-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Zastosowanie centralnej linii żylnej do podawania płynów, leków i składników odżywczych w mysim m...
Zastosowanie centralnej linii żylnej do podawania płynów, leków i składników odżywczych w mysim m...
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
Use of a Central Venous Line for Fluids, Drugs and Nutrient Administration in a Mouse Model of Critical Illness

Zastosowanie centralnej linii żylnej do podawania płynów, leków i składników odżywczych w mysim modelu choroby krytycznej

Full Text
9,407 Views
09:17 min
May 2, 2017

DOI: 10.3791/55553-v

Sarah Derde1, Steven Thiessen1, Chloë Goossens1, Thomas Dufour1, Greet Van den Berghe1, Lies Langouche1

1Clinical Division and Laboratory of Intensive Care Medicine, Department of Cellular and Molecular Medicine,KU Leuven

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Ten protokół opisuje centralnie cewnikowany mysi model przedłużającej się choroby krytycznej. Łączymy metodę podwiązania jelita ślepego i nakłucia w celu wywołania sepsy z wykorzystaniem centralnej linii żylnej do podawania płynów, leków i składników odżywczych, aby naśladować warunki kliniczne człowieka.

Ogólnym celem tej centralnie skategoryzowanej mysiej metody podwiązania i nakłucia jelita ślepego (CLP) jest stworzenie powtarzalnego modelu przedłużającej się choroby krytycznej z intensywnymi środkami leczenia, aby naśladować ludzkie warunki kliniczne. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie medycyny intensywnej terapii. O patogenezie zmian endokrynologicznych i metabolicznych podczas ostrych i długotrwałych chorób krytycznych.

Główną zaletą tej techniki jest to, że łączy w sobie dobrze ustandaryzowaną technikę CLP z wykorzystaniem centralnej linii żylnej do podawania płynów, leków i składników odżywczych. Procedurę zademonstruje Thomas Dufour, technik z naszego laboratorium. Aby przygotować końcówkę przewodu żylnego, szybko zanurz środkową część kawałka 60-centymetrowej rurki z mikro-renathanu w oleju sezamowym o temperaturze 220 stopni Celsjusza lub cieplejszym.

Delikatnie pociągnij za końce rurki, aby rozciągnąć środek rurki, aby uzyskać wąską średnicę środkową i użyj ostrza skalpela, aby przeciąć rurkę na dwie równe 30-centymetrowe części. Teraz podłącz rurkę do łącznika z polietylenu PE 50, krętlika i igły Luer, aby skonstruować cewnik, jak pokazano, i nałóż silny, szybko działający klej adhezyjny na wszystkie połączenia. Po utwardzeniu kleju przepłucz cewnik powietrzem, aby sprawdzić, czy nie ma wycieków, następnie wytnij 80-centymetrowy kawałek z metalowego drutu o średnicy 0,8 milimetra i złóż drut z powrotem na siebie, aby utworzyć pętlę.

Poprowadź trzy perły przez podwójny drut pętli i przeprowadź końcówkę wysterylizowanego cewnika przez trzy perły, aby przymocować cewnik do drutu. Znieczulenie ważącego od 27 do 32 gramów, 24-tygodniowego samca c57 Black Six Mouse i potwierdź sedację przez brak reakcji na szczypanie palca. Użyj kleszczy, aby delikatnie wyciągnąć język z ust, aby uniknąć połknięcia języka.

Następnie ogol obszar operacyjny, a następnie umieść mysz w pozycji leżącej na wstępnie podgrzanej poduszce grzewczej. Zdezynfekuj odsłoniętą skórę 70% etanolem i nałóż niewielką ilość lubrykantu okulistycznego. Naciekaj miejsca operacyjne środkiem przeciwbólowym i wykonaj małe nacięcie u podstawy grzbietowej strony głowy.

Odsłoń tylne mięśnie szyjki macicy i przeciągnij kawałek nylonu 3.0 pod mięśnie, aby związać pętlę drutu mocującego z mięśniem. Następnie, trzymając mysz po prawej stronie, wykonaj małe pionowe nacięcie w skórze brzusznej szyi. Przełóż igłę o rozmiarze 18 podskórnie przez to brzuszne nacięcie w kierunku nacięcia z tyłu i przeciągnij cewnik przez igłę, aby zewnętrzizować igłę po stronie brzusznej.

Trzymając mysz na plecach, przełóż nylonową nić z trzema zerami za górnymi zębami siekaczy i przyklej nylon do poduszki grzewczej. Następnie zabezpiecz ogon i kończyny przednie w pozycji rozciągniętej. Teraz skoncentruj mikroskop preparacyjny i użyj kleszczy, aby delikatnie usunąć tkankę tłuszczową i gruczoły w nacięciu brzusznym, aż będzie można uwidocznić żyłę szyjną.

