Name: Metoda wytwarzania rekombinowanego białka mCD1d w komórkach owadów. (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-12-10T22:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 41 s
Description: Naucz się produkcji rekombinowanego białka mCD1d w komórkach owadów przy użyciu wirusa bakulowirusowego. Ta metoda umożliwia generowanie tetramerów mCD1d do badania komórek NKT w immunologii rozwojowej.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

I. Rozmrażanie komórek
Wyjąć zamrożoną fiolkę z komórkami TN5 i rozmrozić ją w kąpieli wodnej o temperaturze 37°C. Do kolby T.C o powierzchni 25cm2 dodać 5ml pożywki insect Express (Invitrogen, numer katalogowy-10486). Należy pamiętać, że pożywka Express five nie zawiera glutaminy; do 1 lt pożywki należy dodać 10ml 100X glutaminy z pen-strepem lub samej glutaminy. Przenieść komórki TN5 do kolby i inkubować przez 30 minut w inkubatorze o temperaturze 27°C. Następnie delikatnie odessać pożywkę z DMSO, uważając, aby nie naruszyć komórek przytwierdzonych do dna kolby. Dodać 5ml świeżej pożywki.
II. Hodowla i namnażanie komórek
Monitoruj komórki każdego dnia. Gdy konfluencja w kolbie wyniesie blisko 70%, doprowadź do zawieszenia komórki, uderzając w oba boki kolby, a następnie przenieś je do kolby 175cm2, dodając 21 ml pożywki Insect express oraz 5ml kultury komórkowej. Każda kolba T175 powinna zawierać około 25-30ml pożywki jako objętość końcowa.&nbsp; W razie potrzeby rozdziel konfluentną kolbę (stężenie ok. 1 miliona/ml) w stosunku 1/4 lub 1/5. Nie dopuszczaj do nadmiernego rozrostu komórek. Odnotuj liczbę pasaży, w których rozdzielano komórki. Nie hoduj komórek powyżej 30 pasażu, ponieważ może to doprowadzić do starzenia się komórek i w konsekwencji do ich lizy. Po osiągnięciu pożądanej objętości przy stężeniu 1 miliona/ml zainfekuj komórki.
Zazwyczaj hoduję od 2 do 2,5 litra, co zazwyczaj odpowiada siedemdziesięciu kolbach o pojemności 175cm2 i ok. 25 do 30ml na kolbę, lub pięciu kolbach Erlenmeyera o pojemności 1 litra i ok. 400ml do 500 ml w każdej kolbie
Uwaga: Komórki można hodować w kolbie z korkiem T-175 lub w kolbie Erlenmeyera firmy Corning. Hodowla komórek w kolbach Erlenmeyera jest szybsza i łatwiejsza.
III. Miareczkowanie wirusa metodą rozcieńczeń końcowych
<ol>
<li> Wysiać 3000-5000 komórek na studzienkę na płytce 96-dołkowej z płaskim dnem w 200 µL pożywki Express five SFM. Pozostawić komórki do osiadania w temperaturze 27°C przez co najmniej 30 minut.</li>
<li>Przygotować rozcieńczenia seryjne zapasu bakulowirusa. Należy wykonać rozcieńczenie 1/10 w jednym rzędzie płytki 96-dołkowej z dnem w kształcie litery U, stosując 250 µL na studzienkę. Rozcieńczenia przygotowuje się w pożywce Express Five SFM.</li>
<li> Za pomocą pipety wielokanałowej przenieść stałą ilość (zazwyczaj 20 µL) różnych rozcieńczeń do komórek.</li>
<li> Inkubować w temperaturze 27°C przez 7 dni. Aby zapobiec odparowywaniu z krawędzi płyty, owinąć brzegi płytki parafilmem.</li>
<li>Po 7 dniach sprawdzić płytkę i ustalić, które rozcieńczenie wirusa daje 50% infekcji (połowa studzienek przy tym stężeniu wirusa jest zainfekowana). Następnie zastosować wzór do obliczenia miana, wyrażonego w pfu/ml (pfu – jednostki tworzące plamy). Wzór ten znajduje się w większości instrukcji dotyczących bakulowirusów.</li>
</ol>
IV. Zakażanie komórek
Bardzo ważne jest określenie dokładnego miana wirusa. Należy dodać wymaganą ilość wirusa. W przypadku przygotowania zapasu wirusa komórki powinny zostać zainfekowane przy wielokrotności infekcji (MOI) nieprzekraczającej 1 (1pfu na 1 komórkę High Five). Wyższe MOI prowadzi do powstawania mutacji wirusowych. W celu produkcji białka zazwyczaj stosuje się MOI 5-10.
Przykład:
Miano bakulowirusa mCD1d = 1X108 pfu/ml
Dodać MOI=1 (w celu namnożenia wirusa)= 20X10^6 komórek/ kolba / 1X10^8 pfu / ml=200 ul / kolba
MOI = 5 do 10 (dla produkcji białka) = 1ml do 2ml na 20x10^6 komórek/kolbę
W 4. dniu po infekcji należy ocenić zainfekowane komórki. Powinny być one ododerwane, pływające, obrzęknięte i przybrać kształt wydłużonych pęcherzyków.
V. Odzyskiwanie nadpływów
Pobrać pożywkę z zakażonych kolb i przenieść ją do butelek wirówkowych Falcon z niebieskimi nakrętkami o pojemności 250ml. Mogą być one autoklawowane i używane ponownie. Napełnić butelki równomiernie i odwirować komórki w rotorze Sorvall GSA przy 200rpm przez 20 minut w temperaturze 4°C. Zebrać supernatant i przystąpić do dalszego oczyszczania.
VI. Oczyszczanie rekombinowanego mCD1d
<ol>
<li>Dializa i zagęszczanie w buforze fosforanowym sodu 150mM (pH 7.4)</li>
<li>Elucja białka mCD1d+b2m za pomocą chromatografii na agarozie Ni-NTA przy użyciu fosforanu sodu 150mM + imidazolu 200mM</li>
<li>Przeprowadzenie odsalania na kolumnie z użyciem buforu Tris Hcl 20mM pH8 w celu usunięcia imidazolu</li>
<li>Przeprowadzenie anionowymiennej chromatografii na kolumnie MonoQ w celu usunięcia pozostałych zanieczyszczeń.</li>
<li>Zagęszczenie do 1mg/ml przy użyciu koncentratora YM 30 (Millipore) </li>
<li>Enzymatyczna biotynylacja mCD1d za pomocą BirA zgodnie z protokołem producenta (Avidity) </li>
<li>Wolna biotyna jest usuwana na kolumnie S200 (chromatografia wykluczania cząsteczkowego) z użyciem soli fizjologicznej z buforem fosforanowym (PBS), pH7.4. Z 2 litrów supernatantu można uzyskać średnio od 2 do 3 mg biotynilowanego białka</li>
<li>Produkcja tetrameru a-Galcer CD1d.</li>
</ol>
Aby załadować cząsteczkę CD1d za pomocą $\alpha$-Galcer, rozpuszczalne biotynilowane CD1d-b2m inkubuje się przez noc w temperaturze pokojowej z trzykrotnym molowym nadmiarem $\alpha$-Galcer, rozpuszczonego w 0,5% Tween-20 w PBS, 0,9% NaCl. Tetramery otrzymuje się poprzez zmieszanie monomerów CD1d załadowanych $\alpha$-Galcer z czterokrotnym molowym nadmiarem streptawidyny sprzężonej z PE i inkubację przez 4 godziny w temperaturze pokojowej. Przechowywać w temperaturze 4°C.

