Name: Wizualizacja testu resazuryny agarowej z węglem drzewnym do półilościowego, średnioprzepustowego oznaczania liczby prątków (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 57 s
Description: Poznaj metodę CARA do półilościowej oceny aktywności związków przeciwko prątkom w warunkach replikacji i nierozmnażania. Technika ta przyspiesza odkrywanie leków przeciwgruźliczych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Jesteśmy wdzięczni Kristin Burns-Huang za fachową recenzję manuskryptu oraz J. Davidowi Warrenowi (Weill Cornell Medical College) za pomoc chemiczną podczas opracowywania CARA. Praca ta była wspierana przez TB Drug Accelerator Program Fundacji Billa i Melindy Gatesów, Program Abby i Howarda P. Milsteinów w Medycynie Translacyjnej oraz Jednostkę Badawczą NIH TB (U19 AI111143). Zakład Mikrobiologii i Immunologii jest wspierany przez Fundację Williama Randolpha Hearsta. SSK było wspierane przez NIH grant K08AI108799.

1. Przygotowanie mikropłytek CARA
<ol>
	<li>W autoklawie 900 ml agaru Middlebrook 7H11 zawierającego 0,2% glicerolu i 0,4% węgla aktywnego należy umieścić w autoklawie 900 ml agaru Middlebrook 7H11 w kolbie Erlenmeyera o pojemności 2 litra lub alternatywnie 450 ml w szklanej zlewce o pojemności 1 l. Umieścić duże mieszadło nadające się do sterylizacji w autoklawie w kolbie lub zlewce. Przykryj otwór kolby lub zlewki folią aluminiową i przymocuj do szkła taśmą do autoklawu.</li>
	<li>Chłodny w dotyku (około 55-65 °C) na magnetycznej płycie mieszającej ustawionej na niską prędkość, aby utrzymać węgiel drzewny w zawiesinie.</li>
	<li>Wszystkie kolejne kroki należy wykonywać aseptycznie w okapie bezpieczeństwa biologicznego wyposażonym w magnetyczną płytkę mieszającą.</li>
	<li>Usuń folię. Dodać 100 ml suplementu OADC (suplement OADC po zastosowaniu w dawce 10% daje końcowe stężenie pożywki wynoszące 0,2% dekstrozy, 0,5% albuminy, 0,085% NaCl, 0,0005% kwasu oleinowego i 0,4 mg/ml katalazy) do 2 l kolby Erlenmeyera lub 50 ml OADC do 1 l zlewki i kontynuować mieszanie.</li>
	<li>W przypadku korzystania z kolby Erlenmeyera wlać około 25-40 ml węgla drzewnego 7H11-OADC do sterylnego zbiornika na odczynnik. W przypadku korzystania ze zlewki nie jest konieczne używanie zbiornika na odczynnik.</li>
	<li>Napełnić 96-dołkową mikropłytkę 200 μl/studzienkę węgla drzewnego 7H11-OADC ze zbiornika odczynnika lub zlewki. Pracuj szybko, aby uniknąć zestalenia się agaru i wprowadzenia pęcherzyków. Unikaj rozpryskiwania stałego podłoża na zewnątrz studni, ponieważ może to być źródłem zanieczyszczenia grzybiczego. Używając pipety wielokanałowej, użyj jednego zestawu 12 końcówek filtrujących do przeniesienia węgla drzewnego 7H11-OADC do 8 rzędów (AH) płytki 96-dołkowej. 
	UWAGA: Podłoże szybko krzepnie. Aby uniknąć zatkania końcówek pipet, należy je często wymieniać.</li>
	<li>Alternatywnie, mikropłytki CARA można nalewać za pomocą elektronicznej pipety wielokanałowej p1000 z końcówkami filtrującymi, które pomagają w przygotowaniu wielu płytek. 
	UWAGA: Ze względu na małą objętość dołków na mikropłytki, agar w mikropłytkach CARA zestala się w ciągu kilku minut od nalania.</li>
	<li>Umieść stosy mikropłytek CARA w zamykanych torebkach foliowych, aby uniknąć wyschnięcia.</li>
	<li>Przechowywać mikropłytki CARA w temperaturze 4 °C.</li>
</ol>
2. Konfiguracja testów replikujących i niereplikujących MIC90
<ol>
	<li>Zaszczepić M. tuberculosis, M. bovis BCG lub M. smegmatis przy OD580 0,01-0,1 i rozwinąć do środkowej fazy logarytmicznej (OD580 ~ 0,5) w Middlebrook 7H9-ADN (Middlebrook 7H9 zawierający 0,2% glicerolu, 0,2% dekstrozy, 0,5% albuminy i 0,085% NaCl) lub 7H9-OADC (Middlebrook 7H9 zawierający 0,2% glicerolu i 10% suplementu OADC).</li>
	<li>Hodować M. tuberculosis i M. bovis BCG jako ~20 ml stojących kultur w kolbach do hodowli komórkowych, a M. smegmatis z wytrząsaniem w okrągłodennych polipropylenowych probówkach okrągłodennych (4 ml hodowli) lub stożkowych probówkach wirówkowych o pojemności 50 ml (10-20 ml hodowli). Inkubować chorobotwórcze prątki w temperaturze 37 °C z 20%O2 i 5% CO2 oraz M. smegmatis w temperaturze 37 °C z 20%O2 .</li>
	<li>Skonfiguruj eksperyment w stylu minimalnego stężenia hamującego (MIC90) w warunkach replikacji i niereplikacji (ryc. 2). 
	UWAGA: Czynniki testowe są zwykle oznaczane w duplikatach lub poczwórnych duplikatach, aby umożliwić testowanie odpowiednio 4 lub 2 związków na 96-dołkową mikropłytkę. Na przykład na płytce 96-dołkowej jeden czynnik testowy można oznaczyć w wierszach A-D, a drugi w wierszach E-H. DMSO (nośnik) znajduje się w kolumnach 1, 2 i 12, a seria rozcieńczeń badanego czynnika biegnie od kolumny 3 (najniższe stężenie) do kolumny 11 (najwyższe stężenie). Testy typu MIC90 zazwyczaj wykorzystują 2-krotne serie rozcieńczeń. Dostępnych jest wiele niereplikujących się modeli dla prątków14-16,18,24,25, a w celach ilustracyjnych używamy modelu wielostresowego bez replikacji6,8,9.
	<ol>
		<li>Do testu replikacji rozmieścić 200 μl komórek w 7H9-ADN przy OD580 0,01 do wszystkich studzienek 96-dołkowej płytki z przezroczystym dnem poddanej działaniu kultury tkankowej.</li>
		<li>W przypadku testu niereplikującego należy dwukrotnie przemyć komórki w roztworze soli fizjologicznej buforowanym fosforanem (PBS) zawierającej 0,02% tyloksapolu i ponownie zawiesić komórki w pożywce niereplikującej (0,05% KH2PO4, 0,05%MgSO4, 0,005% cytrynian żelazowo-amonowy, 0,0001% ZnCl2, 0,1% NH4Cl, 0,5% BSA, 0,085% NaCl, 0,02% tyloksapol, 0,05% maślan; pH dostosowane do 5,0 z 2 N NaOH).
		<ol>
			<li>Rozcieńczyć komórki do OD580 0,1 w pożywce niereplikującej i dodaćNaNO2 ze świeżo przygotowanego 1 M materiału do końcowego stężenia 0,5 mM.</li>
