Name: Protokół push-pull w celu ograniczenia kolonizacji budek lęgowych ptaków przez pszczoły miodne (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 3 s
Description: Poznaj metodę push-pull do ochrony budek lęgowych ptaków przed kolonizacją przez pszczoły miodne. Wykorzystuje ona repelenty i feromony, aby skutecznie odstraszać pszczoły bez ich zabijania.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Nasze badanie zostało przeprowadzone za zgodą United States Sugar Corporation. Dziękujemy R. Raidowi, S. Raidowi i T. Langowi za ich asystenta. Dziękujemy również M. Stanbackowi i trzem anonimowym recenzentom za sugestie, które wzbogaciły ten manuskrypt.

1. Budowa skrzynek pułapek roju
UWAGA: Istnieją dwa alternatywne protokoły budowy pułapek roju zawarte w krokach 1.1 i 1.2. Istnieje kilka dodatkowych sposobów konstruowania skrzynek-pułapek. Poniższe dwie metody są tutaj przedstawione, ponieważ przetestowaliśmy je w eksperymentach i zakończyły się sukcesem. W przypadku obu protokołów należy użyć sklejki o grubości od 1,3 cm do 2 cm poddanej obróbce ciśnieniowej.
<ol>
	<li>Budowa protokołu pułapki roju Opcja 1: Budowa skrzynki pułapki
	<ol>
		<li>Wytnij sześć kawałków sklejki o wymiarach 30 cm x 30 cm.</li>
		<li>Przymocuj cztery boki pudełka razem za pomocą gwoździ lub.</li>
		<li>Przymocuj dolną część za pomocą gwoździ lub.</li>
		<li>Przymocuj górną część za pomocą lub zszywek.
		<ol>
			<li>Nie używaj gwoździ do zabezpieczania góry. Górna część musi być zdejmowana, aby wyjąć pszczoły i wyczyścić pudełko.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Wywierć otwór o średnicy 2,5 cm w środku jednej z powierzchni skrzynki syfonu w odległości 2,5 cm od dolnej krawędzi.</li>
		<li>Nałóż podkład, uszczelniacz lub farbę na zewnętrzną stronę syfonu, aby chronić drewno przed warunkami atmosferycznymi.
		<ol>
			<li>Nie nakładaj żadnej farby ani szczeliwa na wnętrze syfonu. Może to być odstraszające lub toksyczne dla pszczół.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Budowa skrzynki pułapki roju Opcja protokołu 2: Użycie standardowego korpusu głębokiego ula
	<ol>
		<li>Zdobądź standardowy korpus ula o głębokości 10 ramek w lokalnym sklepie z artykułami dla pszczół.</li>
		<li>Wytnij górę i dół ze sklejki, każdy o długości 50,8 cm i szerokości 41,3 cm.</li>
		<li>Przymocuj dolną część za pomocą gwoździ lub.</li>
		<li>Przymocuj górną część za pomocą lub zszywek.
		<ol>
			<li>Nie używaj gwoździ do zabezpieczania góry. Górna część musi być zdejmowana, aby wyjąć pszczoły i wyczyścić pudełko.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Wywierć otwór o średnicy 2.5 cm pośrodku po jednej stronie skrzynki syfonu, 2.5 cm od dolnej krawędzi.</li>
		<li>Nałóż podkład, uszczelniacz lub farbę na zewnętrzną stronę syfonu, aby chronić drewno przed warunkami atmosferycznymi.
		<ol>
			<li>Nie nakładaj żadnej farby ani szczeliwa na wnętrze syfonu. Może to być odstraszające lub toksyczne dla pszczół.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Przygotowanie przynęty feromonowej
<ol>
	<li>Przygotuj mieszankę cytralu i geraniolu w proporcji 2:1.</li>
	<li>Umieść 1 ml tej mieszaniny w zatrzaskowej probówce do mikroodwirowania z polipropylenu o pojemności 1,5 ml.</li>
	<li>Zawiń przynęty w folię aluminiową, aby chronić je przed światłem. 
	Uwaga: Nasadka probówki wirówkowej jest nakłuwana szpilką po umieszczeniu jej w zamontowanej pułapce roju. 
	Uwaga: Przynęty można przechowywać w ciemnym miejscu w temperaturze pokojowej lub do dłuższego przechowywania w zamrażarce w temperaturze -10 °C.</li>
</ol>
3. Instalacja skrzynek pułapek roju
UWAGA: Istnieją dwa alternatywne protokoły instalacji skrzynek pułapek roju przedstawione w krokach 3.1 i 3.2.
<ol>
	<li>Instalacja Swarm Trap Box Protocol Opcja 1: Instalacja na słupie
	<ol>
		<li>Umieść drewniany słupek ogrodzeniowy o wymiarach 10 cm na 10 cm w ziemi w odległości od 10 m do 15 m od miejsca, w którym znajduje się budka lęgowa dla ptaków.</li>
		<li>Zbuduj wiszącą deskę z drewna impregnowanego ciśnieniowo o grubości 1,3 cm o wymiarach 20 cm na 20 cm.</li>
		<li>Wyrównaj wiszącą tablicę na środku jednej strony skrzynki pułapki, tak aby 10 cm nad górną częścią pudełka. Przymocuj deskę do pudełka za pomocą co najmniej dwóch gwoździ lub po obu stronach deski.</li>
		<li>Umieść skrzynkę pułapki na słupku na wysokości (od 1,5 m do 3 m), która jest bezpieczna i łatwa do usunięcia, gdy skrzynka pułapki zostanie skolonizowana przez pszczoły. Przykręć pudełko do słupka, mocując wiszącą tablicę. Umieść około 5 cm poniżej górnej części wiszącej deski i przykręć na miejscu.
		<ol>
			<li>Nie używaj gwoździ, ponieważ są one trudne do usunięcia.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Instalacja protokołu Swarm Trap Box Opcja 2: Instalacja na drzewie
	<ol>