<ol><li>Benlagha, K., Weiss, A., Beavis, A., Teyton, L., Bendelac, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+identification+of+glycolipipd+antigen-specific+T+cells+using+fluorecent+CD1d+tetramers%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">In vivo identification of glycolipipd antigen-specific T cells using fluorecent CD1d tetramers.</a> J. Exp. Med. 191, 1895-1903 (2000).</li>
<li>Kinjo, Y., Wu, D., Kim, G., Xing, G. W., Poles, M. A., Ho, D. D., Tsuji, M., Kawahara, K., Wong, C. H., Kronenberg, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recognition+of+bacterial+glycosphingolipids+by+natural+killer+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Recognition of bacterial glycosphingolipids by natural killer T cells.</a> Nature. 434, 520-525 (2005).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Binding+and+antigen+presentation+of+ceramide-containing+glycolipids+by+soluble+mouse+and+human+CD1d+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">Binding and antigen presentation of ceramide-containing glycolipids by soluble mouse and human CD1d molecules.</a> J. Exp. Med. 190, 1069-1080 (1999).</li>
<li>Porcelli, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+CD1+family%3A+A+third+lineage+of+antigen-+presenting+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Immunol%22%5BJournal%5D)">The CD1 family: A third lineage of antigen- presenting molecules.</a> Adv. Immunol. 59, 1-98 (1995).</li>
<li>Sidobre, S., Kronemberg, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD1+tetramers%3A+A+powerful+tool+for+the+analysis+of+glycolipid-reactive+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">CD1 tetramers: A powerful tool for the analysis of glycolipid-reactive T cells.</a> J. Immunol. 169, 1340-1348 (2002).</li>
</ol>