			<li>Rozprowadzić 200 μl komórek o średnicy zewnętrznej580 0,1 do wszystkich studzienek 96-dołkowej płytki z czystym dnem, poddanej działaniu kultur tkankowych. 
			UWAGA: Przygotować rozcieńczenia związków jako 100-krotne roztwory podstawowe w DMSO. Tak więc typowa płytka MIC badająca wpływ cząsteczki przy końcowym stężeniu 0,4-100 μg/ml wymagałaby roztworów podstawowych 0,04-10 mg/ml w DMSO.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Dodać 2 μl rozcieńczeń badanego czynnika 1 do rzędów A-E i 2 μl rozcieńczeń badanego czynnika 2 do rzędów E-H. Dokładnie wymieszaj.</li>
		<li>Dodać 2 μl kontroli nośnika (zwykle DMSO) do studzienek kontrolnych, kolumny 1, 2, 12 (rzędy A-H). Dokładnie wymieszaj.</li>
		<li>Dla każdego doświadczenia należy uwzględnić co najmniej jedną kontrolę dodatnią, taką jak ryfampicyna, w dawce od 0,004 do 1 μg/ml (test replikujący) i/lub 0,08 do 20 μg/ml (test niereplikujący). 
		UWAGA: Zaleca się stosowanie 6-bromo-1H-indazol-3-aminy9 w stężeniu od 0,1 do 25 μg/ml jako związku kontrolnego, który ma selektywną, zależną od NaNO2 aktywność w wielostresowym modelu niereplikacji.</li>
		<li>W przypadku testów replikacyjnych inkubować mikropłytki w temperaturze 37 °C przy 20%O2 i 5% CO2 przez 7 dni (M. tuberculosis i M. bovis BCG) lub 1-48 godzin (M. smegmatis). W przypadku wielostresowego modelu niereplikacji inkubować mikropłytki przez 7 dni w temperaturze 37 °C przy 1%O2 i 5% CO2 (M. tuberculosis i M. bovis BCG).</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Inokulacja mikropłytek CARA
<ol>
	<li>W punktach, w których CARA będzie używana jako odczyt, należy ostrożnie ponownie zawiesić zawartość studzienki na płytce testowej typu MIC90 za pomocą pipety wielokanałowej p200 ustawionej na 50-75 μl. Pipetę w górę i w dół co najmniej 5-10 razy i delikatnie obracać zawartość studzienki okrężnymi ruchami za pomocą końcówek do pipet.</li>
	<li>Przenieść 10 μl zawartości basenika testowego na mikropłytkę CARA. Upewnij się, że kolejność zawartości studzienki na płytce testowej jest zgodna z kolejnością zawartości studzienki na mikropłytce CARA. Unikaj rozpryskiwania się podczas przenoszenia i upewnij się, że 10 μl zostało dostrzeżone w środku studzienek na mikropłytki CARA. Upewnij się, że 10 μl wchłania się do mikropłytki CARA. 
	UWAGA: Nie są wymagane żadne rozcieńczenia przed nakrapianiem komórek na mikropłytkach CARA.</li>
	<li>Zwiąż stosy mikropłytek CARA taśmą klejącą, a następnie umieść je w zamykanej plastikowej torbie. Inkubować mikropłytki CARA w temperaturze 37 °C z 20%O2 (M. smegmatis) lub 1%O2 i 5% CO2 (M. tuberculosis i M. bovis BCG).</li>
	<li>Dla M. tuberculosis i M. bovis BCG, testy replikujące: inkubować przez 7 dni; dla M. tuberculosis i M. bovis BCG testować bez replikacji, inkubować przez 10 dni; dla M. smegmatis, próby replikujące, inkubować przez 1-2 dni; dla M. smegmatis, testy niereplikujące, inkubować 2-3 dni. 
	UWAGA: Czasy są szacunkowe i mogą być odpowiednio modyfikowane dla różnych warunków replikacji, niereplikacji i naprężeń.</li>
</ol>
4. Opracowanie mikropłytek CARA
<ol>
	<li>Mikropłytki CARA należy rozwijać, gdy na ujemnych (nośnikowych) studzienkach kontrolnych widoczny jest film wzrostu bakterii lub większe, makroskopowe kolonie. 
	UWAGA: Po długotrwałej inkubacji studzienki mikropłytkowe CARA często wydają się suche i zalecamy wstępne zwilżenie zawartości studzienki sterylnym PBS. Ma to na celu zapobieżenie wchłanianiu resazuryny przez węgiel drzewny, co może prowadzić do niskiej fluorescencji lub zmienności między studniami.</li>
	<li>Używając pojedynczego zestawu 12 końcówek p200 z pipetą wielokanałową, dozuj 40 μl sterylnego PBS wzdłuż boku studzienek i pozwól PBS rozprowadzić się po górnej części mikrokolonii agarowych/bakteryjnych.</li>
	<li>Przygotować odczynnik wywołujący CARA, mieszając 5 mg rezazuryny (0,01% końcowej) i 50 ml 5% Tween80 w PBS. Filtr wirowy i sterylny. 
	UWAGA: Alternatywny odczynnik wywołujący CARA można przygotować, mieszając komercyjnie przygotowany płynny roztwór rezazuryny w stosunku 1:1 (vol/vol) z 10% Tween80 w PBS.</li>
	<li>Dodać 50 μl świeżo przygotowanego odczynnika wywołującego CARA do każdego dołka mikropłytki CARA za pomocą 12-kanałowej pipety. Płytki kołysane kilka razy w przód iw tył, aby pomóc rozprowadzić odczynnik po agarze i macie bakteryjnej w każdej studzience.</li>
	<li>Umieścić płytki w zamykanej plastikowej torbie i inkubować w temperaturze 37 °C przez co najmniej 30 minut w przypadku M. smegmatis i 45–60 minut w przypadku M. tuberculosis lub M. bovis BCG. 
	UWAGA: Jeśli studzienki kontrolne pojazdu nie zmienią koloru na różowy w ciągu pierwszej godziny, płytki można ponownie zapakować i inkubować przez dłuższy czas.</li>
	<li>Przed odczytem fluorescencji należy umieścić mikropłytki CARA w okapie bezpieczeństwa biologicznego na 15 minut w temperaturze pokojowej ze zdjętymi pokrywkami. W przypadku korzystania ze spektrofotometrów BSL3 poza szafą bezpieczeństwa biologicznego, przyklej naklejkę PCR o jakości optycznej na płytce i szczelnie zamknij, delikatnie dociskając powierzchnię naklejki miękkim ręcznikiem papierowym.</li>
	<li>Określić fluorescencję za pomocą odczytu od góry ze wzbudzeniem przy 530 nm i emisją przy 590 nm. Nie ma potrzeby zaślepiania płyty.</li>
</ol>
5. Analiza danych
<ol>
	<li>Wykreślić stężenie inhibitora na osi X w skali logarytmu10 i fluorescencję na osi Y w skali liniowej. Użyj wykresu punktowego z zastosowaniem dopasowania krzywej, takiego jak "nachylenie logarytmu inhibitora a zmiennej odpowiedzi (4 parametry)". Wykreśl punkty danych jako średnie± błąd standardowy.</li>
</ol>

