9 czerwca 2016
Skaner do obrazowania cząstek magnetycznych w próbkach płaskich został opracowany przy użyciu techniki detekcji magnetycznej z mieszaniem częstotliwości planarnej. Reakcja produktu intermodulacji magnetycznej na nieliniowe niehisteretyczne namagnesowanie cząstek jest rejestrowana po wzbudzeniu dwuczęstotliwościowym. Może być używany do wykonywania obrazów 2D cienkich próbek biologicznych.
Ogólnym celem tej procedury jest wykorzystanie dwuwymiarowych mieszanych skanów detekcji magnetycznej do analizy cienkich próbek biologicznych zawierających cząstki nanomagnetyczne. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania z zakresu biochemii i diagnostyki medycznej, takie jak analiza skrawków tkanek wykorzystujących cząstki nanomagnetyczne jako związek wyrównujący. Główną zaletą tej techniki jest to, że pozwala ona na spotkanie rozkładu cząstek nanomagnetycznych.
Procedurę zademonstrują Eul-Gyoon Lim, Jae-chan Jeong i Jiho Chang, trzej badacze z mojego laboratorium. Głowica pomiarowa p-FMMD powinna być zaprojektowana zgodnie z protokołami tekstowymi. Szczegółowe informacje znajdują się we wszystkich specyfikacjach okablowania i zwijania.
Montaż i konfiguracja są szczegółowo opisane w protokole tekstowym. Obejmuje to regulację balansu wysokich częstotliwości i napięcia indukowanego. Następnie ustawiana jest elektronika pomiarowa, która obejmuje sekcję wzbudzenia, sekcje sterujące niskimi i wysokimi częstotliwościami oraz sekcję detekcji FMMD.
Następnie ustawiany jest przedwzmacniacz, pierwszy demodulator, wzmacniacz pośredni z filtrowaniem, drugi demodulator i wzmacniacz końcowy z filtrowaniem. Na koniec zamontowany jest skaner 2D i połączony ze sterowaniem komputerowym. Do tej procedury należy użyć cząstek magnetytu o średnicach 50 nanometrów i 100 nanometrów oraz cząstek maghemitu o średnicy 1 mikrona.
Umyj roztwory podstawowe cząstek w wodzie i zbierz cząstki za pomocą magnesu. Wylej wodę i umyj je jeszcze dwa razy. Następnie rozcieńczyć cząstki do roztworów 25 miligramów na mililitr za pomocą wody destylowanej.
Z roztworu cząstek o wielkości 100 nanometrów wykonaj pięciokrotną serię rozcieńczeń dla stężeń pięciu, jednego, 0,2 i 0,04 miligrama na mililitr. Następnie wybij kawałki absorpcyjnej bibuły za pomocą stempla do biopsji. Następnie zanurz dziurkacze w różnych roztworach cząstek o wielkości 100 nanometrów na 30 sekund.
Po namoczeniu pozostaw dziurkacze do wyschnięcia na powietrzu. Następnie przygotuj wycięte kawałki nitrocelulozy o wymiarach dwa na 18 milimetrów. Namocz jeden kawałek nitrocelulozy w nierozcieńczonym roztworze cząstek o średnicy jednego mikrona na 10 do 15 sekund i wysusz suszarką przy użyciu nieogrzanego powietrza.
Namocz drugi kawałek nitrocelulozy w dwóch roztworach o różnych stężeniach, aby uzyskać gradient stężeń i wysusz go jak drugi. Na koniec, wykorzystując działanie kapilarne, załaduj rurkę kapilarną 30 mikrolitrami nierozcieńczonego roztworu cząstek o średnicy 50 nanometrów. Następnie załaduj drugą kapilarnę 10 mikrolitrami 20-krotnego rozcieńczenia tych samych cząstek.
Kierunek skanowania powinien być krótszy z dwóch wymiarów płaskich. Ustaw punkt początkowy i długość skanowania za pomocą znaczników linijki na palecie. Wprowadź te wartości w oprogramowaniu do skanowania, a następnie ustaw przesunięcie skanowania tak, aby było nieco mniejsze niż osiągalna rozdzielczość przestrzenna.
