Name: Biodegradowalny stent magnezowy Leczenie tętniaków worka workowego na modelu szczurzym - wprowadzenie techniki chirurgicznej (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 7 s
Description: Poznaj standaryzowaną technikę chirurgiczną leczenia tętniaków workowych u szczurów przy użyciu biodegradowalnych stentów magnezowych. Metoda ta umożliwia badanie nowych koncepcji urządzeń stentowych oraz procesów gojenia tętniaków.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dziękujemy Eugenowi Hofmannowi i Philine Zumstein za doskonałą pomoc techniczną i podzielenie się swoją wiedzą na temat procedur zakładania stentów. Dziękujemy Majlindzie Kalanderi za rysunek anatomiczny.

<ol><li>Molyneux, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((International+Subarachnoid+Aneurysm+Trial+%28ISAT%29+of+neurosurgical+clipping+versus+endovascular+coiling+in+2143+patients+with+ruptured+intracranial+aneurysms%3A+a+randomised+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">International Subarachnoid Aneurysm Trial (ISAT) of neurosurgical clipping versus endovascular coiling in 2143 patients with ruptured intracranial aneurysms: a randomised trial.</a> Lancet. 360 (9342), 1267-1274 (2002).</li>
<li>Molyneux, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((International+subarachnoid+aneurysm+trial+%28ISAT%29+of+neurosurgical+clipping+versus+endovascular+coiling+in+2143+patients+with+ruptured+intracranial+aneurysms%3A+a+randomised+comparison+of+effects+on+survival%2C+dependency%2C+seizures%2C+rebleeding%2C+subgroups%2C+and+aneurysm+occlusion%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">International subarachnoid aneurysm trial (ISAT) of neurosurgical clipping versus endovascular coiling in 2143 patients with ruptured intracranial aneurysms: a randomised comparison of effects on survival, dependency, seizures, rebleeding, subgroups, and aneurysm occlusion.</a> Lancet. 366 (9488), 809-817 (2005).</li>
<li>Marbacher, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraluminal+cell+transplantation+prevents+growth+and+rupture+in+a+model+of+rupture-prone+saccular+aneurysms%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Intraluminal cell transplantation prevents growth and rupture in a model of rupture-prone saccular aneurysms.</a> Stroke. 45 (12), 3684-3690 (2014).</li>
<li>Marbacher, S., Marjamaa, J., Abdelhameed, E., Hernesniemi, J., Niemela, M., Frosen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Helsinki+rat+microsurgical+sidewall+aneurysm+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">The Helsinki rat microsurgical sidewall aneurysm model.</a> J Vis Exp. (92), e51071(2014).</li>
<li>Marbacher, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loss+of+mural+cells+leads+to+wall+degeneration%2C+aneurysm+growth%2C+and+eventual+rupture+in+a+rat+aneurysm+model%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Loss of mural cells leads to wall degeneration, aneurysm growth, and eventual rupture in a rat aneurysm model.</a> Stroke. 45 (1), 248-254 (2014).</li>
<li>Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+rodent+surgery+for+the+new+surgeon%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Principles of rodent surgery for the new surgeon.</a> J Vis Exp. (47), (2011).</li>
<li>Bernal, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+rodent+survival+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Surg%22%5BJournal%5D)">Guidelines for rodent survival surgery.</a> J Invest Surg. 22 (6), 445-451 (2009).</li>
<li>Flege, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+characterization+of+a+coronary+polylactic+acid+stent+prototype+generated+by+selective+laser+melting%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mater+Sci+Mater+Med%22%5BJournal%5D)">Development and characterization of a coronary polylactic acid stent prototype generated by selective laser melting.</a> J Mater Sci Mater Med. 24 (1), 241-255 (2013).</li>
<li>Zartner, P., Cesnjevar, R., Singer, H., Weyand, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((First+successful+implantation+of+a+biodegradable+metal+stent+into+the+left+pulmonary+artery+of+a+preterm+baby%5BTitle%5D)+AND+%22Catheter+Cardiovasc+Interv%22%5BJournal%5D)">First successful implantation of a biodegradable metal stent into the left pulmonary artery of a preterm baby.</a> Catheter Cardiovasc Interv. 66 (4), 590-594 (2005).</li>
<li>Hakamata, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Green+fluorescent+protein-transgenic+rat%3A+a+tool+for+organ+transplantation+research%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Biophys+Res+Commun%22%5BJournal%5D)">Green fluorescent protein-transgenic rat: a tool for organ transplantation research.</a> Biochem Biophys Res Commun. 286 (4), 779-785 (2001).</li>