<ol><li>Nathan, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fresh+approaches+to+anti-infective+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Transl.+Medicine%22%5BJournal%5D)">Fresh approaches to anti-infective therapies.</a> Sci. Transl. Medicine. 4 (140), 140-142 (2012).</li>
<li>Gomez, J. E., McKinney, J. D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((tuberculosis+persistence%2C+latency%2C+and+drug+tolerance%5BTitle%5D)+AND+%22Tuberculosis+%28Edinb%29%22%5BJournal%5D)">tuberculosis persistence, latency, and drug tolerance.</a> Tuberculosis (Edinb). 84, 29-44 (2004).</li>
<li>Balaban, N. Q., Merrin, J., Chait, R., Kowalik, L., Leibler, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+persistence+as+a+phenotypic+switch%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Bacterial persistence as a phenotypic switch.</a> Science. 305, 1622-1625 (2004).</li>
<li>Bigger, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+of+staphylococcal+infections+with+penicillin+by+intermittent+sterilisation%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Treatment of staphylococcal infections with penicillin by intermittent sterilisation.</a> Lancet. , 497-500 (1944).</li>
<li>Bryk, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+killing+of+nonreplicating+mycobacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+Microbe%22%5BJournal%5D)">Selective killing of nonreplicating mycobacteria.</a> Cell Host Microbe. 3, 137-145 (2008).</li>
<li>Gold, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonsteroidal+anti-inflammatory+drug+sensitizes+Mycobacterium+tuberculosis+to+endogenous+and+exogenous+antimicrobials%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Nonsteroidal anti-inflammatory drug sensitizes Mycobacterium tuberculosis to endogenous and exogenous antimicrobials.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109, 16004-16011 (2012).</li>
<li>Gold, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid%2C+semi-quantitative+assay+to+discriminate+among+compounds+with+activity+against+replicating+or+non-replicating+Mycobacterium+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob.+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Rapid, semi-quantitative assay to discriminate among compounds with activity against replicating or non-replicating Mycobacterium tuberculosis.</a> Antimicrob. Agents Chemother. 59, 6521-6538 (2015).</li>
<li>Gold, B., Warrier, T., Nathan, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGold%2C+B+%22Mycobacteria+Protocols%2C+Methods+in+Molecular+Biology%22">Mycobacteria Protocols, Methods in Molecular Biology</a>. Parish, T., Roberts, D. 1285, Springer. 293-315 (2015).</li>
<li>Warrier, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+Novel+Anti-mycobacterial+Compounds+by+Screening+a+Pharmaceutical+Small-Molecule+Library+against+Nonreplicating+Mycobacterium+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Infect.+Dis%22%5BJournal%5D)">Identification of Novel Anti-mycobacterial Compounds by Screening a Pharmaceutical Small-Molecule Library against Nonreplicating Mycobacterium tuberculosis.</a> ACS Infect. Dis. , 580-585 (2015).</li>
<li>Zheng, P., et al. Synthetic Calanolides with Bactericidal Activity Against Replicating and Nonreplicating Mycobacterium tuberculosis. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aZheng%2C+P+%22J.+Med.+Chem%22">J. Med. Chem</a>. Chem, J. .M. ed. , (2014).</li>
<li>Darby, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole+cell+screen+for+inhibitors+of+pH+homeostasis+in+Mycobacterium+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Whole cell screen for inhibitors of pH homeostasis in Mycobacterium tuberculosis.</a> PLoS One. 8, e68942(2013).</li>
<li>Darby, C. M., Nathan, C. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Killing+of+non-replicating+Mycobacterium+tuberculosis+by+8-hydroxyquinoline%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Antimicrob.+Chemother%22%5BJournal%5D)">Killing of non-replicating Mycobacterium tuberculosis by 8-hydroxyquinoline.</a> J. Antimicrob. Chemother. 65, 1424-1427 (2010).</li>
<li>de Carvalho, L. P., Darby, C. M., Rhee, K., Nathan, C. Nitazoxanide Disrupts Membrane Potential and Intrabacterial pH Homeostasis of Mycobacterium tuberculosis. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3ade+Carvalho%2C+LP+%22ACS+Med.+Chem.+Lett%22">ACS Med. Chem. Lett</a>. 2, 849-854 (2011).</li>
<li>Xie, Z., Siddiqi, N., Rubin, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+antibiotic+susceptibilities+of+starved+Mycobacterium+tuberculosis+isolates%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob.+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Differential antibiotic susceptibilities of starved Mycobacterium tuberculosis isolates.</a> Antimicrob. Agents Chemother. 49, 4778-4780 (2005).</li>
<li>Grant, S. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+novel+inhibitors+of+nonreplicating+Mycobacterium+tuberculosis+using+a+carbon+starvation+model%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">Identification of novel inhibitors of nonreplicating Mycobacterium tuberculosis using a carbon starvation model.</a> ACS Chem. Biol. 8, 2224-2234 (2013).</li>
<li>Zhang, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Streptomycin-starved+Mycobacterium+tuberculosis+18b%2C+a+drug+discovery+tool+for+latent+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob.+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Streptomycin-starved Mycobacterium tuberculosis 18b, a drug discovery tool for latent tuberculosis.</a> Antimicrob. Agents Chemother. 56, 5782-5789 (2012).</li>
<li>Mak, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-throughput+screen+to+identify+inhibitors+of+ATP+homeostasis+in+non-replicating+Mycobacterium+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">A high-throughput screen to identify inhibitors of ATP homeostasis in non-replicating Mycobacterium tuberculosis.</a> ACS Chem. Biol. 7, 1190-1197 (2012).</li>
<li>Cho, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low-oxygen-recovery+assay+for+high-throughput+screening+of+compounds+against+nonreplicating+Mycobacterium+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob.+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Low-oxygen-recovery assay for high-throughput screening of compounds against nonreplicating Mycobacterium tuberculosis.</a> Antimicrob. Agents Chemother. 51, 1380-1385 (2007).</li>
<li>Franzblau, S. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+analysis+of+methods+used+for+the+evaluation+of+compounds+against+Mycobacterium+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22Tuberculosis+%28Edinb%29%22%5BJournal%5D)">Comprehensive analysis of methods used for the evaluation of compounds against Mycobacterium tuberculosis.</a> Tuberculosis (Edinb). 92, 453-488 (2012).</li>
<li>Rebollo-Lopez, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Release+of+50+new%2C+drug-like+compounds+and+their+computational+target+predictions+for+open+source+anti-tubercular+drug+discovery%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Release of 50 new, drug-like compounds and their computational target predictions for open source anti-tubercular drug discovery.</a> PLoS One. 10, e0142293(2015).</li>
<li>Tasneen, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+the+nitroimidazoles+PA-824+and+TBA-354+to+the+activity+of+novel+regimens+in+murine+models+of+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob.+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Contribution of the nitroimidazoles PA-824 and TBA-354 to the activity of novel regimens in murine models of tuberculosis.</a> Antimicrob. Agents Chemother. 59, 129-135 (2015).</li>
<li>Grosset, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+clofazimine+activity+in+a+second-line+regimen+for+tuberculosis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Crit.+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Assessment of clofazimine activity in a second-line regimen for tuberculosis in mice.</a> Am. J. Respir. Crit. Care Med. 188, 608-612 (2013).</li>
<li>Shiloh, M. U., Ruan, J., Nathan, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+bacterial+survival+and+phagocyte+function+with+a+fluorescence-based+microplate+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Evaluation of bacterial survival and phagocyte function with a fluorescence-based microplate assay.</a> Infect. Immun. 65, 3193-3198 (1997).</li>
<li>Wang, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+small+molecule+with+activity+against+drug-resistant+and+persistent+tuberculosis%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Identification of a small molecule with activity against drug-resistant and persistent tuberculosis.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 110, E2510-E2517 (2013).</li>
<li>Wayne, L. G., Hayes, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro+model+for+sequential+study+of+shiftdown+of+Mycobacterium+tuberculosis+through+two+stages+of+nonreplicating+persistence%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">An in vitro model for sequential study of shiftdown of Mycobacterium tuberculosis through two stages of nonreplicating persistence.</a> Infect. Immun. 64, 2062-2069 (1996).</li>
<li>Barry, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBarry%2C+AL+%22Methods+for+determining+bactericidal+activity+of+antimicrobial+agents%3A+approved+guideline%22">Methods for determining bactericidal activity of antimicrobial agents: approved guideline</a>. 19, National Committee for Clinical Laboratory Standards. (1999).</li>
</ol>

