Name: Przeszczep tłuszczu wzbogacony we frakcję naczyniową zrębu w leczeniu objawowego nerwiaka końcowego (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-23T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 58 s
Description: Poznaj przeszczep tłuszczu wzbogacony we frakcję naczyniową zrębu w leczeniu objawowego nerwiaka końcowego. Technika łączy działanie mechaniczne z biologicznym, skutecznie redukując ból i zapobiegając nawrotom.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy nie mają żadnych podziękowań.

Protokół jest zgodny z wytycznymi Komitetu Etyki Badań Naukowych Szpitala Uniwersyteckiego w Zurychu.
1. Diagnozy nerwiaka i selekcja pacjentów
<ol>
	<li>Wykonaj przedoperacyjne blokady nerwów proksymalnie do nerwiaka w celu potwierdzenia diagnozy. Oceń bloki w środkowej jednej trzeciej przedramienia i wyklucz potencjalne wyzwalacze nakładających się obszarów unerwienia SBRN, takich jak boczny przednio-ramienny nerw skórny (LACN), tylny nerw międzykostny (PIN) i grzbietowa gałąź nerwu łokciowego10.</li>
	<li>Operację należy wykonywać tylko u pacjentów ze znacznym zmniejszeniem bólu (co najmniej 5 punktów w Wizualnej Skali Analogowej (VAS) dla bólu)11.</li>
</ol>
2. Przygotowanie chirurgiczne
<ol>
	<li>Na 6 godzin przed zabiegiem należy zabronić pacjentowi przyjmowania jakichkolwiek pokarmów i płynów.</li>
	<li>Ułóż pacjenta na środku sali operacyjnej na uniwersalnym stole operacyjnym w pozycji leżaka plażowego.</li>
	<li>Umieść dotknięte podłokietnik/dłoń na podłokietniku.</li>
	<li>Poproś anestezjologów o wykonanie znieczulenia dotchawiczego (fentanyl 2 μg/kg, rokuronium 0,6 mg/kg, propofol 150 - 250 mg).</li>
	<li>Zdezynfekować skórę jodowidonem w miejscu liposukcji (np. po wewnętrznej stronie uda i/lub w górnej/dolnej części brzucha) oraz w miejscu wycięcia nerwiaka.</li>
	<li>Przykryj pacjenta sterylnymi obłożeniami chirurgicznymi, pozostawiając odsłonięte miejsce liposukcji i pole operacyjne.</li>
</ol>
3. Liposukcja tumescencyjna
<ol>
	<li>Wykonaj kilka małych nacięć (nakłuć) o średnicy około 3 - 5 mm skalpelem z ostrzem #11 w obszarze liposukcji. Naciąć aż do warstwy podskórnej.</li>
	<li>Wstrzyknąć roztwór tumescencyjny zawierający rozcieńczoną lidokainę i epinefrynę (500 ml roztworu mleczanu Ringera, 20 ml 1% lidokainy i 1 mg epinefryny) przez naciekacz o rozmiarze 14 (kaniula naciekająca) do podskórnej warstwy tłuszczu (głębokość 3 mm) w rejonie zbierania tłuszczu.</li>
	<li>Odczekać co najmniej 20 minut, aby roztwór tumescencyjny zaczął działać.</li>
	<li>Podłącz kaniulę zbierającą 3 mm (średnica zewnętrzna 3 mm, długość 26 cm) do strzykawki Toomey o pojemności 60 ml i zacznij zbierać tłuszcz przez nacięcia kłute. 
	UWAGA: Ręka niedominująca stale kontroluje ułożenie i przebieg kaniuli.</li>
	<li>Odciągnąć tłok strzykawki Toomey do oznaczenia 60 ml i umieścić zacisk na komary wzdłuż wycofanego tłoka, aby utrzymać podciśnienie w strzykawce i uniknąć ciągłego wytwarzania podciśnienia przez rękę dominującą.</li>
	<li>Zbierz co najmniej 220 ml tkanki tłuszczowej, umieszczając strzykawki Toomeya w pozycji pionowej w dostarczonym stojaku na strzykawki Toomeya; pozwala to na sedymentację tłuszczu i oddzielenie się od płynu.</li>
	<li>Należy zachować szczególną ostrożność, aby uzyskać dobrej jakości przeszczep tłuszczowy bez znacznej ilości krwi. 
	UWAGA: Zmień obszar liposukcji, gdy zauważysz zwiększoną zawartość krwi.</li>
	<li>Zszyj nacięcia kłute prostymi szwami i w razie potrzeby dociśnij (np. pasem uciskowym).</li>
	<li>Przenieś lipoaspirat do jednorazowego sterylnego jednorazowego zestawu systemu izolacji.</li>
	<li>Trzymaj jedną strzykawkę Toomey z lipoaspiratem w dołączonym stojaku w celu uzyskania frakcji tłuszczowej do późniejszego lipofillingu.</li>
</ol>
4. Przetwarzanie tkanki tłuszczowej
<ol>
	<li>Zamknij zestaw sterylnych materiałów eksploatacyjnych. 
	UWAGA: System izolacyjny (patrz Tabela materiałów) potwierdza kompletność, wykonując test na mokro.</li>
	<li>Postępuj zgodnie z instrukcjami wyświetlanymi na wyświetlaczu. 
	UWAGA: Proces jest w większości kontrolowany przez oprogramowanie i wymaga jedynie ręcznego potwierdzenia dla wymienionych poniżej kroków poprzez naciśnięcie przycisków "dalej" lub "wstecz" na panelu sterowania. Lipoaspirat jest przenoszony do pojemnika do pobierania tkanek. W pojemniku do pobierania tkanek lipoaspirat jest ważony i automatycznie czyszczony roztworem mleczanu Ringera w celu usunięcia resztek krwinek i roztworu zwilżającego.</li>
