18 sierpnia 2017
Przedstawiono protokół kwantyfikacji białek w złożonych płynach biologicznych przy użyciu technologii automatycznego immuno-MALDI (iMALDI).
Ogólnym celem tego zautomatyzowanego testu immuno-MALDI jest ilościowe określenie peptydów i nienaruszonych białek w złożonych płynach biologicznych w dokładny i czuły sposób. Metoda ta może pomóc w znalezieniu odpowiedzi na kluczowe pytania w dziedzinie proteomiki ilościowej, takie jak ilościowe określanie poziomów białka w diagnostyce lub monitorowaniu odpowiedzi pacjenta na leczenie. Kluczową zaletą tej metody jest to, że może ona bardzo czułie i dokładnie określić ilościowo poziomy białka ze złożonych próbek.
Technika ta pozwala na diagnozowanie chorób na wczesnym etapie, ponieważ etap wzbogacania immunologicznego testu pozwala na ilościowe określenie biomarkerów białkowych i peptydowych o niskiej obfitości. Chociaż metoda ta może zapewnić wgląd w aktywność reniny w osoczu, może być również stosowana w innych badaniach związanych z chorobą, takich jak kwantyfikacja białek związanych z rakiem w celu prognozowania, diagnozy i zarządzania leczeniem. Aby rozpocząć tę procedurę, należy rozmrozić próbki ludzkiego osocza w łaźni wodnej o temperaturze pokojowej przez pięć minut.
Następnie umieść próbki na lodzie do całkowitego rozmrożenia. Następnie ręcznie przenieś 200 mikrolitrów każdej próbki osocza do oddzielnych studzienek płytki o głębokości 1,1 mililitra. Wirować płytkę przez 10 minut w temperaturze dwóch stopni Celsjusza i 3 000 obr./min.
Następnie użyj Bravo do seryjnego rozcieńczenia 500 femtomoli na mikrolitr roztworu wzorcowego Ang-1 NAT, aby przygotować sześć roztworów kalibracyjnych z albuminą białka jaja kurzego. Po odwirowaniu odpipetować 200 mikrolitrów każdego kalibratora do studzienki i 125 mikrolitrów buforu generacyjnego do płytki próbki. Korzystając z automatycznego systemu obsługi cieczy, wymieszaj 125 mikrolitrów supernatantu osocza lub 125 mikrolitrów roztworu albuminy białka jaja kurzego z 25 mikrolitrami buforu angiotensyny I generacji na nowej płytce głębokiej o pojemności 1,1 mililitra.
Teraz automatycznie przenieś roztwory na 96-dołkową płytkę z trzema powtórzeniami na roztwór i 34 mikrolitrami roztworu na dołek. Następnie inkubuj płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez trzy godziny. W celu sprzężenia przeciwciała z kulkami białka G należy najpierw przenieść 78 mikrolitrów wcześniej przygotowanej zawiesiny kulek do probówki o pojemności 1,5 mililitra.
Umyj kulki siedem razy jednym mililitrem 25% acetonitrylu w PBSC i trzy razy jednym mililitrem PBSC, używając magnetycznego stojaka do granulowania kulek między każdym praniem. Po umyciu kulek należy je ponownie zawiesić w 110 mikrolitrach PBSC i dodać 110 mikrolitrów przeciwciała anty-angiotensyny I. Wymieszać kulki i roztwór, pipetując.
Następnie inkubuj kulki w temperaturze pokojowej przez godzinę, obracając się z prędkością ośmiu obr./min. Następnie umyj koraliki trzykrotnie jednym mililitrem PBSC. Następnie ponownie zawieś kulki w 1 100 mikrolitrach PBSC.
Teraz ręcznie przenieś roztwór kulki na płytkę 96-dołkową. Następnie poproś Bravo o podpisanie koralików na tę samą 96-dołkową płytkę. Po trzygodzinnym okresie wytwarzania angiotensyny I umieścić płytkę inkubacyjną na lodzie na 10 minut, aby zakończyć wytwarzanie angiotensyny I. Automatycznie rozcieńczyć 100-krotnie roztwór podstawowy peptydu o stabilnych wzorcach izotopowych buforem PBS.
