Name: Angioplastyka plastrów w aorcie szczura lub żyłie głównej dolnej (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-27T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 4 s
Description: Poznaj technikę angioplastyki plastrami osierdzia wołowego w aorcie i żyle głównej dolnej szczura. Ta metoda umożliwia badanie różnic w tworzeniu się neointimy w środowisku tętniczym i żylnym.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Ta praca była częściowo wspierana przez National Institutes of Health Grants R56-HL095498, R01-HL-095498 (do AD), R01-HL128406, Merit Review Award I01-BX002336 od United States Department of Veterans Affairs Biomedical Laboratory Research and Development Program (do AD), nagrodę Yale Department of Surgery Ohse (dla AD), stypendium Sarnoff Cardiovascular Foundation Fellowship (dla JMS), oraz poprzez zasoby i wykorzystanie obiektów w Veterans Affairs Connecticut Healthcare System (West Haven, CT). Plastry osierdziowe bydlęce zostały hojnie dostarczone przez LeMaitre Vascular Inc. (Burlington, MA).

Musisz uzyskać zgodę odpowiedniej Komisji ds. Opieki nad Zwierzętami i Użytkowania Zwierząt, wskazując, że Twój protokół jest zgodny z wytycznymi komisji etycznej ds. badań na zwierzętach Twojej instytucji.
1. Anestezjologia i zabiegi przedoperacyjne
<ol>
	<li>Samce szczurów rasy Wistar o wadze około 200 g należy znieczulić odparowanym 3% izofluranem i tlenem o stężeniu 1 l/min podawanym do akrylowej komory indukcyjnej.</li>
	<li>Potwierdź odpowiednie znieczulenie poprzez brak reakcji na uszczypnięcie palca u nogi i ogona. Nałóż maść na oczy, aby zapobiec wysuszeniu, gdy zwierzęta są pod narkozą. Umieść każdego szczura na wznak na plastikowej płytce operacyjnej i umieść silikonową maskę, aby dostarczać odparowany 2-3% izofluran w ciągłym wdychaniu. Nie pozostawiaj zwierzęcia bez opieki, dopóki nie odzyska wystarczającej przytomności, aby utrzymać pozycję leżącą na mostku.</li>
	<li>Nosząc sterylne rękawiczki, usuń włosy z brzusznej części brzucha za pomocą depilatora. W tym momencie często podaje się buprenorfinę, zarówno podskórnie, jak i dootrzewnowo.</li>
</ol>
2. Procedury operacyjne
<ol>
	<li>Plastyka żył plastrowych
	<ol>
		<li>Przed zabiegiem należy przyciąć plaster osierdziowy bydlęcy za pomocą mikronożyczek do rozmiaru 3 mm x 1,5 mm x 0,6 mm. Namocz plaster w 10 ml wysterylizowanej soli fizjologicznej przez 5 minut w naczyniu do hodowli komórkowych.</li>
		<li>Przygotuj miejsce nacięcia za pomocą miejscowego środka antyseptycznego zgodnie z protokołem instytucjonalnym i nałóż obłożę chirurgiczną. Używaj sterylnych rękawiczek i narzędzi, aby zachować aseptyczną technikę przez cały czas trwania zabiegu. Znieczulenie miejscowe może być wstrzyknięte w miejsce planowanego nacięcia skóry.</li>
		<li>Za pomocą skalpela wykonaj nacięcie brzucha w linii środkowej rozciągające się od poziomu mieczyka mieczykowatego do tuż nad łonem.</li>
		<li>Włóż retraktor i wypatrosz wszystkie jelita od jamy brzusznej w kierunku prawej strony. Zawiń jelita w gazę nasączoną solą fizjologiczną.</li>
		<li>Odsłonić żyłę główną podnerkową (IVC). Miejsce implantacji plastra znajduje się około 2 mm poniżej poziomu początku żyły nerkowej; przeanalizuj IVC za darmo na tej stronie. Podwiąż i podziel wszystkie żyły lędźwiowe i dopływowe na tym poziomie za pomocą nylonowych szwów 6-0.</li>