	<li>W razie potrzeby dodaj więcej tłuszczu. 
	UWAGA: W zależności od masy pobranej tkanki tłuszczowej system izolacji prosi użytkownika o dodanie większej ilości tłuszczu lub oblicza ilość dodatkowego odczynnika enzymatycznego do dodania.</li>
	<li>Dodać wymaganą ilość odczynnika enzymatycznego, gdy pojawi się monit systemu izolacji. 
	UWAGA: Podczas procesu trawienia enzymatycznego dochodzi do oddzielenia lipidów i SVF. W ten sposób tkanka jest w ruchu oscylacyjnym. Po zakończeniu trawienia enzymatycznego SVF jest automatycznie przenoszony do komory wirówki w celu zagęszczenia komórek. W komorze wirówki SVF jest zagęszczany w postaci osadu komórkowego (prędkość wirówki wynosi około 3 000 x g). Na koniec osad komórkowy poddawany jest serii płukań roztworem mleczanu Ringera w celu zmniejszenia pozostałego poziomu enzymów na wyjściu. Po zakończeniu procesu uzyskuje się 5 ml klarownego płynu (SVF).</li>
</ol>
5. Zabieg chirurgiczny
<ol>
	<li>Aby zbliżyć się do nerwiaka, należy wykonać nacięcie skóry nad wcześniej zdiagnozowanym miejscem nerwiaka w dystalnej jednej trzeciej przedramienia.</li>
	<li>Używając lup chirurgicznych lornetkowych (2,5 - 3,5 razy), kontynuuj preparację tkanki podskórnej i zidentyfikuj zajęty nerw proksymalnie do nerwiaka.
	<ol>
		<li>Następnie podążaj za nerwem dystalnie i zidentyfikuj nerwiaka (na podstawie oględzin).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Gdy pełne rozszerzenie nerwiaka jest czyste, zacznij wycinać nerwiaka za pomocą prostego cięcia nożycami przeznerwowymi. Jeśli nie zostanie zidentyfikowany nerwiak, przeprowadza się tylko neurolizę nerwu.</li>
	<li>Kontynuuj neurolizę pozostałego kikuta nerwowego do 3 cm proksymalnie nadgarstka. 
	UWAGA: Koniec kikuta nerwowego powinien znajdować się pośrodku głównego nacięcia.</li>
	<li>Wykonaj dwa do czterech małych nacięć (kłutych) (o średnicy 1 mm) skalpelem przez naskórek i skórę wokół głównego podejścia.</li>
	<li>Umieść dwie lub cztery kaniule (rozmiar 16, długość 9 cm) przez nacięcia kłute okołonerwowo do kikuta. 
	UWAGA: Końcówka kaniul powinna być skierowana w stronę kikuta nerwowego.</li>
	<li>Zabezpiecz kaniule na miejscu za pomocą opatrunku samoprzylepnego.</li>
	<li>Umieść szwy wokół kaniul i pozostaw materiał szwu na miejscu bez zabezpieczania węzła.</li>
	<li>Zszyj ciasno główne nacięcie, aby zapobiec odpływowi przeszczepu. 
	UWAGA: Upewnij się, że kaniule pozostają na miejscu.</li>
</ol>
6. Zastosowanie przeszczepu tłuszczu wzbogaconego o SVF
UWAGA: Po około 1,5 h przetwarzania, 5 ml przetworzonego SVF jest gotowe do dalszego użycia.
<ol>
	<li>Odessać 5 ml SVF do 10-mililitrowej strzykawki komunikacyjnej.</li>
	<li>W ten sam sposób odessać 2 ml osadzonej frakcji lipidowej w przeciwległej strzykawce o pojemności 10 ml.</li>
	<li>Zmieszać 5 ml SVF z 2 ml osadzonej frakcji lipidowej, naprzemiennie odciągając tłok jednej strzykawki i pociągając w dół tłok komunikującej się strzykawki, aż do uzyskania wystarczającego wymieszania.</li>
	<li>Przeszczep tłuszczu wzbogacony w SVF podzielić równo na dwie do czterech strzykawek o pojemności 10 ml.</li>
	<li>Rozprowadź przygotowany przeszczep tłuszczu wzbogacony w SVF jeden po drugim równomiernie wokół kikuta nerwu, łącząc strzykawki z kaniulami. 
	UWAGA: Przed zastosowaniem przeszczepu upewnij się, że kaniule są zamocowane we właściwej pozycji i uważaj, aby nie przemieścić kaniul podczas nakładania przeszczepu tłuszczu.</li>
	<li>Ostrożnie wyjmij kaniule.</li>
	<li>Następnie zaklej małe nacięcia taśmą za pomocą pasków steri.</li>
	<li>Unieruchomić rękę poprzez założenie szyny w pozycji wewnętrznej plus (stawy śródręczno-paliczkowe (MCP) zgięte pod kątem 60 - 70°, stawy międzypaliczkowe (IP) całkowicie wyprostowane, kciuk w wysunięciu pięści, nadgarstek w zgięciu grzbietowym 25°). Jeśli wykonywana jest tylko neuroliza nerwu, nie jest potrzebna szyna, a ramię i nadgarstek są bandażowane przez 10 dni.</li>
</ol>
7. Pooperacyjne postępowanie z pacjentem
<ol>
	<li>Po operacji należy przenieść pacjenta na oddział rekonwalescencji po znieczuleniu i zapewnić wystarczające monitorowanie na oddziale.</li>
	<li>Kontynuuj unieruchamianie nadgarstka przez 10 dni po zabiegu.</li>
	<li>Pierwszą zmianę opatrunków należy wykonać po 48 godzinach od zabiegu i kontynuować w regularnych odstępach czasu (tj. co drugi dzień, aż do wypisu).</li>
	<li>Zdejmij szwy 12 - 14 dni po operacji.</li>
	<li>Przeprowadź kliniczną ocenę bólu podczas obserwacji po 2, 6, 12 i 36 miesiącach.</li>
</ol>