Nie ma żadnych konfliktów interesów, które można by ujawnić.

CARA został pierwotnie opracowany w celu złagodzenia wąskiego gardła w postępujących niereplikujących się lub podwójnie aktywnych cząsteczkach7. CARA służy jako etap pośredni między potwierdzeniem stężenie-odpowiedź pierwotnych trafień przesiewowych a testami CFU (ryc. 1). Ponieważ pojedyncza płytka CARA może zastąpić wiele płytek do mikromiareczkowania wymaganych do przygotowania seryjnych rozcieńczeń oraz płytek Petriego zawierających agar używanych do liczenia bakterii, które przeżyły, CARA zapewnia prosty sposób szybkiej oceny aktywności cząsteczki i testowania wielu zmiennych jednocześnie, w tym stężenia związku i czasu ekspozycji na związek.
W teście CFU, oprócz seryjnych rozcieńczeń, które często wahają się do 106-krotnie, płytka agarowa zazwyczaj rozcieńcza cząsteczki o dodatkowe ~800-krotne (10 μl na 8 ml w trójstylowej płytce Petriego). Nasz dwuetapowy, wielostresowy test przesiewowy dla związków aktywnych na niereplikującym się M. tuberculosis ma 5-krotny współczynnik przeniesienia, to znaczy związek obecny w fazie niereplikacji testu jest obecny w jednej piątej pierwotnego stężenia w fazie wzrostu (replikacji) testu6-9. CARA łagodzi skutki przenoszenia poprzez sekwestrację małych cząsteczek za pomocą węgla aktywnego. Większość leków przeciwgruźliczych i kandydatów klinicznych wiąże węgiel aktywowany szybko i całkowicie, z wyjątkiem aminoglikozydu streptomycyny7. Włączenie węgla aktywnego do płytek agarowych do testów CFU zapobiegło zahamowaniu wzrostu bakterii lub zabiciu bakterii przez przenoszenie TMC207 i PA-8247,21,22. Tak więc, dzięki włączeniu węgla aktywnego do agaru bakteriologicznego, CARA nie jest zależna od seryjnych rozcieńczeń komórek i czynnika testowego.
CARA może pomóc w przewidywaniu bakteriostatycznego lub bakteriobójczego wpływu replikujących się substancji czynnych oraz bakteriobójczego wpływu niereplikujących się substancji czynnych. Ogólnie rzecz biorąc, CARA jest stosowany równolegle ze standardowymi testami MIC90 . Moc predykcyjna CARA wynika z porównania wyników MIC90 i CARA (Rysunek 2 i Tabela 1). W przypadku stosowania do badania środków przeciwprątkowych, CARA może dokładnie przewidywać aktywność, która jest replikująca bakteriobójcza (Figura 4a), replikująca bakteriostatyczna (Figura 4b), niereplikująca bakteriobójcza (Figura 4c) lub podwójnie aktywna (Figura 4d). CARA pozwala również na prostą ocenę aktywności związku zarówno w dawce, jak i czasie. Same testy CFU wymagają wiele wysiłku i materiału, aby ocenić aktywność związku w szerokim zakresie dawek i czasów, ale zadanie staje się wykonalne, gdy wyniki CARA zawężają zakres warunków do tych, w których związek jest wyraźnie aktywny (ryc. 5).
Chociaż CARA jest przydatna w badaniu działania środków przeciwinfekcyjnych na prątki, test ma ograniczenia. CARA ma wąski zakres dynamiki (2-3 log10) i może nie być odpowiedni w warunkach, w których przewiduje się, że nie może dojść do zabicia bakterii więcej niż 2 do 3 log10 . Przewidywania CARA wymagają dalszych badań przy użyciu bardziej rygorystycznej i dokładnej metody liczenia liczby bakterii, takiej jak test CFU. Działanie niektórych leków przeciwinfekcyjnych, takich jak PAS, po antybiotykoterapii może zmylić CARA jako narzędzie predykcyjne do rozróżniania związków o działaniu bakteriobójczym i bakteriostatycznym przeciwko replikacji M. tuberculosis7.
Istnieją dwa zalecenia dotyczące poprawy jakości CARA. Po pierwsze, należy szybko wlać mikropłytki CARA, zanim agar zastygnie, zachowując dokładność objętościową i unikając rozpryskiwania się na zewnątrz mikrostudzienek. Niezależnie od wymaganej liczby płytek, zalecamy przygotowanie partii od 0,5 do 1 litra pożywki, aby pomóc w utrzymaniu pożywki w postaci płynnej przez czas wymagany do nalewania płytek. Częsta wymiana końcówek podczas napełniania mikropłytek medium pozwala uniknąć stosowania częściowo zatkanych końcówek. Po drugie, należy zminimalizować sztuczną zmienność fluorescencji między powtórzeniami. Mikrokolonie prątków, w szczególności prątków chorobotwórczych, takich jak M. tuberculosis, często rosną nieregularnie. Na przykład mikrokolonie rosnące na powierzchni agaru mogą różnić się wielkością, kształtem, wysokością lub mogą sięgać do wewnętrznych ścian studzienek na mikropłytkach. Jednym z wyzwań jest równomierne pokrycie wszystkich pałeczek odczynnikiem rozwijającym. Kolejną przeszkodą jest to, że po długotrwałej inkubacji w temperaturze 37 °C stałe podłoże bakteriologiczne mikropłytek CARA może stać się suche i podatne na wchłanianie rozwijającego się odczynnika. Ponieważ węgiel aktywny może wiązać rezazurynę i gasić fluorescencję7, może wystąpić różnica między studniami ze względu na suche studzienki absorbujące roztwór rozwijający rezazurynę i fluorescencję resazuryny hartowanej węglem aktywnym. Wstępne zwilżenie powierzchni wszystkich studzienek mikropłytkowych CARA PBS bezpośrednio przed dodaniem odczynnika wywołującego łagodzi oba te problemy — rozwijający się odczynnik dotrze równomiernie do wszystkich kolonii prątków, a resazuryna pozostaje bezpiecznie nad węglem aktywnym. CARA może mieć zastosowanie w identyfikacji i charakterystyce fenotypów mutantów prątków lub w średnioprzepustowych testach odkrywania leków dla innych gatunków bakterii.

Mycobacterium tuberculosis, czynnik etiologiczny gruźlicy, może przetrwać w organizmie gospodarza w stanie utajonym, który jest oporny na zwalczanie antybiotyków. Uważa się, że fenotypowa (niegenetyczna) oporność M. tuberculosis podczas infekcji jest częściowo spowodowana populacjami niereplikujących się pałeczek1,2. Osoby utrzymujące się w klasie I wykazujące fenotypową oporność na leki powstają w wyniku rzadkich mechanizmów stochastycznych w dużych populacjach komórek wrażliwych na leki3,4. Osoby utrzymujące się na długo utrzymujące się w klasie II stają się niereplikujące się pod wpływem czynników odporności gospodarza, w tym stresu zewnętrznego w mikrośrodowiskach napotkanych podczas infekcji. Niedawno opracowaliśmy model in vitro niereplikującej się trwałości klasy II, aby naśladować warunki, z którymi boryka się M. tuberculosis w aktywowanych makrofagach i ziarniniakach. Model wielostresowy trwałości klasy II obejmuje warunki, które spowalniają wzrost, takie jak źródło węgla w kwasach tłuszczowych i całkowicie zatrzymują wzrost, takie jak łagodna kwasowość (pH 5,0), niedotlenienie (1%O2) oraz tlenek azotu i inne reaktywne produkty pośrednieazotu 5-9. Badania przesiewowe na dużą skalę z wykorzystaniem tego wielostresowego modelu niereplikacji i innych modeli niereplikujących klasy II dały różnorodne cząsteczki, których aktywność jest skierowana przeciwko stanowi niereplikującemu5-7,9-18. Te same niereplikujące się badania przesiewowe ujawniły również kategorię cząsteczek, które wykazują aktywność zarówno przeciwko replikującym, jak i niereplikującym się pałeczkom, określaną jako "podwójne substancje aktywne"7,10,12,19,20.
Odkrycie leku przeciwbakteryjnego w fazie hit-to-lead pociąga za sobą obszerną charakterystykę cząsteczek kandydujących w celu wyboru potencjalnych źródeł do rozszerzenia trafienia, wstępną charakterystykę farmakologiczną, identyfikację celu i wstępne badania skuteczności in vivo. Na wczesnym etapie leki przeciwinfekcyjne klasyfikuje się na podstawie ich bakteriostatycznego lub bakteriobójczego mechanizmu działania, a jeśli są bakteriobójcze, to czy zabicie bakterii zależy od czasu i/lub stężenia. Test jednostki tworzącej kolonię (CFU) jest klasyczną, złotą metodą standardu w odpowiedzi na te pytania. W teście CFU bakterie są poddawane działaniu czynnika testowego, po czym podwielokrotności są usuwane, seryjnie rozcieńczane, a podwielokrotności rozcieńczeń rozprowadza się na stałym podłożu bakteriologicznym i inkubuje, aby umożliwić wzrost komórek, które przeżyły. Na koniec wylicza się kolonie bakterii. Test CFU wymaga dużej liczby płytek mikromiareczkowych do rozcieńczenia komórek i płytek Petriego zawierających agar do zliczenia kolonii, które przeżyły. Test CFU dla wolno rosnących prątków jest utrudniony przez ich powolny czas generacji (18-24 godziny), który wymaga około 3 tygodni, aby kolonie pojawiły się na płytkach. Ponadto przestrzeń w inkubatorach jest często ograniczona w specjalistycznych obiektach o poziomie bezpieczeństwa biologicznego 3.
Chociaż są uciążliwe, testy CFU są złotym standardem do scharakteryzowania wpływu niereplikujących się i podwójnie aktywnych cząsteczek na prątki. Testy niereplikujące są obarczone wysokimi wskaźnikami wyników fałszywie dodatnich, ponieważ wiele z nich jest sprzężonych z testami replikującymi w celu oceny żywotności komórek6-8. Na przykład związek, który ma silną aktywność przeciwko replikacji M. tuberculosis ("substancja czynna replikująca") może nie zabijać podczas testu bez replikacji, ale nadal może zabijać dzięki przeniesieniu z fazy niereplikacji testu do fazy odzyskiwania testu, która jest przeprowadzana w warunkach sprzyjających replikacji ("warunki replikacji"). Przenoszenie związków dodatkowo komplikuje analizę podwójnie aktywnych cząsteczek, utrudniając rozróżnienie, czy aktywność była replikująca, niereplikująca, czy podwójna.
Aby rozwiązać problemy opisane powyżej, opracowaliśmy test CARA, który umożliwia szybkie, półilościowe liczenie gatunków prątków, takich jak M. tuberculosis, M. bovis BCG i M. smegmatis7 (Rysunki 1 i 2). W roztworach buforowych in vitro węgiel aktywny szybko sekwestruje większość standardowych leków stosowanych w leczeniu gruźlicy7. Węgiel aktywny w mikropłytkach CARA wiąże związki, które mogą przenosić się z mikropłytki testowej, a ta cecha CARA eliminuje wymóg seryjnego rozcieńczania zawartości studzienki testowej przed wyliczeniem7,21,22. Liczbę mikrokolonii prątków na powierzchni agaru mikropłytek CARA szacuje się przez dodanie resazuryny, niebieskiego barwnika, którego zredukowana forma, rezorufina, jest różową cząsteczką, której fluorescencję mierzy się za pomocą spektrofotometrii23. Mikropłytki CARA inkubuje się przez 1-2 dni w przypadku M. smegmatis i 7-10 dni w przypadku wolno rosnących prątków, takich jak M. tuberculosis i M. bovis BCG. CARA ma wąski zakres dynamiki wynoszący ~2-3 log10 różnicy w CFU. W przypadku zastosowania zamiast testu CFU, pojedyncza mikropłytka CARA zastępuje około pięciu 96-dołkowych płytek używanych do seryjnych rozcieńczeń i 120 trójfazowych płytek agarowych używanych do posiewu. Interpretacja danych CARA pomaga w kierowaniu kolejnymi badaniami poprzez określenie, które czasy inkubacji i stężenia związków należy przetestować w bardziej pracochłonnych testach opartych na CFU.

