November 6th, 2016
Tutaj prezentujemy protokół oceny przeżywalności nasion, kiełkowania i spoczynku w warunkach polowych przy użyciu zakopanych, oznakowanych pasków nasion i testowania żywotności chlorku tetrazolu (TZ).
Ogólnym celem tej procedury jest bezpośrednia obserwacja i ilościowe określenie kiełkowania, śmiertelności i spoczynku nasion w warunkach polowych w czasie. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie ekologii nasion, takie jak to, w jaki sposób różne gatunki lub ekotypy gatunków przyczyniają się do rozwoju populacji następnego pokolenia. Lub pojedyncze nasiona do banku nasion trwałej gleby.
Główną zaletą tej techniki jest to, że dowolna liczba projektów eksperymentalnych, gatunków, zabiegów lub dat usunięcia może być łatwo wykorzystana w terenie i odzyskana jako kompletna replika po tygodniach lub miesiącach pochówku. Aby rozpocząć, wytnij pasek materiału o wymiarach 20 x 105 cm dla każdego paska nasion. Za pomocą taśmy mierniczej zaznacz przegródki na pasku.
Złóż tkaninę na pół i użyj pistoletu do klejenia wysokotemperaturowego, aby nałożyć klej na jednym krótkim końcu. Poczekaj, aż klej lekko ostygnie, a następnie dociśnij obie strony do siebie, aby utworzyć uszczelnienie. Umieść linie kleju wzdłuż każdego znaku przegródki od zagiętej krawędzi do otwartego krótkiego końca.
Dociśnij do siebie dwie strony tkaniny wzdłuż linii kleju, aby uzyskać uszczelki bez otworów między przegródkami. Losowo przypisz typy krzyżówek nasion do przedziałów dla każdego pasa. Następnie policz i umieść jednolitą liczbę nasion w każdej komorze .
Za pomocą plastikowej strzałki ogrodowej oznacz komorę rodzajem nasion. Użyj pistoletu do klejenia, aby bezpiecznie uszczelnić komorę. Postępuj wzdłuż paska, wypełniając, etykietując i uszczelniając kieszenie nasienne jeden po drugim, aż cały pasek zostanie wypełniony i uszczelniony.
Przed kontynuowaniem sprawdź, czy nie ma szczelin między przegródkami i w razie potrzeby użyj kleju punktowego. Aby przeprowadzić próby pochówku, najpierw wykop działki na określoną głębokość, aby zamieszkać w pasach w oparciu o projekt eksperymentalny. Umieść paski nasienne w ziemi i przykryj je ziemią.
Następnie pokrój metalową siatkę na panel o 10 cm większy z każdej strony niż zakopane poletka nasienne. Uszczelnij krawędzie tkaniny siatkowej ziemią. To pokrycie powinno wykluczać drapieżniki kopiące nasiona.
Na koniec umieść kolorowe plastikowe etykiety działki w miejscu budowy, oznaczone datą usunięcia i oznaczone kolorami, aby uzupełnić pisemne zapisy. W wyznaczonym terminie usunięcia wykop nasiona przedmiotu. Zawiń paski w mokrą gazetę, aby były wilgotne, i umieść je w lodówce na czas transportu.
Po wejściu do laboratorium opłucz paski w wodzie, aby usunąć obcy brud i zanieczyszczenia, aż nasiona będą widoczne w komorach. Za pomocą nożyczek otwieraj jedną komorę na raz. Policz wszystkie obecne kiełkujące nasiona i usuń je.
Policz i usuń wszelkie wyraźnie martwe nasiona. Na koniec zbierz wszystkie pozostałe niekiełkujące nasiona i umieść je na oznaczonym mokrym kawałku bibuły na szalce Petriego. Umieść naczynia w komorze wzrostowej na tydzień, aby umożliwić kiełkowanie.
Zbadaj nasiona, zidentyfikuj i policz te, które wykiełkowały. Zapisz je jako żywotne, ale niekiełkujące, ponieważ nasiona te nie wykiełkowały w warunkach polowych. Pozostałe nasiona przeciąć na pół, aby przetestować żywotność za pomocą chlorku tetrazolu.
Umieść jedną połówkę na szalce Petriego z widocznym zarodkiem i bielmem. Dodaj tyle chlorku tetrazolu, aby pokryć połówki nasion. Umieść naczynie w inkubatorze ustawionym na 30 stopni Celsjusza na trzy godziny.
Na koniec oceń połówki nasion. Nasiona, które wykazują czerwone zabarwienie zarodka, są zdolne do kiełkowania, podczas gdy niebarwione nasiona są martwe. Ten wykres pokazuje kiełkowanie dzikich krzyżówek słonecznika w pierwszym dniu usunięcia po zakopaniu późną jesienią.
Typy krzyżówek są układane poprzez zwiększanie procentowej zawartości alleli uprawnych, a rodzic matki jest wskazany dla każdej krzyżówki. Ogólnie rzecz biorąc, niższy odsetek alleli uprawnych zmniejszył nieprzystosowawcze kiełkowanie późną jesienią. Przy usuwaniu wczesną wiosną wszystkie genotypy miały wysoką zdolność kiełkowania, ale różniły się znacznie liczbą niekiełkujących lub martwych nasion.
W szczególności typy krzyżówek z rodzicami ze strony matki miały wyższą śmiertelność, podczas gdy dzikie typy krzyżówek matek częściej pozostawały niewykiełkowane. Wiosną kiełkowanie zmniejszyło się w przypadku niektórych typów krzyżówek. Jest to prawdopodobnie spowodowane śmiertelnością nasion w obrębie pasów pogrzebowych dla wcześniejszych typów krzyżówek kiełkujących.
W związku z tym śmiertelność była wyższa w przypadku bardziej podobnych do upraw typów krzyżówek wytwarzanych przez rodziców ze strony matki. Po opanowaniu tej techniki można zmontować w ciągu kilku godzin, w zależności od projektu. Podczas gdy ocena pasków trwa zwykle tylko kilka minut na komorę, plus czas w komorze wzrostowej i inkubacja w TZ. Próbując tej procedury, należy pamiętać, że tylko nasiona, które przeszły przez komorę wzrostową, a następnie zostały określone przez testy TZ jako żywotne, mogą być uważane za naprawdę uśpione.
Nasiona, które kiełkują w komorze wzrostowej, są uważane za niekiełkujące. Zgodnie z tą procedurą, inne metody działają równolegle, takie jak badania sadzonek, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania, takie jak to, czy przetrwanie nasion przekłada się na wschody nasion i zakończenie cyklu życia. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak przeprowadzić ocenę terenową kiełkowania, śmiertelności i spoczynku nasion.
Nie zapominaj, że chlorek tetrazolu działa drażniąco i podczas wykonywania tej procedury należy zawsze zachować środki ostrożności, takie jak noszenie rękawiczek.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Ten protokół opisuje metodę oceny przeżywalności, kiełkowania i spoczynku nasion w warunkach polowych przy użyciu opatrzonego etykietami pasków nasion i testów żywotności. Umożliwia badaczom ilościową ocenę zachowania nasion w czasie, przyczyniając się do zrozumienia ekologii nasion.
This method enables direct observation of seed germination, dormancy, and mortality under field conditions, providing quantitative data critical for target validation in agricultural biotechnology. By assessing seed behavior over time, it supports mechanistic de-risking of traits related to stand establishment and persistence. The approach enhances predictive confidence in early discovery by linking genetic variation to field-relevant phenotypes.
The method integrates into the discovery continuum from hypothesis testing to lead identification by providing field-based phenotypic data on seed survival traits.