Name: Szczurzy model skojarzenia partycji wątroby i podwiązania żyły wrotnej do etapowej procedury hepatektomii (ALPPS) (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-08-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 29 s
Description: Poznaj model ALPPS u szczurów do badania szybkiej regeneracji wątroby poprzez podwiązanie żyły wrotnej i przecięcie miąższu. Ta metoda umożliwia ocenę fizjologiczną i molekularną oraz testowanie leków.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Autorzy nie mają żadnych podziękowań.

Wszystkie eksperymenty w tym protokole zostały zatwierdzone przez Władze Weterynaryjne Kantonu Zurych, Szwajcaria (numer 60/2014). Ponadto wszystkie etapy doświadczalne zostały przeprowadzone w ścisłej zgodności z Wytycznymi Szwajcarskiej Akademii Nauk Medycznych (SAMS) dotyczącymi eksperymentów na zwierzętach oraz Wytycznymi Federacji Europejskich Stowarzyszeń Nauk o Zwierzętach Laboratoryjnych (FELASA).
1. Hodowla zwierząt, Wyposażenie i instrumenty sali operacyjnej, Anestezjologia
<ol>
	<li>Samce szczurów rasy Wistar o wadze 250-300 g należy trzymać w wentylowanych klatkach w standardowych warunkach wolnych od patogenów w cyklu 12/12 godzin światło/ciemność. Zapewnić zwierzętom swobodny dostęp do pożywienia i wody o temperaturze otoczenia 22 ± 1 °C.</li>
	<li>Wywołaj znieczulenie w pudełku, w którym izofluran jest spłukiwany z 5% obj. przez 30 s (<silna klasa = "xfig">Ryc. 1A), a następnie stężenie izofluranu wynosi 3% obj., aż zwierzę znajdzie się pod głębokim znieczuleniem. Potwierdź poziom znieczulenia za pomocą odruchu szczypania palców u stóp.</li>
	<li>Analgezję należy podawać podskórnie stosując buprenorfinę (0,01 mg/kg) podczas zabiegu chirurgicznego, a następnie 0,02 mg/kg mc. co 12 godzin w fazie pooperacyjnej przez 48 godzin.</li>
	<li>Przenieść zwierzę do miejsca pracy, gdzie spontanicznie oddycha pod wpływem mieszaniny gazów o stężeniu 1,0 - 2,5% obj. izofluranu w tlenie (przepływ: 600 ml/min).</li>
	<li>Zamknij oczy zwierzęcia i użyj maści, aby chronić oczy. Wstrzyknąć podskórnie 5 ml soli fizjologicznej, po połowie z każdej strony brzucha, a następnie 0,1 mg atropiny.</li>
	<li>Wykonaj operację przy użyciu mikroskopu operacyjnego w gabinecie mikrochirurgicznym.</li>
	<li>Utrzymuj zwierzę w znieczuleniu lotnym za pomocą maski wentylacyjnej składającej się z membrany lateksowej (<silna klasa = "xfig">Rysunek 1B), przez którą przepychany jest pysk szczura. Przymocuj kończyny taśmą (<silna klasa="xfig">Rysunek 1B).</li>
	<li>Na stoliku bocznym rozłóż narzędzia chirurgiczne w sterylny sposób: gąbki nasączone solą fizjologiczną i betadyną (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 2A), zwijacze ścian brzucha (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 2B), a także szwy 3-0 do cofania ściany brzucha i mieczyka, nożyczki, kleszcze Adson, mikrokleszcze z cienkimi końcówkami proste i zakrzywione oraz wstępnie przycięte jedwabne opaski 6-0 do procedury podwiązania (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 2C).</li>
	<li>Do przecięcia miąższu wątroby należy użyć nieprzywierających mikrokleszczyków bipolarnych. Zamknij ścianę brzucha i skórę za pomocą szwów jedwabnych 3-0 z igłami SH-1 i 5-0 Maxon (<klasa silna = "xfig">Rysunek 2D). Użyj kleszczy dwubiegunowych do hemostazy.</li>
</ol>
2. Rozpoczęcie operacji
<ol>
	<li>Ogol brzuch zwierzęcia małą maszynką do strzyżenia włosów zwierzęcych od mieczykowatej do narządów płciowych z 2-centymetrowym obszarem po stronie linii środkowej. Dokładnie usuń włosy.</li>
	<li>Zdezynfekuj ten obszar 3 razy gąbkami nasączonymi betadyną.</li>
	<li>Wykonaj nacięcie w linii środkowej za pomocą skalpela do skóry, a następnie użyj nożyczek chirurgicznych, aby otworzyć brzuch.</li>
	<li>Cofnij prawą i lewą ścianę brzucha oraz mieczyk mieczykowaty za pomocą jedwabnych szwów 3-0 (<silna klasa = "xfig">Rysunek 3A).</li>
	<li>Wycofaj żołądek, okrężnicę i jelito cienkie z więzadła wątrobowo-nerwowego szczura za pomocą samodzielnie wykonanych małych drucianych zwijaczy (<silna klasa = "xfig">Rysunek 3B).</li>
</ol>
3. Podwiązanie żyły wrotnej (PVL)
<ol>
	<li>Uzyskaj dostęp do żyły wrotnej i jej odgałęzień poprzez boczne cofnięcie żołądka i jelita cienkiego (<silna klasa = "xfig">Ryc. 3B).</li>
	<li>Wypreparuj żyłę wrotną tępo, podnosząc otrzewną mikrokleszczami i powoli obierając ją przyśrodkowo.</li>
	<li>Rozgałęzij żyłę wrotną na zewnątrz (<silna klasa="xfig">Rysunek 3C) w następującej kolejności: (1) prawa tylna gałąź, (2) lewa boczna i lewa środkowa gałąź razem oraz (3) gałąź ogoniasta.
	<ol>
		<li>Najpierw oderwij otrzewną małymi, niezbyt energicznymi ruchami, aby uniknąć rozerwania małych gałęzi tętniczych do płatów wątroby, które biegną bezpośrednio pod pokryciem otrzewnej.</li>
		<li>Gdy główna żyła wrotna zostanie obnażona, owiń gałęzie powolnymi ruchami do przodu, pchającymi i rozpierającymi, a następnie przeciągnij 1-centymetrowy kawałek jedwabnej opaski 6-0 wokół odpowiedniej gałęzi żyły wrotnej i podwiązaj ją.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Podwiązywać prawą gałąź tylnego płata. (<silna klasa="xfig">Rysunek 3C) Trudność techniczna prawej tylnej gałęzi polega na tym, że tętnica do prawego tylnego płata przebiega w poprzek prawej tylnej gałęzi żyły wrotnej.
	<ol>
		<li>Pociągnij tętnicę czaszkowo razem z otrzewną, aby odsłonić prawą gałąź żyły wrotnej za pomocą zakrzywionych mikrokleszczyków.</li>
		<li>Podwiązuj prawą gałąź tylnego płata za pomocą wstępnie przyciętego jedwabnego krawata 6-0. Prawy tylny płat staje się widocznie blady po podwiązaniu żyły wrotnej.</li>
