Name: Skutki narażenia na działanie formaldehydu na szczurzy model atopowego zapalenia skóry wywołanego leczeniem kapsaicyną u noworodków (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-09-27T12:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 47 s
Description: Poznaj metodę wywoływania objawów atopowego zapalenia skóry u szczurów za pomocą kapsaicyny u noworodków oraz oceny wpływu formaldehydu. Ta technika pozwala badać patofizjologię choroby i czynniki środowiskowe.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

To badanie było wspierane przez program badawczy Public Welfare & Safety przez National Research Foundation of Korea (NRF) finansowane przez Ministerstwo Edukacji, Nauki i Technologii (NRF-2014M3C8A5030612) i wspierane przez The Chung Yang, Cha Young Sun, M.D. i Jang Hi Joo Yeu Sa Memorial Fund.

Wszystkie opisane tutaj metody zostały zatwierdzone przez Międzynarodowy Komitet ds. Opieki nad Zwierzętami i Użytkowania (IACUC) Koreańskiego Uniwersytetu Medycznego College of Medicine. 6 tygodni po urodzeniu eksperymentatorzy mogą wywołać entanazję i pobrać różne próbki, takie jak skóra i surowica szczurów.
1. Indukcja AD przez leczenie noworodków kapsaicyną
<ol>
	<li>Aby przygotować roztwór kapsaicyny o stężeniu 5 mg/ml, dodaj 50 mg kapsaicyny do 1 ml Tween 80 i 1 ml 100% etanolu w stożkowej probówce o pojemności 15 ml.</li>
	<li>Dodaj 8 ml soli fizjologicznej do stożkowej probówki. Energicznie potrząsaj probówką, aż nie będą widoczne żadne oddzielone warstwy</li>
	<li>Wstrzyknąć roztwór kapsaicyny (10 μl/g) do tkanki podskórnej, w linię środkową i tylną stronę szyi nowonarodzonego szczura Sprague-Dawley.
	<ol>
		<li>Kapsaicynę należy dostarczyć w okresie od 12 do 48 godzin po urodzeniu (KRYTYCZNE). 
		UWAGA: Jeśli wstrzyknięcie opóźni się o więcej niż kilka dni, zapalenie skóry nie rozwinie się lub będzie utrzymywało się tylko przez kilka tygodni. Jeśli wstrzyknięcie jest zbyt wczesne, może wystąpić niewydolność oddechowa z powodu silnego bólu.</li>
		<li>Aby zapobiec zatrzymaniu oddechu u nowonarodzonych szczurów w wyniku wstrzyknięcia kapsaicyny, należy popchnąć klatkę piersiową noworodków, aby zachęcić ich do oddychania lub trzymać noworodki w komorze tlenowej, dopóki oddychanie nie stanie się normalne. Ponieważ ból wywołany kapsaicyną może zniechęcać do oddychania, dodanie znieczulenia ogólnego może pogorszyć trudności w oddychaniu. Dlatego eksperymentatorzy nie powinni stosować środków znieczulających w celu zwiększenia przeżywalności szczurów.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Ocena świądu i zapalenia skóry w szczurzym modelu AD
<ol>
	<li>Pomiar świądu poprzez zliczanie spontanicznego drapania
	<ol>
		<li>Przygotuj plastikowe komory (20 cm x 30 cm x 20 cm) wyposażone w lustro, aby umożliwić pełne zakrycie do oglądania oraz otwory, aby umożliwić szczurom oddychanie.</li>
		<li>Odpowiednio skonfiguruj i dostosuj cyfrową kamerę wideo, aby jednocześnie nagrywać widoki lustrzane i widoki z przodu szczurów.</li>
		<li>Umieść szczury w plastikowej komorze i przykryj sufit komory ciężkim przedmiotem, aby zapobiec otwarciu.</li>
		<li>Nagrywaj spontaniczne zachowania szczurów przez 1 godzinę, odtwarzaj klipy wideo i policz liczbę zachowań związanych z drapaniem.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Ocena zmian skórnych za pomocą systemu punktacji
	<ol>
		<li>Umieść szczura w komorze indukcyjnej.</li>
		<li>Ustaw przepływomierz tlenu na natężenie przepływu 2 l/min i wyreguluj parownik izofluranu na 3% w celu znieczulenia.</li>
		<li>Zidentyfikuj zakres i nasilenie zapalenia skóry w uszach i innych częściach szczura.</li>
		<li>Zdefiniuj wielkość jednostki dla rozległości zmian skórnych jako 0,25cm2 i nasilenie zmian skórnych, postępując zgodnie z tabelą 1: wskaźnik nasilenia; stopień oceny zapalenia skóry poprzez pomnożenie zakresu i nasilenia (patrz ocena zapalenia skóry w <silna klasa="xfig">Rysunek 1B).</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Narażenie zwierząt na działanie gazowych FA
<ol>
	<li>Przygotowanie komory inhalacyjnej
	<ol>
		<li>Przygotuj pudełko ze szkła akrylowego (55 cm x 40 cm x 35 cm), które ma dwa wyloty po przeciwnych stronach.</li>
		<li>ostrożność. W celu cyrkulacji gazu FA należy umieścić wylot wyżej niż wlot i sprawić, aby rozmiar wylotu był większy niż wlot.</li>
		<li>ostrożność. W celu pomiaru wewnętrznego stężenia gazu, po drugiej stronie wylotów, wywierć trzy małe przejścia, które można zamknąć.</li>
		<li>Podłącz rurki do obu wylotów. Umieść rurkę wylotową w okapie cyrkulacyjnym lub na zewnątrz budynku w celu emisji gazu, a drugą rurkę wylotową podłącz do regulatora tlenu medycznego.</li>
		<li>Umieść konwencjonalną klatkę dla szczurów w pudełku ze szkła akrylowego.</li>
		<li>Szczury należy umieszczać w klatce od tygodnia po urodzeniu przez 5 tygodni (2 godziny dziennie i 5 dni w tygodniu).</li>
		<li>Uszczelnij pudełko ze szkła akrylowego tak szczelnie, jak to możliwe, aby zapobiec wyciekowi gazu. 
		UWAGA: Aby zapewnić szczelne uszczelnienie, pokrywa komory powinna zawierać gumę. Nałożyć folię spożywczą, aby owinąć komorę, aby uzyskać szczelne uszczelnienie.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wytwarzanie gazowego FA za pomocą medycznego regulatora tlenu
	<ol>
		<li>Rozpuścić 5 g FA w 1 l wody.</li>
		<li>Umieść 0.5% roztwór FA w butelce nawilżacza regulatora tlenu medycznego.</li>
		<li>Po podłączeniu rurki dopływowej do reduktora należy włączyć regulator i ustawić natężenie przepływu na 5 L/min.</li>
