Name: Mysi przeszczep skóry o pełnej grubości (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-02T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 59 s
Description: Poznaj technikę przeszczepu skóry o pełnej grubości u myszy w modelu BALB/c do C57BL/6. Ta metoda umożliwia badanie alloimmunologicznych odpowiedzi i odrzucania przeszczepu w kontrolowanych warunkach laboratoryjnych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca została sfinansowana przez R01AI077610 grantu NIH.

Wszystkie procedury zostały przeprowadzone zgodnie z Przewodnikiem Opieki i Użytkowania Zwierząt Laboratoryjnych Narodowego Instytutu Zdrowia (NIH) i zostały zatwierdzone przez Komitet ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt Uniwersytetu Johnsa Hopkinsa (JHUACUC). Poszczególne procedury zostały przeprowadzone zgodnie z zatwierdzonymi protokołami ACUC MO13M292 i MO13M370.
1. Zbieranie skór od dawców
<ol>
	<li>Znieczulić mysz dawcę izofluranem (parownik indukcyjny w stężeniu 4%, utrzymanie w dawce 1 - 2% przez stożek myszy). Użyj odruchu wycofania szczypania palców u stóp, aby monitorować głębokość znieczulenia.</li>
	<li>Za pomocą elektrycznej maszynki do golenia ogol grzbiet zwierzęcia i zdezynfekuj go 10% jodowidonem (np. Betadine).</li>
	<li>Używając sterylnych nożyczek, rękawiczek i techniki aseptycznej, pobierz skórę pleców dawcy od biodra do szyi, z rozwarstwieniem na poziomie otoczki tkanki łącznej.</li>
	<li>Poddaj zwierzę eutanazji przez zwichnięcie szyjki macicy po pobraniu przeszczepu skóry.</li>
	<li>Pod mikroskopem oddziel tkankę łączną, tkankę tłuszczową i panniculus carnosus od skóry pleców za pomocą cienkich nożyczek do tenotomii. Panniculus carnosus to cienki, przezroczysty mięsień odpowiedzialny za drgania skóry.</li>
	<li>Korzystając z techniki sterylnych narzędzi, wytnij przeszczepy o wymiarach 15 mm x 15 mm z tylnej skóry na złoże przeszczepu o wymiarach 10 mm x 10 mm do 15 mm x 15 mm.</li>
	<li>Przechowuj szczepy na gazach nasączonych sterylną solą fizjologiczną buforowaną fosforanami (PBS) na szalce Petriego na lodzie. 
	UWAGA: Z jednej myszy dawcy można uzyskać 8 - 10 przeszczepów.</li>
</ol>
2. Przeszczep skóry biorcy
<ol>
	<li>Znieczulić mysz biorcę izofluranem (parownik indukcyjny w 4%, utrzymanie w dawce 1 - 2% przez stożek myszy). Użyj odruchu wycofania szczypania palców u stóp, aby monitorować głębokość znieczulenia.</li>
	<li>Podawać 0,02 mg/kg masy ciała buprenorfiny w celu złagodzenia bólu pooperacyjnego.</li>
	<li>Ogolić bok grzbietu zwierzęcia, w którym zostanie wprowadzony przeszczep i zdezynfekować 10% jodowidonem.</li>
	<li>Za pomocą nożyczek wytnij kwadrat skóry o wymiarach 10 mm x 10 mm do 15 mm x 15 mm. Wielkość ubytku powinna być nieco większa (10%) niż przeszczep. Wytnij tak powierzchownie, jak to możliwe. Zadbaj o zachowanie panniculus carnosus i naczyń. Panniculus carnosus można odróżnić od leżącej poniżej powięzi po jej ruchliwości i naczyniach krwionośnych, które biegną do niej powierzchownie.</li>
	<li>Umieść przeszczep na podłożu przeszczepu, unikając fałd wzdłuż krawędzi</li>.
	<li>Umieść 8 szwów na rogach i na środku każdej krawędzi. Dla każdego szwu przełóż igłę przez przeszczep, a następnie przez panniculus carnosus łożyska przeszczepu poniżej otaczającej skóry biorcy.</li>
	<li>Zdejmij maskę znieczulającą i pozwól zwierzęciu częściowo wyzdrowieć ze znieczulenia przed nałożeniem bandaża samoprzylepnego.</li>
	<li>Owiń mysz biorcy w samoprzylepny bandaż ze złożoną gazą na przeszczepie. Wykonaj bandaż, łącząc dwa bandaże, przecinając część klejącą jednego i umieszczając razem dwie podkładki chłonne.</li>
	<li>Uważnie monitoruj mysz podczas rekonwalescencji, aby upewnić się, że bandaż nie ogranicza ruchu klatki piersiowej i oddychania. Zdejmij bandaż, jeśli częstość oddechów zmniejszy się lub zwierzę zacznie sapać lub płytko oddychać.</li>
</ol>
3. Opieka pooperacyjna
<ol>
	<li>Podawać enrofloksacynę w dawce 5 mg/kg mc. po zabiegu chirurgicznym w celu zapobiegania zakażeniom.</li>
	<li>Umieść przeszczepioną mysz w czystej klatce na poduszce grzewczej do kuchenki mikrofalowej, aż w pełni wyzdrowieje ze znieczulenia.</li>
	<li>Obserwuj mysz przez 1 godzinę po operacji przed powrotem do pomieszczenia mieszkalnego.</li>
	<li>Siedem dni po zabiegu znieczulij mysz jak w kroku 2.1. Usuń bandaż, przecinając tylko brzuszną stronę bandaża.</li>
	<li>Obserwuj i badaj palpacyjnie przeszczep następnego dnia pod kątem oznak strupów, skurczów lub stwardnienia. Jeśli jest obecny, przeszczep mógł nie osiągnąć prawidłowego unaczynienia i należy go uznać za awarię techniczną.</li>
	<li>Codziennie monitoruj pod kątem oznak odrzucenia. Rozważ odrzucenie przeszczepów, gdy ≥90% tkanki przeszczepu staje się martwicze.</li>
	<li>Poddaj eutanazji odrzucone zwierzęta i zbierz je do analizy.</li>
</ol>