		<li>Unikaj naciskania na opór podczas krążenia, aby zapobiec rozerwaniu tętnicy lub żyły wrotnej. W przypadku krwawienia należy uciskać przez co najmniej jedną minutę sterylnym wacikiem, a następnie ponownie ocenić. Jeśli krwawienie nie ustaje, należy złożyć zwierzę w ofierze.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Podwiązywać gałęzie po lewej stronie bocznej (LLL) i lewym płacie środkowym (love my life). Te gałęzie mają jeden wspólny pień. (<silna klasa="xfig">Rysunek 3C). Gałąź lewego płata środkowego powstaje z żyły wrotnej w miąższu LLL.
	<ol>
		<li>Zwiń żyłę wrotną prowadzącą zarówno do LLL, jak i gałęzi love my life za pomocą wstępnie przyciętego jedwabnego krawata 6-0.</li>
		<li>Unikaj urazów tętnic prowadzących do LLL i kochaj moje życie, biegnąc w warstwie otrzewnej. Dopóki otrzewna jest ostrożnie złuszczana, pozostają nienaruszone. LLL i love my life stają się widocznie blade po podwiązaniu gałęzi.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Podwiązywać gałąź płata ogoniastego (<silna klasa="xfig">Rysunek 3C). Żyła wrotna prowadząca do nieco oddzielnych płatów ogoniastych u szczurów odchodzi od głównej żyły wrotnej, dystalnie i przyśrodkowo do wylotu odgałęzienia prawego płata od głównej żyły wrotnej (nie ściśle gorzej, jak u ludzi lub większych zwierząt).
	<ol>
		<li>Wypreparuj go i okrąż, podnosząc otrzewną oraz przewód żółciowy i tętnice z głównej żyły wrotnej.</li>
		<li>Otocz gałąź żyły ogoniastej za pomocą zakrzywionych mikrokleszczy biegnących z boku. Dwa płaty ogoniaste stają się widocznie blade, gdy gałąź płata ogoniastego zostanie podwiązana jedwabiem 6-0.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Powiązanie tych trzech gałęzi żyły wrotnej prowadzi do wyłącznej perfuzji żyły wrotnej prawego płata środkowego (RML), która jest widoczna przez wyraźną linię demarkacyjną między prawym i lewym płatem środkowym.</li>
</ol>
4. Podwiązanie żyły wrotnej z przecięciem (PVL+T)
<ol>
	<li>Wykonaj przecięcie wzdłuż linii demarkacyjnej między RML a love my life po PVL (<silna klasa="xfig">Rysunek 3D).</li>
	<li>Użyj nieprzywierających bipolarnych srebrnych kleszczyków z bardzo cienką końcówką neurochirurgiczną, aby wstępnie wykauteryzować tkankę wątroby, tworząc 1-milimetrowy pasek kauteryzacyjny wzdłuż linii demarkacyjnej.</li>
	<li>Użyj nożyczek, aby ostrożnie przeciąć wstępnie wykauteryzowaną tkankę. Dość trudno jest właściwie ocenić głębokość przecięcia. Celem jest zbliżenie się jak najbardziej do żyły głównej, która przebiega wewnątrzwątrobowo u szczurów. Uszkodzeniu żyły głównej towarzyszy rozległe krwawienie, którego zwykle nie można zatrzymać.</li>
	<li>W przypadku zranienia należy delikatnie uciskać wacikiem, ale jeśli krwawienie nie ustąpi w ciągu 3 - 4 minut, należy złożyć zwierzę w ofierze. Próby naprawy żyły głównej za pomocą szwów na ogół kończyły się niepowodzeniem. Szczury są bardzo wrażliwe na zator powietrzny, który może czasami wystąpić i prowadzić do zatrzymania akcji serca.</li>
</ol>
5. Śródoperacyjny pomiar ciśnienia w żyle wrotnej i przepływu objętościowego
<ol>
	<li>Oceń ciśnienie w żyle wrotnej przez bezpośrednią kaniulację za pomocą igły G30 podłączonej do ciśnieniomierza (<silna klasa = "xfig">Rysunek 4A).</li>
	<li>Użyj sondy przepływu objętościowego 2 mm umieszczonej z boku połączonej z urządzeniem przepływowym, aby bezpośrednio zmierzyć przepływ objętościowy portalu w ciągu 2 minut (<silna klasa = "xfig">Rysunek 4B). Rejestruj tylko dane o stabilnej jakości pomiaru, jak wskazano na wyświetlaczu maszyny.</li>
	<li>Oceń przepływ i ciśnienie w żyle wrotnej oddzielnie po grupie kroków, które definiują daną procedurę, tj. związanie trzech odgałęzień żyły wrotnej lub związanie trzech odgałęzień żyły wrotnej plus wykonanie przecięcia miąższu między RML a love my life.</li>
</ol>
6. Końcowe etapy operacji
<ol>
	<li>Przed zamknięciem upewnij się, że jelito cienkie jest prawidłowo umieszczone w jamie brzusznej.</li>
	<li>Zamknij otrzewną i ścianę brzucha za pomocą 3-0 jedwabnych szwów z igłami SH-1.</li>
	<li>Na koniec zszyj skórę za pomocą Maxon 5-0.</li>
	<li>Ponownie zdezynfekuj skórę.</li>
	<li>Ponownie nanieść 5 ml soli fizjologicznej podskórnie w tkankę podskórną po bokach brzucha.</li>
</ol>
7. Wolumetria wątroby u szczurów za pomocą tomografii komputerowej małych zwierząt
<ol>
	<li>Na 24 godziny przed pierwszym badaniem TK wstrzyknąć 200 μl środka kontrastowego do żyły ogonowej przez cewnik dożylny G26.</li>
	<li>Użyj mikrotomografii komputerowej, aby zeskanować szczury. Umieść zwierzę w pudełku z pleksiglasu w celu wywołania znieczulenia ogólnego (najpierw spłukiwać 5% obj. przez 30 s, a następnie stężenie izofluranu wynosi 2-3 obj., aż zwierzę będzie pod narkozą i utrzymuj je przez cały czas skanowania za pomocą systemu rurek). Aby uzyskać optymalną jakość obrazu, zsynchronizuj tomografię komputerową z oddechem zwierzęcia.</li>
	<li>Eksportuj pliki DICOM (Digital Imaging and Communications in Medicine) i analizuj je za pomocą platformy obrazowania OsiriX 8.0 w domenie publicznej. Użyj narzędzia "zamknięty wielokąt", aby narysować granice płata na podstawie radiogęstości kontrastu nanocząstek w wątrobie i użyj menu obszaru zainteresowania (ROI) do obliczenia częściowych objętości wątroby (patrz <silna klasa="xfig">Rysunek 2A w Schadde i wsp.<klasa sup="odnośnik">17)</li>
	<li>W modelu standardowym pozwól wątrobie rosnąć przez 3 dni i wykonuj codzienne badania tomografii komputerowej, aby ocenić wzrost objętości.</li>
</ol>

