności. Widma mocy EEG dla snu NREM i REM wykazują silną gęstość mocy EEG w zakresie częstotliwości od 0,5 do czterech herców dla snu NREM w porównaniu z gęstością mocy od sześciu do 10 herców dla snu REM. Aby ocenić wpływ kofeiny na sen, myszy C57 Black 6 podawano nośnikiem jednego dnia i kofeiną następnego dnia.

Dootrzewnowe zastrzyki kofeiny podawano na początku cyklu świetlnego. Zgodnie z oczekiwaniami, nagranie ujawniło, że kofeina zwiększyła ilość czuwania u myszy. Trzykrotne zwiększenie stanu czuwania nastąpiło przez trzy godziny po wstrzyknięciu.

Po opanowaniu zabieg implantacji elektrody można wykonać w mniej niż 20 minut. Ocena i korekta danych EEG przez okres 24 godzin może być wykonana w około 30 minut. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak skonfigurować zapis elektroencefalogramu i elektromiogramu u myszy oraz jak ocenić, czy i jak długo zwierzę nie śpi lub śpi.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: zapis poligraficzny pomiar snu myszy elektroencefalogram (EEG) elektromiogram (EMG) stan czujności czuwanie sen z szybkimi ruchami gałek ocznych (REM) sen bez szybkich ruchów gałek ocznych (NREM) implanty mózgowe światłowody kaniule infuzyjne zabieg chirurgiczny rama stereotaktyczna rejestrujące EEG elektrody EMG znieczulenie opieka pooperacyjna

Related Videos

Manipulacja optogenetyczna obwodów neuronowych w celu przejścia ze snu do czuwania u myszy

05:54

Manipulacja optogenetyczna obwodów neuronowych w celu przejścia ze snu do czuwania u myszy

Related Videos

368 Views

Analiza zachowań związanych ze snem u myszy za pomocą elektroencefalogramu i zapisów elektromiogramu

05:00

Analiza zachowań związanych ze snem u myszy za pomocą elektroencefalogramu i zapisów elektromiogramu

Related Videos

1.5K Views

Manipulacja elektrokortykogramem padaczkowym (ECoG) i snem u szczurów i myszy za pomocą akupunktury

09:06

Manipulacja elektrokortykogramem padaczkowym (ECoG) i snem u szczurów i myszy za pomocą akupunktury

Related Videos

10K Views

Kwantyfikacja dynamiki mocy widmowej i tętna w podczerwieni u śpiących myszy

10:56

Kwantyfikacja dynamiki mocy widmowej i tętna w podczerwieni u śpiących myszy

Related Videos

10.5K Views

Nieinwazyjne, wysokoprzepustowe określanie czasu trwania snu u gryzoni

07:33

Nieinwazyjne, wysokoprzepustowe określanie czasu trwania snu u gryzoni

Related Videos

8.2K Views

Pomiar kinuryniny i kwasu kynureninowego metodą wysokosprawnej chromatografii cieczowej: powiązanie biochemii z funkcjami poznawczymi i snem u szczurów

07:04

Pomiar kinuryniny i kwasu kynureninowego metodą wysokosprawnej chromatografii cieczowej: powiązanie biochemii z funkcjami poznawczymi i snem u szczurów

Related Videos

11K Views

Manipulacja optogenetyczna obwodów nerwowych podczas monitorowania stanów snu/czuwania u myszy

08:58

Manipulacja optogenetyczna obwodów nerwowych podczas monitorowania stanów snu/czuwania u myszy

Related Videos

10.4K Views

Komputerowy program do spektrogramu wielostożkowego do danych elektroencefalograficznych

04:13

Komputerowy program do spektrogramu wielostożkowego do danych elektroencefalograficznych

Related Videos

12.8K Views

Ustanowienie urządzenia do deprywacji snu u myszy

05:05

Ustanowienie urządzenia do deprywacji snu u myszy

Related Videos

2.3K Views

IntelliSleepScorer, pakiet oprogramowania z graficznym interfejsem użytkownika do automatycznego oceniania fazy snu myszy

04:54

IntelliSleepScorer, pakiet oprogramowania z graficznym interfejsem użytkownika do automatycznego oceniania fazy snu myszy

Related Videos

961 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code