<li>Bouzeghrane, F., Naggara, O., Kallmes, D. F., Berenstein, A., Raymond, J. <a target="_blank" href="http://www.ajnr.org/content/31/3/418">International Consortium of Neuroendovascular C. In vivo experimental intracranial aneurysm models: a systematic review.</a> AJNR Am J Neuroradiol. 31 (3), 418-423 (2010).</li>
<li>Aquarius, R., Smits, D., Gounis, M. J., Leenders, W. P., De Vries, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+diverter+implantation+in+a+rat+model+of+sidewall+aneurysm%3A+a+feasibility+study%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurointerv+Surg%22%5BJournal%5D)">Flow diverter implantation in a rat model of sidewall aneurysm: a feasibility study.</a> J Neurointerv Surg. , (2017).</li>
<li>Indolfi, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+rat+model+of+small+vessel+stenting%5BTitle%5D)+AND+%22Basic+Res+Cardiol%22%5BJournal%5D)">A new rat model of small vessel stenting.</a> Basic Res Cardiol. 95 (3), 179-185 (2000).</li>
<li>Oyamada, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trans-iliac+rat+aorta+stenting%3A+a+novel+high+throughput+preclinical+stent+model+for+restenosis+and+thrombosis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Trans-iliac rat aorta stenting: a novel high throughput preclinical stent model for restenosis and thrombosis.</a> J Surg Res. 166 (1), e91-e95 (2011).</li>
<li>Kwon, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+bare+metal+stent+and+paclitaxel-eluting+stent+using+a+novel+rat+aorta+stent+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vet+Sci%22%5BJournal%5D)">Comparison of bare metal stent and paclitaxel-eluting stent using a novel rat aorta stent model.</a> J Vet Sci. 12 (2), 143-149 (2011).</li>
<li>Rouer, M., Meilhac, O., Delbosc, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+murine+model+of+endovascular+aortic+aneurysm+repair%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A new murine model of endovascular aortic aneurysm repair.</a> J Vis Exp. (77), e50740(2013).</li>
<li>Hardhammar, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduction+in+thrombotic+events+with+heparin-coated+Palmaz-Schatz+stents+in+normal+porcine+coronary+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Reduction in thrombotic events with heparin-coated Palmaz-Schatz stents in normal porcine coronary arteries.</a> Circulation. 93 (3), 423-430 (1996).</li>
<li>Guerrero, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antioxidant+effects+of+a+single+dose+of+acetylsalicylic+acid+and+salicylic+acid+in+rat+brain+slices+subjected+to+oxygen-glucose+deprivation+in+relation+with+its+antiplatelet+effect%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Lett%22%5BJournal%5D)">Antioxidant effects of a single dose of acetylsalicylic acid and salicylic acid in rat brain slices subjected to oxygen-glucose deprivation in relation with its antiplatelet effect.</a> Neurosci Lett. 358 (3), 153-156 (2004).</li>
<li>Niitsu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeat+oral+dosing+of+prasugrel%2C+a+novel+P2Y12+receptor+inhibitor%2C+results+in+cumulative+and+potent+antiplatelet+and+antithrombotic+activity+in+several+animal+species%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Repeat oral dosing of prasugrel, a novel P2Y12 receptor inhibitor, results in cumulative and potent antiplatelet and antithrombotic activity in several animal species.</a> Eur J Pharmacol. 579 (1-3), 276-282 (2008).</li>
<li>Kastrati, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracoronary+stenting+and+angiographic+results%3A+strut+thickness+effect+on+restenosis+outcome+%28ISAR-STEREO%29+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Intracoronary stenting and angiographic results: strut thickness effect on restenosis outcome (ISAR-STEREO) trial.</a> Circulation. 103 (23), 2816-2821 (2001).</li>
<li>Lowe, H. C., James, B., Khachigian, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+model+of+in-stent+restenosis%3A+rat+aortic+stenting%5BTitle%5D)+AND+%22Heart%22%5BJournal%5D)">A novel model of in-stent restenosis: rat aortic stenting.</a> Heart. 91 (3), 393-395 (2005).</li>
<li>Finn, A. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+rat+model+of+carotid+artery+stenting+for+the+understanding+of+restenosis+in+metabolic+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vasc+Res%22%5BJournal%5D)">A novel rat model of carotid artery stenting for the understanding of restenosis in metabolic diseases.</a> J Vasc Res. 39 (5), 414-425 (2002).</li>
</ol>

Prace te były wspierane przez fundusze badawcze Rady ds. Badań Naukowych, Kantonsspital Aarau, Aarau, Szwajcaria. Biodegradowalne stenty magnezowe zostały dostarczone przez Biotronik AG, Center for Vascular Intervention, Buelach, Szwajcaria. Autorzy ponoszą wyłączną odpowiedzialność za projekt i przebieg prezentowanego badania i deklarują brak sprzecznych interesów.