<ol><li>She, W. H., Chok, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strategies+to+increase+the+resectability+of+hepatocellular+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Hepatol%22%5BJournal%5D)">Strategies to increase the resectability of hepatocellular carcinoma.</a> World J Hepatol. 7 (18), 2147-2154 (2015).</li>
<li>Vauthey, J. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standardized+measurement+of+the+future+liver+remnant+prior+to+extended+liver+resection%3A+methodology+and+clinical+associations%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery%22%5BJournal%5D)">Standardized measurement of the future liver remnant prior to extended liver resection: methodology and clinical associations.</a> Surgery. 127 (5), 512-519 (2000).</li>
<li>Kinoshita, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preoperative+portal+vein+embolization+for+hepatocellular+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Surg%22%5BJournal%5D)">Preoperative portal vein embolization for hepatocellular carcinoma.</a> World J Surg. 10 (5), 803-808 (1986).</li>
<li>van Lienden, K. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Portal+Vein+Embolization+Before+Liver+Resection%3A+A+Systematic+Review%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Intervent+Radiol%22%5BJournal%5D)">Portal Vein Embolization Before Liver Resection: A Systematic Review.</a> Cardiovasc Intervent Radiol. , (2012).</li>
<li>Kianmanesh, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Right+portal+vein+ligation%3A+a+new+planned+two-step+all-surgical+approach+for+complete+resection+of+primary+gastrointestinal+tumors+with+multiple+bilateral+liver+metastases%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Coll+Surg%22%5BJournal%5D)">Right portal vein ligation: a new planned two-step all-surgical approach for complete resection of primary gastrointestinal tumors with multiple bilateral liver metastases.</a> J Am Coll Surg. 197 (1), 164-170 (2003).</li>
<li>Nadalin, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Volumetric+and+functional+recovery+of+the+liver+after+right+hepatectomy+for+living+donation%5BTitle%5D)+AND+%22Liver+Transpl%22%5BJournal%5D)">Volumetric and functional recovery of the liver after right hepatectomy for living donation.</a> Liver Transpl. 10 (8), 1024-1029 (2004).</li>
<li>Michalopoulos, G. K., DeFrances, M. C. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9082986">Liver regeneration.</a> Science. 276 (5309), 60-66 (1997).</li>
<li>Fulop, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alterations+in+hepatic+lobar+function+in+regenerating+rat+liver%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Alterations in hepatic lobar function in regenerating rat liver.</a> J Surg Res. 197 (2), 307-317 (2015).</li>
<li>Schnitzbauer, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Right+portal+vein+ligation+combined+with+in+situ+splitting+induces+rapid+left+lateral+liver+lobe+hypertrophy+enabling+2-staged+extended+right+hepatic+resection+in+small-for-size+settings%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Right portal vein ligation combined with in situ splitting induces rapid left lateral liver lobe hypertrophy enabling 2-staged extended right hepatic resection in small-for-size settings.</a> Ann Surg. 255 (3), 405-414 (2012).</li>
<li>de Santibanes, E., Clavien, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Playing+Play-Doh+to+prevent+postoperative+liver+failure%3A+the+%26%2334%3BALPPS%26%2334%3B+approach%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Playing Play-Doh to prevent postoperative liver failure: the &#34;ALPPS&#34; approach.</a> Ann Surg. 255 (3), 415-417 (2012).</li>
<li>Schadde, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monosegment+ALPPS+hepatectomy%3A+extending+resectability+by+rapid+hypertrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery%22%5BJournal%5D)">Monosegment ALPPS hepatectomy: extending resectability by rapid hypertrophy.</a> Surgery. 157 (4), 676-689 (2015).</li>
<li>Dokmak, S., Belghiti, J. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22895355">Which limits to the &#34;ALPPS&#34; approach?</a> Ann Surg. 256 (3), e6(2012).</li>
<li>Aloia, T. A., Vauthey, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Associating+liver+partition+and+portal+vein+ligation+for+staged+hepatectomy+%28ALPPS%29%3A+what+is+gained+and+what+is+lost%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Associating liver partition and portal vein ligation for staged hepatectomy (ALPPS): what is gained and what is lost?</a> Ann Surg. 256 (3), e9(2012).</li>
<li>Yao, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+of+a+rat+model+of+portal+vein+ligation+combined+with+in+situ+splitting%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Establishment of a rat model of portal vein ligation combined with in situ splitting.</a> PLoS One. 9 (8), e105511(2014).</li>
<li>Schlegel, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ALPPS%3A+from+human+to+mice+highlighting+accelerated+and+novel+mechanisms+of+liver+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">ALPPS: from human to mice highlighting accelerated and novel mechanisms of liver regeneration.</a> Ann Surg. 260 (5), 839-846 (2014).</li>
<li>Croome, K. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+a+porcine+model+for+associating+liver+partition+and+portal+vein+ligation+for+a+staged+hepatectomy%5BTitle%5D)+AND+%22HPB+%28Oxford%29%22%5BJournal%5D)">Characterization of a porcine model for associating liver partition and portal vein ligation for a staged hepatectomy.</a> HPB (Oxford). 17 (12), 1130-1136 (2015).</li>
<li>Schadde, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypoxia+of+the+growing+liver+accelerates+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery%22%5BJournal%5D)">Hypoxia of the growing liver accelerates regeneration.</a> Surgery. 161 (3), 666-679 (2017).</li>
<li>Moris, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanistic+insights+of+rapid+liver+regeneration+after+associating+liver+partition+and+portal+vein+ligation+for+stage+hepatectomy%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">Mechanistic insights of rapid liver regeneration after associating liver partition and portal vein ligation for stage hepatectomy.</a> World J Gastroenterol. 22 (33), 7613-7624 (2016).</li>