<ol><li>Furtmuller, G. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+Hind+Limb+Transplantation+in+the+Mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Orthotopic Hind Limb Transplantation in the Mouse.</a> J Vis Exp. , (2016).</li>
<li>Oh, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Novel+Microsurgical+Model+for+Heterotopic%2C+En+Bloc+Chest+Wall%2C+Thymus%2C+and+Heart+Transplantation+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A Novel Microsurgical Model for Heterotopic, En Bloc Chest Wall, Thymus, and Heart Transplantation in Mice.</a> J Vis Exp. , (2016).</li>
<li>Oberhuber, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+cervical+heart+transplantation+model+using+a+modified+cuff+technique%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Murine cervical heart transplantation model using a modified cuff technique.</a> J Vis Exp. , e50753(2014).</li>
<li>Jones, T. R., Shirasugi, N., Adams, A. B., Pearson, T. C., Larsen, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravital+microscopy+identifies+selectins+that+regulate+T+cell+traffic+into+allografts%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Intravital microscopy identifies selectins that regulate T cell traffic into allografts.</a> J Clin Invest. 112, 1714-1723 (2003).</li>
<li>Celli, S., Albert, M. L., Bousso, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+the+innate+and+adaptive+immune+responses+underlying+allograft+rejection+by+two-photon+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Visualizing the innate and adaptive immune responses underlying allograft rejection by two-photon microscopy.</a> Nat Med. 17, 744-749 (2011).</li>
<li>Medawar, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+behaviour+and+fate+of+skin+autografts+and+skin+homografts+in+rabbits%3A+A+report+to+the+War+Wounds+Committee+of+the+Medical+Research+Council%5BTitle%5D)+AND+%22J+Anat%22%5BJournal%5D)">The behaviour and fate of skin autografts and skin homografts in rabbits: A report to the War Wounds Committee of the Medical Research Council.</a> J Anat. 78, 176-199 (1944).</li>
<li>Billingham, R. E., Brent, L., Medawar, P. B., Sparrow, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+studies+on+tissue+transplantation+immunity.+I.+The+survival+times+of+skin+homografts+exchanged+between+members+of+different+inbred+strains+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+R+Soc+Lond+B+Biol+Sci%22%5BJournal%5D)">Quantitative studies on tissue transplantation immunity. I. The survival times of skin homografts exchanged between members of different inbred strains of mice.</a> Proc R Soc Lond B Biol Sci. 143, 43-58 (1954).</li>
<li>Garrod, K. R., Cahalan, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+skin+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Murine skin transplantation.</a> J Vis Exp. , (2008).</li>
<li>Schmaler, M., Broggi, M. A., Rossi, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplantation+of+tail+skin+to+study+allogeneic+CD4+T+cell+responses+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Transplantation of tail skin to study allogeneic CD4 T cell responses in mice.</a> J Vis Exp. , e51724(2014).</li>
<li>Bergstresser, P. R., Toews, G. B., Gilliam, J. N., Streilein, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unusual+numbers+and+distribution+of+Langerhans+cells+in+skin+with+unique+immunologic+properties%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Unusual numbers and distribution of Langerhans cells in skin with unique immunologic properties.</a> J Invest Dermatol. 74, 312-314 (1980).</li>
<li>Chen, H. D., Silvers, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+Langerhans+cells+on+the+survival+of+H-Y+incompatible+skin+grafts+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Influence of Langerhans cells on the survival of H-Y incompatible skin grafts in rats.</a> J Invest Dermatol. 81, 20-23 (1983).</li>
<li>Chong, A. S., Alegre, M. L., Miller, M. L., Fairchild, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lessons+and+limits+of+mouse+models%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Perspect+Med%22%5BJournal%5D)">Lessons and limits of mouse models.</a> Cold Spring Harb Perspect Med. 3, a015495(2013).</li>
<li>Mayumi, H., Nomoto, K., Good, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+surgical+technique+for+experimental+free+skin+grafting+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Jpn+J+Surg%22%5BJournal%5D)">A surgical technique for experimental free skin grafting in mice.</a> Jpn J Surg. 18, 548-557 (1988).</li>
<li>McFarland, H. I., Rosenberg, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skin+allograft+rejection%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Immunol%22%5BJournal%5D)">Skin allograft rejection.</a> Curr Protoc Immunol. Chapter 4, (2009).</li>
<li>Lee, C. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preventing+Allograft+Rejection+by+Targeting+Immune+Metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+reports%22%5BJournal%5D)">Preventing Allograft Rejection by Targeting Immune Metabolism.</a> Cell reports. 13, 760-770 (2015).</li>
<li>Pollizzi, K. N., Powell, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrating+canonical+and+metabolic+signalling+programmes+in+the+regulation+of+T+cell+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Integrating canonical and metabolic signalling programmes in the regulation of T cell responses.</a> Nat Rev Immunol. 14, 435-446 (2014).</li>
<li>Pearce, E. L., Poffenberger, M. C., Chang, C. H., Jones, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fueling+immunity%3A+insights+into+metabolism+and+lymphocyte+function%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Fueling immunity: insights into metabolism and lymphocyte function.</a> Science. 342, 1242454(2013).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Od czasu wprowadzenia przez Medawar, najpierw w badaniach na ludziach, a następnie u królików i myszy, przeszczep skóry jest nieocenionym modelem do badania allogenicznych odpowiedzi immunologicznych6,7. W tym manuskrypcie prezentujemy model wielkoskalowego, nieunaczynionego, pełnogrubego przeszczepu skóry z wykorzystaniem skóry górnej i dolnej części pleców. Do tej pory zgłoszono różne alternatywne metody, w tym wykorzystanie skóry ogona lub skóry ucha myszy jako źródła przeszczepionej tkanki8,9. M...