<table><tbody><tr><td>Middlebrook 7H9</td><td>Beckton Dickinson</td><td>271310</td><td></td></tr><tr><td>Middlebrook 7H11</td><td>Beckton Dickinson</td><td>298810</td><td></td></tr><tr><td>Middlebrook OADC</td><td>Beckton Dickinson</td><td>212351</td><td></td></tr><tr><td>BSA, szok termiczny</td><td>Roche</td><td>3118958001</td><td></td></tr><tr><td>węgiel aktywny</td><td>Sigma</td><td>C5510</td><td></td></tr><tr><td>PBS, Dulbecco's Ca2+ i Mg2+ wolne</td><td>Life Technologies / Invitrogen</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>tween 80</td><td>Sigma</td><td>P8074</td><td></td></tr><tr><td>tyloxapol</td><td>Sigma</td><td>T8761</td><td></td></tr><tr><td>azotyn sodu</td><td>Sigma</td><td>2252</td><td></td></tr><tr><td>ryfampicyna</td><td>Sigma</td><td>R3501</td><td></td></tr><tr><td>6-bromo-1H-indazol-3-amina</td><td>Alfa Aesar</td><td>H34095</td><td></td></tr><tr><td>fosforan potasu monobasic&nbsp; &nbsp;</td><td>Sigma</td><td>P0662</td><td></td></tr><tr><td>siarczan magnezu, siedmiowodny&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>M1880</td><td></td></tr><tr><td>cytrynian żelazowo-amonowy&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>F5879</td><td></td></tr><tr><td>siarczan, siedmiowodny</td><td>Sigma</td><td>Z0251</td><td></td></tr><tr><td>chlorek amonu&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>A9434</td><td></td></tr><tr><td>kwas masłowy, płyn</td><td>Sigma</td><td>B103500</td><td></td></tr><tr><td>rezazuryna w proszku</td><td>Sigma</td><td>R7017</td><td></td></tr><tr><td>chlorek sodu&nbsp;</td><td>J.T. Baker</td><td>4058-01&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Przygotowany roztwór rezazuryny&nbsp;</td><td>Naklejki Invitrogen</td><td>DAL1100</td><td></td></tr><tr><td>PCR</td> Spektrofotometr <td>Denville</td><td>B1212-5</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Urządzenia molekularne</td><td>M5</td><td></td></tr><tr><td>96-dołkowe, mikropłytki poddane hodowli tkankowej</td><td>Zbiorniki odczynników Corning</td><td>3595</td><td></td></tr><tr><td>VWR</td><td>&nbsp;</td><td>89094-678</td><td></td></tr><tr><td>Zamykane torby foliowe</td><td>VWR&nbsp;</td><td>395-94602</td><td></td></tr><tr><td>14 ml Probówki okrągłodenne z polipropylenu Corning</td><td>&nbsp;</td><td></td><td></td>352059</tr><tr><td>Stożkowa probówka wirówkowa o pojemności 50 ml</td><td>Corning</td><td>352070</td><td></td></tr><tr><td>75 cm2 Kolba do hodowli komórkowych</td><td>Corning</td><td>431464U</td><td></td></tr><tr><td>przezroczysta, z płaskim dnem Mikropłytka 96-dołkowa</td><td>Costar</td><td>3595</td><td></td></tr><tr><td>Prism 6 do http://www.graphpad.com/scientific-software/prism/</td><td></td><td></td> OS X <td>GraphPad</td></tr></tbody></table>

wizualizacja testu resazuryny agarowej z węglem drzewnym do półilościowego, średnioprzepustowego oznaczania liczby prątków

Visualization of the Charcoal Agar Resazurin Assay for Semi-quantitative, Medium-throughput Enumeration of Mycobacteria

Istnieje pilna potrzeba odkrycia i rozwoju leków przeciwinfekcyjnych, które skracają czas leczenia gruźlicy (TB). Mycobacterium tuberculosis, czynnik etiologiczny gruźlicy, jest oporny na szybką i długotrwałą chemioterapię ze względu na obecność pałeczek wykazujących fenotypową oporność na leki. Test naobecność węglu iesazuryny (CARA) został opracowany jako narzędzie do charakteryzowania aktywnych cząsteczek odkrytych w wyniku wysokoprzepustowych kampanii przesiewowych przeciwko replikującym się i niereplikującym M. tuberculosis. Włączenie węgla aktywnego do bakteriologicznego podłoża agarowego pomaga złagodzić wpływ przenoszenia związków i eliminuje konieczność wstępnego rozcieńczania komórek przed wykryciem na mikropłytkach CARA. Po 7-10 dniowym okresie inkubacji w temperaturze 37 °C, redukcja rezazuryny przez mikrokolonie prątków rosnące na powierzchni dołków mikropłytkowych CARA pozwala na półilościową ocenę liczby bakterii za pomocą fluorometrii. CARA wykrywa około 2-3 log10 różnicy w liczbie bakterii i przewiduje minimalne stężenie bakteriobójcze prowadzące do ≥99% zabicia bakterii (MBC≥99). CARA pomaga określić, czy cząsteczka jest aktywna na prątki, które się replikują, nie replikują, czy też oba te elementy. Eksperymenty pilotażowe z wykorzystaniem CARA ułatwiają określenie, jakie stężenie badanego czynnika i czas ekspozycji na związek wymagają dalszej oceny za pomocą testów jednostki tworzącej kolonie (CFU). Ponadto CARA może przewidzieć, czy replikujące się substancje czynne są bakteriobójcze czy bakteriostatyczne.