<li>Garcia-Perez, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Associated+Liver+Partition+and+Portal+Vein+Ligation+%28ALPPS%29+vs+Selective+Portal+Vein+Ligation+%28PVL%29+for+Staged+Hepatectomy+in+a+Rat+Model.+Similar+Regenerative+Response%3F%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Associated Liver Partition and Portal Vein Ligation (ALPPS) vs Selective Portal Vein Ligation (PVL) for Staged Hepatectomy in a Rat Model. Similar Regenerative Response?</a> PLoS One. 10 (12), e0144096(2015).</li>
<li>Shi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+preliminary+study+of+ALPPS+procedure+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">A preliminary study of ALPPS procedure in a rat model.</a> Sci Rep. 5, 17567(2015).</li>
<li>Almau Trenard, H. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+an+experimental+model+of+portal+vein+ligation+associated+with+parenchymal+transection+%28ALPPS%29+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Cir+Esp%22%5BJournal%5D)">Development of an experimental model of portal vein ligation associated with parenchymal transection (ALPPS) in rats.</a> Cir Esp. 92 (10), 676-681 (2014).</li>
<li>Dhar, D. K., Mohammad, G. H., Vyas, S., Broering, D. C., Malago, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+rat+model+of+liver+regeneration%3A+possible+role+of+cytokine+induced+neutrophil+chemoattractant-1+in+augmented+liver+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg+Innov+Res%22%5BJournal%5D)">A novel rat model of liver regeneration: possible role of cytokine induced neutrophil chemoattractant-1 in augmented liver regeneration.</a> Ann Surg Innov Res. 9, 11(2015).</li>
<li>Wei, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+of+a+rat+model%3A+Associating+liver+partition+with+portal+vein+ligation+for+staged+hepatectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery%22%5BJournal%5D)">Establishment of a rat model: Associating liver partition with portal vein ligation for staged hepatectomy.</a> Surgery. 159 (5), 1299-1307 (2016).</li>
<li>Tschuor, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salvage+parenchymal+liver+transection+for+patients+with+insufficient+volume+increase+after+portal+vein+occlusion+-+an+extension+of+the+ALPPS+approach%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Surg+Oncol%22%5BJournal%5D)">Salvage parenchymal liver transection for patients with insufficient volume increase after portal vein occlusion - an extension of the ALPPS approach.</a> Eur J Surg Oncol. 39 (11), 1230-1235 (2013).</li>
<li>Schadde, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+survival+and+safety+of+ALPPS%3A+first+report+of+the+International+ALPPS+Registry%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Early survival and safety of ALPPS: first report of the International ALPPS Registry.</a> Ann Surg. 260 (5), 829-836 (2014).</li>
<li>Harnoss, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prolyl+Hydroxylase+Inhibition+Enhances+Liver+Regeneration+Without+Induction+of+Tumor+Growth%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Prolyl Hydroxylase Inhibition Enhances Liver Regeneration Without Induction of Tumor Growth.</a> Ann Surg. , (2016).</li>
<li>Olthof, P. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparable+liver+function+and+volume+increase+after+portal+vein+embolization+in+rabbits+and+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery%22%5BJournal%5D)">Comparable liver function and volume increase after portal vein embolization in rabbits and humans.</a> Surgery. 161 (3), 658-665 (2017).</li>
<li>Olthof, P. B., van Gulik, T. M., Bennink, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimal+use+of+hepatobiliary+scintigraphy+before+liver+resection%5BTitle%5D)+AND+%22HPB+%28Oxford%29%22%5BJournal%5D)">Optimal use of hepatobiliary scintigraphy before liver resection.</a> HPB (Oxford). 18 (10), 870(2016).</li>
<li>Lau, L., Christophi, C., Muralidharan, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraoperative+functional+liver+remnant+assessment+with+indocyanine+green+clearance%3A+another+toehold+for+climbing+the+%26%2334%3BALPPS%26%2334%3B%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Intraoperative functional liver remnant assessment with indocyanine green clearance: another toehold for climbing the &#34;ALPPS&#34;.</a> Ann Surg. 261 (2), e43-e45 (2015).</li>
<li>Cieslak, K. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+Liver+Function+Using+%2899m%29Tc-Mebrofenin+Hepatobiliary+Scintigraphy+in+ALPPS+%28Associating+Liver+Partition+and+Portal+Vein+Ligation+for+Staged+Hepatectomy%29%5BTitle%5D)+AND+%22Case+Rep+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">Assessment of Liver Function Using (99m)Tc-Mebrofenin Hepatobiliary Scintigraphy in ALPPS (Associating Liver Partition and Portal Vein Ligation for Staged Hepatectomy).</a> Case Rep Gastroenterol. 9 (3), 353-360 (2015).</li>
<li>Truant, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drop+of+Total+Liver+Function+in+the+Interstages+of+the+New+Associating+Liver+Partition+and+Portal+Vein+Ligation+for+Staged+Hepatectomy+Technique%3A+Analysis+of+the+%26%2334%3BAuxiliary+Liver%26%2334%3B+by+HIDA+Scintigraphy%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Drop of Total Liver Function in the Interstages of the New Associating Liver Partition and Portal Vein Ligation for Staged Hepatectomy Technique: Analysis of the &#34;Auxiliary Liver&#34; by HIDA Scintigraphy.</a> Ann Surg. 263 (3), e33-e34 (2016).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Protokół ten przedstawia zwierzęcy model ALPPS z jego szybką hipertrofią indukowaną przez PVL+T, która w przybliżeniu podwaja wzrost objętości w ciągu 3 dni w porównaniu z samym PVL. 17 Prawy środkowy płat wątroby jest używany jako model dla rosnącego płata wątroby, ponieważ środkowy płat wątroby jest jedną ciągłą masą miąższową zasilaną przez dwie oddzielne żyły wrotne po jego lewej i prawej stronie, jak pokazano na rysunku 1 w niedawno opublikowanej pracy. <sup clas...