Biowchłanialne stenty i modele zwierzęce W ostatnich latach ogólny trend w medycynie odchodzi od implantów stałych (które pozostają w ciele pacjenta do końca życia) na rzecz materiałów biowchłanialnych. W szczególności stenty magnezowe są już dość dobrze znane w kardiologii 8,9. Niestety, stenty te nie zostały jeszcze przetestowane pod kątem innych zastosowań, takich jak choroby naczyń mózgowych. Z tego powodu zdecydowaliśmy się na zbadanie ...

Krwotok podpajęczynówkowy spowodowany pęknięciem tętniaka wewnątrzczaszkowego wiąże się z wysoką śmiertelnością i słabymi wynikami neurologicznymi u wielu osób, które przeżyły. Obecnie istnieją dwa ogólne podejścia do okluzji IA: albo mikrochirurgiczne przycinanie (które wymaga operacyjnego odsłonięcia tętniaka), albo okluzja wewnątrznaczyniowa. Ponieważ wykazano, że mniej inwazyjne leczenie cewką wewnątrznaczyniową IA z wąską szyjką wiąże się z nieco niższą chorobowością (szczególnie w krążeniu tylnym1,2), opcje leczenia wewnątrznaczyniowego stały się preferowaną metodą wielu ośrodków neurochirurgicznych. Opracowano liczne urządzenia w celu rozszerzenia wskazań do leczenia wewnątrznaczyniowego i przezwyciężenia głównego ograniczenia, jakim jest nawroty IA po zwijaniu. Stenty wewnątrzczaszkowe są szczególnie obiecujące w przezwyciężaniu tych ograniczeń, ponieważ służą jako rusztowanie do neoendotelizacji i zapobiegania przepuklinom cewkowym, a także chronią tętnicę rodzicielską i poprawiają śródświatełną śródtętniakową zakrzepicę spowodowaną zmniejszeniem dopływu krwi. Istnieje potrzeba zbadania nowych stentów wewnątrzczaszkowych w tanim modelu zwierzęcym; zarówno na poziomie makroskopowym, jak i molekularnym.
Celem tego badania było zaprojektowanie bezpiecznej, szybkiej i ustandaryzowanej techniki chirurgicznej do stosowania stentu w już ustalonym modelu tętniaka workowatego u szczurów3,4,5. W niniejszym projekcie oceniliśmy rolę biodegradowalnego stentu magnezowego.