Przewidywane wyniki CARA opisano na Rysunku 2 i podsumowano w Tabeli 1. W przypadku komórek replikujących się test CARA jest przeprowadzany równolegle ze standardowymi analizami MIC90, a w przypadku analiz dla komórek niereplikujących się test CARA jest przeprowadzany równolegle z dostosowaną analizą MIC90, która jest powiązana z fazą wzrostu. Stężenie badanego czynnika, przy którym fluorescencja CARA nie wzrasta powyżej poziomu tła, stanowi CARA-MBC≥99 (Rysunek 3a). Indeks dolny „≥99” wskazuje, że CARA-MBC dostarcza szacunkowe stężenie badanego czynnika, które powoduje ubytek bakterii o wartości ≥2 log10 (śmiertelność ≥99%).
MIC w bulionie90 test nie pozwala na rozróżnienie między działaniem bakteriobójczym a bakteriostatycznym, a rozstrzygnięcie tej kwestii wymaga przeprowadzenia testu CFU. Przyjęto umownie, że próg odróżniający działanie bakteriobójcze od bakteriostatycznego w przypadku wolno rosnących prątków wynosi około 2-3 log10 eliminacja w ciągu 7 dni7,26Ponieważ zakres dynamiczny CARA wynosi również 2–3 log10 zabijają, CARA pozwala na oszacowanie aktywności bakteriobójczej lub bakteriostatycznej. Metoda CARA pozwala łatwo zidentyfikować niektóre substancje aktywne hamujące replikację jako bakteriostatyczne, ponieważ związki te nie obniżają fluorescencji CARA do poziomu tła (Rycina 2). Jednakże niektóre związki wykazujące działanie bakteriostatyczne przeciwko replikującym się *M. tuberculosis* wykazują silny efekt poantybiotykowy, co oznacza, że nadal hamują odrastanie bakterii w fazie regeneracji, nawet w przypadku braku przeniesienia związku. Efekt ten może być trudny do rozpoznania w teście CARA. Podejrzewa się, że związki wywierają efekt poantybiotykowy, jeśli wykazują tzw. „okno statyczne”, zdefiniowane jako &gt;4-krotne przesunięcie w prawo między krzywymi MIC a CARA (Rysunek 3b). Okno statyczne wskazuje, że cząsteczka aktywna przeciwko replikującym M. tuberculosis może być bakteriostatyczny zamiast bakteriobójczego. W niektórych przypadkach okna statyczne są widoczne dopiero po analizie powiększonej osi Y dla fluorescencji CARA (Rycina 3c i 3D).
Dane CARA i MIC90 są zazwyczaj przedstawiane wspólnie (Rysunek 4). Reprezentatywne dane dla cząsteczek aktywnych w warunkach replikacji i poza replikacją, przetestowanych za pomocą MIC90 oraz CARA, przedstawiono na Rysunku 4. Wyróżnia się 4 główne klasy aktywności cząsteczek: 1) bakteriobójcza w warunkach replikacji (wykazana dla izoniazydy, Rysunek 4a); 2) bakteriostatyczna w warunkach replikacji (wykazana dla linezolidu, Rysunek 4b); 3) bakteriobójcza poza replikacją (wykazana dla oksyfenbutazonu, Rysunek 4c); oraz 4) aktywna w warunkach replikacji (bakteriostatyczna lub bakteriobójcza) i bakteriobójcza poza replikacją (wykazana dla PA-824, Rysunek 4d). Co istotne, Rysunki 4a i 4b pokazują, że choć izoniazyd i linezolid wydają się wykazywać aktywność przeciwko bakteriom niepodzielonym w teście MIC90, to CARA sugeruje, że są one nieaktywne w testowanych warunkach braku replikacji. Aby sprawdzić użyteczność CARA w przewidywaniu wpływu cząsteczki zależnego od czasu i stężenia, replikujące M. smegmatis poddano działaniu rosnących stężeń ryfampicyny (Rysunki 5a-d), a w różnych odstępach czasu między 1 a 24 h naniesiono alikwoty na płytki CARA. Dane te wykazały, że ryfampicyna wywarła wpływ już po 1 h (Rysunek 5a), wykazała rosnącą aktywność bakteriobójczą między 3 a 24 h (Rysunki 5b-d) i zabiła ≥2-3 log10 przy stężeniu ~10 μg/ml do 24 h (Rysunek 5d). Podobny eksperyment testujący czwórki kontroli nośnika i 9 stężeń leku w 4 punktach czasowych byłby niewykonalny przy użyciu standardowego testu opartego na CFU.
Zatem CARA odgrywa rolę w odkrywaniu leków jako mechanizm o średniej przepustowości i szybkim działaniu, służący do identyfikacji profilu aktywności cząsteczki. Przewidywania CARA powinny być rygorystycznie oceniane przy użyciu standardowego testu CFU. Dodanie 0,4% węgla aktywnego do szalek Petriego w analizie CFU może pomóc w poprawie korelacji z danymi CARA i może skutkować dokładniejszymi zliczeniami CFU, przy czym skala korekty jest zazwyczaj proporcjonalna do mocy związku21,22.
<img alt="Schemat badania wrażliwości na antybiotyki; ocena MIC₉₀; ustawienie płytek 96-dołkowych i 384-dołkowych." src="/files/ftp_upload/54690/54690fig1.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 1"> 
Rycina 1: CARA jako narzędzie predykcyjne w poszukiwaniu leków. Ten schemat podsumowuje użyteczność CARA jako etapu pośredniego między przesiewaniem leków (przesiewanie jednopunktowe, selekcja wybranych związków i testy zależności dawka-odpowiedź) a czasochłonnymi badaniami hit-to-lead (testy CFU i identyfikacja celu). [Zaadaptowano za zgodą Gold et al., Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2015 7] <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54690/54690fig1large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby zobaczyć powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Schemat testu wrażliwości na antybiotyki; metoda analizy; ekspozycja na lek; OD580; odczyt fluorescencji." src="/files/ftp_upload/54690/54690fig2.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Figure 2"> 
Rysunek 2: Schemat analizy MIC90 w bulionie oraz CARA wraz z przewidywanymi wynikami. Wyniki MIC90 oraz CARA przedstawiono dla 8 możliwych wariantów aktywności. Kodowanie kolorystyczne dla studzienek mikropłytki MIC90 to biały (brak wzrostu) i brązowy (wzrost), a dla mikropłytek CARA to czarny (brak fluorescencji) i różowy (fluorescencja rezorufiny). Dane są hipotetyczne. [Zaadaptowano za zgodą Gold et al., Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2015 7] <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54690/54690fig2large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
<img alt="Wyniki testów przeciwdrobnoustrojowych; % inhibicji względem związku; wykres przedstawiający fluorescencję CARA; testowanie leków." src="/files/ftp_upload/54690/54690fig3.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 3"> 
Rycina 3: Specjalistyczne terminy i definicje CARA. Minimalne stężenie bakteriobójcze cząsteczki, skutkujące tłem fluorescencji CARA, to CARA-MBC≥99 (a). W warunkach replikacji przesunięcie CARA-MBC≥99 o ≥4-krotność w prawo względem MIC90 często wskazuje na aktywność bakteriostatyczną i nazywane jest „oknem statycznym” (b). W przypadku cząsteczek o silnym efekcie poantybiotykowym okna statyczne mogą być trudne do zaobserwowania (c) i wymagają rozszerzenia osi Y (fluorescencja CARA) w celu ich wizualizacji (d). Dane są hipotetyczne. [Adaptowano za zgodą z Gold et al., Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2015 7] <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54690/54690fig3large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Efekty bakteriobójcze i bakteriostatyczne w warunkach replikacji i braku replikacji; wykres inhibicji w funkcji dawki." src="/files/ftp_upload/54690/54690fig4.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 4"> 
Rysunek 4: Przykładowe wyniki MIC90 i CARA dla wybranych związków. Dane dla MIC90 (czerwone) i CARA (niebieskie) przedstawiono dla (a) izoniazydu (INH), (b) linezolidu, (c) oksyfenbutazonu oraz (d) PA-824. Dziki szczep M. tuberculosis H37Rv poddano działaniu związków przez 7 dni w standardowych warunkach replikacji lub w modelu wielostresowym braku replikacji7-9. Testy MIC90 oraz CARA przeprowadzono zgodnie z Rysunkiem 2. [Adaptowano za zgodą z Gold et al., Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2015 7] <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54690/54690fig4large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
<img alt="Wykresy fluorescencji CARA w zależności od stężenia ryfampicyny po 1, 3, 6, 24 godzinach; analiza zależności dawka-odpowiedź." src="/files/ftp_upload/54690/54690fig5.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 5"> 
Rysunek 5: Aktywność ryfampicyny zależna od dawki i czasu. Niepatogenne, szybko rosnące M. smegmatis poddano działaniu zwiększających się stężeń ryfampicyny w warunkach replikacji, a alikwoty pobrano do analizy CARA po 1 (a), 3 (b), 6 (c) i 24 (d) h. [Zaadaptowano za zgodą z Gold et al., Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2015 7] <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54690/54690fig5large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
<img alt="Tabela klasyfikacji testów przeciwdrobnoustrojowych z parametrami, klasyfikacjami aktywności i wynikami testów." src="/files/ftp_upload/54690/54690tbl1.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Tabela 1"> 
Tabela 1: Podsumowanie spodziewanych wyników przedstawionych na Rysunku 2. [Adaptowano za zgodą Gold et al., Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2015 7] <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54690/54690tbl1large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej tabeli.</a>

Próba CARA) to półilościowa, średnio przepustowa metoda oceny aktywności badanych agentów przeciwko prątkom, które się replikują, nie replikują, lub jedno i drugie. CARA pozwala na szybką ocenę aktywności zależnej od czasu i stężenia oraz identyfikuje parametry, które należy realizować za pomocą testów jednostek tworzących kolonie (CFU).

