-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Przeszczep komórek Schwanna wewnątrz przewodów PVDF-TrFE w celu zmostkowania przeciętych kikutów ...
Przeszczep komórek Schwanna wewnątrz przewodów PVDF-TrFE w celu zmostkowania przeciętych kikutów ...
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
Transplantation of Schwann Cells Inside PVDF-TrFE Conduits to Bridge Transected Rat Spinal Cord Stumps to Promote Axon Regeneration Across the Gap

Przeszczep komórek Schwanna wewnątrz przewodów PVDF-TrFE w celu zmostkowania przeciętych kikutów rdzenia kręgowego szczura w celu promowania regeneracji aksonów w poprzek luki

Full Text
7,411 Views
08:05 min
November 3, 2017

DOI: 10.3791/56077-v

Yee-Shuan Lee1, Siliang Wu2, Treena Livingston Arinzeh3, Mary Bartlett Bunge1,4,5

1The Miami Project to Cure Paralysis,University of Miami Miller School of Medicine, 2Department of Materials Science and Engineering,New Jersey Institute of Technology, 3Department of Biomedical Engineering,New Jersey Institute of Technology, 4Department of Cell Biology,University of Miami Miller School of Medicine, 5Department of Neurological Surgery,University of Miami Miller School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Ten artykuł opisuje technikę wprowadzania pustego przewodu między kikuty rdzenia kręgowego po całkowitym przecięciu i wypełnieniu komórkami Schwanna (SC) oraz wstrzykiwalną macierzą błony podstawnej w celu wypełnienia i wspomagania regeneracji aksonów w poprzek szczeliny.

Ogólnym celem tej procedury interwencji chirurgicznej jest użycie przewodu wypełnionego komórkami Schwanna i matrycą do wstrzykiwań w celu ustanowienia mostu między całkowicie przeciętymi kikutami rdzenia kręgowego w celu promowania regeneracji aksonów w poprzek mostu. Naszym celem jest wypełnienie mostka w miejscu urazu rdzenia kręgowego u szczura, aby przywrócić jego funkcję. Uraz, z którego korzystamy, polega na stworzeniu całkowitej luki w przecięciu.

Tylko dzięki zastosowaniu tego rodzaju urazu możemy z całą pewnością stwierdzić, że aksony się zregenerowały, gdy znajdziemy je w miejscu urazu. Most, którego używamy, to kanał polimerowy, który zawiera komórki Schwanna, które są tak ważne dla regeneracji aksonów. W tym filmie pokazujemy, jak wprowadzić taki most w całkowitą lukę transsekcyjną.

Badacze, którzy są nowicjuszami w tej metodzie, będą potrzebować praktyki, ponieważ całkowite przecięcie rdzenia kręgowego i wprowadzenie przewodu może być wyzwaniem dla początkujących. Przed rozpoczęciem procedury użyj ostrza numer 10, aby przyciąć przewód do pięciu milimetrów. W razie potrzeby można to również wykonać pod mikroskopem preparacyjnym.

Delikatnie złóż przewód wzdłuż podłużnej strony i za pomocą nożyczek Vannas o prostych krawędziach wytnij cztery małe nacięcia o długości około 0,4 milimetra, co najmniej jeden milimetr od otworów i około jednego milimetra od siebie. Następnie rozłóż przewód i przetnij między dwoma nacięciami po tej samej stronie, aby utworzyć dwa okna obok siebie, upewniając się, że okna można prawidłowo otwierać i zamykać wzdłuż nieodciętej strony. Aby wykonać laminektomię T7-T9, po potwierdzeniu braku reakcji na uszczypnięcie palca u znieczulonej samicy szczura Fischera o wadze od 180 do 200 gramów, zlokalizuj punkt orientacyjny dla wyrostków kolczystych T9-T11.

Będą odczuwane jak mały trójkątny guzek przez skórę. Używając ostrza numer 10, wykonaj od czterech do pięciu centymetrów nacięcie skóry w linii środkowej od T4 do T11, a następnie małe nacięcie w powierzchownej warstwie tłuszczu za pomocą zakrzywionych nożyczek z końcówkami. Po wycięciu tłuszczu użyj ostrza numer 10, aby zlokalizować wyrostki kolczyste T7-T9 i użyj kleszczy, aby utrzymać mięsień na poziomie około T4. Wykonaj nacięcie w mięśniu wzdłuż każdej strony kręgów od T6 do T10 jak najbliżej kręgów, aby zrobić czysty otwór i spowodować minimalne obrażenia zwierzęcia.