<ol><li>Mackinnon, S. E., Dellon, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Results+of+treatment+of+recurrent+dorsoradial+wrist+neuromas%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Results of treatment of recurrent dorsoradial wrist neuromas.</a> Ann Plast Surg. 19 (1), 54-61 (1987).</li>
<li>Hazari, A., Elliot, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+of+end-neuromas%2C+neuromas-in-continuity+and+scarred+nerves+of+the+digits+by+proximal+relocation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Hand+Surg+Br%22%5BJournal%5D)">Treatment of end-neuromas, neuromas-in-continuity and scarred nerves of the digits by proximal relocation.</a> J Hand Surg Br. 29 (4), 338-350 (2004).</li>
<li>Goldstein, S. A., Sturim, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraosseous+nerve+transposition+for+treatment+of+painful+neuromas%5BTitle%5D)+AND+%22J+Hand+Surg+Am%22%5BJournal%5D)">Intraosseous nerve transposition for treatment of painful neuromas.</a> J Hand Surg Am. 10 (2), 270-274 (1985).</li>
<li>Koch, H., Haas, F., Hubmer, M., Rappl, T., Scharnagl, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+of+painful+neuroma+by+resection+and+nerve+stump+transplantation+into+a+vein%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Plast+Surg%22%5BJournal%5D)">Treatment of painful neuroma by resection and nerve stump transplantation into a vein.</a> Ann Plast Surg. 51 (1), 45-50 (2003).</li>
<li>Vaienti, L., Merle, M., Battiston, B., Villani, F., Gazzola, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perineural+fat+grafting+in+the+treatment+of+painful+end-neuromas+of+the+upper+limb%3A+a+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22J+Hand+Surg+Eur%22%5BJournal%5D)">Perineural fat grafting in the treatment of painful end-neuromas of the upper limb: a pilot study.</a> J Hand Surg Eur. 38 (1), 36-42 (2013).</li>
<li>Zuk, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multilineage+cells+from+human+adipose+tissue%3A+implications+for+cell-based+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies.</a> Tissue Eng. 7 (2), 211-228 (2001).</li>
<li>Fraser, J. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Celution+System%3A+Automated+Processing+of+Adipose-Derived+Regenerative+Cells+in+a+Functionally+Closed+System%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Wound+Care+%28New+Rochelle%29%22%5BJournal%5D)">The Celution System: Automated Processing of Adipose-Derived Regenerative Cells in a Functionally Closed System.</a> Adv Wound Care (New Rochelle). 3 (1), 38-45 (2014).</li>
<li>Guo, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stromal+vascular+fraction%3A+A+regenerative+reality%3F+Part+2%3A+Mechanisms+of+regenerative+action%5BTitle%5D)+AND+%22J+Plast+Reconstr+Aesthet+Surg%22%5BJournal%5D)">Stromal vascular fraction: A regenerative reality? Part 2: Mechanisms of regenerative action.</a> J Plast Reconstr Aesthet Surg. 69 (2), 180-188 (2015).</li>
<li>Lutz, B. S., Ma, S. F., Chuang, D. C., Chan, K. H., Wei, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interposition+of+a+pedicle+fat+flap+significantly+improves+specificity+of+reinnervation+and+motor+recovery+after+repair+of+transected+nerves+in+adjacency+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Interposition of a pedicle fat flap significantly improves specificity of reinnervation and motor recovery after repair of transected nerves in adjacency in rats.</a> Plast Reconstr Surg. 107 (1), 116-123 (2001).</li>
<li>Calcagni, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+novel+treatment+of+SVF-enriched+fat+grafting+for+painful+end-neuromas+of+superficial+radial+nerve%5BTitle%5D)+AND+%22Microsurgery%22%5BJournal%5D)">The novel treatment of SVF-enriched fat grafting for painful end-neuromas of superficial radial nerve.</a> Microsurgery. , (2016).</li>
<li>Hawker, G. A., Mian, S., Kendzerska, T., French, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measures+of+adult+pain%3A+Visual+Analog+Scale+for+Pain+%28VAS+Pain%29%2C+Numeric+Rating+Scale+for+Pain+%28NRS+Pain%29%2C+McGill+Pain+Questionnaire+%28MPQ%29%2C+Short-Form+McGill+Pain+Questionnaire+%28SF-MPQ%29%2C+Chronic+Pain+Grade+Scale+%28CPGS%29%2C+Short+Form-36+Bodily+Pain+Scale+%28SF-36+BPS%29%2C+and+Measure+of+Intermittent+and+Constant+Osteoarthritis+Pain+%28ICOAP%29%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+Care+Res+%28Hoboken%29.+63+Suppl%22%5BJournal%5D)">Measures of adult pain: Visual Analog Scale for Pain (VAS Pain), Numeric Rating Scale for Pain (NRS Pain), McGill Pain Questionnaire (MPQ), Short-Form McGill Pain Questionnaire (SF-MPQ), Chronic Pain Grade Scale (CPGS), Short Form-36 Bodily Pain Scale (SF-36 BPS), and Measure of Intermittent and Constant Osteoarthritis Pain (ICOAP).</a> Arthritis Care Res (Hoboken). 63 Suppl. 63, Suppl 11. S240-S252 (2011).</li>
<li>Stokvis, A., van der Avoort, D. J., van Neck, J. W., Hovius, S. E., Coert, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+management+of+neuroma+pain%3A+a+prospective+follow-up+study%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Surgical management of neuroma pain: a prospective follow-up study.</a> Pain. 151 (3), 862-869 (2010).</li>
<li>Kolle, S. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enrichment+of+autologous+fat+grafts+with+ex-vivo+expanded+adipose+tissue-derived+stem+cells+for+graft+survival%3A+a+randomised+placebo-controlled+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Enrichment of autologous fat grafts with ex-vivo expanded adipose tissue-derived stem cells for graft survival: a randomised placebo-controlled trial.</a> Lancet. 382 (9898), 1113-1120 (2013).</li>
<li>Zhu, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipocyte+regeneration+after+free+fat+transplantation%3A+promotion+by+stromal+vascular+fraction+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Adipocyte regeneration after free fat transplantation: promotion by stromal vascular fraction cells.</a> Cell Transplant. 24 (1), 49-62 (2015).</li>
<li>Eto, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+human+adipose+tissue-resident+hematopoietic+cell+populations+reveals+a+novel+macrophage+subpopulation+with+CD34+expression+and+mesenchymal+multipotency%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Characterization of human adipose tissue-resident hematopoietic cell populations reveals a novel macrophage subpopulation with CD34 expression and mesenchymal multipotency.</a> Stem Cells Dev. 22 (6), 985-997 (2013).</li>
<li>Premaratne, G. U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stromal+vascular+fraction+transplantation+as+an+alternative+therapy+for+ischemic+heart+failure%3A+anti-inflammatory+role%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Stromal vascular fraction transplantation as an alternative therapy for ischemic heart failure: anti-inflammatory role.</a> J Cardiothorac Surg. 6, 43(2011).</li>
<li>Paik, K. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studies+in+Fat+Grafting%3A+Part+V.+Cell-Assisted+Lipotransfer+to+Enhance+Fat+Graft+Retention+Is+Dose+Dependent%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Studies in Fat Grafting: Part V. Cell-Assisted Lipotransfer to Enhance Fat Graft Retention Is Dose Dependent.</a> Plast Reconstr Surg. 136 (1), 67-75 (2015).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Celem niniejszego badania jest metodyczne zilustrowanie technicznych aspektów przeszczepu tłuszczu wzbogaconego SVF jako nowatorskiego leczenia objawowego nerwiaka końcowego.
Nerwiaki SBRN są związane ze wskaźnikiem powodzenia operacji wynoszącym tylko 33%12. Vaienti i wsp. przedstawili serię korzystnych wyników we wczesnej obserwacji przy użyciu okołonerwowego przeszczepu tłuszczu (PFG) bez dodawania SVF u 8 pacjentów z bolesnym nerwiakiem koń...