		<li>Wywierć otwór o średnicy 5 mm w górnym tylnym rogu z każdej strony pudełka.</li>
		<li>Przeciągnij drut przez otwory. 
		Uwaga: W przypadku korzystania z tego protokołu łatwiej będzie przepuścić drut przez otwory przed zabezpieczeniem górnej części pudełka.</li>
		<li>Wybierz drzewo w odległości od około 10 m do 15 m od miejsca, w którym znajduje się budka lęgowa dla ptaków.
		<ol>
			<li>Nie umieszczaj budek pułapek na tych samych drzewach, co budki dla ptaków, ponieważ gdy ktoś sprawdzi stan budki dla ptaków, skrzynki pułapkowe skolonizowane przez pszczoły mogą zostać naruszone, powodując, że pszczoły staną się defensywne.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Przymocuj drut wokół drzewa na wysokości od 1,5 m do 3 m nad ziemią. 
		Uwaga: Aby chronić drzewo, wokół drutu można użyć wygaszacza kambium.
		<ol>
			<li>Upewnij się, że pudełko jest wypoziomowane i bezpieczne, aby się nie przewróciło. Pudełko można oprzeć na gałęzi drzewa, aby zwiększyć stabilność, jeśli jest to możliwe.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. Dodanie przynęty feromonowej
<ol>
	<li>Weź wcześniej przygotowaną przynętę z sekcji 2 i przebij górną część rurki za pomocą pinezki.</li>
	<li>Po zamontowaniu umieść przynętę w pudełku pułapki na dole w pobliżu wejścia, aby upewnić się, że nie wypadnie podczas montażu pudełka.</li>
</ol>
5. Leczenie budki lęgowej dla ptaków za pomocą permetryny
<ol>
	<li>Należy wybrać produkt z permetryną, który jest przeznaczony do stosowania wyłącznie u drobiu lub ptaków trzymanych w klatkach.</li>
	<li>Postępuj zgodnie z instrukcjami na etykiecie dotyczącymi mieszania i aplikacji 
	UWAGA: postępuj zgodnie ze wszystkimi wytycznymi dotyczącymi ochrony osobistej zawartymi na etykiecie.</li>
	<li>Spryskaj wnętrze budki lęgowej całkowicie, aż do momentu, gdy płyn spłynie z boków budki za pomocą opryskiwacza ręcznego o pojemności 3,7 l. 
	Uwaga: Budki lęgowe można leczyć przed lub po instalacji.</li>
</ol>
6. Usunięcie skrzynki-pułapki zajętej przez pszczoły miodne
<ol>
	<li>Zatkaj otwór wejściowy małym ręcznikiem. 
	UWAGA: nosić odpowiednią odzież ochronną, aby zapobiec użądleniu przez pszczoły miodne.
	<ol>
		<li>Jeśli rój ma zostać zabity, zrób to, gdy tylko zostanie wykryty. Jeśli ma być wykorzystany rój, pozwól pszczołom w pełni skolonizować skrzynki pułapkowe przed próbą ich usunięcia (zwykle około 2 tygodni). Jeśli to możliwe, usuń zajęte skrzynki pułapki na noc (gdy wszystkie pszczoły są w środku). Wejście do syfonu można zatkać w nocy, a następnie wyjąć skrzynkę następnego ranka w świetle dziennym. 
		Uwaga: Używaj czerwonego światła z filtrem podczas pracy w pobliżu pszczół w nocy.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Odkręć pudełko od słupka lub przetnij drut przytrzymujący pudełko do drzewa.</li>
	<li>Przenieś pudełko w nowe miejsce (co najmniej 4 km dalej) i wyciągnij ręcznik z otworu wejściowego.</li>
</ol>
7. Zniszczenie kolonii pszczół w skrzynce-pułapce
Uwaga: Na obszarach, na których hodowla afrykańskich pszczół miodnych jest nielegalna, zniszczenie kolonii może być uzasadnione. Jeśli tak, to w tym miejscu przedstawione są dwa protokoły.
<ol>
	<li>Solaryzacja kolonii
	<ol>
		<li>Zatkaj otwór wejściowy małym ręcznikiem. 
		UWAGA: nosić odpowiednią odzież ochronną, aby zapobiec użądleniu przez pszczoły miodne.</li>
		<li>Odkręć pudełko od słupka lub przetnij drut przytrzymujący pudełko do drzewa.</li>
		<li>Zamknij i zamknij całkowicie syfon w plastikowej torbie i pozostaw w pełnym słońcu na kilka dni 
		UWAGA: nosić odpowiednią odzież ochronną, aby zapobiec użądleniu przez pszczoły miodne.</li>
		<li>Wyczyść pudełko, usuwając martwe pszczoły i grzebień.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Stosowanie sprayu owadobójczego
	<ol>
		<li>Użyj sprayu owadobójczego oznaczonego jako do zabijania pszczół, aby spryskać wnętrze skrzynki pułapki. 
		UWAGA: postępuj zgodnie z instrukcjami na etykiecie insektycydu i używaj odpowiedniego sprzętu ochrony osobistej, aby zapobiec użądleniu przez pszczoły miodne.</li>
		<li>Zatkaj wejście i pozostaw pudełko na 24 godziny.</li>
		<li>Wyczyść pudełko, usuwając martwe pszczoły i grzebień. 
		Uwaga: Aby ponownie użyć syfonu, wyczyść jego wnętrze roztworem wody z mydłem, aby usunąć pozostałości środka owadobójczego. Dobrze spłucz i pozostaw do całkowitego wyschnięcia przed ponowną instalacją.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Zastosowanie pianki owadobójczej
	<ol>
		<li>Wypełnij całą wnękę zajmowanego syfonu pianką na bazie detergentu. (UWAGA: postępuj zgodnie z instrukcjami na etykiecie insektycydu i używaj odpowiedniego sprzętu ochrony osobistej oraz noś odpowiednią odzież ochronną, aby zapobiec użądleniu przez pszczoły miodne). 
		Uwaga: Pianę można nakładać za pomocą komercyjnego generatora piany do zwalczania szkodników lub gaśnicy na sprężone powietrze. 