Umieść końcówkę kleszczy między żyłą a tkanką łączną i wielokrotnie otwieraj kleszcze równolegle do żyły, aby tępo wyciąć żyłę szyjną z tkanki łącznej i podskórnej wokół naczynia. Gdy naczynie zostanie odizolowane, umieść kleszcze pod żyłą szyjną i wprowadź dwa kawałki trzech jedwabnych nici zero pod żyłę. Ustawienie jednego kawałka, przybliżonego do rozwidlenia żyły szyjnej dla podwiązania czaszki i jednego kawałka blisko mięśnia mostkowo-obojczykowo-sutkowego dla podwiązania ogonowego.

Zaciśnij więzadła czaszkowe i ogonowe, aby rozciągnąć żyłę i zapobiec nadmiernemu krwawieniu podczas zakładania cewnika. Użyj trzeciej nici, aby utworzyć luźną ligatturę, a następnie za pomocą mikronożyczek wykonaj nacięcie wzdłuż żyły między ligaturami czaszkowymi i ogonowymi wystarczająco duże, aby przejść przez cewnik. Za pomocą kleszczy włóż cewnik na 11 milimetrów do żyły i luźno zabezpiecz cewnik środkową ligaturą.

Delikatnie przepłucz cewnik sterylnym roztworem soli fizjologicznej, aby potwierdzić jego prawidłowe umieszczenie. Następnie mocno dokręć więzadło ogonowe i środkowe. Zwiąż ze sobą końce ligatur ogonowej i środkowej, aby zabezpieczyć cewnik.

Potwierdzenie, że żyła nie jest niedrożna przez węzły, poprzez przepłukanie cewnika po każdym wiązaniu. Na koniec podwiązaj również ligaturę czaszkową. Następnie zamknij nacięcie pięcioma zerowymi szwami jedwabnymi.

W przypadku podwiązania i nakłucia jelita ślepego wykonaj jednocentymetrowe nacięcie linii środkowej przez skórę dolnej połowy brzucha, uważając, aby nie przeniknąć do jamy otrzewnej. Po zidentyfikowaniu linea alba mięśni brzucha. Wykonaj nacięcie międzymięśniowe, aby uzyskać dostęp do jamy otrzewnej.

Za pomocą kleszczy anatomicznych odizoluj i zewnętrznij jelito ślepe. Podwiązywać jelito ślepe na 50% jego długości za pomocą trzech zerowych szwów jedwabnych, uważając, aby nie zwęzić zastawki krętniczo-kątniczej, aby zachować ciągłość jelita. Następnie użyj igły o rozmiarze 18, aby przebić jelito ślepe pojedynczym nakłuciem na wylot i na wylot w połowie drogi między podwiązaniem a końcem jelita ślepego, wyciskając niewielką ilość kału z otworu, aby zapewnić drożność po wyjęciu igły.

Ułóż jelito w jamie brzusznej i zamknij otrzewną i skórę pięcioma zerowymi szwami jedwabnymi. Trzymając mysz w pozycji leżącej, przyklej cewnik do przewodu mocującego. Następnie umieść mysz w indywidualnej klatce z materiałem gniazdowym i drewnianym klockiem.

Za pomocą stojaka z regulowanym zaciskiem umieść urządzenie obrotowe w zacisku i mocno przyklej wolną część metalowego drutu mocującego do punktu obrotu krętlika. Następnie umieść klatkę w szafce dla zwierząt o temperaturze 27 stopni Celsjusza z 12-godzinnymi cyklami światła i ciemności. Podłączyć strzykawkę zawierającą odpowiednią mieszaninę zrównoważonych koloidów i krystaloidów do przewodu żylnego i użyć dokładnej pompy infuzyjnej napędzanej strzykawką, aby rozpocząć resuscytację płynem z prędkością 0,3 milimetra na godzinę.

Po sześciu godzinach wstrzyknij środek przeciwbólowy i antybiotyki. Analiza krzywych przeżycia w jednym pięciodniowym i jednym siedmiodniowym eksperymencie z podwiązaniem i nakłuciem jelita ślepego pokazuje, że wskaźniki przeżycia nie różniły się znacząco między tymi dwoma badaniami do piątego dnia, co podkreśla powtarzalność zestawu eksperymentalnego. Podwiązanie 50% jelita ślepego w połączeniu z antybiotykami, resuscytacją płynów i całkowitym żywieniem pozajelitowym za pomocą cewnika żylnego w żyle szyjnej powoduje 13% śmiertelność po jednym dniu krytycznej choroby.