<table><tbody><tr><td>Medetomidyna</td><td></td><td></td><td>dowolny ogólny</td></tr><tr><td>Ketamina</td><td></td><td></td><td>dowolny ogólny</td></tr><tr><td>Buprenorfina</td><td></td><td></td><td>dowolny ogólny</td></tr><tr><td>Sól fizjologiczna</td><td></td><td></td><td></td>buforowana fosforanem</tr><tr><td>Dodecylosiarczan sodu (0,1%)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>3-0 wchłanialny szew</td><td>Ethicon Inc., USA</td><td>VCP428G</td><td></td></tr><tr><td>5-0 non szew wchłanialny</td><td>Ethicon Inc., USA</td><td>8618G</td><td></td></tr><tr><td>6-0 szew niewchłanialny</td><td>B. Braun, Niemcy</td><td>C0766070</td><td></td></tr><tr><td>9-0 szew niewchłanialny</td><td>B. Braun, Niemcy</td><td>G1111140</td><td></td></tr><tr><td>10-0 szew niewchłanialny</td><td>Covidien, USA</td><td>Mikroskop operacyjny N2530 Monosof</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Zeiss, Niemcy</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop cyfrowy aparat</td><td>fotograficzny Sony, Japonia</td><td>HXR-MC1P</td><td></td></tr><tr><td>Standardowe narzędzia</td><td></td> chirurgiczne <td>wiele</td><td>patrz protokół 7.a</td></tr><tr><td>Instrumenty</td><td></td> mikrochirurgiczne <td></td><td>wiele patrz protokół 7.b</td></tr><tr><td>Aplikator klipsów naczyniowych</td><td>B. Braun, Niemcy</td><td>FT495T</td><td></td></tr><tr><td>Tymczasowe zaciski naczyniowe</td><td>B. Braun, Niemcy</td><td></td><td></td></tr><tr><td>19G Igła do nakłuwania& nbsp;</td><td>Angiomed GmbH, Niemcy</td><td>15820010</td><td></td></tr><tr><td>Hydrofobowy drut doprowadzający</td><td>Cook Medical, USA</td><td>G00650</td><td></td></tr><tr><td>4F sheat</td><td>Cordis Corporation, USA</td><td>504-604A</td><td></td></tr><tr><td>Strzykawka</td><td></td><td></td><td></td>do pompowania</tr><tr><td>Wytrząsarka laboratoryjna</td><td>Stuart</td><td>SRT6</td><td></td></tr><tr><td>Stent magnezowy 2,5/6 AMS z powłoką polimerową</td><td>Biotronik, Szwajcaria</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Obłożenie chirurgiczne&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sterylne waciki celulozowe</td> Strzykawki <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 ml i 2 ml</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Wydrążone igły 18G i 26G</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Izotoniczny chlorek</td><td></td><td></td><td></td>sodu</tr><tr><td>Mikroprobówki</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Maść do oczu</td><td>Bausch + Lomb Inc, USA</td><td>Lacrinorm</td><td>dowolny ogólny</td></tr><tr><td>Golarka</td><td></td><td></td><td></td> dla małych zwierząt</tr></tbody></table>

biodegradowalny stent magnezowy leczenie tętniaków worka workowego na modelu szczurzym - wprowadzenie techniki chirurgicznej

Biodegradable Magnesium Stent Treatment of Saccular Aneurysms in a Rat Model - Introduction of the Surgical Technique

Stały postęp w arsenale technik dostępnych do wewnątrznaczyniowego leczenia tętniaków wewnątrzczaszkowych wymaga przystępnych cenowo i powtarzalnych eksperymentalnych modeli zwierzęcych do testowania nowych materiałów embolizacyjnych, takich jak stenty i odwracacze przepływu. Celem niniejszego projektu było zaprojektowanie bezpiecznej, szybkiej i ustandaryzowanej techniki chirurgicznej embolizacji tętniaków worka workowego w stentach na szczurzym modelu zwierzęcym.
Tętniaki workowe zostały utworzone z przeszczepu tętniczego z aorty zstępującej. Tętniaki przeszczepiono mikrochirurgicznie przez zespolenie end-to-side do podnerkowej aorty brzusznej syngenicznego samca szczura rasy Wistar o masie >500 g. Po zespoleniu tętniaka wykonano embolizację tętniaka za pomocą balonowych stentów magnezowych rozprężalnych (2,5 mm x 6 mm). System stentów został wprowadzony wstecznie z dolnej aorty brzusznej przy użyciu zmodyfikowanej techniki Seldingera.
Po pilotażowej serii 6 zwierząt, łącznie 67 szczurów zostało przebadanych zgodnie z ustalonymi standardowymi procedurami operacyjnymi. Średni czas operacji, średni czas zespolenia i średni czas szycia miejsca wkłucia tętnicy wynosiły odpowiednio 167 ± 22 min, 26 ± 6 min i 11 ± 5 min. Śmiertelność wynosiła 6% (n=4). Wskaźnik zachorowalności wynosił 7,5% (n=5), a zakrzepicę w stencie stwierdzono w 4 przypadkach (n=2 wcześnie, n=2 późno w stencie).
Wyniki pokazują wykonalność standaryzowanej okluzji tętniaków workowatej ściany bocznej u szczurów - przy niskich wskaźnikach zachorowalności i śmiertelności. Ta procedura embolizacji stentu łączy w sobie możliwość zbadania nowatorskich koncepcji urządzeń opartych na stentach lub odwracaczach przepływu, a także molekularnych aspektów gojenia.

Średni czas trwania operacji wynosił 167 (± 22) min, z czego 26 (± 6) min zajęło stworzenie tętniaka, a kolejne 23 (± 7) min wymagało zastosowanie stentu i rekonstrukcja arteriotomii (Rysunek 3).
Głównymi punktami końcowymi badania były śmiertelność, zachorowalność oraz makroskopowa zakrzepica w stencie. Regularne okresy obserwacji wynosiły odpowiednio 7 dni (n=28) oraz 21 dni (n=32). Śmiertelność l...

