6 października 2016
Ten protokół opisuje użycie mikroskopii wielofotonowej do wykonywania długoterminowego, wysokorozdzielczego, jednokomórkowego obrazowania nienaruszonego płuca w czasie rzeczywistym przy użyciu stabilizowanego próżniowo okna obrazowania.
Ogólnym celem tej metody jest długoterminowe obrazowanie pojedynczych komórek w nienaruszonym płucach z wysoką rozdzielczością przy użyciu stabilizowanego próżniowo okna obrazującego. Metoda ta może pomóc w odpowiedzi na kluczowe pytania z zakresu badań nad rakiem, takie jak rodzaje oddziaływań zachodzących między zwouleniem a komórkami nowotworowymi podczas najwcześniejszych etapów przerzutowania. Główną zaletą tej techniki jest możliwość teoretycznej wizualizacji żywego, nienaruszonego płuca z rozdzielczością pojedynczych komórek przez okres do 12 godzin.
Zacznij od przywiązania 7,6 cm długiego szwu 2-0 do cewnika tchawiczego, 6,35 mm powyżej tulei, za pomocą podwójnego węzła. Następnie nałóż maść do oczu znieczulonej myszy i użyj kremu depilacyjnego, aby usunąć sierść z lewej strony zwierzęcia, od linii środkowej klatki piersiowej do jednej czwartej pleców oraz od pachy do obszaru tuż pod klatką piersiową. Usuń nadmiar preparatu i wysterylizuj odsłoniętą skórę 70% etanolem.
Następnie wykonaj intubację zwierzęcia. Obwiąż pysk szwem 2-0, pod przednimi zębami. Przenieś zwierzę do obszaru chirurgicznego, uważając, aby nie przesunąć cewników, i włącz respirator.
Podłącz respirator do cewnika tchawiczego. Następnie przymocuj taśmą cewnik do pyska oraz lewą przednią kończynę do cewnika. Po potwierdzeniu braku reakcji na ucisk palca, za pomocą ostrych nożyczek usuń jeden centymetr kwadratowy skóry nad lewą ścianą klatki piersiowej.
Unieś podskórną tkankę tłuszczową gruczołu mlekowego i przypal wszystkie odsłonięte naczynia krwionośne. Następnie wypreparuj tkankę tłuszczową i usuń warstwę mięśniową aż do klatki piersiowej, uważając, aby nie przeciąć żyły pachowej u podstawy przedniej kończyny. Użyj pęsety, aby unieść szóste żebro.
Następnie, trzymając ostre nożyczki pod płytkim kątem pięciu stopni, przetnij żebro w pobliżu krawędzi otworu w skórze. Usuń cztery kolejne żebra, aby poszerzyć otwór w klatce piersiowej i odsłonić cały płat płuca. Następnie ostrożnie przenieś mysz na stół obrazujący mikroskopu.
Przy wyłączonej próżni należy napełnić wewnętrzną komorę okna próżniowego roztworem PBS. Odwrócić mysz i umieścić odsłonięte płuco nad okienkiem z szkiełka nakrywowego do obrazowania próżniowego. Powoli włączyć próżnię.
Załóż szelek stabilizujący, wykonany z papieru chłonnego złożonego na pół, dwa razy na klatce piersiowej myszy i przyklej go taśmą do płyty stolika. Następnie przymocuj pulsoksymetr do łapy zwierzęcia. Potem umieść komorę środowiskową na stoliku i włącz ogrzewanie, aby utrzymać mysz w temperaturze fizjologicznej.
Gdy zwierzę znajdzie się w odpowiedniej pozycji, zbliż obiektyw z aperturą numeryczną 25 by 95 do szkiełka nakrywki. W trybie epifluorescencji wyświetl kanał fitzy i ustaw ostrość na tkankę płucną. Następnie napełnij sterylną strzykawkę 100 µL zawiesiny komórek nowotworowych, odłącz strzykawkę z PBS z cewnika żyły ogonowej i podłącz strzykawkę z komórkami nowotworowymi.
Powoli wstrzyknij komórki nowotworowe do żyły ogonowej. Następnie podłącz strzykawkę z PBS do cewnika żyły ogonowej i zlokalizuj komórki nowotworowe w tkance płuc za pomocą okularu mikroskopu. Teraz zastąp strzykawkę z PBS strzykawką zawierającą 100 µL dekstranu z rodamyną i powoli wstrzyknij dekstran myszy poprzez cewnik ogonowy.