Transplantacja narządów jest leczeniem z wyboru dla pacjentów ze schyłkową niewydolnością narządów, a wyniki znacznie się poprawiły dzięki postępom w procedurach chirurgicznych i protokołach immunosupresyjnych. Jednak długotrwała immunosupresja wiąże się ze znacznymi skutkami ubocznymi, a opracowanie nowych strategii promujących tolerancję pozostaje celem współczesnych badań transplantacyjnych.
Liczne modele zwierzęce zostały opracowane do podstawowych badań w transplantacji, do badania mechanizmów odrzucania przeszczepów allogenicznych oraz do testowania metod immunosupresji w celu zapobiegania odrzuceniu przeszczepu i promowania długoterminowej tolerancji1-3. Modele mysie stały się podstawą badań immunologicznych ze względu na wyjątkową i szeroką dostępność przeciwciał diagnostycznych i terapeutycznych oraz dobrze zdefiniowanych szczepów wsobnych i transgenicznych. Przeszczep skóry to prosta procedura, która nie wymaga specjalnych umiejętności mikrochirurgicznych i może być łatwo monitorowana po operacji. Podsumowując, przeszczep skóry myszy jest wyjątkowym narzędziem do badania wielu aspektów związanych z odpowiedzią alloimmunologiczną, w tym dostarczania antygenu, transportu komórek i niszczenia tkanek podczas odrzucania przeszczepu4,5.
Tutaj pokazujemy krok po kroku procedurę przeszczepu skóry o pełnej grubości na modelu mysim i opisujemy ważne kroki niezbędne do pomyślnego wszczepienia przeszczepionej skóry.