Leczenie objawowego nerwiaka końcowego SBRN pozostaje wyzwaniem z powodu mnogości istniejących metod leczenia chirurgicznego. Zasadniczo nerwiak jest wycinany, a pozostały kikut nerwowy jest przenoszony do sąsiednich struktur, takich jak mięśnie1,2, bone3, lub veins4. Zakłada się, że zapobiega to wyrastaniu regenerujących się pęczków nerwowych poprzez naśladowanie atmosfery narządu końcowego. Jednak żadna z tych technik nie okazała się lepsza, ponieważ często obserwowano wysokie wskaźniki nawrotów bólu i niewystarczającą redukcję bólu.
Niedawno, przeszczep tłuszczu wokół pozostałego kikuta nerwowego przyniósł obiecujące wyniki i był promowany jako nowa opcja leczenia bolesnego nerwiaka końcowego kończyny górnej5. Oprócz działania jako mechaniczna bariera zapobiegająca ciągłemu ruchowi i bólowi stukania, korzystny aspekt przeszczepu tłuszczu przypisuje się raczej poziomowi komórkowemu. Ludzka tkanka tłuszczowa zawiera wiele typów komórek, w tym preadipocyty, komórki tuczne, perycyty, komórki śródbłonka, komórki mięśni gładkich naczyń krwionośnych, fibroblasty i komórki macierzyste pochodzące z tkanki tłuszczowej (ADSC) wraz z hematopoetycznymi komórkami macierzystymi6. Ta niejednorodna populacja komórek jest określana jako komórki regeneracyjne pochodzące z tkanki tłuszczowej (ADRC) lub SVF i może być uzyskana z lipoaspiratu za pomocą systemu izolacji (patrz Tabela materiałów) i zastosowanego odczynnika enzymatycznego (patrz Tabela materiałów)7. Dokładny mechanizm działania wciąż nie jest w pełni zrozumiały; jednak SVF wiąże się z poprawą angiogenezy, immunomodulacji, różnicowania i wydzielania macierzy zewnątrzkomórkowej8.
Skoncentrowana populacja komórek SVF jest dodawana do przeszczepu tłuszczu w celu zmniejszenia szybkości resorpcji i zwiększenia potencjału regeneracyjnego przeszczepu tłuszczu, ponieważ ostatnie badania wykazały nawrót bólu po 12 miesiącach przeszczepu tłuszczu bez dodatku SVF5. Co więcej, działanie biologiczne zapewnia również korzystny wpływ na sam nerw poprzez zmniejszenie zdezorganizowanego kiełkowania aksonów kikuta9 i późniejszych przylegań blizn, które mogą prowadzić do uwięzienia nerwów.
Niedawno opublikowano pierwsze badanie kliniczne opisujące przeszczep tłuszczu wzbogacony SVF jako nowatorską opcję chirurgiczną w leczeniu objawowego nerwiaka końcowego SBRN10. Ogólnie rzecz biorąc, technika ta może być stosowana do każdego nerwiaka występującego po przypadkowym lub jatrogennym uszkodzeniu nerwu. Celem niniejszego kolejnego badania jest metodyczne zilustrowanie technicznych aspektów tej procedury.