		<li>Dostosuj stężenie roztworu i natężenie przepływu, aby określić stężenie gazu w komorze.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Geha, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allergy+and+hypersensitivity.+Nature+versus+nurture+in+allergy+and+hypersensitivity%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Immunol%22%5BJournal%5D)">Allergy and hypersensitivity. Nature versus nurture in allergy and hypersensitivity.</a> Curr Opin Immunol. 15 (6), 603-608 (2003).</li>
<li>Novak, N., Bieber, T., Leung, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immune+mechanisms+leading+to+atopic+dermatitis%5BTitle%5D)+AND+%22The+J+Allergy+Clin+Immunol%22%5BJournal%5D)">Immune mechanisms leading to atopic dermatitis.</a> The J Allergy Clin Immunol. 112 (Suppl 6), S128-S139 (2003).</li>
<li>Back, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronically+relapsing+pruritic+dermatitis+in+the+rats+treated+as+neonate+with+capsaicin%3B+a+potential+rat+model+of+human+atopic+dermatitis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Dermatol+Sci%22%5BJournal%5D)">Chronically relapsing pruritic dermatitis in the rats treated as neonate with capsaicin; a potential rat model of human atopic dermatitis.</a> J Dermatol Sci. 67 (2), 111-119 (2012).</li>
<li>Jin, H., He, R., Oyoshi, M., Geha, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+atopic+dermatitis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Animal models of atopic dermatitis.</a> J Invest Dermatol. 129 (1), 31-40 (2009).</li>
<li>Han, R. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formaldehyde-Induced+Aggravation+of+Pruritus+and+Dermatitis+Is+Associated+with+the+Elevated+Expression+of+Th1+Cytokines+in+a+Rat+Model+of+Atopic+Dermatitis%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+ONE%22%5BJournal%5D)">Formaldehyde-Induced Aggravation of Pruritus and Dermatitis Is Associated with the Elevated Expression of Th1 Cytokines in a Rat Model of Atopic Dermatitis.</a> PLOS ONE. 11 (12), e0168466(2016).</li>
<li>Xu, B., Aoyama, K., Takeuchi, M., Matsushita, T., Takeuchi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+cytokine+mRNAs+in+mice+cutaneously+exposed+to+formaldehyde%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol+Lett%22%5BJournal%5D)">Expression of cytokine mRNAs in mice cutaneously exposed to formaldehyde.</a> Immunol Lett. 84 (1), 49-55 (2002).</li>
<li>Kim, J. Y., Jeong, M. S., Park, K. Y., Seo, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aggravation+of+atopic+dermatitis-like+symptoms+by+consecutive+low+concentration+of+formaldehyde+exposure+in+NC%2FNga+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Aggravation of atopic dermatitis-like symptoms by consecutive low concentration of formaldehyde exposure in NC/Nga mice.</a> Exp Dermatol. 22 (3), 219-221 (2013).</li>
<li>Laske, N., Niggemann, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Does+the+severity+of+atopic+dermatitis+correlate+with+serum+IgE+levels%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatr+Allergy+Immunol%22%5BJournal%5D)">Does the severity of atopic dermatitis correlate with serum IgE levels?</a> Pediatr Allergy Immunol. 15 (1), 86-88 (2004).</li>
<li>Fujii, Y., Takeuchi, H., Sakuma, S., Sengoku, T., Takakura, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+a+2%2C4-dinitrochlorobenzene-induced+chronic+dermatitis+model+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Skin+Pharmacol+Physiol%22%5BJournal%5D)">Characterization of a 2,4-dinitrochlorobenzene-induced chronic dermatitis model in rats.</a> Skin Pharmacol Physiol. 22 (5), 240-247 (2009).</li>
<li>Sugimoto, T., Xiao, C., Ichikawa, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neonatal+primary+neuronal+death+induced+by+capsaicin+and+axotomy+involves+an+apoptotic+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Neonatal primary neuronal death induced by capsaicin and axotomy involves an apoptotic mechanism.</a> Brain Res. 807 (1-2), 147-154 (1998).</li>
<li>Saito, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+skin+inflammation+induced+by+repeated+exposure+of+toluene%2C+xylene%2C+and+formaldehyde+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Toxicol%22%5BJournal%5D)">Characterization of skin inflammation induced by repeated exposure of toluene, xylene, and formaldehyde in mice.</a> Environ Toxicol. 26 (3), 224-232 (2011).</li>
<li>Jung, W. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formaldehyde+exposure+induces+airway+inflammation+by+increasing+eosinophil+infiltrations+through+the+regulation+of+reactive+oxygen+species+production%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Toixcol+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Formaldehyde exposure induces airway inflammation by increasing eosinophil infiltrations through the regulation of reactive oxygen species production.</a> Environ Toixcol Pharmacol. 24 (2), 174-182 (2007).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Opisany tutaj protokół indukcji objawów podobnych do choroby Alzheimera u szczurów może być zaadaptowany do badania patofizjologii choroby Alzheimera i wykorzystany jako narzędzie przesiewowe do testów narkotykowych. Przyrząd do ekspozycji gazowego FA na szczury leczone kapsaicyną może być zastosowany do oceny skutków narażenia na różne gazy na różnych modelach zwierzęcych.
Model AD leczony kapsaicyną u noworodków opiera się na prostszej procedurze niż inne modele atopowe, takie jak model lecz...