W niniejszej procedurze przedstawiono sposób inicjowania, hodowli i infekcji komórek owadziech oraz metodę miareczkowania bakulowirusa przy użyciu tych komórek. Najważniejszymi aspektami tej procedury są utrzymanie komórek oraz dokładne określenie miana bakulowirusa. Po wygenerowaniu tetramerów CD1 mogą one służyć jako potężne narzędzie do analizy limfocytów T reagujących na glikolipidy. Systemy bakulowirusowe są również szeroko stosowane do produkcji białek rekombinowanych, w tym tetramerów MHC klasy II, dzięki czemu pr...

<table><tbody><tr><td>Express Five SFM</td><td>Pożywka bezsurowicza</td><td>Invitrogen</td><td>10486025</td><td></td></tr><tr><td>High Five TM</td><td>Komórki owadzie</td><td>Invitrogen</td><td>B855-02</td><td></td></tr><tr><td>Glutamine Pen strep</td><td>Antybiotyki</td><td>Invitrogen</td><td>10378-016</td><td></td></tr><tr><td>Kolba TC 25 cm²</td><td>Plastikowa</td><td>Fisher Scientific</td><td>10-126-28</td><td></td></tr><tr><td>Kolba TC 175 cm²</td><td>Kolba z korkiem</td><td>Fisher Scientific</td><td>10-126-8</td><td></td></tr><tr><td>Kolba Erlenmeyera</td><td>Kolba do hodowli komórkowej</td><td>Fisher Scientific</td><td>07 200 672</td><td></td></tr><tr><td>Koncentrator YM 30</td><td>30,000 MWCO</td><td>EMD Millipore</td><td>UFC 903096</td><td></td></tr><tr><td>Sprzęt FPLC</td><td></td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Enzym i bufor BrA</td><td>Zestaw do biotinylacji</td><td>Avidity</td><td>BIRA500</td><td></td></tr><tr><td>Kolumna Ni-NTA Agarose</td><td>Kolumna do oczyszczania białek z tagiem His</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kolumna odsalająca</td><td>Do usuwania soli z białka</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kolumna MonoQ</td><td>Chromatografia wymiany anionowej</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kolumna S200</td><td>Chromatografia wykluczania molekularnego</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>alfa-Galcer</td><td>Glikolipid</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PE-Streptawidyna</td><td>Do sprzęgania białek</td><td>Molecular Probes, Life Technologies</td><td>S-866</td><td></td></tr></tbody></table>

metoda produkcji rekombinowanego białka mcd1d w komórkach owadzych.

A Method For Production of Recombinant mCD1d Protein in Insect Cells.