		Uwaga: Aby użyć gaśnicy: Wlej 3.8 l wody do gaśnicy o pojemności 9.5 l, dodaj 190 ml środka spieniającego (lub detergentu do mycia naczyń), uszczelnij gaśnicę i zwiększ ciśnienie do 100-125 funtów/cal kwadratowy (psi). Tuż przed użyciem energicznie zamieszaj, a następnie nałóż pianę, aż syfon się przepełni. 
		Uwaga: Piana zabija pszczoły w ciągu 60 sekund, wnikając do przetchlinków i blokując tchawicę.</li>
		<li>Zatkaj wejście i pozostaw pudełko na 24 godziny.</li>
		<li>Wyczyść pudełko, usuwając martwe pszczoły i grzebień. 
		Uwaga: Aby ponownie użyć syfonu, wyczyść jego wnętrze roztworem wody z mydłem, aby usunąć pozostałości środka owadobójczego. Dobrze spłucz i pozostaw do całkowitego wyschnięcia przed ponowną instalacją.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Winston, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biology+and+management+of+Africanized+honey+bees%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Entomol%22%5BJournal%5D)">The biology and management of Africanized honey bees.</a> Annu Rev Entomol. 37, 173-193 (1992).</li>
<li>Schmidt, J. O., Hurley, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selection+of+nest+cavities+by+Africanized+and+European+honey+bees%5BTitle%5D)+AND+%22Apidologie%22%5BJournal%5D)">Selection of nest cavities by Africanized and European honey bees.</a> Apidologie. 26, 467-475 (1995).</li>
<li>Eadie, J., Sherman, P., Semel, B. Conspecific Brood Parasitism, Population Dynamics, and the Conservation of Cavity-Nesting Birds. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEadie%2C+J+%22In%3A+Behavioral+Ecology+and+Conservation+Biology%22">In: Behavioral Ecology and Conservation Biology</a>. Casro, T. , Oxford University Press. 306-340 (1998).</li>
<li>Newton, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+nest+sites+in+limiting+the+numbers+of+hole-nesting+birds%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Conserv%22%5BJournal%5D)">The role of nest sites in limiting the numbers of hole-nesting birds: a review.</a> Biol Conserv. 70, 265-276 (1994).</li>
<li>White, T. H. Jr, Abreu-González, W., Toledo-González, M., Torres-Báez, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+the+field%3A+artificial+nest+cavities+for+Amazona+parrots%5BTitle%5D)+AND+%22Wildl+Soc+Bull%22%5BJournal%5D)">From the field: artificial nest cavities for Amazona parrots.</a> Wildl Soc Bull. 33, 756-760 (2005).</li>
<li>Vaughan, C., Nemeth, N., Marineros, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ecology+and+management+of+natural+and+artificial+Scarlet+Macaw+%28Ara+macao%29+nest+cavities+in+Costa+Rica%5BTitle%5D)+AND+%22Ornitol+Neotrap%22%5BJournal%5D)">Ecology and management of natural and artificial Scarlet Macaw (Ara macao) nest cavities in Costa Rica.</a> Ornitol Neotrap. 14, 381-396 (2003).</li>
<li>WCS Guatemala Program. Integrated interventions to conserve Scarlet Macaws as flagships for the Maya Biosphere Reserve, Guatemala. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%222009-2010+Report+to+BBC+Wildlife+Fund%22">2009-2010 Report to BBC Wildlife Fund</a>. , (2011).</li>
<li>Fish and Wildlife Service. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Puerto+Rican+Parrot+%28Amazona+vittata%29+5-Year+Review%3A+Summary+and+Evaluation%22">Puerto Rican Parrot (Amazona vittata) 5-Year Review: Summary and Evaluation</a>. , (2008).</li>
<li>Berkunsky, I., DiazLuque, J. A., Kacoliris, F. P., Daniele, G., Milpacher, S., Gilardi, J. D., Martin, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((10+Years%3A+Blue-throated+Macaw+Conservation%5BTitle%5D)+AND+%22PsittaScene%22%5BJournal%5D)">10 Years: Blue-throated Macaw Conservation.</a> PsittaScene. 24, 3-5 (2012).</li>
<li>Synder, N., McGowen, P., Gilardi, J. D., Grajal, A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSynder%2C+N+%22Parrots%3A+Status+Survey+and+Conservation+Action+Plan+2000-2004%22">Parrots: Status Survey and Conservation Action Plan 2000-2004</a>. , Island Press. Washington D.C., USA. (2000).</li>
<li>Delnicki, D. E., Bolen, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+Black-Bellied+Whistling+duck+nest+sites+by+other+species%5BTitle%5D)+AND+%22SW+Naturalist%22%5BJournal%5D)">Use of Black-Bellied Whistling duck nest sites by other species.</a> SW Naturalist. 22, 275-277 (1977).</li>
<li>Twedt, D. J., Henne-Kerr, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Artificial+Cavities+Enhance+Breeding+Bird+Densities+in+Managed+Cottonwood+Forests%5BTitle%5D)+AND+%22Wildl+Soc+Bull%22%5BJournal%5D)">Artificial Cavities Enhance Breeding Bird Densities in Managed Cottonwood Forests.</a> Wildl Soc Bull. 27, 680-687 (2001).</li>