		<li>Umieść dwa klipsy mikrochirurgiczne zarówno na bliższej, jak i dystalnej części śródnerkowej IVC. Wykonaj janotomię za pomocą igły 25 G, nakłuwając przednią ścianę IVC, a następnie przedłuż ją do około 3 mm za pomocą nożyczek (ryc. 1A).</li>
		<li>Zamknij janotomię plastrem za pomocą biegnących lub przerywanych szwów nylonowych 10-0 (ryc. 1B).</li>
		<li>Dokończ zamknięcie wenoplastyki. Najpierw usuń dystalny zacisk, aby odpowietrzyć plaster, a następnie usuń proksymalny zacisk, aby przywrócić przepływ krwi do IVC.</li>
		<li>Potwierdź hemostazę, obserwując przez 30 s bez kompresji. Przywróć jelita do ich naturalnej pozycji. Zamknij brzuch za pomocą szwu biegnącego zgodnie z zatwierdzonymi protokołami dla zwierząt.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Plastryczna plastyka tętnic
	<ol>
		<li>Przed zabiegiem należy przyciąć plaster osierdziowy bydlęcy za pomocą mikronożyczek do rozmiaru 3 mm x 1,5 mm x 0,6 mm. Namocz go w wysterylizowanej soli fizjologicznej.</li>
		<li>Przygotuj miejsce nacięcia za pomocą miejscowego środka antyseptycznego i nałóż obłożenie chirurgiczne. Używaj sterylnych rękawiczek i narzędzi, aby zachować aseptyczną technikę przez cały czas trwania zabiegu.</li>
		<li>Za pomocą skalpela wykonaj nacięcie brzucha w linii środkowej rozciągające się od poziomu mieczyka mieczykowatego do tuż nad łonem.</li>
		<li>Włóż retraktor i wypatrosz wszystkie jelita od jamy brzusznej w kierunku prawej strony. Zawiń jelita w gazę nasączoną solą fizjologiczną.</li>
		<li>Odsłoń aortę. Miejsce implantacji plastra znajduje się około 2 mm poniżej poziomu początku tętnic nerkowych; Wypreparuj aortę swobodnie w tym miejscu. Podwiązaj i podziel wszystkie tętnice lędźwiowe na tym poziomie za pomocą nylonowych szwów 6-0.</li>
		<li>Zacisnąć aortę podnerkową. Użyj igły 25 G, aby wykonać arteriotomię, nakłuwając przednią ścianę aorty, a następnie przedłuż ją do około 3 mm za pomocą nożyczek (ryc. 1C).</li>
		<li>Zamknij arteriotomię za pomocą plastra za pomocą biegnących szwów nylonowych 10-0 (ryc. 1D). Zakończ zamknięcie arterioplastyki. Najpierw usuń dystalny zacisk, aby odpowietrzyć plaster, a następnie usuń proksymalny zacisk, aby przywrócić przepływ krwi do aorty.</li>
		<li>Potwierdź hemostazę, obserwując przez 30 s bez kompresji. Przywróć jelita do ich naturalnej pozycji. Zamknij brzuch za pomocą szwu biegnącego zgodnie z zatwierdzonymi protokołami dla zwierząt.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Zabiegi pooperacyjne
<ol>
	<li>Po zamknięciu jamy brzusznej należy przerwać znieczulenie. Stosuj opiekę pooperacyjną, w tym analgezję i pielęgnację ran, zgodnie z instrukcjami zalecanymi przez Instytucjonalny Komitet ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt.</li>
	<li>W przypadku analgezji buprenorfinę należy stosować domięśniowo w dawce 0,1 mg/kg mc. nie rzadziej niż co 12 godzin przez 24 godziny po zabiegach chirurgicznych. Codziennie sprawdzaj stan zwierzęcia w pomieszczeniu dla zwierząt, zapewniając prawidłową rekonwalescencję po okresie okołooperacyjnym, a także odpowiednie leczenie bólu pooperacyjnego. Nie należy zwracać zwierzęcia, które przeszło operację, do towarzystwa innych zwierząt, dopóki w pełni nie wyzdrowieje.</li>
</ol>
<style type="text/css">p.p1 {margin: 0.0px 0.0px 0.0px; font: 12.0px Helvetica}
</style>
<style type="text/css">p.p1 {margin: 0.0px 0.0px 0.0px; font: 12.0px Helvetic
</style>