Aby zbadać wpływ inhalacji formaldehydu (FA) na postęp atopowego zapalenia skóry (AD), ustaliliśmy protokół indukcji AD i opracowaliśmy konwencjonalną komorę krążenia do przewlekłego narażenia na FA.
AD to przewlekła choroba zapalna skóry, przypisywana złożonym interakcjom między predyspozycjami genetycznymi a wyzwalaczami środowiskowymi1,2. Do badania AD w stanie przedklinicznym wymagany jest odpowiedni model zwierzęcy. Jest to szczególnie istotne przy wyjaśnianiu patogenezy choroby Alzheimera pod wpływem czynników środowiskowych. Ponadto, aby lepiej zbadać wpływ czynników środowiskowych na postęp choroby Alzheimera, konieczne jest oddzielenie poszczególnych czynników środowiskowych i ilościowe określenie stopnia narażenia.
Pokazaliśmy nowy szczurzy model choroby Alzheimera wywołanej leczeniem noworodków kapsaicyną. Ten model AD3 ma pewne zalety w porównaniu z innymi modelami AD, takimi jak modele AD indukowane przez uczulenie naskórne, genetycznie modyfikowane modele AD i spontaniczne modele myszy AD4. Po pierwsze, w modelu tym objawy podobne do choroby Alzheimera pojawiają się w wieku 3 tygodni, co odpowiada chorobie Alzheimera u niemowląt i jest wcześniejsze niż w przypadku innych spontanicznych mysich modeli choroby Alzheimera, takich jak mysz NC/Nga. W niektórych przypadkach, w przeciwieństwie do genetycznie modyfikowanych modeli AD, objawy modeli AD ustępują i nawracają spontanicznie w ciągu 20 tygodni. Co więcej, proces indukcji objawów podobnych do AZS w modelu jest łatwiejszy niż w modelu uczulenia naskórnego, który w perspektywie procesu indukcji jest bardziej zbliżony do alergicznego kontaktowego zapalenia skóry.
Wprowadziliśmy nowy protokół ekspozycji na FA na modelu zwierzęcym, używając komory ze szkła akrylowego i konwencjonalnego regulatora tlenu medycznego5 do badania wpływu inhalacji FA na rozwój AD w okresie niemowlęcym i młodzieńczym. Reduktor pozwolił nam wystawić zwierzęta na działanie stałego stężenia gazu poprzez regulację natężenia przepływu i stężenia roztworu. Wcześniejsze badania opisywały kilka sposobów ekspozycji FA na modele zwierzęce. Xu i wsp. opisali metodę ekspozycji, w której roztwór FA został bezpośrednio nałożony na skórę6. Inne niedawne badanie dotyczyło protokołu ekspozycji na gaz FA przy użyciu specjalistycznego generatora lotnych rozpuszczalników, model 49127. W porównaniu z metodami poprzednich badań, nowa metoda jest łatwiejsza w wyposażeniu i może być stosowana do innych rozwiązań oprócz FA.