<li>Carlile, N., Priddel, D., Zino, F., Natividad, C., Wingate, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+of+four+successful+recovery+programmes+for+threatened+sub-tropical+petrels%5BTitle%5D)+AND+%22Mar+Ornithol%22%5BJournal%5D)">A review of four successful recovery programmes for threatened sub-tropical petrels.</a> Mar Ornithol. 31, 185-192 (2003).</li>
<li>Oldroyd, B. P., Lawler, S. H., Crozier, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Do+feral+honey+bees+%28Apis+mellifera%29+and+regent+parrots+%28Polytelis+anthopeplus%29+compete+for+nest+sites%5BTitle%5D)+AND+%22Aust+J+Ecol%22%5BJournal%5D)">Do feral honey bees (Apis mellifera) and regent parrots (Polytelis anthopeplus) compete for nest sites.</a> Aust J Ecol. 19, 444-450 (1994).</li>
<li>Downs, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Artificial+nest+boxes+and+wild+Cape+Parrots+Poicephalus+robustus%3A+persistence+pays+off%5BTitle%5D)+AND+%22Ostrich%22%5BJournal%5D)">Artificial nest boxes and wild Cape Parrots Poicephalus robustus: persistence pays off.</a> Ostrich. 76, 222-224 (2005).</li>
<li>Seeley, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+Nest+Cavity+Volume+by+the+Honey+Bee+%28Apis+mellifera%29%5BTitle%5D)+AND+%22Behav+Ecol+Sociobiol%22%5BJournal%5D)">Measurement of Nest Cavity Volume by the Honey Bee (Apis mellifera).</a> Behav Ecol Sociobiol. 2, 201-227 (1977).</li>
<li>Schneider, S. S., DeGrandi-Hoffman, G., Smith, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+African+Honey+Bee%3A+Factors+contributing+to+a+successful+biological+invasion%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Entomol%22%5BJournal%5D)">The African Honey Bee: Factors contributing to a successful biological invasion.</a> Annu Rev Entomol. 49, 351-376 (2004).</li>
<li>Seely, T. D., Visscher, P. K., Passino, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Group+decision+making+in+honey+bee+swarms%5BTitle%5D)+AND+%22Behav+Ecol+Sociobiol%22%5BJournal%5D)">Group decision making in honey bee swarms.</a> Behav Ecol Sociobiol. 94, 220-229 (2006).</li>
<li>Taylor, K. S., Waller, G. D., Crowder, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impairment+of+a+classical+conditioning+response+of+the+honey+bee+%28Apis+mellifera+L.%29+by+sublethal+doses+of+synthetic+pyrethroid+insecticides%5BTitle%5D)+AND+%22Apidologie%22%5BJournal%5D)">Impairment of a classical conditioning response of the honey bee (Apis mellifera L.) by sublethal doses of synthetic pyrethroid insecticides.</a> Apidologie. 18, 243-252 (1987).</li>
<li>Ingram, E. M., Augustin, J., Ellis, M. D., Siegfried, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluating+sub-lethal+effects+of+orchard-applied+pyrethroids+using+viedo-tracking+software+to+quantify+honey+bee+behaviors%5BTitle%5D)+AND+%22Chemosphere%22%5BJournal%5D)">Evaluating sub-lethal effects of orchard-applied pyrethroids using viedo-tracking software to quantify honey bee behaviors.</a> Chemosphere. 135, 272-277 (2015).</li>
<li>Rieth, J. P., Levin, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+repellent+effect+of+two+pyrethroid+insecticides+on+the+honey+bee%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Entomol%22%5BJournal%5D)">The repellent effect of two pyrethroid insecticides on the honey bee.</a> Physiol Entomol. 13, 213-218 (1988).</li>
<li>Efstathion, C. A., Bardunias, P. M., Boyd, J. D., William, K. H. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+push-pull+integrated+pest+management+scheme+for+preventing+use+of+parrot+nest+boxes+by+invasive+Africanized+honey+bees%5BTitle%5D)+AND+%22J+Field+Ornithol%22%5BJournal%5D)">A push-pull integrated pest management scheme for preventing use of parrot nest boxes by invasive Africanized honey bees.</a> J Field Ornithol. 86, 65-72 (2015).</li>
<li>Seeley, T. D., Morse, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nest+site+selection+by+the+honey+bee%2C+Apis+mellifera%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Sco%22%5BJournal%5D)">Nest site selection by the honey bee, Apis mellifera.</a> Insect Sco. 25, 323-337 (1978).</li>
<li>Schmidt, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Attraction+of+reproductive+honey+bee+swarms+to+artificial+nests+by+nasonov+pheromone%5BTitle%5D)+AND+%22J+Chem+Ecol%22%5BJournal%5D)">Attraction of reproductive honey bee swarms to artificial nests by nasonov pheromone.</a> J Chem Ecol. 20, 1053-1056 (1994).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Jako bardzo udany owad inwazyjny17, AHB stanowi głównego konkurenta dla ptaków gniazdujących w dziuplach na całym ich zasięgu. Przedstawiony tutaj protokół ma na celu zmniejszenie wskaźników kolonizacji budek lęgowych ptaków przez AHB. Główne elementy tego projektu to: 1) zastosowanie środka odstraszającego i bezpiecznego dla ptaków środka owadobójczego, permetryny; 2) zapewnienie alternatywnego miejsca lęgowego dla pszczół; oraz 3) stosowanie feromonu wabiącego wewnątrz skrzynek pułapkowych. Pszczoły zwykle p...