Powtarzalne eksperymentalne modele zwierzęce są potrzebne do testowania nowych materiałów embolizacyjnych, które zostały zaprojektowane do leczenia wewnątrznaczyniowej niedrożności tętniaków wewnątrzczaszkowych (IA). Niniejsze badanie ma na celu opracowanie bezpiecznej i ustandaryzowanej techniki chirurgicznej embolizacji tętniaków worka w stentach w modelu zwierzęcym szczura.

Biodegradowalny stent magnezowy Leczenie tętniaków worka workowego na modelu szczurzym - wprowadzenie techniki chirurgicznej

The steady progess in the armamentarium of techniques available for endovascular treatment of intracranial aneurysms requires affordable and reproducable ...

Ogólnym celem tej standaryzowanej metody zamykania workowatych tętniaków ściany bocznej u szczurów przy użyciu biodegradowalnych stentów magnezowych jest zbadanie nowych koncepcji urządzeń do stentów i molekularnych aspektów gojenia tętniaka. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie neurochirurgii i neuroradiologii związane z funkcją nowych stentów lub urządzeń do zmiany kierunku. Główną zaletą tej techniki jest to, że stanowi ona ustandaryzowaną i bezpieczną procedurę o niskiej zachorowalności i śmiertelności.Jest również wysoce odtwarzalny, a tym samym poprawia wiarygodność powiązanych badań. W znieczuleniu ogólnym otwórz brzuch szczura dawcy poniżej wyrostka mieczykowatego. Najpierw naciąć wzdłuż linii środkowobrzusznej i oddzielić skórę od mięśni.Następnie przeanalizuj mięśnie brzucha i zidentyfikuj przeponę nad wątrobą w punkcie przyczepu jamy piersiowej. Następnie uzyskaj dostęp do klatki piersiowej i poddaj szczura eutanazji za pomocą dosercowego zastrzyku ketaminy. Następnie zmobilizuj lewe płuco i przymocuj je do prawej strony za pomocą wacika celulozowego.Następnie odsłoń łuk aorty i powyżej aorty zaciśnij azygos i lewe żyły kawałka czaszki za pomocą dwóch klamer na komary. Następnie przetnij między zaciskami i pozostaw zaciski przymocowane. Teraz zwiększ dostęp do łuku aorty i aorty zstępującej za pomocą mikronożyczek i mikro kleszczyków.Wzdłuż aorty zidentyfikuj lewą tętnicę podobojczykową i pierwszą tętnicę międzyżebrową. Teraz umieść niewchłanialny szew 6-0 tuż przy czaszce pierwszej tętnicy międzyżebrowej i zwiąż go. Na bliższym końcu przetnij aortę zaraz po początku lewej tętnicy podobojczykowej.Na koniec usuń nowo powstałego tętniaka za pomocą nacięcia tuż pod ligaturą. Po zmierzeniu tętniaka należy natychmiast przeszczepić przeszczep szczurowi biorcy. Rozpocznij operację na szczurze biorcy od środkowego brzusznego nacięcia dystalnego wyrostka mieczykowatego i otwórz mięśnie brzucha wzdłuż kresy białej.Następnie odsuń na bok jelito cienkie, jelito ślepe i okrężnicę i przymocuj samopodtrzymujący się retraktor, aby utrzymać otwartą jamę brzuszną. Umieść wacik pod wątrobą, aby poprawić ekspozycję zaotrzewnową. Masy tłuszczowe można również odsunąć na bok.Teraz otwórz otrzewną ciemieniową, aby odsłonić aortę brzuszną. Najpierw tępo rozetnij otaczający tłuszcz zaotrzewnowy, aby odsłonić większą długość naczynia. Zachowaj ostrożność podczas obchodzenia się z moczowodami, naczyniami jąder i tętnicą krezkową górną.Często pokrywa je cienka warstwa tkanki tłuszczowej. Przystępując do ostrego rozwarstwienia, chwyć tylko przydankę, aby uniknąć uszkodzenia ściany naczynia. Po odsłonięciu rozwarstwij aortę brzuszną.Zacznij od odcinka dystalnego, który jest najtrudniejszym technicznie segmentem do rozbioru. Użyj mikronożyczek i mikrokleszczy, zaczynając od żyły głównej wzdłuż warstwy przybyszowej tętniczej między naczyniami. Małe tętnice lędźwiowe mogą powstawać jako naczynia segmentowe z grzbietowej powierzchni aorty.Koaguluj i tnij je w razie potrzeby. Spróbuj także zidentyfikować prawą tętnicę biodrowo-lędźwiową. Jego pochodzenie jest najczęściej ogonowe do lewego odpowiednika, ale to się różni.Po zakończeniu sekcji, bez rozciągania naczynia, umieść pod nim małą, kolorową gumową podkładkę, aby wskazać miejsce, w którym zostanie wykonane nakłucie tętnicy. Teraz przystąp do wycięcia aorty brzusznej z żyły głównej w środkowym segmencie. Zidentyfikuj tętnicę krezkową górną u jej początku od aorty brzusznej i utrzymuj ją w stanie nienaruszonym.Nie uszkadzaj również splotu lędźwiowo-krzyżowego. Stosuj dużo spłukiwania i pamiętaj o krótkim czasie krzepnięcia. Ostatecznie ustal lokalizację stentu w środkowym segmencie i upewnij się, że pozostawiłeś wystarczająco dużo miejsca na naczynia brzuszne wokół stentu.Teraz umieść mały kawałek gazy i kolorową gumową podkładkę pod aortą, aby uzyskać lepszą ekspozycję. Następnie wypreparuj