Rozmiar pozostałości wątroby ogranicza resekcyjność guzów wątroby. 1 Ogólnie, gdy pozostawia mniej niż 25% tkanki wątroby, pacjent jest narażony na zwiększone ryzyko zgonu z powodu ostrej niewydolności wątroby z powodu braku funkcji metabolicznej dla całego organizmu ("zespół zbyt mały dla rozmiaru"). 2 Ta niewydolność wątroby po hepatektomii jest najbardziej niszczycielskim powikłaniem po resekcji wątroby. Dlatego klinicyści próbowali wywołać regenerację wątroby przed resekcją wątroby poprzez manipulowanie przepływem żyły wrotnej. 3 Stwierdzono, że po zamknięciu żyły wrotnej, pozostała część z przepływem żyły wrotnej zaczyna rosnąć w wolnym tempie, a tym samym może zwiększyć swój rozmiar nawet o 60%. 4 Podwiązanie chirurgiczne5 lub interwencyjne zamknięcie żyły wrotnej zostało klinicznie potwierdzone. 4 Wzrost objętości i funkcji wątroby jest wiarygodny, ale tempo wzrostu wątroby po zamknięciu wrotu wynosi tylko około jednej piątej w porównaniu do wzrostu resztki wątroby po częściowej hepatektomii. 6
Czas niezbędny do wzrostu wątroby to tygodnie lub miesiące, mimo że wątroba może regenerować się znacznie szybciej po resekcji. W związku z tym wątroba jest jedynym narządem, który wraca do normalnego funkcjonowania po usunięciu jej części. 7 Nowatorska procedura indukująca regenerację wątroby w podobnym tempie jak po częściowej hepaktektomii została opracowana przez grupę chirurgów, którzy odkryli, że dodanie przecięcia między niedrożną i nieokludowaną częścią wątroby indukuje przerost wątroby w tym samym tempie wzrostu, co po resekcji wątroby, ale przed resekcją. 9 Procedura inicjuje szybki przerost 80% w ciągu tygodnia w przyszłej pozostałości wątroby, co pozwala na resekcję rozległych, głównie nieoperacyjnych, guzów wątroby w ciągu tygodnia. Procedura została nazwana "Kojarzenie partycji wątroby i podwiązania żyły wrotnej w przypadku etapowej hepatektomii = ALPPS" i szybko stała się popularna na całym świecie. 10 Wiele raportów potwierdzało rozszerzenie resekcyjności granicznych resekcyjnych guzów wątroby osiągnięte za pomocą nowej techniki,11, podczas gdy skomplikowany zabieg chirurgiczny był również krytykowany za wysoki wskaźnik powikłań. 12,13
Od czasu publikacji ALPPS w 2012 roku podjęto próbę opracowania modeli gryzoni, a także dużych modeli zwierzęcych o powolnej i szybkiej hipertrofii, aby umożliwić lepszą charakterystykę histologiczną i zrozumienie mechanizmów oraz przetestować wpływ leków na różne tempo wzrostu tkanki wątroby u zwierząt. Pierwszym opracowanym modelem zwierzęcym był model szczura. W tym modelu gwałtowny przerost po przecięciu miąższu między prawą a lewą częścią płata środkowego przyspieszał regenerację prawego płata środkowego. 14 Później w myszy wprowadzono inny model. W tym modelu lewy płat boczny został wycięty, a żyła wrotna odgałęziła się do każdego płata wątroby z wyjątkiem lewego płata środkowego. 15 W międzyczasie opisano również duże modele zwierzęce ALPPS u świń. 16
Do badania mechanizmów fizjologicznych, takich jak zmiany przepływu i ciśnienie w żyle wrotnej, perfuzja i natlenienie tkanki wątroby, model szczurzy jest lepszy od modelu ALPPS u myszy. Kolejną przewagą szczura nad modelem mysim jest to, że w modelu szczurzym nie ma konieczności resekcji lewego płata bocznego,15, co może zanieczyścić efekty resekcji wątroby tymi z ALPPS. Natomiast model szczurzy nie zmniejsza masy komórek wątroby. Model świni wykorzystuje prawy tylny płat jako płat rosnący, ale wątroba świni jest silnie zrazikowana. W związku z tym trudno jest stworzyć płaszczyznę przecięcia w i tak już cienkim pomoście tkankowym między prawym tylnym a prawym przednim płatem. Natomiast płat środkowy u szczurów składa się z dwóch części, z których każda jest oddzielnie zasilana przez żyłę wrotną, a płaszczyznę przecięcia miąższu można łatwo utworzyć między nimi za pomocą technik mikrochirurgicznych. Dostępność tomografii komputerowej małych zwierząt (CT) i/lub rezonansu magnetycznego (MRI) pozwala na bardzo dokładne ilościowe określenie wzrostu objętościowego między samym podwiązaniem żyły wrotnej a podwiązaniem żyły wrotnej a dodanym przecięciem, co jest ważne dla walidacji dowolnego modelu szybkiego przerostu wątroby.
Przedstawiony tutaj protokół opisuje technikę chirurgiczną i procedury używane do walidacji wolumetrycznej i fizjologicznej charakterystyki modelu powolnej i szybkiej hipertrofii po podwiązaniu żyły wrotnej i podwiązaniu żyły wrotnej z przecięciem, odpowiednio, u szczurów.