<table><tbody><tr><td>Proste mikro kleszcze</td><td>Sigma</td><td>F4017</td><td></td></tr><tr><td>Zakrzywione mikro kleszcze</td><td>Aesculap</td><td>BD333R</td><td></td></tr><tr><td>Zakrzywione nożyczki do tenotomii Stevens</td> Nożyczki preparacyjne <td>Aesculap</td><td>BC905R</td><td></td></tr><tr><td>Mayo</td><td>Sigma</td><td>S3146</td><td></td></tr><tr><td>Uchwyt na mikroigły</td><td>Aesculap</td><td>BM563R</td><td></td></tr><tr><td>Sterylna gaza</td><td>Covidien</td><td></td><td></td>441218</tr><tr><td>6-0 Nylonowy szew</td><td>MWI</td><td>31849</td><td></td></tr><tr><td>Plastikowe paski&#45; Pomoc</td><td>Johnson & Johnson</td><td></td><td>Uzyskane z apteki</td></tr><tr><td>10 cm szalka Petriego</td><td>Fisherbrand</td><td>FB0875712</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Jakość Biologiczna</td><td>119069131</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorfina</td><td></td><td></td><td>DEA Wymagany numer; Otrzymywany z apteki szpitalnej</td></tr><tr><td>Enrofloksacyna</td><td>Bayer Health Care</td><td>186599</td><td></td></tr></tbody></table>

mysi przeszczep skóry o pełnej grubości

Murine Full-thickness Skin Transplantation

Przeszczep skóry na pełnej grubości myszy jest dobrze znanym modelem in vivo do badania odpowiedzi alloimmunologicznej i odrzucenia przeszczepu. Pomimo ograniczonego zastosowania u ludzi, przeszczep skóry u myszy jest szeroko stosowany w badaniach transplantacyjnych. Zabieg jest łatwy do nauczenia się i wykonania, nie wymaga delikatnych technik mikrochirurgicznych ani intensywnego szkolenia. Co więcej, odrzucenie przeszczepu w tym modelu następuje w bardzo powtarzalnej reakcji immunologicznej i jest łatwo monitorowane przez bezpośrednią inspekcję i badanie palpacyjne. Ponadto wtórny przeszczep skóry z użyciem przeszczepów skóry dopasowanych do dawcy lub od osób trzecich może być wykonywany na bardziej złożonych modelach przeszczepów jako alternatywna i nieskomplikowana metoda oceny tolerancji specyficznej dla dawcy. Powikłania są niewielkie i na ogół ograniczają się do znieczulenia, przedawkowania lub niewydolności oddechowej po zabiegu. Z drugiej strony niepowodzenie przeszczepu występuje często w wyniku złego przygotowania przeszczepu, nieprawidłowego ułożenia w łożu przeszczepu lub niewłaściwego umieszczenia bandaża. W tym artykule przedstawiamy protokół przeszczepu skóry o pełnej grubości u myszy oraz opisujemy ważne kroki niezbędne do udanego zabiegu.