proksymalny odcinek aorty brzusznej znajdujący się proksymalnie do żyły nerkowej. Po otwarciu otrzewnej ciemieniowej należy oddzielić naczynia dwoma kleszczami.Następnie, po grzbietowym okrążeniu aorty, umieść pod nią mały kawałek kolorowej gumy, aby ułatwić przyszłe zastosowanie klipsa proksymalnego. Zacisnąć aortę w środkowym segmencie. Najpierw załóż dystalny zacisk, a następnie proksymalny zacisk.Następnie należy usunąć przydankę w miejscu planowanego zespolenia za pomocą mikrokleszczyków i mikronożyczek. Nie uszkodzić ścianki naczynia. Następnie podnieś mały fragment ściany naczynia za pomocą mikrokleszczyków i wykonaj liniowe nacięcie mikronożyczkami, aby wykonać otwór o tej samej wielkości co podstawa tętniaka.Następnie przepłukać tętnicę solą fizjologiczną w obu kierunkach za pomocą igły. Teraz umieść pierwsze dwa szwy zespolenia końc-bok na bliższym i dalszym końcu arterionomii. Chwyć naczynie tak mało, jak to możliwe podczas zakładania szwów.Następnie zamknij nacięcie przerwanymi szwami, aby zakończyć zespolenie. Aby kontynuować, najpierw zdejmij dystalny zacisk. Założyć dodatkowy szew w przypadku dużego krwawienia z przepływu zwrotnego.Następnie zdejmij oba zaciski i przepłucz miejsce zespolenia. Sprawdź drożność dystalnej aorty brzusznej za pomocą bezpośredniego testu udojowego. Następnie wyjmij wacik z gazy pod kolorową gumową podkładką i odczekaj 10 minut przed przystąpieniem do implantacji stentu.Aby rozpocząć implantację stentu, należy najpierw przyciąć miejsce wkłucia tętnicy w odcinku dystalnym przy dystalnym zacisku, a następnie w bliższym zacisku. Następnie usuń luźną tkankę łączną i część przydanki w miejscu nakłucia. Następnie umieść duży tymczasowy zacisk w bliższym segmencie, aby uniknąć poważnego krwotoku podczas nakłucia tętnicy.Teraz podnieś ścianę naczynia i nakłuj dystalny odcinek tętnicy za pomocą igły do nakłuwania 18G i dokładnie przepłucz tętnicę solą fizjologiczną. Następnie włóż prowadnik hydrofobowy w miejsce nakłucia i usuń proksymalny zacisk z dystalnego segmentu. Przesuń prowadnik do zacisku w segmencie proksymalnym.Następnie włóż teflonowy wprowadzacz za pomocą techniki Seldingera. Przesuń dyferencjał tak, aby był proksymalny do miejsca zespolenia. Następnie sprawdź, czy zawór trójdrogowy jest wyłączony, aby uniknąć niepotrzebnej utraty krwi.Następnie zdejmij prowadnik i dyflażkę. Po odkurzeniu systemu balonowego ustaw system na ciśnienie jednego bara, a następnie wprowadź obserwowalny stent magnezowy za pomocą wprowadzacza Fogarty w rozmiarze cztery. Kiedy stent jest w końcu na miejscu, ostrożnie napompuj balon do ośmiu lub dziewięciu barów, ciągle sprawdzając, czy szwy zespolenia nie są rozerwane.Następnie opróżnij i wyjmij balon. Podczas usuwania wprowadzacza przygotuj się na tymczasowy klips, ponieważ wsteczne sączenie się z bliższych tętnic patentowych może być znaczące. Teraz umieść klips w bliższym dystalnym segmencie i zdejmij tymczasowy zacisk w bliższym segmencie.Następnie dokładnie przepłukać miejsce wkłucia solą fizjologiczną i zamknąć je przerwanymi, niewchłanialnymi szwami 10-0. Jeśli to możliwe, unikaj chwytania się ścianki naczynia. Sprawdź drożność dystalnej tętnicy za pomocą bezpośredniego testu udojowego.Usuń kolorową gumową podkładkę. Zakończ zamykając pole operacyjne zgodnie z opisem w protokole technika. Średni czas trwania operacji wynosił około trzech godzin, z czego około 1/2 godziny było potrzebne na stworzenie tętniaka, a kolejne pół godziny na założenie stentu i rekonstrukcję arteriotomii.Nie było zgonów podczas operacji. W 87% operacji osiągnięto pożądany punkt końcowy tętnicy drożnej. Pozostałe zwierzęta to pięć, u których wystąpiły powikłania, i cztery, które zmarły w ciągu trzech dni z powodu wczesnej fazy zakrzepicy w stencie.U dwóch zwierząt późna zakrzepica w stencie wystąpiła 21 dni po operacji bez towarzyszących deficytów neurologicznych. Jedno zwierzę doznało rozejścia się rany w drugiej dobie po operacji, z kolejną utratą objętości. Po raz pierwszy wpadliśmy na pomysł tej metody, gdy zauważyliśmy, że biodegradowalne stenty zyskują coraz większą popularność w leczeniu choroby niedokrwiennej serca i zdaliśmy sobie sprawę, że dzisiejsze techniki wprowadzania stentów wiążą się z wysokimi wskaźnikami zachorowalności i śmiertelności.Po opanowaniu tej techniki można ją wykonać średnio w czasie dwóch godzin i 15 minut, jeśli jest wykonywana prawidłowo. Po tej procedurze można wykonać inne metody, takie jak embolizacja cewki wewnątrz tętniaka, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania dotyczące gojenia tętniaka.