<ol><li>Muto, A., Nishibe, T., Dardik, H., Dardik, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patches+for+carotid+artery+endarterectomy%3A+current+materials+and+prospects%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Patches for carotid artery endarterectomy: current materials and prospects.</a> J Vasc Surg. 50 (1), 206-213 (2009).</li>
<li>Li, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+usage+and+future+directions+for+the+bovine+pericardial+patch%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Vasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Current usage and future directions for the bovine pericardial patch.</a> Ann Vasc Surg. 25 (4), 561-568 (2011).</li>
<li>Biasi, G. M., Sternjakob, S., Mingazzini, P. M., Ferrari, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nine-year+experience+of+bovine+pericardium+patch+angioplasty+during+carotid+endarterectomy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Nine-year experience of bovine pericardium patch angioplasty during carotid endarterectomy.</a> J Vasc Surg. 36 (2), 271-277 (2002).</li>
<li>Papakostas, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+the+vascu-guard+bovine+pericardium+patch+for+arteriotomy+closure+in+carotid+endarterectomy.+Early+and+long-term+results%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Vasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Use of the vascu-guard bovine pericardium patch for arteriotomy closure in carotid endarterectomy. Early and long-term results.</a> Ann Vasc Surg. 28 (5), 1213-1218 (2014).</li>
<li>Ohwada, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glutaraldehyde-fixed+heterologous+pericardium+for+vena+cava+grafting+following+hepatectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatogastroenterology%22%5BJournal%5D)">Glutaraldehyde-fixed heterologous pericardium for vena cava grafting following hepatectomy.</a> Hepatogastroenterology. 46 (26), 855-858 (1999).</li>
<li>Mori, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standard+hepatic+vein+reconstruction+with+patch+plasty+using+the+native+portal+vein+in+adult+living+donor+liver+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Liver+Transpl%22%5BJournal%5D)">Standard hepatic vein reconstruction with patch plasty using the native portal vein in adult living donor liver transplantation.</a> Liver Transpl. 18 (5), 602-607 (2012).</li>
<li>Bai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pericardial+patch+venoplasty+heals+via+attraction+of+venous+progenitor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Reports%22%5BJournal%5D)">Pericardial patch venoplasty heals via attraction of venous progenitor cells.</a> Physiological Reports. 4 (12), (2016).</li>
<li>Li, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pericardial+patch+angioplasty+heals+via+an+Ephrin-B2+and+CD34+positive+cell+mediated+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Pericardial patch angioplasty heals via an Ephrin-B2 and CD34 positive cell mediated mechanism.</a> PLoS One. 7 (6), 38844(2012).</li>
<li>Bai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pretreatment+of+pericardial+patches+with+antibiotics+does+not+alter+patch+healing+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Pretreatment of pericardial patches with antibiotics does not alter patch healing in vivo.</a> J Vasc Surg. 63 (4), 1063-1073 (2016).</li>
<li>Muto, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Eph-B4+prevents+venous+adaptive+remodeling+in+the+adult+arterial+environment%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Eph-B4 prevents venous adaptive remodeling in the adult arterial environment.</a> J Exp Med. 208 (3), 561-575 (2011).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Opisujemy model angioplastyki plastrowej u szczura, który może być stosowany zarówno w żyłach, jak i tętnicach, tworząc odpowiednio venoplastykę łatową lub arterioplastykę łatową. Korzystając z tego modelu łaty osierdziowej, wykazaliśmy agresywny i stabilny przerost neointimalny w żynoplastyce IVC szczura w porównaniu z arterioplastyką aorty (ryc. 2)7,8.
Na uwagę zasługuje kilka aspektów technicznych. W arterioplastyce...