<table><tbody><tr><td>Medyczny regulator tlenu</td><td>Yuyao Jiahua Producent medyczny</td><td></td><td>nie wpłynie na wyniki</td></tr><tr><td>Producent rurki</td><td></td><td></td><td>nie wpłynie na wyniki</td></tr><tr><td>Komora akrylowa</td><td>Taejin Producent akrylu</td><td></td><td>nie wpłynie na wyniki</td></tr><tr><td>Plastikowa komora</td><td>Taejin Producent akrylu</td><td></td><td>nie wpłynie na wyniki</td></tr><tr><td>Paraformaldehyd, proszek</td><td>Producent Sigma</td><td>158127</td><td>nie wpłynie na wyniki</td></tr><tr><td>Producent folii Wrap</td><td>Uniwrap</td><td></td><td>nie wpłynie na wyniki</td></tr><tr><td>Producent kapsaicyny</td><td>Sigma</td><td>M2028</td><td>nie wpłynie na wyniki</td></tr><tr><td>Tween 80</td><td>Producent Sigma</td><td>P4780</td><td>nie wpłynie na wyniki</td></tr><tr><td>Producent</td><td>Sony</td><td>HDR-CX380y</td><td>nie będzie miał wpływu na wyniki wpływać na wyniki</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>JW producent farmaceutyczny</td><td></td><td>nie wpłynie na wyniki</td></tr></tbody></table>

skutki narażenia na działanie formaldehydu na szczurzy model atopowego zapalenia skóry wywołanego leczeniem kapsaicyną u noworodków

Effects of Exposure of Formaldehyde to a Rat Model of Atopic Dermatitis Induced by Neonatal Capsaicin Treatment