Następnie ustaw prędkość skanowania, biorąc pod uwagę redukcję sygnału, która następuje z powodu filtrowania dolnoprzepustowego. Użyj wartości z zakresu od jednego do siedmiu milimetrów na sekundę. Teraz ustaw odległość kroku.
Całkowity czas skanowania jest obliczany przy użyciu formuły podanej w protokole tekstowym. Przed skanowaniem należy zabezpieczyć próbkę taśmą klejącą. Na potrzeby skanowania wygeneruj plik NVD dla programu do sterowania ruchem.
Otwórz program do sterowania ruchem PMC i załaduj plik NVD. Naciśnij przycisk Home, aby ustawić mechaniczne punkty początkowe. Zamknij program sterowania ruchem i wróć do programu skanera.
Następnie wykonaj skanowanie. W przypadku tych skanów intensywność sygnału analizowano jako funkcję stężenia kulek magnetycznych, a prędkość skanowania wynosiła 10 milimetrów na minutę. Stwierdzono silną korelację między stężeniem kulek a sygnałem.
Zależność między prędkością stopnia skanującego a natężeniem sygnału sprawdzono za pomocą papierowych granulek nasączonych kulkami magnetycznymi. Wyższe sygnały uzyskano przy niższych prędkościach skanowania. Porównanie skanu p-FMMD z obrazem optycznym próbki membrany nitrocelulozowej wyraźnie wykazało użyteczność p-FMMD jako skanera MPI.
Szerokość skanu wynika głównie z profilu czułości głowicy pomiarowej. Podobnie, dwie kapilary wypełnione cząstkami magnetycznymi o różnych stężeniach magnetycznych zostały sfotografowane i zeskanowane za pomocą p-FMMD. Oczywiste jest, że stężenia różniące się 20-krotnie są łatwe do odróżnienia.
Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak analizować 10 próbek zawierających cząstki nanomagnetyczne za pomocą techniki FMMD. Po opanowaniu tej techniki można ją wykonać w około godzinę, jeśli zostanie wykonana prawidłowo. Po opracowaniu technika ta utorowała drogę naukowcom w dziedzinie biochemii i diagnostyki medycznej do zbadania rozkładu cząstek nanomagnetycznych, które raczej wskazują na specyficzne przeciwciała w układzie narządów.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
W niniejszym artykule przedstawiono metodę obrazowania cienkich próbek biologicznych przy użyciu nowatorskiego skanera wykorzystującego płaskie mieszanie częstotliwości w detekcji magnetycznej. Technika ta rejestruje magnetyczną odpowiedź intermodulacyjną nanocząstek magnetycznych, co umożliwia tworzenie obrazów 2D.
Ten skaner płaskiego mieszania częstotliwości do detekcji magnetycznej (p-FMMD) umożliwia nieinwazyjne obrazowanie 2D rozkładu nanocząsteczek magnetycznych w cienkich próbkach biologicznych, wspierając walidację celu i opracowywanie testów na wczesnym etapie odkrywania. Poprzez rejestrowanie sygnałów intermodulacyjnych z cząsteczek superparamagnetycznych bez konieczności namagnesowania całej próbki, dostarcza ilościowych danych przestrzennych, które zwiększają pewność prognostyczną w badaniach mechanistycznych i skracają czas ograniczania ryzyka biologicznego. Metoda ta jest szczególnie istotna przy analizie skrawków tkanek i próbek diagnostycznych, w których precyzyjna lokalizacja znaczników magnetycznych determinuje decyzje o kontynuacji lub przerwaniu badań (go/no-go) w procesach identyfikacji związków wiodących.
Metoda p-FMMD wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków – od wczesnej walidacji celu, przez identyfikację związku wiodącego, aż po ocenę przedkliniczną – oferując wielokrotnie wykorzystywalną możliwość obrazowania w celu śledzenia rozkładu nanocząsteczek magnetycznych na poszczególnych etapach procesu.