<table><tbody><tr><td>Izofluran, butelki 250 ml</td><td>Attane, Piramal, Bombaj, Indie</td><td>LDNI 22098</td><td>Standardowe wyposażenie weterynaryjne</td></tr><tr><td>Waporyzator izofluoranu Tec-3</td><td>Ohmeda, GE-Healthcare, Chicago, IL</td><td>już niedostępne</td><td>Standardowe wyposażenie weterynaryjne&nbsp;</td></tr><tr><td>Buprenorfina (Temgesic)</td><td>Indivior, Baar, Szwajcaria</td><td>7680419310353</td><td>Numer GTIN</td></tr><tr><td>Witamina A maść</td><td>Bausch& Lomp, Zug, Szwajcaria</td><td>7680223980247</td><td>Numer GTIN</td></tr><tr><td>Siarczan atropiny 0,5 mg/ml</td><td>Sintetica SA, Mendrisio, Szwajcaria</td><td>7680565330045</td><td>Numer GTIN</td></tr><tr><td>Mikroskop mikrochirurgiczny</td><td>Olympus, Tokio, Japonia</td><td>SZX10</td><td>Standardowe wyposażenie weterynaryjne</td></tr><tr><td>Betadine</td><td>Mundipharma, Bazylea, Szwajcaria</td><td>7680342821377</td> Gąbki z <td>numerem GTIN</td></tr><tr><td></td><td>Carl Roth GmbH, Karlsruhe, Niemcy</td><td>NK83.1</td><td>Mini-gąbki</td></tr><tr><td>Zwijacze ścian brzucha</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>Własnoręcznie wykonane ze spinaczy do papieru i końcówek Q-Tip</td></tr><tr><td>3-0 jedwab&nbsp;</td><td>Ethicon, Sommerville, NJ</td> Standardowe nożyczki <td>chirurgiczne</td><td>K872H</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Światowe instrumenty precyzyjne (WPI), Sarasota, FL</td><td>503371</td><td>Standardowe mikrochirurgiczne</td></tr><tr><td>kleszcze Adson</td><td>Światowe instrumenty precyzyjne (WPI), Sarasota, FL</td><td>501244-G</td><td>Standardowe mikrochirurgiczne</td></tr><tr><td>mikrokleszcze z cienkimi końcówkami</td><td>Światowe instrumenty precyzyjne (WPI), Sarasota, FL</td><td>501976</td><td>Końcówki należy regularnie polerować</td></tr><tr><td>Zakrzywione mikrokleszcze z cienkimi końcówkami</td><td>Światowe instrumenty precyzyjne (WPI), Sarasota, FL</td><td>504513</td><td>Niezbędne do obejścia odgałęzień żył wrotnych&nbsp;</td></tr><tr><td>6-0 LOOK pleciony jedwab</td><td>Surgical Specalities Corporation, Wyomissing, PA&nbsp;</td><td>SP114</td><td>Szpula, wstępnie przycięta przed zabiegiem</td></tr><tr><td>2-0 nici jedwabne</td><td>Ethicon, Sommerville, NJ</td><td>K833</td> Standardowe szwy <td>chirurgiczne</td></tr><tr><td>5-0 maxon</td><td>Covidien, Dublin, Irlandia</td><td>6608-21</td><td>Standardowe chirurgiczne</td></tr><tr><td>mikrokleszcze bipolarne</td><td>Sutter, Freiburg, Niemcy</td><td>780148SGS</td><td>Niezbędne do przecięcia miąższu</td></tr><tr><td>Końcówki Q małe</td><td>Carl Roth GmbH, Karlsruhe, Niemcy</td><td>EH11.1</td><td>Standardowe</td></tr><tr><td>chirurgiczne końcówki Q duży</td><td>Carl Roth GmbH, Karlsruhe, Niemcy</td><td>XL54.1</td><td>Standardowa igła chirurgiczna</td></tr><tr><td>G30&nbsp;</td><td>Terumo, Tokio, Japonia</td><td>NN-3013R&nbsp;</td><td>Standardowy sprzęt anestezjologiczny</td></tr><tr><td>Sonda przepływu objętościowego 2 mm&nbsp;</td><td>Transonic Systems, Ithaca, NY</td><td>MA-2PS</td><td>Najmniejsza dostępna sonda do przepływomierza HAT-311</td></tr><tr><td>Przepływomierz transsoniczny</td><td>Transonic Systems, Ithaca, NY</td><td>HAT-311 Transsoniczny przepływomierz QC</td><td>Jeden z&nbsp; przepływomierzy pierwszej generacji do chirurgii</td></tr><tr><td>ExiTron nano 12,000&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotech, Bergisch Gladbach, Niemcy</td><td>130-095-698</td><td>Nanomoloekularny środek kontrastowy, który zmętnia wątrobę i śledzionę</td></tr><tr><td>Cewnik dożylny G26</td><td>Becton Dickinson, Franklin Lakes, NJ</td><td>391349</td><td>Standardowy sprzęt anestezjologiczny</td></tr><tr><td>Quantum FX MicroCT&nbsp;</td><td>Perkin Elmer, Waltham, MA</td><td>N/A</td><td>Standardowy tomograf komputerowy dla małych zwierząt w Instytucie Fizjologii Uniwersytetu Z&uuml; rich</td></tr><tr><td>OsiriX 8.0</td><td>Pixmeo Sarl, Genewa, Szwajcaria N</td><td>/A</td><td>Oprogramowanie domeny publicznej : www.pixmeo.com</td></tr></tbody></table>

