-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Advanced Biology
Test TUNEL
Test TUNEL
JoVE Science Education
Cell Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Cell Biology
The TUNEL Assay

4.14: Test TUNEL

93,171 Views
08:12 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Jedną z cech charakterystycznych apoptozy jest fragmentacja jądrowego DNA przez nukleazy. Enzymy te są aktywowane przez kaspazy, rodzinę białek, które realizują program śmierci komórki. Test TUNEL to metoda, która wykorzystuje tę cechę do wykrywania komórek apoptotycznych. W tym teście enzym zwany końcową deoksynukleotydylotransferazą katalizuje dodawanie nukleotydów dUTP do wolnych końców 3' pofragmentowanego DNA. Używając dUTP, które są oznaczone znacznikami chemicznymi, które mogą wytwarzać fluorescencję lub kolor, można specyficznie zidentyfikować komórki apoptotyczne.

Film JoVE na temat testu TUNEL rozpoczyna się od omówienia, w jaki sposób można wykorzystać tę technikę do wykrywania komórek apoptotycznych. Następnie przechodzimy przez ogólny protokół wykonywania testów TUNEL na skrawkach tkanek i wizualizacji wyników za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej. Na koniec omówionych zostanie kilka zastosowań testu w bieżących badaniach.

Procedure

Test TUNEL jest najczęściej stosowany do wykrywania komórek ulegających apoptozie, która jest formą zaprogramowanej śmierci komórki. Apoptoza jest ważnym procesem biologicznym podczas rozwoju i utrzymania homeostazy tkanek. Barwienie metodą TUNEL pozwala na wizualizację i kwantyfikację komórek apoptotycznych. Pomaga to naukowcom testować skuteczność nowych metod leczenia zaburzeń, w których apoptoza jest albo zahamowana, jak w przypadku raka, albo wzmocniona, jak w przypadku neurodegeneracji.

Ten film wyjaśni, w jaki sposób test TUNEL może być wykorzystany do oznaczania komórek poddawanych apoptozie, protokołu krok po kroku do wykonywania tej metody w skrawkach tkanki, oraz w jaki sposób naukowcy stosują tę technikę do zrozumienia mechanizmów śmierci komórki.

Zanim zagłębimy się w protokół testu TUNEL, omówmy zasady stojące za tą techniką.

Jedną z wielu charakterystycznych cech apoptozy jest fragmentacja DNA. Jak dochodzi do fragmentacji DNA? Apoptoza jest przeprowadzana przez enzymy zwane kaspazami obecne w cytozolu. Ich podstawową rolą jest rozszczepianie białek w celu rozmontowania komórki. Ponadto kaspazy aktywują enzym zwany DNazą aktywowaną kaspazą lub CAD, odłączając go od jego inhibitora - ICAD. Aktywowana CAD to endonukleaza, która przemieszcza się do jądra i rozszczepia chromosomalne DNA.

Rozszczepienie DNA ostatecznie powoduje akumulację fragmentów DNA z naciętymi końcami, a test TUNEL fluorescencyjnie znakuje te nacięte końce pofragmentowanego DNA, umożliwiając naukowcom wykrycie apoptozy. Ale jak to się dzieje? W tym celu musisz zrozumieć reakcję TUNEL. TUNEL oznacza końcowe znakowanie końca dUTP za pośrednictwem deoksynukleotydylotransferazy. Dwa główne odczynniki TUNEL to końcowa deoksynukleotydylotransferaza lub TdT i trifosforan deoksyurydyny lub dUTP, które mogą być znakowane fluorescencyjnie w celu ułatwienia wykrywania.

Aby zrozumieć reakcję TUNEL, wróćmy do komórek apoptotycznych z fragmentami DNA. Te nacięte fragmenty mają wolne grupy hydroksylowe 3′. Po dodaniu odczynników TUNEL do próbki zawierającej komórki apoptotyczne, znakowane fluorescencyjnie dUTP przyłączają się do tych grup hydroksylowych 3′ za pomocą enzymu katalizatora TdT. Komórki barwione tą procedurą nazywane są komórkami TUNEL-dodatnimi, które można następnie uwidocznić za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej.

Teraz, gdy rozumiesz podstawowe zasady i koncepcje stojące za testem TUNEL, przedstawmy ogólny protokół wykonywania tej techniki w sekcjach tkanek. Główne etapy testu TUNEL obejmują utrwalenie tkanki będącej przedmiotem zainteresowania, przepuszczalność tkanki, dodanie odczynników TUNEL, zatrzymanie reakcji TUNEL i wreszcie analizę.