Białka CD1 stanowią trzecią klasę cząsteczek prezentujących antygen. Są to glikoproteiny powierzchniowe komórek, występujące w formie glikozylowanych łańcuchów ciężkich o masie około 50 kDa, które są niewalencyjnie związane z beta2-mikroglobuliną. Wiążą one lipidy, a nie peptydy. Chociaż ich struktura potwierdza podobieństwo białek CD1 do cząsteczek prezentujących antygeny MHC klasy I i klasy II, rowek mCD1d jest stosunkowo wąski, głęboki i silnie hydrofobowy; posiada on dwie kieszenie wiążące zamiast kilku płytkich kieszeni opisanych dla klasycznych cząsteczek prezentujących antygeny kodowanych przez MHC. Biorąc pod uwagę ich sekwencje aminokwasowe, taki hydrofobowy rowek zapewnia idealne środowisko do wiązania antygenów lipidowych.Komórki Natural Killer T (NKT) wykorzystują swój TCR do rozpoznawania glikolipidów związanych z CD1d lub prezentowanych przez to białko. Limfocyty T reagujące na lipidy prezentowane przez CD1 uczestniczą w ochronie przed chorobami autoimmunologicznymi i zakaźnymi oraz w odrzucaniu nowotworów. Z tego względu zdolność do identyfikacji, oczyszczania i śledzenia odpowiedzi komórek NKT reaktywnych wobec CD1 ma ogromne znaczenie. Generowanie tetramerów alfa-galaktocylozamidu (a-Galcer) z CD1d dostarczyło istotnych informacji na temat biologii komórek NKT. Wygenerowano również tetramery zbudowane z innych cząsteczek CD1, a te nowe odczynniki znacznie rozszerzyły wiedzę o funkcjach lipidoreaktywnych limfocytów T, z potencjalnym zastosowaniem w monitorowaniu odpowiedzi na szczepionki oparte na lipidach oraz w diagnostyce chorób autoimmunologicznych i innych metodach leczenia.

Metoda przygotowania komórek owadzie i zakażania ich bakulowirusem w celu produkcji rekombinowanego białka mCD1d oraz generowania tetramerów mCD1d.

Metoda produkcji rekombinowanego białka mCD1d w komórkach owadzych.

Białka CD1 stanowią trzecią klasę cząsteczek prezentujących antygen. Są to glikoproteiny powierzchniowe komórki, występujące jako glikozylowane białka o masie około 50 kDa...