<table><tbody><tr><td>System Cytori Celution</td><td>System izolacji</td><td>Cytori</td><td></td></tr><tr><td>Celase</td><td>Odczynnik Cytori</td><td></td><td>enyzme</td></tr><tr><td>system</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>liposukcji roztwór tumescencyjny (500 ml mleczanowego Ringera, 20 ml 1% lidokainy i 1 mg epinefryny)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Naciekacz</td><td></td><td></td><td></td>naciekający o rozmiarze 14</tr><tr><td>mm Kaniula zbierająca 3 mm (15, 26, 32 cm)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>60 mL strzykawki</td><td></td><td></td><td></td>Tommey</tr><tr><td>zacisk</td><td></td><td></td><td></td>na komary</tr><tr>Stojak <td></td><td></td><td></td>na<td>strzykawkę Toomey</td></tr><tr><td>4 kaniule (kaniule do wstrzykiwania tłuszczu 1,5 mm, strzykawka nr 2, 90 mm)</td><td>Chalybs</td><td></td><td></td></tr><tr><td>10 mL strzykawki</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>urządzenie łączące do strzykawek</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr>Skalpel <td></td><td></td><td></td><td>z ostrzem #11 i #15</td></tr><tr><td>Stevens nożyczki</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>, szpilki, pincette</td><td></td><td></td><td></td></tr>, <tr>bipolarny <td></td><td></td><td></td>materiał<td>do szwów</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr> elektrokauguryjnych, <tr><td>opatrunek</td><td></td><td></td><td></td>samoprzylepny</tr><tr><td>, lorpy lornetkowe, okulary powiększające (2,5-3,5x)</td><td>Carl Pakiet statystyczny Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>dla nauk społecznych, wersja 22</td><td>IBM</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

przeszczep tłuszczu wzbogacony we frakcję naczyniową zrębu w leczeniu objawowego nerwiaka końcowego

Stromal Vascular Fraction-enriched Fat Grafting for the Treatment of Symptomatic End-neuromata

Celem tego badania było metodyczne zilustrowanie i podkreślenie kluczowych etapów przeszczepu tłuszczu wzbogaconego frakcją naczyniową zrębu (SVF) jako nowatorskiego leczenia objawowego nerwiaka końcowego obwodowych nerwów czuciowych, a w tym badaniu, szczególnie powierzchownej gałęzi nerwu promieniowego (SBRN). Pomimo mnogości dotychczasowych metod leczenia, uporczywy ból pooperacyjny i częste nawroty bólu są nadal bardzo częste, niezależnie od ocenianego zabiegu. Nerwiak jest wycinany mikrochirurgicznie zgodnie ze standardowym protokołem. Zamiast przemieszczenia regenerującego się kikuta nerwowego w sąsiednich strukturach anatomicznych, takich jak mięśnie lub kości, przeszczep tłuszczu jest stosowany okołoogniskowo i działa jak bariera mechaniczna. W celu zmniejszenia szybkości resorpcji tłuszczu i zwiększenia potencjału regeneracyjnego przeszczepu, wysoce skoncentrowany SVF jest integrowany ze szczepieniem. SVF jest izolowany z podskórnej tkanki tłuszczowej poprzez enzymatyczne i mechaniczne oddzielenie lipoaspiratu za pomocą specjalnego komercyjnego systemu izolacji. Przeszczep tłuszczu wzbogacony w SVF zapewnia zarówno barierę mechaniczną, jak i różne efekty biologiczne na poziomie komórkowym, w tym poprawę angiogenezy, stanu zapalnego i zwłóknienia. Zarówno efekty mechaniczne, jak i biologiczne pomagają zmniejszyć zdezorganizowany rozrost aksonalny kikuta nerwowego podczas regeneracji nerwów, a tym samym zapobiegają nawrotom bolesnych nerwiaków końcowych.