Po pierwsze, tkanka będąca przedmiotem zainteresowania musi zostać utrwalona w celu zachowania struktur biologicznych. Utrwalanie działa poprzez sieciowanie białek w komórkach. W przypadku testu TUNEL tkanki można utrwalić, dodając je do roztworu zawierającego 4% paraformaldehydu przez 4–24 godziny w temperaturze 4°C. Po utrwaleniu kriosekcję tkanki na cienkie plasterki o wielkości 10 μm lub mniejszej.

Kolejnym krokiem jest przenikanie, które pozwala odczynnikom takim jak enzym TdT przeniknąć do jądra komórkowego. Permeabilizację skrawków tkanek można przeprowadzić, dodając tkankę do roztworu proteinazy K przez 5–15 minut w temperaturze 37°C. Skrawki tkanek należy płukać roztworem soli fizjologicznej buforowanym fosforanami na wytrząsarce orbitalnej przez 15–30 minut w temperaturze pokojowej.

Po przepuszczalności enzym TdT i znakowane fluorescencyjnie dUTP są dodawane do skrawków tkanki wraz z buforem znakującym zawierającym kobalt, który działa jako kofaktor reakcji TUNEL. Mieszaninę reakcyjną TUNEL i wycinek tkankowy inkubuje się razem przez 1–3 godziny w temperaturze 37°C i chroni przed światłem, aby zapobiec blaknięciu fluorescencji.

Po inkubacji do wycinka tkankowego dodaje się bufor zatrzymujący w celu zatrzymania reakcji TUNEL, a po krótkiej inkubacji skrawki przemywa się solą fizjologiczną buforowaną fosforanami. Na koniec skrawki tkanek wybarwione za pomocą znakowanego fluorescencyjnie dUTP są wizualizowane za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej i oceniane pod kątem lokalizacji komórek TUNEL dodatnich w danej tkance. Śmierć komórki można określić ilościowo, po prostu licząc procent komórek TUNEL dodatnich w danym wycinku tkanki.

Teraz, gdy już wiesz, jak wykonać test TUNEL w celu wykrycia komórek apoptotycznych, omówmy, w jaki sposób ten test można wykorzystać do odpowiedzi na pytania zadawane przez biologów komórkowych.

Śmierć komórki zachodzi jako normalna część rozwoju w celu rzeźbienia tkanek i struktur oraz eliminacji niepotrzebnych komórek. Dlatego naukowcy zainteresowani tym zjawiskiem badają wpływ prenatalnej ekspozycji na różne substancje na apoptozę podczas rozwoju. W tym przypadku naukowcy byli zainteresowani zbadaniem wpływu prenatalnej ekspozycji na alkohol na rozwój mózgu. Wyniki barwienia TUNEL przeprowadzonego na mózgach płodów wykazały zwiększoną apoptozę w tkankach, które były prenatalnie narażone na działanie alkoholu, w porównaniu ze zwierzętami kontrolnymi.

Naukowcy wykorzystują również test TUNEL do badania apoptozy w odpowiedzi na infekcję bakteryjną. W tym eksperymencie naukowcy opracowali model zapalenia płuc, wstrzykując myszom Pseudomonas aeruginosa, który wywołuje zapalenie płuc. Następnie usunięto tkankę płucną i wykonano barwienie TUNEL w celu zbadania apoptozy w odpowiedzi na infekcję bakteryjną. Wyniki pokazują, że śmierć komórek apoptotycznych wzrosła u myszy narażonych na działanie bakterii w porównaniu ze zwierzętami kontrolnymi.

Wreszcie, barwienie TUNEL może być stosowane na próbkach ludzkich guzów w celu określenia reakcji guza na leki. W tym przykładzie próbki guza pobrano od pacjentów i poddano hodowli ex vivo. Następnie byli leczeni lekami przedklinicznymi i oceniani pod kątem odpowiedzi za pomocą testu TUNEL. Uzyskane dane pokazują, że leczenie lekiem hamującym białko szoku cieplnego 90 znacznie zwiększa apoptozę w tkance nowotworowej.

Właśnie obejrzałeś film JoVE na temat używania testu TUNEL do wykrywania komórek ulegających apoptozie. W tym filmie omówiono zasady barwienia metodą TUNEL oraz protokół krok po kroku umożliwiający wykonanie testu TUNEL na skrawkach tkanki. Sprawdziliśmy również, w jaki sposób można zastosować tę metodę do zrozumienia zaprogramowanej śmierci komórki podczas rozwoju i choroby. Jak zawsze, dziękujemy za oglądanie!

Transcript

Test TUNEL jest najczęściej stosowany do wykrywania komórek ulegających apoptozie, która jest formą zaprogramowanej śmierci komórki. Apoptoza jest ważnym procesem biologicznym podczas rozwoju i utrzymania homeostazy tkanek. Barwienie metodą TUNEL pozwala na wizualizację i kwantyfikację komórek apoptotycznych. Pomaga to naukowcom testować skuteczność nowych metod leczenia zaburzeń, w których apoptoza jest albo zahamowana, jak w przypadku raka, albo wzmocniona, jak w przypadku neurodegeneracji.