Wizualizacja testu resazuryny agarowej z węglem drzewnym do półilościowego, średnioprzepustowego oznaczania liczby prątków

There is an urgent need to discover and progress anti-infectives that shorten the duration of tuberculosis (TB) treatment. Mycobacterium tuberculosis, the ...

Ogólnym celem CARA jest zapewnienie średnioprzepustowej, półilościowej oceny aktywności związków przeciwko replikującym się i niereplikującym się prątkom. Główną zaletą tej techniki jest to, że jako substytut CFU, CARA pozwala na szybkie przetestowanie zależności dawki i czasu działania związku. Metoda ta może pomóc w odpowiedzi na kluczowe pytania w dziedzinie odkrywania leków przeciwgruźliczych, takie jak ustalenie, czy związek jest bakteriostatyczny czy bakteriobójczy w stosunku do replikujących się bakterii oraz czy wykazuje działanie bakteriobójcze wobec bakterii niereplikujących się.Metody zaprezentuje Julia Roberts, współpracownik w naszym laboratorium. Nalej 450 mililitrów wody do jednolitrowego zlewki szklanej lub 900 mililitrów wody do dwulitrowej kolby Erlenmeyera. Umieść w zlewce lub kolbie magnes do mieszania nadający się do autoklawowania.Następnie dodaj proszek Middlebrook 7H11, węgiel aktywny do stężenia końcowego 0,4% oraz roztwór 50% glicerolu, aby osiągnąć stężenie końcowe 0,2%. Przykryj otwór kolby lub zlewki folią aluminiową i przymocuj do szkła taśmą do autoklawowania. Po autoklawowaniu pożywki schłodź ją do około 55 do 65 °C na mieszalce magnetycznej ustawionej na niskie obroty, aby utrzymać węgiel w zawiesinie.Pracując aseptycznie w komorze z laminarnym przepływem powietrza wyposażonej w mieszadło magnetyczne, należy usunąć folię z pożywki, a następnie dodać 100 lub 50 ml suplementu OADC odpowiednio do kolby o pojemności dwóch litrów lub zlewki o pojemności jednego litra i kontynuować mieszanie. Używając pipety wielokanałowej z ośmioma lub 12 końcówkami z filtrem, należy napełnić mikropłytkę 96-dołkową, dozując do każdego dołka 200 µl pożywki 7H11-OADC-charcoal z rezerwuaru na odczynniki lub zlewki, pracując szybko, aby uniknąć zestalenia agaru i powstawania pęcherzyków powietrza. Stosy mikropłytek CARA należy umieścić w szczelnych plastikowych woreczkach, aby zapobiec ich wysychaniu, i przechowywać w temperaturze 4 °C.Zaszczep polipropylenowe probówki do wirowania z dnem okrągłym lub stożkowym zawierające odpowiednio 4 lub 20 mililitrów pożywki Middlebrook 7H9-ADN lub 7H9-OADC przy użyciu M.smegmatis w stężeniu OD580 od 0,01 do 0,1. Inkubuj kultury M.smegmatis w temperaturze 37 °C i 20% O2 z wytrząsaniem, namnażając kultury do fazy średnio-logarytmicznej lub do przybliżonej wartości OD580 wynoszącej 0,5. Aby przygotować eksperyment w stylu wyznaczania minimalnego stężenia hamującego w warunkach replikujących i niereplikujących, nanieś 200 µL komórek w 7H9-ADN przy OD580 wynoszącym 0,01 do wszystkich dołków przezroczystej, traktowanej do hodowli tkankowych płytki 96-dołkowej.W przypadku testu dla komórek niereplikujących się, należy dwukrotnie przemyć komórki roztworem PBS zawierającym 0,02% tyloxapolu. Do ponownego zawieszenia komórek należy użyć pożywki dla komórek niereplikujących się. Za pomocą pożywki dla komórek niereplikujących się należy rozcieńczyć komórki do wartości OD580 wynoszącej 0,1, a następnie dodać azotan sodu do stężenia końcowego od 0,5 do 5 mM, korzystając ze świeżo przygotowanego roztworu stokowego o stężeniu 1 M.Rozdziel 200 µL komórek o OD580 wynoszącym 0,1 do wszystkich studzienek przezroczystej płyty 96-dołkowej przeznaczonej do hodowli tkanek. Po przygotowaniu substancji testowych zgodnie z protokołem tekstowym, dodaj 2 µL pierwszej substancji testowej do rzędów od A do E oraz 2 µL drugiej substancji testowej do rzędów od E do H, a następnie dokładnie wymieszaj. W przypadku powtórzeń analizy, inkubuj mikroplate z M.smegmatis w temperaturze 37 °C, przy 20% O2 i 5% CO2 przez okres od 1 do 48 godzin.W punktach czasowych, w których CARA będzie służyć jako odczyt, należy użyć wielokanałowej pipety p200 ustawionej na 50 do 75 µL, aby ostrożnie resuspender zawartość studzienek płyty testowej w stylu MIC90 poprzez pipetowanie w górę i w dół od 5 do 10 razy. Następnie, za pomocą końcówek pipety, należy delikatnie zamieszać zawartość studzienek ruchem okrężnym. Przenieś 10 µL nierozcieńczonej zawartości studzienek testowych do odpowiadających im studzienek mikropłyty CARA, unikając rozbryzgów podczas przenoszenia i upewniając się, że aliquot 10 µL zostanie naniesiony na środek studzienek mikropłyty CARA.Za pomocą taśmy do płytek zwiąż stosy mikropłytek CARA, a następnie umieść je w szczelnym plastikowym worku. Inkubuj mikropłytki CARA z M.smegmatis w temperaturze 37 °C przy 20%O2 przez jeden do dwóch dni w przypadku płytek replikujących oraz przez dwa do trzech dni w przypadku płytek niereplikujących. Gdy w studzienkach kontrolnych negatywnych pojawi się błona wzrostu bakteryjnego lub widoczne będą większe kolonie makroskopowe, użyj jednego zestawu 12 końcówek p200 z pipetą wielokanałową, aby nanieść 40 µL sterylnego PBS wzdłuż ścianek studzienek i pozwól, aby PBS rozprzestrzenił się po powierzchni agaru/mikrokolonii bakteryjnych.Przygotuj odczynnik wywoławczy CARA, mieszając 5 mg rezuryny oraz 50 ml 5% Tween80 w PBS. Dodaj 50 µl świeżo przygotowanego odczynnika wywoławczego CARA do każdej studni mikropłytki CARA. Następnie kilkakrotnie delikatnie poruszaj płytkami w przód i w tył, aby pomóc w rozprowadzeniu odczynnika na agarze i macie bakteryjnej w każdej studni.Umieścić płytki w strunowej torbie plastikowej i inkubować w temperaturze 37°C przez co najmniej 30 minut w przypadku M.smegmatis. Przed odczytem fluorescencji umieścić mikropłytki CARA w komorze z laminarnym przepływem powietrza na 15 minut w temperaturze pokojowej po zdjęciu pokrywek. W przypadku korzystania ze spektrofotometrów BSL3 poza komorą bezpieczeństwa biologicznego, nakleić na płytkę naklejkę PCR o jakości optycznej i użyć miękkiego ręcznika papierowego, aby szczelnie ją zamocować, delikatnie naciskając powierzchnię naklejki.Wyznacz fluorescencję za pomocą odczytu górnego (top read) przy wzbudzeniu 530 nanometrów i emisji 590 nanometrów. Nie ma potrzeby wykonywania pomiaru tła dla płytki. Aby przeanalizować dane, nanieś stężenie inhibitora na oś X w skali log10 oraz fluorescencję na oś Y w skali liniowej.Szczegółowe informacje znajdują się w protokole tekstowym. Stężenie substancji testowej, przy którym fluorescencja CARA nie wzrasta powyżej poziomu tła, stanowi CARA-MBC ≥ 99, co przedstawiono tutaj. Oznaczenie ≥ 99 w indeksie wskazuje, że CARA-MBC podaje szacunkowe stężenie substancji testowej, które prowadzi do redukcji bakterii o wartość ≥ 2 log10.Podejrzewa się, że związki wywierają efekt poantybiotykowy, jeśli wykazują okno statyczne, definiowane jako przesunięcie w prawo o więcej niż czterokrotność między krzywymi MIC a CARA. Okno statyczne wskazuje, że cząsteczka aktywna przeciwko replikującym się M.tuberculosis może być bakteriostatyczna zamiast bakteriobójczej. W przypadku cząsteczek o silnym efekcie poantybiotykowym okna statyczne mogą być trudne do zaobserwowania i stają się widoczne dopiero po analizie powiększonej osi Y dla fluorescencji CARA, jak pokazano tutaj.Przedstawiono tutaj replikujące i niereplikujące aktywne cząsteczki przebadane za pomocą MIC90 oraz CARA. Choć izoniazyd i linezolid wydają się wykazywać aktywność przeciwko niereplikującym bakteriom w teście MIC90, CARA sugeruje, że są one nieaktywne w testowanych warunkach braku replikacji. W tym eksperymencie CARA wystawienie M.smegmatis na działanie zwiększających się stężeń ryfampicyny ujawniło wpływ już po jednej godzinie i wykazało rosnącą aktywność bakteriobójczą między trzecią a 24. godziną, zabijając ≥ dwie do trzech log10 przy stężeniu około 10 µg/mL do 24. godziny.Po opanowaniu tej techniki, przygotowanie płytek zajmuje około dwóch godzin, przeniesienie komórek na płytki CARA trwa mniej niż godzinę, a wywołanie i pomiar fluorescencji płytek CARA zajmuje około jednej do dwóch godzin, pod warunkiem prawidłowego wykonania procedury. Podczas przeprowadzania tej procedury należy pamiętać o wykorzystaniu CARA jako testu prognostycznego do określenia, czy związek wykazuje działanie bakteriobójcze czy bakteriostatyczne przeciwko prątkom w stanie replikacji lub bez replikacji. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś mieć dobrą wiedzę na temat tego, jak przygotować CARA i analizować dane w sposób pomagający przewidzieć rodzaj aktywności danego związku.Dziękujemy za obejrzenie i życzymy powodzenia w eksperymentach.