Ponadto automatycznie podwielokrotnić rozcieńczenie standardowego peptydu stabilnego izotopu na 96-dołkową płytkę PCR. Przenieść 10 mikrolitrów rozcieńczonego roztworu peptydu do każdej studzienki płytki inkubacyjnej. Zmieszać rozcieńczony roztwór peptydu z próbkami osocza lub roztworem albuminy białka jaja kurzego.
Automatycznie dodać próbkę lub roztwory wzorcowe do roztworów kulek na płytce inkubacyjnej i wymieszać. Po jednej godzinie inkubacji automatycznie umyj koraliki trzykrotnie pięciomilimolowym roztworem wodorowęglanu amonu. Użyj magnesu, aby pociągnąć koraliki na dół po każdym praniu.
Po ostatnim praniu dodaj 10 mikrolitrów roztworu wodorowęglanu amonu do każdej studzienki, aby ponownie zawiesić kulki. Automatycznie przenieś siedem mikrolitrów zawiesiny perełkowej na płytkę docelową MALDI o wielkości plamki 2 600 mikrometrów. Po wyschnięciu kulek automatycznie dodaj dwa mikrolitry wcześniej przygotowanego roztworu matrycy HCCA z dołka matrycowego na każde miejsce próbki na płytce docelowej.
Następnie przeanalizuj miejsca próbki za pomocą instrumentu MALDI-TOF w trybie dodatniego reflektora. Wykonuj kalibrację wewnętrzną, wygładzanie danych i odejmowanie linii bazowej za pomocą oprogramowania specyficznego dla dostawcy. Zautomatyzowana procedura iMALDI do pomiaru angiotensyny I pozwala na wysokoprzepustową analizę dużej liczby próbek o współczynniku zmienności śróddziennej poniżej 10%Reprezentatywne widma uzyskane przez pomiar angiotensyny I w próbkach osocza ludzkiego przedstawiono tutaj.
Przedstawiono korelację wartości PRA ze 188 próbek pacjentów uzyskanych za pomocą automatycznego testu iMALDI z wartościami PRA uzyskanymi za pomocą klinicznej procedury LC-MS/MS. Obie metody mają współczynnik korelacji wynoszący 0,98, a różnica między nachyleniami może wynikać z zastosowania różnych wzorców wewnętrznych lub różnych przeciwciał. W tym miejscu wyświetlany jest liniowy zakres testu i precyzja testu.
Po opanowaniu tej techniki można ją wykonać w ciągu około pięciu godzin. Próbując wykonać tę procedurę, należy pamiętać o odpowiednim wyregulowaniu główki końcówki i prędkości obsługi cieczy. Po tej procedurze można zastosować dodatkowe metody w celu potwierdzenia pierwotnego aldosteronizmu u pacjentów, w tym doustne ładowanie solą lub testy infuzji soli fizjologicznej.
Zautomatyzowana technika iMALDI umożliwia specyficzne i dokładne, bardzo dokładne ilościowe badania przesiewowe próbek biologicznych, w tym próbek pobranych od pacjentów, pod kątem białek lub peptydów związanych z chorobą. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak wykonać automatyczny test iMALDI do kwantyfikacji białek i peptydów na podstawie spektrometrii mas. Nie zapominaj, że praca z próbkami biologicznymi, takimi jak ludzkie osocze, jest niezwykle niebezpieczna, a podczas wykonywania zabiegu należy zawsze zachować niezbędne środki ostrożności.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Ten artykuł przedstawia protokół ilościowego wyznaczania peptydów i całych białek w złożonych płynach biologicznych z wykorzystaniem zautomatyzowanej technologii immuno-MALDI (iMALDI). Metoda ta ma na celu zapewnienie dokładnych i wrażliwych pomiarów, pomagając w diagnostyce i monitorowaniu leczenia.
Automated immuno-MALDI (iMALDI) addresses the critical challenge of quantifying low-abundance peptide and protein biomarkers in complex biofluids, enabling sensitive detection in the ng/mL to pg/mL range required for clinical applications. By integrating immuno-enrichment with MALDI-TOF mass spectrometry and full automation, the method delivers high-throughput, reproducible quantification with intraday CV below 10%, supporting reliable biomarker measurement for diagnostic and therapeutic monitoring workflows. This capability enhances predictive confidence in target validation and assay development for cardiovascular, endocrine, and oncology indications where low-abundance analytes drive clinical decision-making.
The iMALDI method fits within the discovery continuum from early target validation through assay development to translational screening, providing quantitative protein and peptide measurements that inform lead identification and preclinical progression.