Od czasu przypadkowego wprowadzenia ponad dwóch tuzinów afrykańskich królowych pszczół miodnych do Sao Paulo w Brazyliiw 1957 roku, owady te rozprzestrzeniły się po Ameryce Południowej i Środkowej aż do południowych Stanów Zjednoczonych, przywłaszczając sobie i zastępując mniej przystosowane europejskie pszczoły miodne (EHB) w populacji dzikich zwierząt. Te hybrydowe zafrykanizowane pszczoły miodne (AHB) mają cechy, które stawiają je w konflikcie zarówno z ludźmi, jak i dziką przyrodą. Wykazują wysoce defensywne zachowanie, rozmnażają się bardzo szybko i są mniej selektywne, jeśli chodzi o to, gdzie tworzą dom1,2.
Chociaż budki lęgowe od dawna są używane przez ornitologów do wspomagania hodowli ptaków gniazdujących w dziuplach3,4, okazało się, że ich użycie jest szczególnie skuteczne w zwiększaniu hodowli zagrożonych i zagrożonych papug w tropikach5,6. Niestety, zafrykanizowane pszczoły miodne często wybierają te same budki lęgowe – czasami nawet zabijając ich mieszkańców. Ponadto te AHB stanowią poważne zagrożenie dla biologów, gdy prowadzą badania gniazd. Na obszarach Ameryki Południowej, gdzie założono AHB, w kilku projektach ochrony papug ich sztuczne budki lęgowe zostały zajęte przez AHB7-10. Konkurencja o budki lęgowe z pszczołami miodnymi jest powszechna i nie ogranicza się do papug. Wiele innych gatunków ptaków, zarówno w Nym, jak i Starym Świecie, jest dotkniętychchorobą w wieku 11-15 lat. Bez wysiłków mających na celu złagodzenie zagrożenia ze strony tych inwazyjnych AHB, ostatnie sukcesy w ochronie papug mogą zostać zaprzepaszczone.
Obecne praktyki zarządzania konkurencją ze strony pszczół obejmują stosowanie powtarzających się, wysokich dawek permetryny7, ręczne usuwanie rojów, zamykanie wejść do gniazd natychmiast po8 sezonie lęgowym, czy stosowanie chemikaliów na zewnątrz budek lęgowych15. Związany z tym nakład pracy i zagrożenie dla biologów sprawiają, że strategie te są dalekie od optymalnych. Opracowanie protokołu prewencyjnego jest uzasadnione.
Kolonie pszczół miodnych rozmnażają się w procesie znanym jako rój, kiedy stara królowa opuszcza kolonię z maksymalnie trzema czwartymi pszczół robotnic16. Wysoki wskaźnik reprodukcji afrykańskich pszczół miodnych pozwala im roić się częściej (cztery do ośmiu razy w roku) niż EHB (które roją się raz lub dwa razy w roku)17. Co więcej, AHB może roić się przez cały rok, a nie w określonym sezonie, jak EHB. Dzięki temu AHB może szybko zająć większość odpowiednich miejsc lęgowych na danym obszarze.
Zachowanie pszczół miodnych podczas polowania może być wykorzystane do wpłynięcia na ich wybór miejsca na gniazdo. Niewielka część pszczół w roju odlatuje, aby zlokalizować i sprawdzić nowe potencjalne miejsca gniazdowania. Jednocześnie poszukuje się kilku potencjalnych miejsc do gniazdowania. Te pszczoły zwiadowcze wracają do roju i wykonują tańce, aby wskazać lokalizację miejsca. Im silniejszy jest taniec w danym miejscu, tym szybciej gromadzi się w nim liczba pszczół zwiadowców18. Dlatego pszczoły tańczą silniej, aby uzyskać lepszą jakość witryn, w porównaniu z witrynami, które są przeciętne lub słabe. Po osiągnięciu progu kworum rój startuje i leci do nowo wybranego miejsca macierzystego18.
Subletalne dawki kontaktowe insektycydu permetryny utrudniają pszczołom zwiadowczym orientację i zmniejszają poziom aktywności19,20. Stosowanie permetryny w budkach lęgowych na początku powinno być odstraszające dla pszczół zwiadowczych21, a z czasem, gdy substancja chemiczna ulega degradacji, pszczoły zwiadowcze wystawione na działanie permetryny podczas oceny budki powinny być mniej zdolne do wykonywania silnych tańców rekrutacyjnych, zmniejszając liczbę pszczół zwiadowczych rekrutowanych na miejsce. Bardziej odpowiednie (idealna objętość jamy, mały otwór wejściowy znajdujący się na dole i atraktant feromonowy) alternatywne miejsce na gniazdo jest zapewnione w postaci skrzynki pułapki dla pszczół. To doskonałe miejsce pułapki powinno osiągnąć kworum szybciej niż budka dla ptaków potraktowana środkiem owadobójczym, co skłoni rój do wyboru skrzynki pułapki zamiast budki dla ptaków.
Jako przykład, opisujemy eksperyment mający na celu ograniczenie kolonizacji sztucznych budek lęgowych płomykówki przez AHB na polach trzciny cukrowej na południu Florydy. Naszym celem było przetestowanie skuteczności stosowania metody push-pull, która "odpycha" pszczoły od budek lęgowych sów potraktowanych środkiem owadobójczym i "ciągnie" je w kierunku pułapek roju z przynętą feromonową.