biodegradable-magnesium-stent-treatment-saccular-aneurysms-rat-model

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neuronauka

W niniejszym materiale wideo przedstawiono sposób wykorzystania niedrogiego i niezawodnego modelu przedklinicznego do badania procesów patobiologicznych i patofizjologicznych rozwoju restenozy wewnątrzstentowej. Zaprezentowano również podłużny monitoring in vivo z wykorzystaniem OCT (optycznej koherentnej tomografii) oraz analizę obrazów OCT.

Obrazowanie restenozy wewnątrzstentowej: niedrogi, niezawodny i szybki model przedkliniczny

Niniejszy film przedstawia model służący do badania rozwoju hiperplazji intimy po implantacji stentu z wykorzystaniem ludzkiego naczynia (IMA) w modelu szczura z niedoborem odporności.

Przeszczepianie i stentowanie ludzkiej tętnicy piersiowej wewnętrznej (IMA): model ludzki do badania rozwoju restenozy wewnątrzstentowej

Opisano model implantacji stentu w tętnicy szyjnej myszy. W porównaniu z innymi podobnymi metodami, procedura ta jest bardzo szybka, prosta i dostępna, oferując możliwość zbadania w wygodny sposób reakcji ściany naczyniowej na różne stenty uwalniające leki oraz molekularnych mechanizmów restenozy.

Mysi model implantacji stentu w tętnicy szyjnej do badania restenozy

Modyfikacje histologiczne i biochemiczne po wykluczeniu endoprzeszczepu tętniaka są nadal niejasne. Opisujemy nowy model implantacji endprzeszczepu na tętniaku myszy. Dzięki analizie skrzepliny z utrzymującym się interfejsem krążącego krwiobiegu i bez niego oraz ocenie nowych biomateriałów wewnątrznaczyniowych, model ten pomoże lepiej zrozumieć patobiologię wykluczenia tętniaka wewnątrznaczyniowego.