Atopowe zapalenie skóry to przewlekle nawracająca egzema świądowa, która występuje na całym świecie, szczególnie w krajach rozwiniętych. Wiadomo, że złożone interakcje między czynnikami genetycznymi i środowiskowymi odgrywają ważną rolę w patofizjologii atopowego zapalenia skóry. Wciąż jednak brakuje nam szczegółowego obrazu patogenezy tej choroby. Dlatego tak ważne jest opracowanie odpowiednich modeli zwierzęcych w celu wyjaśnienia postępu atopowego zapalenia skóry. Co więcej, badanie wpływu czynników środowiskowych, takich jak zanieczyszczenia powietrza, na atopowe zapalenie skóry poszerza wiedzę na temat tej choroby. W tym miejscu opisujemy metodę wywoływania atopowego zapalenia skóry u szczurów za pomocą leczenia kapsaicyną u noworodków oraz protokół ekspozycji szczurów na stałe stężenie formaldehydu w celu ujawnienia wpływu na rozwój atopowego zapalenia skóry w okresie niemowlęcym i młodzieńczym. Protokoły te zostały z powodzeniem zastosowane w kilku eksperymentach i mogą być stosowane do innych substancji.

Stan zapalny skóry przypominający AD u szczurów w modelu AD traktowanych kapsaicyną w wieku 7 tygodni przedstawiono na Rysunku 1A. Intensywne zachowania drapania u szczurów w modelu AD traktowanych kapsaicyną pokazano w Filmie 1. Neonatalna terapia kapsaicyną wywołała zapalenie skóry i nasiliła zachowania drapania u szczurów w wieku 3 tygodni, a objawy przypominające AD utrzymywały się przez kilka tygodni (Rysunek 1B</str...

Opisujemy tutaj metody leczenia noworodków kapsaicyną w celu wywołania atopowego zapalenia skóry u szczurów oraz ekspozycję na odparowany formaldehyd, aby zbadać wpływ inhalacji formaldehydu na atopowe zapalenie skóry.

Skutki narażenia na działanie formaldehydu na szczurzy model atopowego zapalenia skóry wywołanego leczeniem kapsaicyną u noworodków

Atopic dermatitis is chronically relapsing pruritic eczema and prevails around the world especially in developed countries. Complex interactions between ...