Ten film wyjaśni, w jaki sposób test TUNEL może być wykorzystany do oznaczania komórek poddawanych apoptozie, protokołu krok po kroku do wykonywania tej metody w skrawkach tkanki, oraz w jaki sposób naukowcy stosują tę technikę do zrozumienia mechanizmów śmierci komórki.

Zanim zagłębimy się w protokół testu TUNEL, omówmy zasady stojące za tą techniką.

Jedną z wielu charakterystycznych cech apoptozy jest fragmentacja DNA. Jak dochodzi do fragmentacji DNA? Apoptoza jest przeprowadzana przez enzymy zwane kaspazami obecne w cytozolu. Ich podstawową rolą jest rozszczepianie białek w celu rozmontowania komórki. Ponadto kaspazy aktywują enzym zwany DNazą aktywowaną kaspazą lub CAD, odłączając go od inhibitora? ICAD. Aktywowana CAD to endonukleaza, która przemieszcza się do jądra i rozszczepia chromosomalne DNA.

Rozszczepienie DNA ostatecznie powoduje akumulację fragmentów DNA z naciętymi końcami, a test TUNEL fluorescencyjnie znakuje te nacięte końce pofragmentowanego DNA, umożliwiając naukowcom wykrycie apoptozy. Ale jak to się dzieje? W tym celu musisz zrozumieć reakcję TUNEL. TUNEL oznacza końcowe znakowanie końca dUTP za pośrednictwem deoksynukleotydylotransferazy. Dwa główne odczynniki TUNEL to końcowa deoksynukleotydylotransferaza lub TdT i trifosforan deoksyurydyny lub dUTP, które mogą być znakowane fluorescencyjnie w celu ułatwienia wykrywania.

Aby zrozumieć reakcję TUNEL, wróćmy do komórek apoptotycznych z fragmentami DNA. Te nacięte fragmenty mają wolne 3? grupy hydroksylowe. Po dodaniu odczynników TUNEL do próbki zawierającej komórki apoptotyczne, znakowane fluorescencyjnie dUTP przyłączają się do tych 3? grupy hydroksylowe za pomocą enzymu katalizatora TdT. Komórki barwione tą procedurą nazywane są komórkami TUNEL-dodatnimi, które można następnie uwidocznić za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej.

Teraz, gdy rozumiesz podstawowe zasady i koncepcje stojące za testem TUNEL, przedstawmy ogólny protokół wykonywania tej techniki w sekcjach tkanek. Główne etapy testu TUNEL obejmują utrwalenie tkanki będącej przedmiotem zainteresowania, przepuszczalność tkanki, dodanie odczynników TUNEL, zatrzymanie reakcji TUNEL i wreszcie analizę.

Po pierwsze, tkanka będąca przedmiotem zainteresowania musi zostać utrwalona w celu zachowania struktur biologicznych. Utrwalanie działa poprzez sieciowanie białek w komórkach. W przypadku testu TUNEL tkanki można utrwalić, dodając je do roztworu zawierającego 4% paraformaldehydu przez 4–24 godziny w temperaturze 4°C. Po utrwaleniu należy dokonać kriosekcji tkanki na cienkie plastry o grubości 10 μm lub mniejszej.

Kolejnym krokiem jest przenikanie, które pozwala odczynnikom takim jak enzym TdT przeniknąć do jądra komórkowego. Permeabilizację skrawków tkanek można przeprowadzić przez dodanie tkanki do roztworu proteinazy K przez 5–15 minut w temperaturze 37°C. Płukać skrawki tkanek solą fizjologiczną buforowaną fosforanami na wytrząsarce orbitalnej przez 15–30 minut w temperaturze pokojowej.

Po przepuszczalności enzym TdT i znakowane fluorescencyjnie dUTP są dodawane do skrawków tkanki wraz z buforem znakującym zawierającym kobalt, który działa jako kofaktor reakcji TUNEL. Mieszaninę reakcyjną TUNEL i wycinek tkankowy inkubuje się razem przez 1–3 godziny w temperaturze 37° C i chronione przed światłem, aby zapobiec blaknięciu fluorescencji.

Po inkubacji do wycinka tkankowego dodaje się bufor zatrzymujący w celu zatrzymania reakcji TUNEL, a po krótkiej inkubacji skrawki przemywa się solą fizjologiczną buforowaną fosforanami. Na koniec skrawki tkanek wybarwione za pomocą znakowanego fluorescencyjnie dUTP są wizualizowane za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej i oceniane pod kątem lokalizacji komórek TUNEL dodatnich w danej tkance. Śmierć komórki można określić ilościowo, po prostu licząc procent komórek TUNEL dodatnich w danym wycinku tkanki.