Nowy mysi model wewnątrznaczyniowej naprawy tętniaka aorty

Mikrochirurgiczne tętniaki ściany bocznej u szczurów powstają w wyniku zespolenia przeszczepu aorty z boku do końca. Przedstawiamy instrukcje krok po kroku i omawiamy szczegóły anatomiczne i chirurgiczne, aby pomyślnie stworzyć eksperymentalnego tętniaka workowatego.

Mikrochirurgiczny model tętniaka ściany bocznej Helsinki Rat

Te badania donoszą o odwracalnym przyczepianiu wektorów genów adenowirusa do bezpowłokowych metalowych powierzchni stentów i modelowych dysków siatkowych. Przedłużone uwalnianie cząstek wirusa kompetentnych do transdukcji, uzależnione od hydrolizy środków sieciujących stosowanych do immobilizacji wektorów, skutkuje trwałą, specyficzną dla miejsca ekspresją transgenu w komórkach naczyniowych i stentowanych tętnicach.

Naczyniowy transfer genów z metalowych powierzchni stentów przy użyciu wektorów adenowirusowych połączonych przez hydrolizowalne środki sieciujące

Wprowadzenie cewnika poliuretanowego do światła aorty i podwiązanie szwem aorty powoduje przewlekłe niedotlenienie z powodu hipoperfuzji naczynia krwionośnego przybyszowego. W artykule opisano nowy zwierzęcy model tętniaka aorty brzusznej (AAA) o charakterystyce podobnej do AAA u ludzi.

Stworzenie modelu tętniaka aorty brzusznej u gryzoni poprzez zablokowanie przybyszowej perfuzji naczynia krwionośnego

Rekonstrukcja żyły głównej nadwątrobowej (SHVC) pozostaje trudnym krokiem w ortotopowym przeszczepie wątroby u szczurów. W tym artykule przedstawiamy krok po kroku protokół rekonstrukcji SHVC u szczurów przy użyciu nowatorskiej techniki zespolenia magnetycznego.

Szczurzy model ortotopowego przeszczepu wątroby z wykorzystaniem nowatorskiej techniki zespolenia magnetycznego do rekonstrukcji żyły głównej nadwątrobowej

Ten protokół opisuje wszczepianie ludzkich stentów wieńcowych do aorty brzusznej szczurów z tłem apoE-/- przy użyciu dostępu przezudowego. W porównaniu z innymi modelami zwierzęcymi, modele mysie mają zalety wysokiej przepustowości, odtwarzalności, łatwości obsługi i utrzymania oraz szerokiej dostępności markerów molekularnych.

Implantacja stentów wieńcowych wielkości człowieka do aorty brzusznej szczura przy użyciu dostępu przezudowego

Ten protokół opisuje etapy tworzenia modelu królika z dwoma tętniakami trawionymi elastazą o różnej hemodynamice (konstelacja kikuta i bifurkacji). Pozwala to na testowanie nowatorskich urządzeń wewnątrznaczyniowych w tętniakach o różnej angioarchitekturze i warunkach hemodynamicznych w obrębie jednego zwierzęcia.

Stworzenie dwóch tętniaków trawionych elastazą workowatą o różnej hemodynamice u jednego królika

Przeprowadziliśmy jednopunktowe, lipofilowe wstrzyknięcie znacznika komórkowego w celu śledzenia komórek śródbłonka, a następnie arteriotomię i zszycie tętniaków ściany bocznej na aorcie szczura w jamie brzusznej. Tworzenie się neointima wydawało się zależne od tętnicy macierzystej w tętniakach pozbawionych komórek i było promowane przez rekrutację z komórek ściany tętniaka w ważnych ścianach bogatych w komórki.

Wykorzystanie iniekcji znacznika komórkowego do zbadania pochodzenia komórek tworzących neointimę w modelu ściany bocznej worka workowego szczura

Poznaj standaryzowaną technikę chirurgiczną leczenia tętniaków workowych u szczurów przy użyciu biodegradowalnych stentów magnezowych. Metoda ta umożliwia badanie nowych koncepcji urządzeń stentowych oraz procesów gojenia tętniaków.

Biodegradowalny stent magnezowy Leczenie tętniaków worka workowego na modelu szczurzym - wprowadzenie techniki chirurgicznej

Przeglądaj więcej filmów