Witajcie, nazywam się Ashra Corona i pracuję w laboratorium dr. Mitcha Kronenberga w Katedrze Immunologii Rozwojowej w La Jolla Institute for Allergy and Immunology. Dzisiaj pokażę Państwu, jak przygotować owadzie komórki High Five i zainfekować je wirusem w celu generowania tetramerów MA CD 1D. Tetramery CD 1D są wykorzystywane przez nasze laboratorium oraz inne ośrodki do rozpoznawania komórek NKT.Systemy VIR są szeroko stosowane do produkcji białek rekombinowanych, w tym klasy dwóch drgań TE MS C. Zatem prezentowana procedura ma znacznie szersze zastosowanie. Procedura ta obejmuje inicjację i namnażanie komórek owadów High Five, zakażenie komórek reowirusami przenoszącymi cDNA CD 1D,yzebranie nadsączu poprzez wirowanie po czterech dniach od zakażenia, lizę w celu uzyskania stężenia białka w 150 mM buforze fosforanowym sodu o pH 7,4, oczyszczanie białka CD 1D myszy za pomocą metod niklowych i T agros oraz wymiany jonowej, zagęszczenie białka M CD 1D do 1 mg/ml przy użyciu koncentratora YM 30, a następnie enzymatyczną walidację CD 1D myszy zgodnie z protokołem AVID D oraz eliminację wolnego BioTeam za pomocą kolumny S 200.I na koniec, produkcja alpha gel CD 1D Tet. Chociaż cała procedura obejmuje wszystkie te etapy, dzisiaj pokażemy Państwu jedynie, jak obchodzić się z tymi komórkami i jak je infekować wirusem w celu wygenerowania większej ilości CD 1D tremors. Zacznijmy.Przede wszystkim chciałbym pokazać Państwu komórki owadzie Tn5; linia komórkowa High Five pochodzi z komórek jajnika owada z rodzaju cabbage looper. Są one stosowane w niniejszym protokole, ponieważ rosną w medium bezsurowiczym, są przystosowane do hodowli w zawiesinie i produkują wysokie poziomy białka rekombinowanego w 5 ml medium Insect Express w 25 cm² kwadratowych kolbach tkankowych. Należy pamiętać, że medium Express 5 nie zawiera glutaminy.Należy dodać 10 ml 100-krotnego roztwoku glutaminy (GlutaMAX), lub samej glutaminy, do jednego litra pożywki. Teraz wezmę zamrożoną fiolkę z komórkami owadów High Five, rozmrożę ją w kąpieli wodnej o temperaturze 37 °C, natychmiast przeleję komórki High Five do kolby i inkubuję przez 30 minut w inkubatorze w temperaturze 27 °C. Następnie odessam pożywkę, aby delikatnie usunąć medium z DMSO, nie naruszając komórek przytwierdzonych do dna kolby.Teraz należy dodać 5 ml świeżej pożywki do kolby po rozmrożeniu; musimy teraz namnożyć komórki przed infekcją wirusem. Monitoruj komórki codziennie, aż kolba będzie wypełniona w około 70%. Doprowadź komórki do stanu zawiesiny, uderzając w oba boki kolby.Przenieś komórki do kolby kwadratowej o wymiarach 75 cm², dodając 25 ml pożywki Insect Express oraz 5 ml zawiesiny komórkowej z kolby do pasażowania. Stosunek rozcieńczenia powinien wynosić 1:4 lub 1:5, w zależności od potrzeb. Nie dopuszczaj do nadmiernego wzrostu komórek i monitoruj liczbę pasaży, w których komórki zostały podzielone.Nie przekraczać 30. pasażu, ponieważ może to doprowadzić do starzenia się komórek i w konsekwencji do ich lizy. Komórki należy pasażować co drugi dzień. Przesiew należy wykonywać w stosunku jeden do pięciu.Po osiągnięciu pożądanej objętości przy stężeniu 1 miliona komórek na ml należy zainfekować komórki. Zazwyczaj namnażam je do objętości dwóch litrów, co zazwyczaj odpowiada 71 kolbach o pojemności 75 cm² i około 25 ml pożywki na kolbę lub czterem kolbach ER o pojemności jednego litra i około 500 ml pożywki na kolbę. Namnażanie komórek w kolbach ER jest znacznie szybsze; przy 100 ml hodowli i 400 ml medium express five SFM hoduje się je w wytrząsarce przy 125 RPM w temperaturze 27 stopni Celsjusza, aż do osiągnięcia stężenia 1 miliona komórek na ml w pożądanej objętości przed infekcją komórek. Chciałbym teraz pokazać Państwu, jak miareczkować wirusa belo, co zrobimy w następnym kroku. W celu miareczkowania wirusa należy wysiać od 3000 do 5000 komórek na dołek.Wypełnij płytkę 96-dołkową z płaskim dnem 200 µL medium Insect Express Five SFM w każdym dołku. Pozostaw komórki do osiadania w temperaturze 27 °C przez co najmniej 30 minut. Przygotuj rozcieńczenia seryjne roztworu zapasowego avius.Należy przygotować rozcieńczenia w jednym rzędzie płytki 96-dołkowej, stosując 250 µL na dołek. Rozcieńczenia wykonuje się w medium X-Press 5 SFM.Za pomocą pipety wielokanałowej przenieś stałą ilość, zazwyczaj 20 µL, różnych rozcieńczeń do hodowli komórkowej w inkubatorze w temperaturze 27 °C na siedem dni, aby zapobiec parowaniu z rzędów brzegowych. Po siedmiu dniach owiń brzegi płytki folią. Sprawdź płytkę i określ, które rozcieńczenie wirusa powoduje 50% infekcję.Następnie należy użyć wzoru do obliczenia miana wirusa, wyrażonego w PFU/ml. Wzór ten znajduje się w większości instrukcji dotyczących wirusów. Po mianowaniu wirusa, wymagana ilość wirusa do zainfekowania komórek w celu produkcji białek, czyli wielokrotność infekcji (MOI), powinna wynosić od 5 do 10.Na przykład, jeśli miano wirusa belo CD 1D mysiego wynosi sto milionów jednostek tworzących plak (pfu/ml), a w kolbie znajduje się 20 milionów komórek, należy dodać od 1 ml do 2 ml wirusa belo, aby zainfekować komórki. Komórki powinny być infekowane przez cztery dni. W czwartym dniu po infekcji komórki powinny być oddzielone, pływające, obrzęknięte i tworzyć kształty przypominające kiełbaski.Nadszedł czas na odzyskanie nadosadu. Przenieś pożywkę z zakażonej kolby do butelek wirówkowych Falcon o pojemności 250 ml z niebieskim zakrętką. Można je autoklawować i używać ponownie.Napełnij butelki równomiernie i odwirowuj komórki w wirówce z rotorem GSA przy 2000 RPM przez 20 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Zbierz nadsącz i przystąp do dalszej puryfikacji. Właśnie zaprezentowałem sposób inicjowania, hodowli i infekcji komórek owadzie Hi5 oraz miareczkowania baculowirusa.Przy użyciu tych komórek najważniejszymi aspektami tej procedury są sposób utrzymania komórek oraz metoda określania dokładnego miana wirusa. Po wygenerowaniu trimerów CD 1D mogą one posłużyć jako potężne narzędzie do analizy limfocytów T reaktywnych na glikolipidy. Niniejsza procedura postępowania z wirusem i jego miareczkowania może być zastosowana również w przypadku wielu innych białek rekombinowanych.To wszystko. Dziękujemy za obejrzenie filmu i życzymy powodzenia w przeprowadzaniu eksperymentów.