Chirurdzy naczyniowi często zamykają naczynia krwionośne łatami osierdziowymi, bydlęcymi lub wieprzowymi, aby zmniejszyć ryzyko restenozy1,2. W chirurgii tętnic angioplastyka z plastrem osierdziowym zmniejsza częstość restenozy w porównaniu z pierwotnym zamknięciem3,4. Plastyka żył płatowych jest również wykonywana podobnie w przypadku żył zamkniętych, choć rzadziej w porównaniu z zabiegami tętniczymi5,6. Plamy zazwyczaj rozwijają przerost neointimy na ich powierzchniach świetlnych; Jednak mechanizm powstawania neointimalu pozostaje niejasny, zwłaszcza w porównaniu różnic w tworzeniu się neointimalu między środowiskiem tętniczym i żylnym. Wcześniej wykazaliśmy, że łaty osierdziowe przyciągają komórki progenitorowe zarówno w środowisku tętniczym, jak i żylnym, a angioplastyka plam żylnych wykazuje bardziej agresywne tworzenie się neointimalu w porównaniu z łatami tętniczymi7,8.
W tym badaniu opisujemy szczurzy model angioplastyki z plamą osierdziową, który jest powszechny w zamykaniu zarówno żył, jak i tętnic, i który może być używany do badania tworzenia się neointimalu; ta metoda jest małym zwierzęcym modelem techniki operacyjnej powszechnie stosowanej u ludzi. Model szczura ma większą średnicę niż model myszy, co ułatwia techniczne aspekty operacji i poprawia krzywą uczenia się modelu.

<table><tbody><tr><td>Łatka osierdziowa bydlęca</td><td>LeMaitre Vascular</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Craskular Clamp</td><td>Roboz Surgical Instrument Co.</td><td>RS-5424</td><td></td></tr><tr><td>Zacisk nakładający kleszcze</td><td>Roboz Surgical Instrument Co</td><td>RS-5410</td><td></td></tr><tr><td>10-0 Szew prolenowy</td><td>Arosurgical Co.</td><td>T05A10N10-13</td><td></td></tr></tbody></table>

angioplastyka plastrów w aorcie szczura lub żyłie głównej dolnej

Patch Angioplasty in the Rat Aorta or Inferior Vena Cava

Łaty osierdziowe są powszechnie używane w chirurgii naczyniowej do zamykania naczyń. Aby ułatwić badania przerostu neoinimalnego, który tworzy się na plastrach, opracowaliśmy szczurzy model angioplastyki plastrowej, który można zastosować zarówno w żyle, jak i tętnicy, tworząc odpowiednio venoplastykę łaty lub arterioplastykę łatową. Omówiono techniczne aspekty tego modelu. IVC lub aorta podnerkowa są preparowane, a następnie zaciskane proksymalnie i dystalnie. Wenotomię lub arterytomię o średnicy 3 mm wykonuje się w żyle głównej lub aorcie podnerkowej dolnej u 6 do 8 tygodniowych szczurów rasy Wistar. Łata osierdziowa bydła (3 mm x 1,5 mm x 0,6 mm) jest następnie używana do zamknięcia miejsca za pomocą nylonowego szwu 10-0. W porównaniu z łatami tętniczymi, łaty żylne wykazują zwiększoną grubość neowewnętrznej części ciała w 7. dobie pooperacyjnej. Ten nowatorski model angioplastyki z plamą osierdziową może być wykorzystany do badania przerostu neointimal na biomateriałach naczyniowych, a także do porównania różnic między środowiskiem tętniczym i żylnym.

Po angioplastyce z użyciem łaty nie stwierdzono zakrzepicy ani w grupie z łatą żylną (n = 42), ani w grupie z łatą tętniczą (n = 24). Przeżywalność w 7. dniu wyniosła 100% w obu grupach, zarówno w przypadku łaty żylnej, jak i tętniczej.
Łaty pobrano w 7. dniu i zabarwiono hematoksyliną i eozyną, a następnie porównano grubość neointimy zgodnie z wcześniejszym opisem7. Ze względu na wyraźną różnicę morfologiczną między ...