Po podaniu dekstranu przeprowadź przemycie 50 µL sterylnego PBS. Następnie wykonaj obrazy w każdym z wcześniej zlokalizowanych miejsc występowania komórek nowotworowych, aby zwizualizować przepływ i integralność naczyń krwionośnych. Dwadzieścia cztery godziny po wstrzyknięciu można zaobserwować pojedyncze komórki nowotworowe wchodzące w interakcje z makrofagami i monocytami w obrębie naczyń.
Stabilność obrazowania jest na tyle wysoka, że możliwe jest pozyskiwanie sekwencyjnych stosów Z (Z-stacks) danego pola i generowanie rekonstrukcji trójwymiarowej. Tutaj przedstawiono mozaikę pól obrazowania o rozmiarze pięć na pięć, obejmującą pole widzenia o szerokości 890 micron, zarejestrowaną w ciągu 205 minut, na głębokości 15 micron poniżej powierzchni płuca pojedynczego ogniska przerzutowego, 12 dni po wtryśnięciu. Pomimo dużego pola widzenia, wysoka rozdzielczość klatek tworzących mozaikę umożliwia uchwycenie zdarzeń podkomórkowych, takich jak mitoza pojedynczej komórki, o czym świadczy rozdzielenie chromosomów.
Dożylne wstrzyknięcie wysokocząsteczkowego dekstranu znakowanego fluorescencyjnie prowadzi do oznakowania światła naczyń krwionośnych; jednak nieoznakowane krążące erytrocyty i leukocyty mogą blokować dekstran. W małych naczyniach włosowatych płuc blokada ta powoduje migotanie sygnału dekstranu oraz utratę ostrości granic naczyniowych. Wysoka stabilność przestrzenna, zapewniona przez ten protokół, umożliwia uśrednianie czasowe kanału krwi bez rozmycia, co pozwala na przywrócenie miejscowych blokad.
Pozostałe kanały sygnałowe można następnie nałożyć na obraz naczyń krwionośnych, aby uzyskać wyraźny widok granic naczyń. Po opanowaniu tej techniki, procedura ta może zająć około godziny, jeśli zostanie przeprowadzona prawidłowo. Podczas wykonywania tej procedury ważne jest, aby pamiętać o zachowaniu ostrożności, by nie przeciąć żadnych dużych naczyń krwionośnych przed ich koagulacją oraz aby całkowicie unikać dotykania tkanki płucnej.
Po zastosowaniu tej procedury można zwizualizować najwcześniejsze etapy dysseminacji i proliferacji komórek nowotworowych. Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo posiadać gruntowną wiedzę na temat przeprowadzania obrazowania intravitalnego w nienaruszonym płucu z wykorzystaniem okna obrazującego stabilizowanego próżniowo. Dziękujemy za oglądanie i życzymy powodzenia w eksperymentach.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół opisuje zastosowanie mikroskopii wielofotonowej do długoterminowego obrazowania pojedynczych komórek w nienaruszonej tkance płuca w czasie rzeczywistym z wysoką rozdzielczością, przy użyciu stabilizowanego próżniowo okna obrazującego. Metoda ta może pomóc w udzieleniu odpowiedzi na kluczowe pytania w badaniach nad nowotworami dotyczące interakcji między stromą a komórkami nowotworowymi podczas przerzutowania.
Długoterminowe obrazowanie intravitalne nienaruszonego płuca umożliwia bezpośrednią obserwację wczesnych zdarzeń przerzutowych z rozdzielczością pojedynczych komórek, co wypełnia krytyczną lukę w przedklinicznych badaniach nad rakiem. Możliwość ta wspiera ograniczanie ryzyka mechanistycznego poprzez wizualizację oddziaływań między guzem a zrębem oraz dynamiki naczyniowej w kontekście fizjologicznie istotnym. Takie spostrzeżenia poprawiają walidację celów terapeutycznych oraz pewność prognostyczną w procesach odkrywania leków w onkologii.
Metoda ta integruje się z kontinuum odkryć — od testowania hipotez, poprzez identyfikację związków wiodących, aż po walidację przedkliniczną — dostarczając dynamicznych, ilościowych danych na temat procesów metastatycznych.