Założenie opatrunku myszy biorcy jest istotnym etapem procedury. Przeszczep skóry umieszcza się na tułowiu biorcy, pomiędzy łopatką, biodrem a kręgosłupem (Rycina 1). Opatrunek wykonuje się z złożonej gazy oraz kombinacji dwóch plastikowych plastrów przylepnych. Myszy biorcy układa się graftem do dołu na gazie znajdującej się w centrum opatrunku. Używając dwóch zakrzywionych mikropincet, najpierw naciąga się dolną część opatrunku, a następnie górną część owija wokół myszy...

Przeszczep skóry pełnej grubości myszy jest dobrze znanym modelem do badania odrzucenia w środowisku alloimmunologicznym. W tym miejscu przedstawiamy samouczek dotyczący każdego kroku związanego z wykonaniem przeszczepu skóry pełnej grubości BALB/c-->C57BL/6.

Mysi przeszczep skóry o pełnej grubości

Murine full-thickness skin transplantation is a well-established in vivo model to study alloimmune response and graft rejection. Despite its limited ...

Ogólnym celem niniejszego artykułu wideo jest przeprowadzenie pełnowarstwowego przeszczepu skóry oraz opisanie kluczowych kroków niezbędnych do pomyślnego wykonania tego zabiegu. Pełnowarstwowy przeszczep skóry u myszy jest ugruntowanym modelem do badania odpowiedzi alloimmunologicznych oraz odrzucania przeszczepów. Procedura ta jest łatwa do wykonania i nie wymaga zaawansowanych technik mikrochirurgicznych.Odrzucenie przeszczepu w tym modelu przebiega w ramach bardzo powtarzalnej reakcji immunologicznej i jest łatwo monitorowane poprzez bezpośrednią inspekcję oraz palpację. Dodatkowo, w bardziej złożonych modelach transplantacyjnych można przeprowadzić wtórny przeszczep skóry z dawcy dopasowanego lub od osoby trzeciej jako alternatywną i prostą metodę oceny tolerancji swoistej dla dawcy. Po znieczuleniu myszy dawcy zgodnie z protokołem tekstowym, należy użyć maszynki elektrycznej do ogolenia grzbietu zwierzęcia.Następnie odkaż skórę 10% roztworem powidon-jodu. Za pomocą nożyczek i tępej dyssekcji pobierz skórę grzbietową od biodra do karku na poziomie tkanki łącznej rozpływistej. Umieść skórę grzbietową pod mikroskopem i użyj precyzyjnych nożyczek do tenotomii, aby oddzielić tkank

murine-full-thickness-skin-transplantation

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologia i infekcje

Allogeniczny przeszczep skóry jest standardowym modelem do oceny odpowiedzi limfocytów T gospodarza na antygeny dawcy o odmiennej strukturze MHC. Niniejszy artykuł wideo stanowi wizualny samouczek każdego etapu przeprowadzania przeszczepu skóry BALB/c--&gt;C57BL/6.

Przeszczep skóry u myszy

W niniejszym raporcie opisujemy trójwymiarowy model rekonstrukcji skóry, który naśladuje architekturę i skład ludzkiej skóry. Wykorzystując model rekonstrukcji skóry, badano fizjologię melanocytów, progresję czerniaka oraz losy dermalnych komórek macierzystych. Model ten jest również przydatny jako narzędzie przedkliniczne do oceny leków.

Trójwymiarowy model rekonstrukcji ludzkiej skóry: narzędzie do badania normalnej skóry i progresji czerniaka

Ten film demonstruje metodę przeszczepiania ludzkiej skóry myszy z niedoborem odporności z obniżoną reakcją neutrofili. Metoda polega na nałożeniu ludzkiej skóry o podzielonej grubości na podłoże przeszczepu myszy, uszczelnieniu jej i przykryciu w celu odzyskania. W końcu ludzka skóra przylega do skóry myszy, ustanawiając unaczynienie i krążenie, co skutkuje udanym ksenoprzeszczepem skóry.