Ustaliliśmy model angioplastyki z plastrem osierdziowym, który może być stosowany zarówno w żyłach o małej średnicy, jak i tętnicach. Model ten można wykorzystać do porównania powstawania przerostu nowozewnętrznego żył i tętnic.

Angioplastyka plastrów w aorcie szczura lub żyłie głównej dolnej

Pericardial patches are commonly used in vascular surgery to close vessels. To facilitate studies of the neointimal hyperplasia that forms on the patch, ...

Ogólnym celem tej procedury jest implantacja naczyniowych biomateriałów do środowiska tętniczego lub żylnego. Metoda ta może pomóc w udzieleniu odpowiedzi na kluczowe pytania dotyczące różnic w hiperplazji neointimy tworzącej się na biomateriałach umieszczonych w środowisku tętniczym lub żylnym. Główną zaletą tej techniki jest łatwość jej opanowania oraz krótki czas wykonania.Po potwierdzeniu braku reakcji na uciśnięcie palca stopy, podaj buprenorfinę drogą IP w ramach przeciwbólowego leczenia wyprzedzającego. Usuń owłosienie z brzusznej strony brzucha zwierzęcia. Następnie, używając mikronozyciór, przytnij łatkę z osierdzia bydlęcego do rozmiaru 3 x 1,5 x 0,6 mm i namocz łatkę w 10 ml sterylnej soli fizjologicznej w naczyniu do hodowli komórkowej przez pięć minut.Podczas namaczania łaty, zdezynfekuj miejsce nacięcia miejscowym środkiem antyseptycznym i przykryj zwierzę obłożeniem chirurgicznym. Pod mikroskopem stereoskopowym, za pomocą skalpela wykonaj nacięcie w linii środkowej brzucha, rozciągające się od wyrostka mieczykowatego do miejsca tuż nad kością łonową, a następnie wprowadź rozieracz do nacięcia. Po otwarciu jamy brzusznej wyciągnij jelita z jamy brzusznej na prawą stro

patch-angioplasty-in-the-rat-aorta-or-inferior-vena-cava

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

W niniejszym materiale wideo przedstawiono sposób wykorzystania niedrogiego i niezawodnego modelu przedklinicznego do badania procesów patobiologicznych i patofizjologicznych rozwoju restenozy wewnątrzstentowej. Zaprezentowano również podłużny monitoring in vivo z wykorzystaniem OCT (optycznej koherentnej tomografii) oraz analizę obrazów OCT.

Obrazowanie restenozy wewnątrzstentowej: niedrogi, niezawodny i szybki model przedkliniczny

W niniejszym filmie zaprezentowano model ortotopowego przeszczepu aorty jako prosty model do badania rozwoju waskulopatii przeszczepu (TVP) u szczurów. <br...

Ortotopowy przeszczep aorty: model szczurzy do badania rozwoju przewlekłej waskulopatii

Płuco jest perfundowane zarówno przez tętnicę oskrzelową systemową, jak i tętnice płucne.  W większości patologii płuc to mniejsze uczynki układowe wykazują solidną neowaskularyzację.  Zatrzymanie przepływu krwi w płucach sprzyja energicznej angiogenezie oskrzeli.  Zapewniamy chirurgiczne szczegóły indukowania niedokrwienia lewej tętnicy płucnej, które sprzyja neowaskularyzacji oskrzeli.

Angiogeneza w niedokrwiennym płucu szczura

Modyfikacje histologiczne i biochemiczne po wykluczeniu endoprzeszczepu tętniaka są nadal niejasne. Opisujemy nowy model implantacji endprzeszczepu na tętniaku myszy. Dzięki analizie skrzepliny z utrzymującym się interfejsem krążącego krwiobiegu i bez niego oraz ocenie nowych biomateriałów wewnątrznaczyniowych, model ten pomoże lepiej zrozumieć patobiologię wykluczenia tętniaka wewnątrznaczyniowego.