szczurzy model skojarzenia partycji wątroby i podwiązania żyły wrotnej do etapowej procedury hepatektomii (alpps)

Rat Model of the Associating Liver Partition and Portal Vein Ligation for Staged Hepatectomy (ALPPS) Procedure

Ostatnie dane kliniczne wspierają agresywne podejście chirurgiczne zarówno do pierwotnych, jak i przerzutowych nowotworów wątroby. W przypadku niektórych wskazań, takich jak przerzuty do wątroby jelita grubego, ilość tkanki wątroby pozostawiona po resekcji wątroby stała się głównym czynnikiem ograniczającym resekcyjność dużych lub mnogich guzów wątroby. Wymagana jest minimalna ilość funkcjonalnej tkanki, aby uniknąć poważnych powikłań niewydolności wątroby po hepatektomii, która ma wysoką zachorowalność i śmiertelność. Indukowanie wzrostu wątroby potencjalnej pozostałości przed resekcją stało się bardziej ugruntowane w chirurgii wątroby, zarówno w postaci embolizacji żyły wrotnej przez radiologów interwencyjnych, jak i w postaci podwiązania żyły wrotnej na kilka tygodni przed resekcją. Ostatnio wykazano, że regeneracja wątroby jest bardziej rozległa i szybsza, gdy do podwiązania żyły wrotnej w pierwszym etapie dodaje się przekrój miąższu, a następnie, już po tygodniu oczekiwania, resekcję wykonywaną w drugim etapie (Associating Liver Partition and Portal vein ligation for Staged hepatektomia = ALPPS). ALPPS szybko stał się popularny na całym świecie, ale był krytykowany za wysoką śmiertelność okołooperacyjną. Mechanizm przyspieszonego i ekstensywnego wzrostu wywołanego tą procedurą nie został dobrze poznany. Opracowano modele zwierzęce w celu zbadania zarówno fizjologicznych, jak i molekularnych mechanizmów przyspieszonej regeneracji wątroby w ALPPS. Protokół ten przedstawia model szczura, który umożliwia mechanistyczną eksplorację przyspieszonej regeneracji.

Dwie różne procedury chirurgiczne: podwiązanie żyły wrotnej (PVL) oraz podwiązanie żyły wrotnej z przecięciem (PVL+T) prowadzą do wyraźnie odmiennej kinetyki wzrostu. PVL indukuje umiarkowany wzrost objętości w ciągu 3 dni, natomiast w przypadku PVL+T można zaobserwować znacznie większy prawy płat środkowy (RML) (Rysunek 5). Można to zweryfikować za pomocą codziennej wolumetrii. Objętość RML w grupie PVL mniej więcej podwaja się w ciągu 3 dni, podczas gdy w g...

Wywołanie szybkiego przerostu wątroby za pomocą Kojarzenia Partycji Wątroby i Podwiązania Żyły Wrotnej dla etapowej hepatektomii (ALPPS) zostało zaproponowane do resekcji granicznych resekcyjnych guzów wątroby. Model ten może wyjaśnić mechanizmy związane z szybką hipertrofią i umożliwia testowanie leków, które promują lub blokują przyspieszenie regeneracji.

Szczurzy model skojarzenia partycji wątroby i podwiązania żyły wrotnej do etapowej procedury hepatektomii (ALPPS)

Recent clinical data support an aggressive surgical approach to both primary and metastatic liver tumors. For some indications, like colorectal liver ...

Ogólnym celem tej interwencji chirurgicznej jest wywołanie szybkiej hipertrofii wątroby szczura poprzez podwiązanie żyły wrotnej i przecięcie miąższu. Model ten umożliwia szczegółową ocenę fizjologiczną i molekularną szybkiej regeneracji wątroby. Wątroba regeneruje się po podwiązaniu żyły wrotnej.Opracowaliśmy metodę przecinania miąższu w połączeniu z podwiązaniem żyły wrotnej w celu przyspieszenia regeneracji. Metoda ta stanowi model przyspieszonej regeneracji wątroby. Jest to technika stosowana w chirurgii ludzi u pacjentów z guzami wątroby o granicznym stopniu resekcyjności.Gdy zwierzę zostanie w pełni znieczulone i przygotowane do operacji, ogolić brzuch wzdłuż linii środkowej od wyrostka mieczykowatego do narządów płciowych, używając maszynki do strzyżenia małych zwierząt. Dokładnie usunąć włosy w obrębie dwóch centymetrów od linii środkowej. Po zdezynfekowaniu skóry wykonać nacięcie przez ścianę brzuszna.Następnie odciągnij obie ściany oraz wyrostek mieczowaty za pomocą szwów utrzymujących z jedwabiu 3-0. Dalej, używając własnoręcznie wykonanych małych drucianych retraktorów, odsunąć żołądek, okrężnicę i jelito cienkie od więzadła wątrobowo-dwunastniczego. W ten sposób uzyska

rat-model-associating-liver-partition-portal-vein-ligation-for-staged

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Ortotopowe przeszczepienie wątroby u szczurów jest niezbędnym modelem eksperymentalnym w badaniach biomedycznych. W niniejszym materiale przedstawiamy procedury chirurgiczne ortotopowego przeszczepienia wątroby szczura z rekonstrukcją tętnicy wątrobowej z wykorzystaniem 50% częściowego graftu.