Ogólnym celem niniejszej procedury jest wywołanie objawów przypominających atopowe zapalenie skóry poprzez noworodkowe podanie kapsaicyny oraz zmierzenie wpływu formaldehydu na te objawy. Metoda ta może pomóc w odpowiedzi na kluczowe pytanie dotyczące patofizjologii atopowego zapalenia skóry w dziedzinie dermatologii.Główną zaletą tej techniki jest indukowanie objawów przypominających atopowe zapalenie skóry oraz ustanowienie istotnego systemu ekspozycji z zastosowaniem przyrostów. Aby przygotować roztwór kapsaicyny o stężeniu 5 mg/mL, należy dodać 1 mL Tween 80, 1 mL 100% etanolu oraz 50 mg kapsaicyny do 15 mL probówki stożkowej. Następnie do probówki stożkowej należy dodać 8 mL soli fizjologicznej.Zakręć probówkę i energicznie nią wstrząśnij, aż do całkowitego wymieszania warstw. Kluczowe jest podanie kapsaicyny od 12 do 48 godzin po urodzeniu. Wstrzyknij roztwór kapsaicyny w tkankę podskórną wzdłuż linii środkowej na karku noworodka szczura linii Sprague Dawley.Aby zapobiec zatrzymaniu oddechu po wstrzyknięciu kapsaicyny, należy umieścić noworodki w komorze tlenowej do czasu normalizacji oddychania. W razie potrzeby należy uciskać klatkę piersiową noworodków, aby pobudzić oddech. Pracę rozpoczyna się od przygotowania plastikowych komór wyposażonych w lustro, zapewniające pełny wgląd w pole widzenia, oraz w otwory umożliwiające szczurom oddychanie.Umieść szczury w plastikowej komorze i przyciśnij górną ściankę komory ciężkim przedmiotem, aby zapobiec otwarciu pokrywy. Następnie ustaw cyfrową kamerę wideo, aby jednocześnie rejestrować widok szczurów w lustrze oraz widok z przodu. Następnie rejestruj spontaniczne zachowania szczurów przez jedną godzinę.Odtwórz klipy wideo i policz liczbę zachowań związanych z drapaniem, takich jak te wykazane przez szczura po prawej stronie oraz przez szczura w centrum. Aby ocenić zmiany chorobowe, określ zakres i stopień nasilenia zapalenia skóry w uszach i innych częściach ciała znieczulonego szczura.Zdefiniuj jednostkę wielkości zasięgu zmian skórnych jako 0,25 centymetra kwadratowego. Stopień nasilenia zmian skórnych określ przy użyciu poniższej tabeli. Przygotuj pudełko z pleksi, które posiada dwa złącza po przeciwnych stronach.Aby zapewnić cyrkulację gazu formaldehydu, wylot wentylacyjny należy umieścić powyżej wlotu gazu. Podłącz rurki do obu złączy. Poprowadź rurkę wylotu wentylacyjnego do dygestorium lub na zewnątrz budynku w celu emisji gazu.Drugą rurkę wlotową należy podłączyć do medycznego regulatora tlenu. Wewnątrz akrylowej skrzynki należy umieścić standardową klatkę dla szczurów. Do klatki należy włożyć tygodniowe szczury, a następnie szczelnie zamknąć akrylową skrzynkę, aby zapobiec wyciekowi gazu.Owiń komorę folią spożywczą i zamknij ją gumową pokrywą, aby zapewnić szczelne zamknięcie. Do butelki nawilżacza podłączonej do medycznego regulatora tlenu dodaj 0,5% roztwór formaldehydu. Pamiętaj, że praca z formaldehydem może być niezwykle niebezpieczna.Podczas wykonywania tej procedury należy zawsze przestrzegać środków ostrożności, takich jak stosowanie masek i rękawiczek. Następnie należy włączyć regulator i ustawić przepływ na 5 L/min. Szczury należy poddać działaniu gazowego formaldehydu przez okres dwóch godzin.Przedstawione są tutaj reprezentatywne fotografie stanu zapalnego skóry u szczura traktowanego kapsaicyną. Pokazany jest tutaj chronologiczny rozwój zapalenia skóry u szczurów traktowanych kapsaicyną. Ten obraz przedstawia chronologiczny rozwój zachowań drapania u szczurów traktowanych kapsaicyną.Jest to reprezentatywny obraz nawracających zmian skórnych u 16-tygodniowych szczurów traktowanych kapsaicyną. Poziomy IgE w surowicy są znacząco podwyższone u zwierząt traktowanych kapsaicyną. U zwierząt traktowanych kapsaicyną obserwuje się również znaczący wzrost ekspresji mRNA dla IL-4.Przedstawiono tutaj znaczący wzrost ekspresji mRNA IL-13 u zwierząt traktowanych kapsaicyną. Te reprezentatywne fotografie ukazują zapalenie skóry atopowe po piątym tygodniu leczenia z użyciem 1,2 ppm oraz 0,8 ppm formaldehydu w porównaniu z grupą kontrolną traktowaną powietrzem.Ekspozycja na formaldehyd w stężeniu 1,2 ppm, ale nie w stężeniu 0,8 ppm, znacząco nasiliła świąd w modelu atopowego zapalenia skóry indukowanego kapsaicyną. Podobne wyniki zaobserwowano podczas pomiaru stanu zapalnego skóry. Podwyższony poziom IgE w surowicy odnotowano u szczurów w modelu AD indukowanym kapsaicyną, które były poddane ekspozycji na formaldehyd w stężeniu 1,2 ppm.Po zastosowaniu tej procedury można wykorzystać inne materiały, takie jak roztwór glikolu, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania dotyczące wpływu konkretnych cząstek na atopowe zapalenie skóry. W następstwie tych opracowań technika ta utorowała drogę badaczom w dziedzinie dermatologii do zbadania roli czynników środowiskowych w patogenezie atopowego zapalenia skóry.

effects-exposure-formaldehyde-to-rat-model-atopic-dermatitis-induced

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologia i infekcje

Zazwyczaj, model wstrzykiwania szyi myszy jest używany do oceny zachowań związanych z zadrapaniami wywołanymi przez świąd. Jednak model dostarcza informacji tylko o swędzeniu, a nie bólu. Tutaj u myszy wprowadza się model wstrzykiwania policzka, który może być używany do jednoczesnego pomiaru bólu i zachowań związanych ze swędzeniem.