a-method-for-production-of-recombinant-mcd1d-protein-in-insect-cells

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Metoda wytwarzania rekombinowanego białka mCD1d w komórkach owadów.

W erze genomiki post-humanistycznej dostępność białek rekombinowanych w natywnych konformacjach jest kluczowa dla badań i rozwoju w obszarze strukturalnym, funkcjonalnym oraz terapeutycznym. W niniejszej pracy opisujemy system ekspresji białek w skali testowej i przemysłowej z wykorzystaniem ludzkich komórek embrionalnej nerki 293T, który może być stosowany do produkcji różnorodnych białek rekombinowanych.

Wygodna i uniwersalna platforma ekspresyjna do produkcji białek wydzielanych z komórek ludzkich

Kompleksy białkowe katalizują kluczowe funkcje komórkowe. Szczegółowa charakterystyka funkcjonalna i strukturalna wielu istotnych kompleksów wymaga produkcji rekombinowanej. MultiBac to system komórkowy bakulowirusa/owadów specjalnie przystosowany do ekspresji białek eukariotycznych i ich kompleksów. MultiBac został wdrożony jako platforma o otwartym dostępie, a standardowe procedury operacyjne zostały opracowane w celu maksymalizacji jego użyteczności.

Platforma do produkcji kompleksu białkowego MultiBac w EMBL

Tutaj używamy transdukcji retrowirusowej i transfekcji konkategomerycznej, aby stworzyć linię komórkową, która może wyrażać składniki wektora lentiwirusowego (LV) przy braku tetracykliny. Ten LV koduje GFP i jest pseudotypowany glikoproteiną SVGmu, która jest specyficzna dla receptora na komórkach dendrytycznych.

Linia komórkowa regulowana tetracykliną wytwarza wektory lentiwirusowe o wysokim mianie, które są specyficznie ukierunkowane na komórki dendrytyczne

Kindliny mają fundamentalne znaczenie dla adhezji komórek poprzez integryny, ale badania nad nimi były utrudnione z powodu trudności napotkanych podczas ich rekombinacyjnej ekspresji u gospodarzy bakteryjnych. Opisujemy tutaj metody ich efektywnej produkcji w komórkach owadów zakażonych bakulowirusem.