Procedury chirurgiczne w szczurzym modelu częściowego ortotopowego przeszczepu wątroby z rekonstrukcją tętnicy wątrobowej

Pomocniczy przeszczep wątroby zapewnia tymczasowe wsparcie w ostrej niewydolności wątroby, aż do regeneracji niewydolnej wątroby. Heterotopowy pomocniczy przeszczep wątroby (HALT) z tętnicą żyły wrotnej (PVA) zapewnia wystarczającą czynność wątroby. Opracowaliśmy analogiczną technikę na szczurach, aby zbadać wpływ tętnicy żyły wrotnej na morfologię i funkcję przeszczepu.

Heterotopowe pomocnicze przeszczepienie wątroby szczura z tętnicą żyły wrotnej o regulowanym przepływie w ostrej niewydolności wątroby

Tutaj przedstawiono protokół polegający na ponownym przeszczepieniu wątroby szczurowi. W szczególności 70% wątroby wycięto in vivo przy użyciu zaktualizowanej techniki hepatektomii zorientowanej na naczynia. Tętnicę wątrobową zrekonstruowano w sposób end-to-side. Technika mankietu została zmodyfikowana w celu skrócenia czasu zespolenia żyły podwątrobowej głównej.

Ponownie zarteryalizowany częściowy przeszczep wątroby szczura z 70% hepatektomią in vivo zorientowaną na naczynia

Celem tego badania jest modyfikacja modelu ortotopowego przeszczepu wątroby u szczurów, aby lepiej reprezentowała przeszczep wątroby u człowieka i poprawiła przeżywalność biorców. Przedstawiona metoda przywraca dopływ tętniczy wątrobowej poprzez połączenie wspólnej tętnicy wątrobowej wątroby dawcy z właściwą tętnicą wątrobową biorcy.

Zmniejszone powikłania po ponownym połączeniu tętnic w szczurzym modelu ortotopowego przeszczepu wątroby

Liczne badania wykazały zalety anatomicznej resekcji. Niemniej jednak to, czy resekcja anatomiczna może zwiększyć wskaźniki resekcji R0, pozostaje kontrowersyjne. W związku z tym w niniejszej pracy opisano innowacyjną procedurę wykorzystującą koncepcję en bloc połączoną z anatomiczną resekcją w laparoskopowej hepatektomii, która może zmniejszyć ryzyko nawrotów pooperacyjnych i przerzutów.

Zastosowanie koncepcji en bloc w połączeniu z resekcją anatomiczną w laparoskopowej hepatektomii

Wykazano, że powiązanie podziału wątroby i podwiązania żyły wrotnej w przypadku etapowej hepatektomii (ALPPS) powoduje niezwykłą regenerację wątroby po kilku tygodniach od operacji pierwszego etapu. Modele zwierzęce, które przeszły ALPPS, zostały opracowane w celu zbadania potencjalnej zdolności regeneracji wątroby i osiągnięcia korzystnych wyników klinicznych.

Mysi model skojarzonej partycji wątroby i podwiązania żyły wrotnej do etapowego zabiegu hepatektomii wspomaganego mikroskopią

Opisany tutaj protokół heterotopowego pomocniczego przeszczepu wątroby u szczurów stanowi praktyczne narzędzie badawcze do badania mechanizmów odrzucania alloprzeszczepu wątrobowego. Model ten pomaga złagodzić przeszkody chirurgiczne i stres zwierząt związany z ortotopowym przeszczepem wątroby u szczurów.

Heterotopowy pomocniczy model przeszczepu szczura całej wątroby z wykorzystaniem hepaticoureterostomii do badań odrzucenia przeszczepu allogenicznego

Mysi model częściowej 2/3 (66%) hepatektomii jest dobrze opisany w literaturze, ale rzadko stosowano bardziej rozbudowane hepatektomie naśladujące zespół małego dla rozmiaru po przeszczepie wątroby. Opisujemy rozszerzoną 78% procedurę hepatektomii w modelu mysim, która powoduje około 50% śmiertelności pooperacyjnej u zdrowych myszy.

Rozszerzona 78% hepatektomia w mysim modelu chirurgicznym

Przedstawiamy laparoskopową technikę resekcji anatomicznej S7+S8d z przecięciem prawej żyły wątrobowej, zachowując dolną prawą żyłę wątrobową i segment S6. Opierając się na szczegółowych punktach anatomicznych bez USG wewnątrzoperacyjnego, to podejście oferuje precyzyjną i oszczędzającą parenchymy opcję dla guzów prawej wątroby położonych grzbietowo, szczególnie w miejscach o ograniczonych zaawansowanych zasobach nawigacyjnych.

Laparoskopowa anatomiczna resekcja S7+S8d zachowująca dolną prawą żyłę wątrobową oraz S6 z przecięciem prawej żyły wątrobowej

Mysi model podwiązania i perforacji kątnicy jako wartościowe narzędzie do badania sepsy u ludzi.

Procedura ligacji i punkcji kątnicy

Poznaj model ALPPS u szczurów do badania szybkiej regeneracji wątroby poprzez podwiązanie żyły wrotnej i przecięcie miąższu. Ta metoda umożliwia ocenę fizjologiczną i molekularną oraz testowanie leków.

Szczurzy model skojarzenia partycji wątroby i podwiązania żyły wrotnej do etapowej procedury hepatektomii (ALPPS)

Przeglądaj więcej filmów