Model iniekcji policzkowej do jednoczesnego pomiaru bólu i zachowań związanych ze swędzeniem

Tutaj prezentujemy protokół zbierania konfokalnych widm Ramana od ludzi w badaniach klinicznych w połączeniu z metodami chemometrycznymi do usuwania widmowych wartości odstających i późniejszej ekstrakcji kluczowych cech.

Rozpoznawanie wody, białek i lipidów z konfokalnych widm ramanowskich warstwy rogowej naskórka in vivo za pomocą podejścia chemometrycznego

Dostarczony jest tutaj protokół, który szczegółowo opisuje kroki prowadzące do stworzenia zwierzęcego modelu przewlekłego bólu po niedokrwieniu (CPIP). Jest to dobrze rozpoznawalny model naśladujący ludzki złożony zespół bólu regionalnego typu I. Dalej oceniane są nadwrażliwości mechaniczne i termiczne, a także zachowania nocyfensywne wywołane kapsaicyną obserwowane w modelu szczurzym CPIP.

Model przewlekłego bólu po niedokrwieniu złożonego zespołu bólu regionalnego typu I u szczurów

Wysoka platforma może bez ograniczeń naprawiać szczury i całkowicie odsłaniać punkty akupunkturowe na plecach podczas manipulacji akupunkturą. W artykule opisano metody wytwarzania wysokiej platformy, ustanowiono szczurzy model astmy i zmierzono zmiany w funkcji oddechowej za pomocą nieinwazyjnego systemu pletyzmografii całego ciała (WBP) w czasie rzeczywistym.

Akupunktura w szczurzym modelu astmy

Nadwrażliwość kontaktowa (CHS) to mysi eksperymentalny model alergicznego kontaktowego zapalenia skóry (ACD). CHS opiera się na uczuleniu na reaktywny hapten poprzez malowanie ogolonej skóry klatki piersiowej i brzucha, a następnie prowokację skóry ucha rozcieńczonym haptenem, powodując reakcję obrzęku, która jest oceniana na różne sposoby.

Nadwrażliwość kontaktowa jako mysi model alergicznego kontaktowego zapalenia skóry

Tutaj opisujemy metody wywoływania alergicznego kontaktowego zapalenia skóry w uszach myszy za pomocą 1-fluoro-2,4-dinitrobenzenu (DNFB) i jak ocenić nasilenie alergicznego kontaktowego zapalenia skóry.

Model ucha myszy do oceny alergicznego kontaktowego zapalenia skóry

Tutaj prezentujemy zwięzły protokół tworzenia modelu wcześniaka, ułatwiający badania nad wczesnym leczeniem bólu poporodowego. Metoda polega na wykonaniu cesarskiego cięcia na trzy dni przed spodziewanym porodem, ekstrakcji wcześniaków poprzez histerektomię i zintegrowaniu ich z biologicznym potomstwem matki zastępczej.

Model wcześniaka do badań nad bólem

Ten protokół opisuje procedurę wywoływania zapalenia trądzikowego na skórze szczura za pomocą kwasu oleinowego i Cutibacterium acnes.

Szczurzy model trądziku złożonego

Ten protokół opisuje wielobarwną technikę immunofluorescencji do oceny szczurzego modelu alergicznego nieżytu nosa.

Znakowanie immunofluorescencyjne w skrawkach tkanki błony śluzowej nosa alergicznych szczurów z nieżytem nosa za pomocą wielokolorowego testu immunologicznego

Ten protokół opisuje rozwój modelu myszy z nadwrażliwością na kaszel, który może służyć jako idealny model do badania mechanizmów przewlekłego kaszlu.

Stworzenie modelu mysiego z nadwrażliwością na kaszel poprzez wdychanie kwasu cytrynowego

Poznaj metodę wywoływania objawów atopowego zapalenia skóry u szczurów za pomocą kapsaicyny u noworodków oraz oceny wpływu formaldehydu. Ta technika pozwala badać patofizjologię choroby i czynniki środowiskowe.

Skutki narażenia na działanie formaldehydu na szczurzy model atopowego zapalenia skóry wywołanego leczeniem kapsaicyną u noworodków (Wideo) | JoVE Journal

Skutki narażenia na działanie formaldehydu na szczurzy model atopowego zapalenia skóry wywołanego leczeniem kapsaicyną u noworodków

Przeglądaj więcej filmów