Wydajna produkcja i oczyszczanie rekombinowanego mysiego Kindlin-3 z komórek owadów do badań biofizycznych

W tym badaniu porównano ekspresję docelowego ludzkiego białka rekombinowanego na różnych platformach produkcyjnych. Skupiliśmy się na tradycyjnych kulturach fermentorowych i roślinach, opisując konfigurację każdego systemu i podkreślając, na podstawie zgłoszonych wyników, nieodłączne ograniczenia i zalety każdej platformy.

Analiza porównawcza ekspresji białek rekombinowanych w różnych biofabrykach: bakteriach, komórkach owadów i systemach roślinnych

Nielityczne systemy ekspresji komórek owadów są niedostatecznie wykorzystywane do produkcji, transportu/lokalizacji komórkowej i analizy funkcjonalnej białek rekombinowanych. W tym miejscu opisujemy metody generowania wektorów ekspresyjnych i późniejszej przejściowej ekspresji białek w dostępnych na rynku liniach komórkowych lepidoptera. Przedstawiono również kolokalizację akwaporyn Bemisia tabaci z subkomórkowymi białkami markerowymi fluorescencyjnymi.

Przejściowa ekspresja i lokalizacja komórkowa rekombinowanych białek w hodowanych komórkach owadów

Informujemy o użyciu sztucznej strategii ekspresji małego RNA w celu opracowania niewadliwego systemu dostarczania rekombinowanego densowirusa Aedes aegypti (AaeDV) in vivo. Opisano szczegółową procedurę budowy, pakowania i analizy ilościowej wektorów rAaeDV, a także infekcji larwalnej.

Zastosowanie rekombinowanego densowirusa komarów jako wektora dostarczania genów do analizy funkcjonalnej genów w larwach komarów

Ten protokół opisuje system ekspresji białek wywołany szokiem cieplnym (system komórkowy pDHsp/V5-His/sf9), który może być używany zarówno do ekspresji obcych białek, jak i oceny antyapoptotycznej aktywności potencjalnych obcych białek i ich skróconych aminokwasów w komórkach owadów.

Przejściowa ekspresja obcych genów w komórkach owadów (sf9) do testu funkcjonalnego białka

Tutaj prezentujemy protokół produkcji białek karboksyloesterazy u muchy domowej in vitro z systemem ekspresji komórek owadów za pośrednictwem bakulowirusa, a następnie funkcjonalnie charakteryzujemy ich role w metabolizowaniu permetryny, nadając w ten sposób odporność na pyretroidy poprzez przeprowadzanie testów MTT na bazie komórek i badań metabolicznych in vitro.

Charakterystyka funkcjonalna karboksylesterazy u much domowych odpornych na insektycydy, Musca domestica

Tutaj prezentujemy protokoły wykorzystania systemu ekspresji białek komórek owadów i bakulowirusa do produkcji dużych ilości białek wydzielanych przez rośliny do krystalizacji białek. Wektor ekspresyjny bakulowirusa został zmodyfikowany za pomocą GP67 lub peptydu sygnałowego hemoliny owadów w celu ekspresji wydzielania białek roślinnych w komórkach owadów.

Modyfikowanie wektorów ekspresyjnych bakulowirusa w celu wytwarzania wydzielanych białek roślinnych w komórkach owadów

System wektorów ekspresyjnych bakulowirusa (BEVS) to solidna platforma do badania ekspresji i produkcji białkowych metylotransferaz argininowych (PRMT) do wykorzystania w badaniach biochemicznych, biofizycznych i strukturalnych. Miligramowe ilości materiału mogą być produkowane dla większości PRMT i innych białek będących przedmiotem zainteresowania, wymagających eukariotycznej platformy ekspresyjnej.

Produkcja rekombinowanych białek PRMT przy użyciu systemu wektorów ekspresyjnych bakulowirusa

Naucz się produkcji rekombinowanego białka mCD1d w komórkach owadów przy użyciu wirusa bakulowirusowego. Ta metoda umożliwia generowanie tetramerów mCD1d do badania komórek NKT w immunologii rozwojowej.

Metoda produkcji rekombinowanego białka mCD1d w komórkach owadzych.

Przeglądaj więcej filmów