<table><tbody><tr><td>Cytral (ACROS Organics)</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC11044-1000</td><td></td></tr><tr><td>Geraniol (ACROS Organics)</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC41090-1000</td><td></td></tr><tr><td>PermaCap CS</td><td>Permetryna</td><td></td> o <td>kontrolowanym uwalnianiu</td></tr></tbody></table>

protokół push-pull w celu ograniczenia kolonizacji budek lęgowych ptaków przez pszczoły miodne

A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees

Wprowadzenie inwazyjnej afrykańskiej pszczoły miodnej (AHB) do neotropików jest poważnym problemem dla wielu ptaków gniazdujących w dziuplach, szczególnie papug. Pszczoły te wybierają dziuple, które są odpowiednimi miejscami gniazdowymi dla ptaków, co powoduje konkurencję. Trudność w usuwaniu pszczół i ich zachowań obronnych sprawia, że konieczny jest protokół zapobiegawczy. W tym miejscu opisujemy zintegrowany protokół ochrony przed szkodnikami typu push-pull, aby odstraszyć pszczoły od zamieszkiwania budek dla ptaków poprzez zastosowanie bezpiecznego dla ptaków środka owadobójczego, permetryny, w celu odstraszenia pszczół od budek lęgowych, jednocześnie przyciągając je do pułapek roju z przynętą feromonową. Pokazany tutaj jest przykładowy eksperyment z wykorzystaniem budek lęgowych płomykówki. Protokół ten skutecznie ograniczył kolonizację budek lęgowych płomykówki przez zafrykanizowane pszczoły miodne. Protokół ten jest elastyczny, co pozwala na dostosowanie do szerokiego zakresu gatunków ptaków i siedlisk. Protokół ten może przynieść korzyści działaniom na rzecz ochrony przyrody w miejscach, w których zlokalizowane są AHB.

Wcześniejsze niewielkie pilotażowe badanie typu „push-pull” przeprowadzone w Brazylii wykazało, że pułapki na roje były skuteczne i ograniczyły zasiedlanie budek lęgowych papug przez pszczoły22. Aby ustalić, czy metoda „push-pull” może być skuteczna na większą skalę w ograniczaniu kolonizacji budek lęgowych ptaków przez AHB, przeprowadziliśmy badanie terenowe na polach trzciny cukrowej w południowej Florydzie, USA. Zainstalowano sześćdziesiąt budek lęgowych dla puchacza ameryka...

Zapobieganie kolonizacji budek lęgowych ptaków przez inwazyjne afrykańskie pszczoły miodne jest ważne dla działań ochronnych ptaków o ograniczonych miejscach gniazdowania. Zapewniamy zintegrowane podejście do ochrony przed szkodnikami, aby "odepchnąć" pszczoły od budek lęgowych za pomocą odstraszającego środka owadobójczego, permetryny, i "zwabić" je w kierunku pułapek roju z przynętą feromonową.

Protokół push-pull w celu ograniczenia kolonizacji budek lęgowych ptaków przez pszczoły miodne

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. ...