Dane analizowano przy użyciu oprogramowania statystycznego i przedstawiono jako średnie ± odchylenia standardowe. Zastosowano test Kołmogorowa-Smirnowa w celu weryfikacji nieparametrycznego rozkładu badanej populacji, co potwierdziło negatywny rozkład empiryczny. Ze względu na nieparametryczny charakter badanej populacji, do porównania wyników przed i po operacji wykorzystano test Wilcoxona dla prób zależnych. Istotność statystyczną przyjmując dla wartości p mniejszych niż 0,05<su...

Celem badania jest zilustrowanie technicznej procedury przeszczepu tłuszczu wzbogaconego frakcją naczyniową zrębu (SVF) jako nowatorskiego leczenia objawowego nerwiaka końcowego. Technika ta zapewnia korzyści zarówno w zakresie bariery mechanicznej, jak i działania biologicznego na poziomie komórkowym przez przetworzony i skoncentrowany SVF.

Przeszczep tłuszczu wzbogacony we frakcję naczyniową zrębu w leczeniu objawowego nerwiaka końcowego

The purpose of this study was to methodically illustrate and highlight the crucial steps of stromal vascular fraction (SVF)-enriched fat grafting as a ...

Ogólnym celem tej interwencji chirurgicznej jest zmniejszenie bólu wywołanego przez neuromy końcowe poprzez wycięcie neuromy oraz przeszczepienie tłuszczu wokół pozostałego kikutu nerwu. Przeszczep tłuszczowy wzbogacony o SVF może zapobiegać nawrotom bólu w neuromach obwodowych. Do efektu tego mogą przyczyniać się zarówno cechy mechaniczne, jak i biologiczne przeszczepu.W szczególności można leczyć bolesne neuromy powierzchownej gałęzi nerwu promieniowego, jednak technikę tę można rozszerzyć na dowolny neuroma w całym organizmie. Metoda ta może również dostarczyć wiedzy na temat biologicznych efektów frakcji naczyniowo-stromalnej. Ponadto może ona znaleźć zastosowanie w leczeniu twardziny, choroby zwyrodnieniowej stawów oraz oparzeń termicznych.Protokół tekstowy omawia diagnostykę oraz przygotowania chirurgiczne. W tym miejscu przechodzimy do zabiegu wykonanego u pacjenta. Aby rozpocząć, należy wykonać kilka małych nacięć punktowych w obszarze liposukcji, używając skalpela nr 11.Każde nacięcie powinno mieć średnicę około trzech do pięciu milimetrów i być prowadzone do warstwy podskórnej. Następnie, za pomocą kaniuli infiltracyjnej o rozmiarze 14 G, wstrzyknij roztwór tumescentny zawierający rozcieńczoną lidokainę i epinefrynę na głębokość trzech milimetrów do tkanki tłuszczowej podskórnej w miejscu, z którego tłuszcz zostanie usunięty. Odczekaj około 20 minut, aż roztwór tumescentny zacznie działać, przed przejściem do kolejnego etapu.Aby pobrać tkankę tłuszczową, należy przymocować trzymilimetrową kaniulę do pobierania do strzykawki Toomey o pojemności 60 ml. Kaniulą należy operować ręką dominującą, kontrolując jej ułożenie i kierunek prowadzenia ręką niedominującą. W celu przygotowania strzykawki należy odciągnąć tłok do oznaczenia 60 ml i zabezpieczyć go za pomocą kleszczyków typu mosquito, aby utrzymać wewnątrz podciśnienie.Następnie pobierz co najmniej 220 mililitrów tkanki tłuszczowej. W razie potrzeby użyj dodatkowych strzykawek i pobieraj materiał z różnych miejsc, aby uniknąć pobrania krwi. Przechowuj strzykawki wypełnione tkanką w pozycji pionowej w specjalnym stojaku, aby umożliwić oddzielenie tłuszczu od płynu.Po pobraniu odpowiedniej ilości lipoaspiratu, zaszyj nacięcia wejściowe prostymi szwami i w razie potrzeby wywrzyj ucisk. Następnie odstaw jedną strzykawkę lipoaspiratu, a pozostałą jego część przelej do jednorazowego pojemnika systemu izolacyjnego. Aby obsłużyć system izolacyjny, postępuj zgodnie z instrukcjami wyświetlanymi na ekranie.Proces jest w większości sterowany programowo i wymaga jedynie potwierdzenia przez użytkownika w komunikatach wyświetlanych na ekranie. System przetwórczy przenosi lipoaspirat do pojemnika zbiorczego, waży próbkę, a następnie automatycznie płucze ją roztworem mleczanu Ringera w celu usunięcia pozostałych komórek krwi oraz roztworu zwilżającego. Na żądanie można dodać więcej tłuszczu, a następnie dodać wymaganą objętość odczynnika enzymatycznego do trawienia.Po trawieniu lipidy i SVF zostaną rozdzielone. Następnie SVF jest automatycznie oddzielana w drodze wirowania i płukana roztworem mleczanu Ringera w celu zmniejszenia poziomu resztkowego enzymu. Po 90 minutach, po