Nowy mysi model wewnątrznaczyniowej naprawy tętniaka aorty

Ten protokół wykorzystuje cewnik balonowy do spowodowania uszkodzenia śródświetlnego tętnicy szyjnej szczura i wywołania przerostu neointimalu. Jest to dobrze ugruntowany model do badania mechanizmów przebudowy naczyń krwionośnych w odpowiedzi na uraz. Jest również szeroko stosowany do określania ważności potencjalnych podejść terapeutycznych.

Uszkodzenie balonu naczyniowego i podanie śródświetlne w tętnicy szyjnej szczura

Opisany poniżej model uszkodzenia balonu szyjnego u szczura pozwala badaczom ocenić leki lub terapie, które negują przerost tętnic wywołany urazem. Opisano szczegółowe przygotowanie przedoperacyjne, zabieg chirurgiczny i opiekę pooperacyjną nad zwierzęciem.

Model uszkodzenia balonu szyjnego szczura do testowania terapii przeciwnaczyniowej

Ten protokół opisuje procedurę chirurgiczną mającą na celu stworzenie modelu tętniczego nadciśnienia płucnego wywołanego przepływem (PAH) u szczurów oraz procedury analizy głównych hemodynamicznych i histologicznych punktów końcowych w tym modelu.

Chirurgia zastawkowa, cewnikowanie prawego serca i morfometria naczyniowa w modelu szczurzym dla tętniczego nadciśnienia płucnego wywołanego przepływem

Wprowadzenie cewnika poliuretanowego do światła aorty i podwiązanie szwem aorty powoduje przewlekłe niedotlenienie z powodu hipoperfuzji naczynia krwionośnego przybyszowego. W artykule opisano nowy zwierzęcy model tętniaka aorty brzusznej (AAA) o charakterystyce podobnej do AAA u ludzi.

Stworzenie modelu tętniaka aorty brzusznej u gryzoni poprzez zablokowanie przybyszowej perfuzji naczynia krwionośnego

Powtarzalne eksperymentalne modele zwierzęce są potrzebne do testowania nowych materiałów embolizacyjnych, które zostały zaprojektowane do leczenia wewnątrznaczyniowej niedrożności tętniaków wewnątrzczaszkowych (IA). Niniejsze badanie ma na celu opracowanie bezpiecznej i ustandaryzowanej techniki chirurgicznej embolizacji tętniaków worka w stentach w modelu zwierzęcym szczura.

Biodegradowalny stent magnezowy Leczenie tętniaków worka workowego na modelu szczurzym - wprowadzenie techniki chirurgicznej

Uszkodzenie balonu tętnicy szyjnej szczura naśladuje zabieg angioplastyki klinicznej wykonywany w celu przywrócenia przepływu krwi w naczyniach miażdżycowych. Model ten indukuje reakcję na uszkodzenie tętnicy poprzez rozdęcie ściany tętnicy i obnażenie warstwy wewnętrznej komórek śródbłonka, ostatecznie powodując przebudowę i reakcję hiperplastyczną błony wewnętrznej.

Segmentowe uszkodzenie balonu tętnicy szyjnej szczura z kontrolowanym ciśnieniem z okołoprzybytkowym zastosowaniem terapeutycznym

Ten protokół opisuje wszczepianie ludzkich stentów wieńcowych do aorty brzusznej szczurów z tłem apoE-/- przy użyciu dostępu przezudowego. W porównaniu z innymi modelami zwierzęcymi, modele mysie mają zalety wysokiej przepustowości, odtwarzalności, łatwości obsługi i utrzymania oraz szerokiej dostępności markerów molekularnych.

Implantacja stentów wieńcowych wielkości człowieka do aorty brzusznej szczura przy użyciu dostępu przezudowego

Poznaj technikę angioplastyki plastrami osierdzia wołowego w aorcie i żyle głównej dolnej szczura. Ta metoda umożliwia badanie różnic w tworzeniu się neointimy w środowisku tętniczym i żylnym.

Angioplastyka plastrów w aorcie szczura lub żyłie głównej dolnej

Przeglądaj więcej filmów