Umieść zwijacz wokół T7 do T9. Użyj ostrza numer 10, aby przeciąć mięśnie i więzadła między poszczególnymi wyrostkami od T6 do T10 i użyj rongeur, aby usunąć wszelkie mięśnie lub więzadła na blaszkach od T7 do T9 tak bocznie, jak to możliwe. Gdy przerwy między wyrostkami poprzecznymi od T7 do T9 są widoczne, użyj rongeur, aby usunąć wyrostek kolczysty T9, delikatnie podnosząc wyrostek kolczysty T8 kleszczami, aby podnieść blaszkę T9 w małym otworze między wyrostkami T9 i T10. Następnie użyj rongeur, aby usunąć blaszkę tak bocznie, jak to możliwe, zaczynając od otworu i poruszając się obrotowo w T9. Po usunięciu wszystkich blaszek potwierdź, że przerwy między wyrostkami poprzecznymi są widoczne, szczególnie w T8 i zbadaj kości po obu stronach między T7 i T9, aby upewnić się, że nie ma wystających na zewnątrz fragmentów kości, a korzenie grzbietowe powinny stać się widoczne.

Za pomocą kątowych nożyczek sprężynowych odetnij korzenie grzbietowe i brzuszne powyżej i poniżej T8 i dodaj sól fizjologiczną do rdzenia kręgowego, aby zatrzymać krwawienie. Następnie umieść kątowe nożyczki sprężynowe nad rdzeniem kręgowym w szczelinach między wyrostkami poprzecznymi w T8 i wykonaj jedno cięcie, aby całkowicie przeciąć tkankę nerwową. Umieść mały kawałek sprasowanej pianki w powstałej szczelinie od dwóch do 2,5 milimetra i natychmiast dodaj sól fizjologiczną do tego obszaru.

Czekając, aż odcięte kikuty pępowiny osiągną hemostazę, pokrój trójkąty absorpcyjne na cienkie, długie kawałki i wyjmij przewód z magazynu PBS. Umieść kilka trójkątów w przewodzie, aby usunąć nadmiar PBS i upewnij się, że wstępnie przycięte okna są otwarte. Następnie usuń pożywkę z granulki komórek Schwanna GFP i ponownie zawieś komórki Schwanna w 10 mikrolitrach zimnego DMEM / F-12.

Dodać 10 mikrolitrów zimnego żelu do wstrzykiwań do zawiesiny komórek i dobrze wymieszać, powtarzając pipetowanie. Następnie umieść zawiesinę komórkową na lodzie. Gdy kikuty pępowiny są gotowe, usuń skompresowaną pianę, a następnie użyj długich kawałków trójkątów absorpcyjnych, aby usunąć sól fizjologiczną i krew z obszaru laminektomii.

Następnie za pomocą mikroszpatułki delikatnie podnieś kikut rostralny i wsuń przewód na kikut oknami skierowanymi do góry, uważając, aby cały kikut był włożony i aby nie było nadmiernego krwawienia do przewodu. Delikatnie podnieś kikut ogonowy i nasuń na niego drugi koniec przewodu, uważając, aby cały kikut był włożony i aby okna znajdowały się na powierzchni grzbietowej. Następnie za pomocą mikropipety wyposażonej w końcówkę ładującą western blot wstrzyknąć 20 mikrolitrów mieszaniny matrycowej GFP Schwann Cell do wstrzykiwań do przewodu przez jedno z wstępnie wyciętych okienek i zamknąć okienka.

Uwaga ku przestrodze. Bardzo ważne jest, aby z kikutami sznurowymi obchodzić się tak szybko i ostrożnie, jak to możliwe. Opóźnienie może spowodować obrzęk kikutów, co utrudni przesunięcie przewodu przez rdzeń kręgowy, powodując dalsze obrażenia.

Trzy tygodnie po przeszczepie konfokalne obrazy fluorescencyjne skrawków kriostatu strzałkowego tkanki rdzenia ujawniają równomierne rozmieszczenie komórek Schwanna wzdłuż i wewnątrz przewodu, a także naczyń krwionośnych i mielinizowanych aksonów w środku mostu. Regeneracja aksonów jest również ściśle związana z obecnością komórek Schwanna, co potwierdza skuteczność stosowania mostka komórkowego Schwanna w ustrukturyzowanym przewodzie w celu promowania regeneracji aksonów wzdłuż mostu między kikutami rostralnymi i ogonowymi. Po opanowaniu tej procedury można ją wykonać w 45 minut, jeśli zostanie wykonana prawidłowo.