zakończeniu procesu, otrzymuje się pięć mililitrów klarownego płynu SVF.Aby dostać się do neuromy, wykonaj nacięcie skóry nad zdiagnozowanym miejscem, które w tym przypadku znajduje się trzy centymetry dystalnie od nadgarstka. W celu zidentyfikowania zajętego nerwu proksymalnie względem neuromy, użyj chirurgicznych lup binokularnych i rozsecz tkankę podskórną. Po odsłonięciu pełnego zakresu neuromy, wykonaj proste cięcie nożyczkami transneuralnymi, aby wyciąć neuromę.Prawidłowa identyfikacja neuromy jest kluczowa. Prowadź preparację do momentu, aż nerw stanie się widoczny, a aby zlokalizować neuromę, podążaj wzdłuż nerwu w kierunku dystalnym, aż do znalezienia formacji neuromy. Następnie wykonaj neurolizę pozostałego kikuta nerwu, aż koniec kikuta nerwu znajdzie się w środku głównego cięcia.W tym przypadku, ze względu na brak neuromy, wykonano jedynie neurolizę. Następnie, poprzez skórę naskórkową i skórę właściwą wokół głównego dostępu, wykonuje się skalpelem od dwóch do czterech małych, jednofilimetrowych nacięć punkcyjnych. Następnie przez nacięcia wprowadza się cztery tępokoniczne kaniule w obszarze paraneuralnym względem kikutu nerwu, kierując końcówki kaniul w stronę kikutu.Aby upewnić się, że kaniule pozostają w miejscu, należy zabezpieczyć je opatrunkiem przylepnym. Należy zachować szczególną ostrożność, aby skierować kaniule precyzyjnie na kikut nerwu i unieruchomić je, co zagwarantuje całkowite pokrycie kikuta nerwu przeszczepem tłuszczowym wzbogaconym o frakcję naczyniowo-zrębową. Następnie należy ciasno zaszyć główne nacięcie, aby roztwór przeszczepu, który ma zostać dostarczony do tkanki za pomocą kaniul, pozostał w miejscu.Następnie odessij pięć mililitrów przetworzonej SVF do jednej części dziesięciomililitrowej strzykawki łączonej. Potem przenieś dwa mililitry osadzonej frakcji lipidowej z odstawionej strzykawki Toomey'ego do przeciwległej części strzykawki łączonej. Teraz, używając tłoków, wymieszaj SVF i lipidy, aż osadzona frakcja lipidowa zostanie równomiernie rozprowadzona w SVF.Następnie podziel siedem mililitrów przeszczepu tłuszczowego wzbogaconego w SVF równo pomiędzy dwie do czterech strzykawek o pojemności 10 mililitrów. Następnie ostrożnie przymocuj te dwie do czterech strzykawek do kaniul i rozprowadź mieszaninę przeszczepu wokół kikutu nerwu za pomocą kaniul tępych. Po podaniu przeszczepu ostrożnie usuń kaniule.Następnie niewielkie nacięcia punktowe zakleja się plastrami Steri-Strips. Na koniec ramię i nadgarstek zostają opatrunkowane na 10 dni. Opisaną procedurę zastosowano w obrębie gałęzi powierzchownej nerwu promieniowego u pięciu pacjentów.Ich średni wiek wynosił 50 lat. Ze względu na niewielką wielkość próby, zmierzone redukcje bólu nie były istotne statystycznie, jednak odnotowano zmniejszenie nasilenia wszystkich rodzajów bólu w drugim oraz w 36. miesiącu po operacji, przy braku zgłoszeń dotyczących nawrotu bólu. Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo posiadać dobrą wiedzę na temat nowatorskiej techniki przeszczepu tłuszczu wzbogaconego o SVF w leczeniu bolesnych neuromów.Po opanowaniu techniki, przy jej prawidłowym wykonaniu, procedura ta może zająć dwie godziny. Podczas przeprowadzania tego zabiegu należy pamiętać, że neurolyza i/lub usunięcie neuroma muszą zostać przeprowadzone dokładnie, aby zagwarantować maksymalny efekt przeszczepu tłuszczowego wzbogaconego o SVF. W przyszłości konieczne będą randomizowane badania na większej populacji w celu wykazania statystycznie istotnej redukcji bólu.Biorąc pod uwagę wczesne pozytywne wyniki, technikę tę zastosowano w leczeniu innych obszarów ciała dotkniętych bolesnymi neuropnomami.

stromal-vascular-fraction-enriched-fat-grafting-for-treatment

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Źródło: Zimmermann, S., et.al. Przeszczep tłuszczu wzbogacony we frakcję naczyniową zrębu w leczeniu objawowego nerwiaka końcowego. J. Vis. Exp. (2017)Ten film przedstawia procedurę chirurgiczną neurolizy i przeszczepu tłuszczu wzbogaconego we frakcję naczyniową zrębu (SVF) w leczeniu objawowego nerwiaka. Neuroliza usuwa tkankę adhezyjną w celu przywrócenia poślizgu nerwów, podczas gdy przeszczep tłuszczu wzbogacony SVF jest stosowany wokół nerwu, aby stworzyć barierę ochronną, wspomóc gojenie...