Technika przeszczepiania ludzkiej skóry w modelu mysim

Unaczynienie jest kluczem do skutecznego podejścia do inżynierii tkankowej. W związku z tym potrzebne są niezawodne technologie do oceny rozwoju sieci naczyniowych w konstruktach tkankowych. Tutaj przedstawiamy prostą i opłacalną metodę wizualizacji i ilościowego określania unaczynienia in vivo.

Pełny model ubytku skóry do oceny unaczynienia biomateriałów in vivo

Przeszczep skóry ogona jest potężnym modelem do badania zależnego od limfocytów T odrzucania i indukcji tolerancji podczas allogenicznych odpowiedzi immunologicznych u myszy. Zaletami tego protokołu są drobne inwazyjne zabiegi chirurgiczne oraz łatwość monitorowania bez konieczności poświęcania myszy biorcy.

Przeszczep skóry ogona w celu zbadania allogenicznych odpowiedzi limfocytów T CD4 u myszy

Podczas rozwoju ssaków, rany skóry na wczesnym etapie ciąży goją się bez blizny. Tutaj szczegółowo opisujemy wiarygodny i powtarzalny model gojenia się ran bez blizn płodu w grzbietu skóry zarodków myszy E16.5 (bez blizn) i E18.5 (bliznowaciejących).

Model skóry płodu myszy z gojeniem ran bez blizn

Celem tego badania było opracowanie mysiego modelu gojenia się ran po oparzeniach. Oparzenie termiczne wywołano na skórze grzbietowej myszy za pomocą podgrzanego mosiężnego szablonu. Spaloną tkankę oczyszczono i pokryto przeszczepem skóry pobranym z ogona genetycznie podobnej myszy dawcy.

Mysi model rany oparzeniowej zrekonstruowany za pomocą allogenicznego przeszczepu skóry

Obecny protokół opisuje, jak przeszczepić ludzką skórę nieotyłym myszom z cukrzycą (NOD)-scid z receptorem łańcucha gamma interleukiny-2 (NSG). W raporcie zawarto szczegółowy opis przygotowania skóry ludzkiej do przeszczepu, przygotowania myszy do przeszczepu, przeszczepu skóry ludzkiej o podzielonej grubości oraz procedury rekonwalescencji po przeszczepie.

Model skóry ksenoprzeszczepu do manipulowania ludzkimi odpowiedziami immunologicznymi in vivo

Niniejszy artykuł opisuje zmodyfikowaną technikę heterotopowego przeszczepu unaczynionego serca z zaktualizowaną techniką aseptyczną, analgezją i znieczuleniem.

Zmodyfikowany protokół przeszczepu serca heterotopowego u myszy zgodny ze współczesnymi standardami techniki aseptycznej, anestezjologii i analgezji

Przedstawiamy powtarzalny model myszy heterotopowej allotransplantacji naczyń tylnych kończyn do szyi, unaczynionej allotransplantacji. Ten protokół supermikrochirurgiczny, obejmujący anastomozę naczyń o średnicy 0,3-0,5 mm, integruje naprowadzanie z włókna nylonowego oraz mankietowanie żylne. Stanowi wiarygodną platformę do badań translacyjnych nad tolerancją, uszkodzeniem niedokrwienia i reperfuzją oraz mechanizmami immunologicznymi w naczyniowej allotransplantacji złożonej.

Heterotopowa transplantacja kończyny tylnej do szyi u myszy: supermikrochirurgiczny model unaczynionej alotransplantacji kompozytowej

Poznaj technikę przeszczepu skóry o pełnej grubości u myszy w modelu BALB/c do C57BL/6. Ta metoda umożliwia badanie alloimmunologicznych odpowiedzi i odrzucania przeszczepu w kontrolowanych warunkach laboratoryjnych.

Mysi przeszczep skóry o pełnej grubości

Przeglądaj więcej filmów