Po tej procedurze można wykonać inne metody, takie jak śledzenie EndoRay, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania. Na przykład, ile aksonów regeneruje się do mostu, a ile z nich opuszcza most, aby ponownie wejść do rdzenia kręgowego? Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak przeciąć rdzeń kręgowy, wprowadzić przewód i wstrzyknąć komórki w matrycy, aby stworzyć niezawodny pomost do regeneracji aksonów i innych ocen wyników.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: komórki Schwanna przewody PVDF-TrFE przekrój rdzenia kręgowego regeneracja aksonów laminektomia model szczura zabieg chirurgiczny

Related Videos

Połączenie przeszczepu nerwów obwodowych i modulacji macierzy w celu naprawy uszkodzonego rdzenia kręgowego szczura

20:14

Połączenie przeszczepu nerwów obwodowych i modulacji macierzy w celu naprawy uszkodzonego rdzenia kręgowego szczura

Related Videos

16.8K Views

Przeszczep komórek śródrdzeniowych w celu ukierunkowania na róg brzuszny szyjki macicy w stwardnieniu zanikowym bocznym i urazowym uszkodzeniu rdzenia kręgowego

10:49

Przeszczep komórek śródrdzeniowych w celu ukierunkowania na róg brzuszny szyjki macicy w stwardnieniu zanikowym bocznym i urazowym uszkodzeniu rdzenia kręgowego

Related Videos

21.2K Views

Naprawa nerwów za pomocą bionicznego rusztowania przewodzącego w połączeniu ze stymulacją elektryczną

01:21

Naprawa nerwów za pomocą bionicznego rusztowania przewodzącego w połączeniu ze stymulacją elektryczną

Related Videos

178 Views

Przewody wysiewane komórkami Schwanna do regeneracji aksonów po urazie rdzenia kręgowego

03:58

Przewody wysiewane komórkami Schwanna do regeneracji aksonów po urazie rdzenia kręgowego

Related Videos

413 Views

Promowanie przeżycia i różnicowania nerwowych komórek macierzystych z koktajlami fibryny i czynnika wzrostu po ciężkim urazie rdzenia kręgowego

09:56

Promowanie przeżycia i różnicowania nerwowych komórek macierzystych z koktajlami fibryny i czynnika wzrostu po ciężkim urazie rdzenia kręgowego

Related Videos

12.8K Views

System radiotelemetryczny do monitorowania funkcji układu krążenia u szczurów z przecięciem rdzenia kręgowego i przeszczepami embrionalnych nerwowych komórek macierzystych

07:59

System radiotelemetryczny do monitorowania funkcji układu krążenia u szczurów z przecięciem rdzenia kręgowego i przeszczepami embrionalnych nerwowych komórek macierzystych

Related Videos

10.9K Views

Przeszczepienie nerwowych komórek macierzystych w eksperymentalnym modelu kontuzyjnym uszkodzenia rdzenia kręgowego

10:56

Przeszczepienie nerwowych komórek macierzystych w eksperymentalnym modelu kontuzyjnym uszkodzenia rdzenia kręgowego

Related Videos

13.5K Views

Eksperymentalne strategie wypełniania dużych luk tkankowych w uszkodzonym rdzeniu kręgowym po ostrym i przewlekłym uszkodzeniu

09:14

Eksperymentalne strategie wypełniania dużych luk tkankowych w uszkodzonym rdzeniu kręgowym po ostrym i przewlekłym uszkodzeniu

Related Videos

9.3K Views

In vivo (in vivo) Transfer genów do komórek Schwanna w nerwie kulszowym gryzoni za pomocą elektroporacji

05:40

In vivo (in vivo) Transfer genów do komórek Schwanna w nerwie kulszowym gryzoni za pomocą elektroporacji

Related Videos

9.3K Views

Badanie regeneracji aksonów ssaków: elektroporacja in vivo zwoju korzenia grzbietowego dorosłej myszy

06:17

Badanie regeneracji aksonów ssaków: elektroporacja in vivo zwoju korzenia grzbietowego dorosłej myszy

Related Videos

8.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code