Ogólnym celem niniejszej procedury jest zapobieganie kolonizacji budek lęgowych ptaków przez pszczoły miodne poprzez zastosowanie repelentów owadziego w budkach lęgowych oraz wabika feromonowego w skrzynkach pułapkach na roje. Metoda ta może pomóc w rozwiązaniu problemu konserwatorskiego związanego z hybrydami afrykańskich pszczół miodnych, które konkurują o dziuple z ptakami gniazdującymi w kawernach. Głównymi zaletami tej techniki są: bezpieczeństwo dla ptaków, odstraszanie pszczół miodnych bez konieczności uśmiercania całych kolonii lub rojów oraz odstraszanie krwiopijnych ektopasożytów.Pomysł na tę metodę pojawił się po raz pierwszy, gdy musieliśmy usunąć kolonię afrykańskiej pszczoły miodnej z budki lęgowej sowy puszczyka w południowej Florydzie. Wizualna demonstracja tej metody jest kluczowa, ponieważ sposób realizacji tej procedury różni się w zależności od warunków środowiskowych i stanu kolonii pszczół. Przed ustawieniem skrzynki z pułapką na rójkę, należy dodać 1 ml mieszaniny citralu i geraniolu w stosunku 2:1 do 1,5 ml polipropilenowej probówki do mikrocentryfugi z zakrętką typu snap top, a następnie owinąć probówkę folią aluminiową, aby chronić wabik przed światłem.Następnie przechowywać wabik w ciemnym miejscu w temperaturze pokojowej. Aby zainstalować pułapkę na roje na słupku, należy wbić w ziemię impregnowany słup o przekroju 9 na 9 cm i długości 2,4 m, w odległości od 10 do 15 m od miejsca, w którym znajduje się budka lęgowa dla ptaków. Następnie, za pomocą co najmniej dwóch wkrętów, przymocować impregnowaną drewnianą deskę zawiesową o grubości 1,3 cm i wymiarach 20 na 20 cm na środku jednej ze ścianek skrzynki pułapki.Górna krawędź deski powinna znajdować się 10 centymetrów nad górną krawędzią skrzynki. Następnie umieść śrubę około pięciu centymetrów poniżej miejsca, w którym będzie opierać się górna część deski wieszającej, i przymocuj deskę do słupa w taki sposób, aby skrzynka pułapki znajdowała się od 1,5 do trzech metrów nad ziemią, co umożliwi bezpieczne i łatwe zdjęcie skrzynki po zasiedleniu. Aby zainstalować skrzynkę pułapki na roju na drzewie, najpierw wywierć otwór o średnicy pięciu milimetrów w górnych tylnych narożnikach każdej strony skrzynki i przełóż przez otwory drut.Następnie wybierz drzewo znajdujące się w odległości około 10 do 15 metrów od miejsca, w którym znajduje się budka lęgowa dla ptaków, i przymocuj drut do drzewa na wysokości od 1,5 do trzech metrów nad ziemią. Następnie upewnij się, że budka jest wypoziomowana i nie przewróci się. Po zamocowaniu budki-pułapki na rój, użyj pinezki, aby przebić korek probówki z atraktantem, a następnie umieść atraktant na dnie budki-pułapki w pobliżu wejścia.Następnie użyj ręcznego opryskiwacza o pojemności 3,7 litra, aby pokryć całe wnętrze budki gniazdowej dla ptaków świeżo przygotowanym roztworem permetryny przeznaczonej dla drobiu lub ptaków klatkowych, aż ciecz zacznie spływać po ściankach budki. Jeśli rój ma zostać wykorzystany, należy pozwolić pszczołom w pełni zasiedlić budkę-pułapkę przez około dwa tygodnie. Następnie w nocy, gdy wszystkie pszczoły znajdą się wewnątrz, załóż odpowiedni sprzęt ochronny i użyj małego ręcznika, aby zatkać wejście do budki-pułapki.Następnego ranka odbierz pudełko, przenieś je w nowe miejsce oddalone o co najmniej cztery kilometry i zdejmij ręcznik. Jeśli wymagane jest zniszczenie kolonii pszczół, niezwłocznie po jej odkryciu zatkaj otwór wejściowy małym ręcznikiem i zabierz pudełko. Szczelnie zamknij pudełko z pułapką w plastikowej torbie i pozostaw kolonię w pełnym słońcu.Po kilku dniach usuń martwe pszczoły oraz plastry. Jeśli preferowane jest zastosowanie insektycydu, niezwłocznie po odkryciu kolonii spryskaj wnętrze skrzyni pułapki sprayem owadobójczym i zatkaj wejście małym ręcznikiem. Po 24 godzinach usuń martwe pszczoły oraz plastry.Z 77 rojów schwytanych w tym reprezentatywnym eksperymencie, 75 znajdowało się w pułapkach na roje. Z kolonizacją zakończyły się tylko dwie budki dla sów, z czego obie były nieimpregnowane. Znacznie więcej pszczół wybrało pułapki na roje niż nieimpregnowane lub impregnowane budki dla sów, a kilka pułapek na roje zostało zasiedlonych przez pszczoły więcej niż raz.Po opanowaniu tej techniki, przy prawidłowym wykonaniu, można ją zrealizować w czasie krótszym niż jedna godzina. Podczas przeprowadzania tej procedury ważne jest zachowanie zasad bezpieczeństwa. Pudełka pułapek na roje należy zawsze ustawiać w miejscach, z których łatwo je usunąć, a ich relokację przeprowadzać w nocy, gdy pszczoły nie są aktywne.Niniejszą procedurę można zmodyfikować, aby dostosować ją do szerokiego zakresu gatunków ptaków i siedlisk. Po opracowaniu technika ta otworzyła badaczom z dziedziny ochrony przyrody drogę do poszukiwania narzędzi zarządzania kolonizacją budek lęgowych przez roje pszczół w programach odzyskiwania populacji zagrożonych gatunków papug. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze rozumieć, jak przygotować pułapki na roje pszczół oraz jak bezpiecznie usuwać i relokować lub niszczyć pszczoły, które skolonizowały pułapkę.Należy pamiętać, że praca z afrykańskimi pszczołami miodnymi może być niezwykle niebezpieczna, dlatego podczas wykonywania tej procedury należy zawsze stosować środki ostrożności, takie jak noszenie kombinezonów pszczelarskich i rękawic.

a-push-pull-protocol-to-reduce-colonization-bird-nest-boxes-honey

Research

JoVE Journal

Environment

Środowisko

Protokół warunkowania Proboscis Extension Response (PER), opracowany dla pszczół miodnych (Apis mellifera), dostarcza ekologicznie istotnych i łatwo mierzalnych środków do badania kilku różnych mechanizmów uczenia się u wielu gatunków owadów.