visualization-charcoal-agar-resazurin-assay-for-semi-quantitative

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologia i infekcje

Ten film prezentuje test CARA, test rezazurynowy z węglem drzewnym do oceny aktywności związków przeciwdrobnoustrojowych przeciwko Mycobacterium tuberculosis. CARA pomaga w ocenie skuteczności tych związków poprzez ocenę ich wpływu na wzrost bakterii i rozróżnienie między działaniem bakteriobójczym i bakteriostatycznym.

Test resazuryny agarowej z węglem drzewnym w celu oceny aktywności badanego związku przeciwko prątkom

Ten film pokazuje test do oceny skuteczności leków przeciwko zakażeniu Mycobacterium tuberculosis (Mtb).  Generowany jest model infekcji in vitro zawierający agregaty Mtb/makrofagów, który naśladuje infekcję in vivo. Po wprowadzeniu odpowiednich antybiotyków ich skuteczność jest testowana za pomocą testu resuzaryny w celu monitorowania przeżywalności bakterii przy rosnących stężeniach leku.

Test do oceny skuteczności leku przeciwko modelowi zakażenia Mycobacterium tuberculosis

Ten film demonstruje test w bulionie w celu określenia skuteczności antybiotyku przeciwko Mycobacterium tuberculosis. Kultura bakteryjna jest inkubowana z różnymi stężeniami antybiotyku bakteriobójczego. Skuteczność bakteriobójczą mierzy się, oceniając obecność żywych bakterii za pomocą testu resazurynowego.

Ocena skuteczności badanego związku przeciwko prątkom w bulionie

Tutaj opisujemy test fenotypowy mający zastosowanie do wysokoprzepustowych/wysokotreściowych ekranów małych interferujących bibliotek syntetycznego RNA (siRNA), związków chemicznych i Mycobacterium tuberculosis. Metoda ta polega na wykrywaniu znakowanych fluorescencyjnie Mycobacterium tuberculosis w znakowanej fluorescencyjnie komórce gospodarza za pomocą zautomatyzowanej mikroskopii konfokalnej.

Mikroskopowy test fenotypowy do oznaczania ilościowego prątków wewnątrzkomórkowych przystosowany do badań przesiewowych o wysokiej przepustowości/wysokiej zawartości

Opracowaliśmy modułowy, wysokoprzepustowy system przesiewowy do odkrywania nowych związków przeciwko Mycobacterium tuberculosis, ukierunkowanych na bakterie rosnące wewnątrzkomórkowo i w bulionie, a także cytotoksyczność wobec komórki gospodarza ssaków.

System badań przesiewowych skuteczności i cytotoksyczności inhibitorów ukierunkowanych na wewnątrzkomórkowe prątki gruźlicy

Nowe modele i testy, które poprawiłyby wczesny proces opracowywania leków przeciwgruźliczych nowej generacji, są wysoce pożądane. Tutaj opisujemy szybki, niedrogi i zgodny z BSL-2 test do oceny skuteczności leku przeciwko Mycobacterium tuberculosis, który można łatwo dostosować do wysokoprzepustowych badań przesiewowych.

Wysokoprzepustowy, kompatybilny test do oceny skuteczności leku przeciwko prątkom gruźlicy pasażowanym przez makrofagi

Szybkie i skuteczne oznaczanie wzrostu wewnątrzkomórkowego M. tuberculosis jest kluczowe dla poszukiwania lepszych terapii przeciwko gruźlicy (TB). Protokół ten opisuje test detekcji kolorymetrycznej na bazie bulionu przy użyciu zautomatyzowanego systemu hodowli płynów do ilościowego określenia wzrostu Mtb w makrofagach traktowanych potencjalnymi terapiami kierowanymi przez gospodarza.

Zautomatyzowany system hodowli do stosowania w badaniach przedklinicznych terapii gruźlicy ukierunkowanych na gospodarza

Oznaczanie jednostek tworzących kolonie (CFU) jest złotym standardem w ilościowym oznaczaniu bakterii, w tym Mycobacterium tuberculosis, które mogą potrzebować tygodni na utworzenie widocznych kolonii. W tym miejscu opisujemy mikro-CFU do oznaczania CFU ze zwiększoną wydajnością czasową, zmniejszoną przestrzenią laboratoryjną i kosztami odczynników oraz skalowalnością do eksperymentów o średniej i wysokiej przepustowości.

Test jednostkowy tworzenia mikrokolonii do oceny skuteczności szczepionek przeciwko gruźlicy

To badanie opracowało test do wysokoprzepustowych badań przesiewowych przeciwko Mycobacterium abscessus z niedawno stworzonym podwójnym szczepem reporterowym, wykorzystując fluorescencję i luminescencję do szybkiej oceny żywotności bakterii. Protokół ten będzie istotny dla naukowców dążących do badań przesiewowych nowych leków przeciwko tej lekoopornej bakterii.

Opracowanie testów do wysokoprzepustowych badań przesiewowych leków przeciwko prątkom

Przedstawiamy tutaj protokół do identyfikacji potencjalnych kandydatów do leków przeciwgruźliczych poprzez badanie fenotypową, obejmujące syntezę chemiczną związku 4-aminochinolinowego, określenie jego minimalnego stężenia hamującego wobec Mycobacterium tuberculosis i ocenę jego cytotoksyczności w liniach komórek ssaczych.

Identyfikacja potencjalnych kandydatów przeciwgruźliczych: Krok po kroku przewodnik po syntezie, oznaczaniu MIC i ocenie cytotoksyczności w komórkach ssaczy

Poznaj metodę CARA do półilościowej oceny aktywności związków przeciwko prątkom w warunkach replikacji i nierozmnażania. Technika ta przyspiesza odkrywanie leków przeciwgruźliczych.

Wizualizacja testu resazuryny agarowej z węglem drzewnym do półilościowego, średnioprzepustowego oznaczania liczby prątków

Przeglądaj więcej filmów