24%śmiertelność po trzech dniach krytycznej choroby i 27%do 31%śmiertelność po pięciu dniach krytycznej choroby i 36%śmiertelność po siedmiu dniach krytycznej choroby. Zdrowe myszy karmione para, które były ograniczone kalorycznie do spożycia składników odżywczych przez krytycznie chore myszy, nie wykazały jednak żadnej śmiertelności w żadnym eksperymencie. Po opanowaniu techniki przez 10 do 15 zwierząt, można założyć cewnik i wykonać CLP w ciągu 45 minut, jeśli procedury są wykonywane prawidłowo.

Podczas wykonywania tego zabiegu należy pamiętać o ostrożnym wprowadzeniu cewnika do żyły. Umieszczenie cewnika zbyt głęboko w sercu spowoduje wywołanie arytmii serca. Umieszczając go niewystarczająco daleko, można go łatwo wyciągnąć.

Zawsze upewnij się, że cewnik jest umieszczony w świetle naczynia. Jeśli cewnik zostanie umieszczony w warstwach ściany naczynia, płyny będą wyciekać do otaczających tkanek. Model ten może wymagać rozległego zabiegu chirurgicznego i codziennej intensywnej opieki nad zwierzęciem.

Rezultatem jest jednak stabilny i powtarzalny model, który pozwala na badanie wielu aspektów ostrych i długotrwałych chorób krytycznych.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: centralna linia żylna płyny leki podawanie składników odżywczych model mysi choroba krytyczna podwiązanie i nakłucie jelita ślepego (CLP) intensywna terapia endokrynologiczna metaboliczna znieczulenie technika chirurgiczna cewnik pętla druciana ułożenie myszy nacięcie skóry odsłonięcie mięśni

Related Videos

Klamry hiperinsulinemiczno-euglikemiczne u przytomnych, nieskrępowanych myszy

11:10

Klamry hiperinsulinemiczno-euglikemiczne u przytomnych, nieskrępowanych myszy

Related Videos

95.8K Views

Metody samodzielnego podawania dożylnego w modelu mysim

12:09

Metody samodzielnego podawania dożylnego w modelu mysim

Related Videos

55.1K Views

Dożylne wstrzykiwanie środków eksperymentalnych za pomocą cewnika: technika dostarczania środków eksperymentalnych dożylnie przez żyłę szyjną w modelu mysim

02:57

Dożylne wstrzykiwanie środków eksperymentalnych za pomocą cewnika: technika dostarczania środków eksperymentalnych dożylnie przez żyłę szyjną w modelu mysim

Related Videos

6.9K Views

Cewnikowanie tętnicy szyjnej i żyły szyjnej w celu wykonania pomiarów hemodynamicznych, infuzji i pobierania próbek krwi w świadomym modelu szczurzym

09:05

Cewnikowanie tętnicy szyjnej i żyły szyjnej w celu wykonania pomiarów hemodynamicznych, infuzji i pobierania próbek krwi w świadomym modelu szczurzym

Related Videos

74.7K Views

Monitorowanie parametrów hemodynamicznych układu układowego i wątroby u myszy

16:09

Monitorowanie parametrów hemodynamicznych układu układowego i wątroby u myszy

Related Videos

17.1K Views

Żylno-żylne pozaustrojowe utlenowanie błony u myszy

06:41

Żylno-żylne pozaustrojowe utlenowanie błony u myszy

Related Videos

13K Views

Mysi model zwężenia żyły centralnej z wykorzystaniem przetoki aortalno-caval ze zwężeniem odpływu

06:17

Mysi model zwężenia żyły centralnej z wykorzystaniem przetoki aortalno-caval ze zwężeniem odpływu

Related Videos

7.9K Views

Wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa i inwazyjna ocena hemodynamiczna w modelu nadciśnienia tętniczego płucnej myszy wywołanego niedotlenieniem

08:51

Wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa i inwazyjna ocena hemodynamiczna w modelu nadciśnienia tętniczego płucnej myszy wywołanego niedotlenieniem

Related Videos

2K Views

Leczenie farmakologiczne za pomocą cewnika do żyły centralnej w mysim modelu tętniaka aorty brzusznej indukowanego angiotensyną II i monitorowanie za pomocą ultradźwięków 3D

10:09

Leczenie farmakologiczne za pomocą cewnika do żyły centralnej w mysim modelu tętniaka aorty brzusznej indukowanego angiotensyną II i monitorowanie za pomocą ultradźwięków 3D

Related Videos

3.7K Views

Test zakrzepicy żylnej w mysim modelu raka

04:40

Test zakrzepicy żylnej w mysim modelu raka

Related Videos

3.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code