Protokół odpowiedzi na wydłużenie trąby do badania plastyczności behawioralnej u owadów: zastosowanie do badań podstawowych, biomedycznych i rolniczych

Konsorcja mikrobiologiczne w ulach trzmieli wzbogacają i zachowują pyłek dla larw pszczół. Wykorzystując sekwencjonowanie nowej generacji, wraz z eksperymentami laboratoryjnymi i terenowymi, manuskrypt ten opisuje protokoły stosowane do testowania hipotezy, że pozostałości fungicydów zmieniają mikrobiom pyłku i demografię kolonii, ostatecznie prowadząc do utraty kolonii.

Techniki empiryczne, metagenomiczne i obliczeniowe rzucają światło na mechanizmy, za pomocą których fungicydy zagrażają zdrowiu pszczół

Ten manuskrypt opisuje kilka protokołów podawania środków farmakologicznych pszczołom miodnym, w tym proste nieinwazyjne metody dla pszczół swobodnie latających, a także bardziej inwazyjne warianty, które pozwalają na precyzyjne, miejscowe leczenie krępowanych pszczół.

Neurofarmakologiczna manipulacja skrępowanych i swobodnie latających pszczół miodnych, Apis mellifera

Niniejszym przedstawiamy metodę karmienia skażoną pestycydami żywnością zarówno pojedynczej pszczoły miodnej, jak i kolonii ula. Procedura ocenia wpływ pestycydów na poszczególne pszczoły miodne poprzez dokarmianie in vivo podstawową dietą larw, a także na naturalny stan rodziny pszczelej.

Ocena wpływu chemikaliów środowiskowych na rozwój pszczół miodnych od poziomu osobnika do poziomu kolonii

Utrata kolonii pszczół miodnych stanowi wyzwanie dla służb zajmujących się zapylaniem upraw. Obecne praktyki ochrony owadów zapylających uzasadniają alternatywne podejście do minimalizacji kontaktu pszczół miodnych ze szkodliwymi pestycydami przy użyciu odstraszających środków chemicznych. W tym miejscu przedstawiamy szczegółowe metody protokołu śledzenia wizualnego w celu odstraszania pszczół.

Protokół śledzenia wideo w celu przesiewania środków chemicznych odstraszających pszczoły miodne

Subletalne dawki pestycydów mogą wpływać na kolonie w sposób, który jest trudny do wykrycia przy użyciu tylko metod okresowych lub wizualnych. Podano metody pomiaru całkowitej masy dorosłych pszczół, czerwiu i zasobów pokarmowych poprzez ważenie uli i części ula, fotografowanie ramek i instalowanie czujników. Poruszana jest również kwestia analizy danych.

Monitorowanie wpływu narażenia na subletalne pestycydy na pszczoły miodne na poziomie kolonii

Spraye fungicydowe na kwitnące rośliny mogą narażać samotne pszczoły na wysokie stężenia pozostałości fungicydów przenoszonych przez pyłki. Wykorzystując eksperymenty laboratoryjne z udziałem larw pszczół hodowanych in vitro, badanie to bada interaktywne efekty spożywania pyłku poddanego działaniu fungicydów pochodzącego z roślin żywicielskich i niebędących żywicielami.

In vitro Hodowla pszczół samotnic: narzędzie do oceny czynników ryzyka larw

Prezentujemy nieśmiercionośny i zautomatyzowany mechanizm zbierania pyłku od robotnic trzmieli (Bombus) powracających do ula. W zestawie znajduje się instrukcja produkcji, przygotowania, instalacji i użytkowania urządzeń. Dzięki wykorzystaniu obiektów wydrukowanych w 3D, modyfikacja projektu była terminowa, wydajna i pozwoliła na szybki czas na testy.

Wydrukowana w 3D pułapka na pyłki dla wejść do ula Bumble Bee (Bombus)

Opisujemy metody zbierania pyłku sercowego od pszczół miodnych, a także protokoły sortowania kolorów, acetolizy i preparatu mikroskopowego pyłku do identyfikacji taksonomicznej. Ponadto prezentujemy barwę granulek i różnorodność taksonomiczną pyłku guzowatego zebranego z pięciu systemów upraw z wykorzystaniem pułapek pyłkowych.

Zbieranie i identyfikacja pyłku z kolonii pszczół miodnych

Pokazujemy sprawdzoną metodę bezpiecznego obchodzenia się z pszczołami zebranymi na polu. Metoda ta umożliwia szybką manipulację, identyfikację, pobieranie próbek genetycznych i potwierdzanie interakcji między roślinami a owadami za pomocą pyłku pobranego podczas pobierania próbek. Podejście to, łatwe do adaptacji, oferuje opłacalny, nieśmiercionośny sposób badania rzadkich grup owadów.

Szybka metoda ograniczania i bezpiecznego obchodzenia się z pszczołami w terenie

Poznaj metodę push-pull do ochrony budek lęgowych ptaków przed kolonizacją przez pszczoły miodne. Wykorzystuje ona repelenty i feromony, aby skutecznie odstraszać pszczoły bez ich zabijania.

Protokół push-pull w celu ograniczenia kolonizacji budek lęgowych ptaków przez pszczoły miodne

Przeglądaj więcej filmów