Przeszczep tłuszczu wzbogacony we frakcję naczyniową zrębu w leczeniu objawowych nerwiaków

Przeszczep tłuszczu jest podstawową techniką rekonstrukcji deficytów tkanek miękkich. Pozostaje jednak nieprzewidywalną procedurą charakteryzującą się zmienną przeżywalnością przeszczepu.  Naszym celem było opracowanie modelu mysiego, który wykorzystuje nowatorską metodę obrazowania do porównania zachowania objętości między różnymi technikami przygotowania i dostarczania przeszczepu tłuszczu.

Ocena żywotności wstrzyknięcia ludzkiego tłuszczu nagim myszom za pomocą mikrotomografii komputerowej

Przedstawiamy protokół izolowania fragmentów mikronaczyniowych pochodzących z tkanki tłuszczowej, które reprezentują obiecujące jednostki unaczynienia. Można je szybko wyizolować, nie wymagają przetwarzania in vitro, a tym samym mogą być stosowane do jednoetapowej prewaskularyzacji w różnych dziedzinach inżynierii tkankowej.

Izolacja fragmentów mikronaczyniowych pochodzących z mysiej tkanki tłuszczowej jako jednostek unaczynienia dla inżynierii tkankowej

Ta praca demonstruje nowatorskie podejście do oceny proliferacji, różnicowania i potencjału tworzenia naczyń krwionośnych komórek macierzystych śródbłonka (VESCs) poprzez przeszczep poduszeczki tłuszczowej sutka, a następnie przygotowanie całej tkanki do obserwacji mikroskopowej. Przedstawiono również strategię śledzenia linii w celu zbadania zachowania VESC in vivo.

Nowatorska technika przeszczepu poduszeczki tłuszczowej sutka w celu wizualizacji wytwarzania naczyń krwionośnych śródbłonka

Tutaj prezentujemy protokół uzyskiwania frakcji naczyniowej zrębu z tkanki tłuszczowej poprzez szereg procesów mechanicznych, które obejmują emulgację i wielokrotne wirowanie.

Mikronizacja mechaniczna lipoaspiratów w terapii regeneracyjnej

Przedstawiamy szczegółowy protokół generowania mysiego modelu ksenoprzeszczepu malformacji żylnej. Model ten opiera się na podskórnym wstrzyknięciu komórek śródbłonka pochodzących od pacjenta zawierających hiperaktywujące mutacje genu TIE2 i/lub PIK3CA. Zmiany ksenoprzeszczepowe ściśle odwzorowują cechy histopatologiczne tkanki pacjenta z VM.

Model ksenoprzeszczepu pobrany od pacjenta w przypadku malformacji żylnej

Mechanicznie izolowana frakcja naczyniowa zrębu (SVF) w połączeniu z hydrożelem fibrynowym oferuje łatwy i skuteczny nośnik dla żywotnych komórek zrębowych pochodzących z tkanki tłuszczowej dla różnych wskazań, w tym inżynierii tkankowej i/lub gojenia się ran. W tym miejscu przedstawiamy przygotowanie mechanicznego konstruktu hydrożelowego SVF (mSVF)-fibryna do badań translacyjnych i zastosowań klinicznych.

Połączenie mechanicznie izolowanej frakcji zrębu naczyniowego i hydrożelu fibrynowego: protokół przetwarzania

Ten protokół przedstawia instrukcję krok po kroku, jak pobrać powierzchowny płat powięzi tętnicy nadbrzusza dolnej (SIEF) i owinąć go wokół zrekonstruowanego ubytku nerwu strzałkowego u królików. To chirurgiczne dodanie unaczynienia do łożyska tkankowego przeszczepów nerwowych służy do poprawy wyników regeneracji.

Powierzchowny dolny płat powięzi tętnicy nadbrzusznej do rekonstrukcji nerwów u królików

Tutaj prezentujemy protokół, który może przekształcić autologiczną tkankę tłuszczową w różne substancje składowe tkanki tłuszczowej o różnych właściwościach i funkcjach fizykochemicznych.

Innowacyjne frakcjonowanie tkanki tłuszczowej do przekształcania tłuszczu w specjalistyczne składniki

Neurofibromoza typu 1 (NF1) prowadzi do łagodnych guzów osłonki nerwowej obwodowej (neurofibromów), które wymagają specyficznego mikrośrodowiska nerwowego do wzrostu. Opracowano zoptymalizowany model ksenotransplanttu ortotopowego, wykorzystujący intraneuralne wstrzykiwanie ludzkich komórek Schwanna do myszy NSG. Model ten przypomina ludzkie neurofibromy i stanowi cenną platformę do oceny strategii terapeutycznych.

Ortotopowy ksenoprzeszczep nerwu kulszowego dla neurofibromozy typu 1

Poznaj przeszczep tłuszczu wzbogacony we frakcję naczyniową zrębu w leczeniu objawowego nerwiaka końcowego. Technika łączy działanie mechaniczne z biologicznym, skutecznie redukując ból i zapobiegając nawrotom.

Przeszczep tłuszczu wzbogacony we frakcję naczyniową zrębu w leczeniu objawowego nerwiaka końcowego

Przeglądaj więcej filmów