Teraz, gdy już wiesz, jak wykonać test TUNEL w celu wykrycia komórek apoptotycznych, omówmy, w jaki sposób ten test można wykorzystać do odpowiedzi na pytania zadawane przez biologów komórkowych.

Śmierć komórki zachodzi jako normalna część rozwoju w celu rzeźbienia tkanek i struktur oraz eliminacji niepotrzebnych komórek. Dlatego naukowcy zainteresowani tym zjawiskiem badają wpływ prenatalnej ekspozycji na różne substancje na apoptozę podczas rozwoju. W tym przypadku naukowcy byli zainteresowani zbadaniem wpływu prenatalnej ekspozycji na alkohol na rozwój mózgu. Wyniki barwienia TUNEL przeprowadzonego na mózgach płodów wykazały zwiększoną apoptozę w tkankach, które były prenatalnie narażone na działanie alkoholu, w porównaniu ze zwierzętami kontrolnymi.

Naukowcy wykorzystują również test TUNEL do badania apoptozy w odpowiedzi na infekcję bakteryjną. W tym eksperymencie naukowcy opracowali model zapalenia płuc poprzez wstrzyknięcie myszom Pseudomonas aeruginosa, który wywołuje zapalenie płuc. Następnie usunięto tkankę płucną i wykonano barwienie TUNEL w celu zbadania apoptozy w odpowiedzi na infekcję bakteryjną. Wyniki pokazują, że śmierć komórek apoptotycznych wzrosła u myszy narażonych na działanie bakterii w porównaniu ze zwierzętami kontrolnymi.

Wreszcie, barwienie TUNEL może być stosowane na próbkach ludzkich guzów w celu określenia reakcji guza na leki. W tym przykładzie próbki guza pobrano od pacjentów i poddano hodowli ex vivo. Następnie byli leczeni lekami przedklinicznymi i oceniani pod kątem odpowiedzi za pomocą testu TUNEL. Uzyskane dane pokazują, że leczenie lekiem hamującym białko szoku cieplnego 90 znacznie zwiększa apoptozę w tkance nowotworowej.

Właśnie obejrzałeś film JoVE na temat używania testu TUNEL do wykrywania komórek ulegających apoptozie. W tym filmie omówiono zasady barwienia metodą TUNEL oraz protokół krok po kroku umożliwiający wykonanie testu TUNEL na skrawkach tkanki. Sprawdziliśmy również, w jaki sposób można zastosować tę metodę do zrozumienia zaprogramowanej śmierci komórki podczas rozwoju i choroby. Jak zawsze, dziękujemy za oglądanie!

Explore More Videos

Test TUNEL apoptoza programowana śmierć komórki proces biologiczny homeostaza tkanek barwienie TUNEL nowe metody leczenia zaburzenia rak neurodegeneracja mechanizmy śmierci komórki fragmentacja DNA kaspazy DNaza aktywowana kaspazą (CAD) endonukleaza rozszczepienie chromosomalnego DNA wykrywanie fragmentarycznego DNA

Related Videos

Wprowadzenie do podziału komórek

10:03

Wprowadzenie do podziału komórek

Cell Biology

80.0K Wyświetlenia

Analiza cyklu komórkowego

09:32

Analiza cyklu komórkowego

Cell Biology

61.6K Wyświetlenia

Obrazowanie mitozy na żywo

09:57

Obrazowanie mitozy na żywo

Cell Biology

78.7K Wyświetlenia

Wprowadzenie do ruchliwości i migracji komórek

08:52

Wprowadzenie do ruchliwości i migracji komórek

Cell Biology

35.3K Wyświetlenia

Test migracji Transwell

08:24

Test migracji Transwell

Cell Biology

128.5K Wyświetlenia

Test inwazji przy użyciu macierzy 3D

07:58

Test inwazji przy użyciu macierzy 3D

Cell Biology

13.6K Wyświetlenia

Wprowadzenie do endocytozy i egzocytozy

09:27

Wprowadzenie do endocytozy i egzocytozy

Cell Biology

79.5K Wyświetlenia

Test biotynylacji na powierzchni komórki

09:13

Test biotynylacji na powierzchni komórki

Cell Biology

80.0K Wyświetlenia

Barwniki FM w recyklingu pęcherzyków

08:36

Barwniki FM w recyklingu pęcherzyków

Cell Biology

13.2K Wyświetlenia

Wprowadzenie do metabolizmu komórkowego

10:19

Wprowadzenie do metabolizmu komórkowego

Cell Biology

44.6K Wyświetlenia

Test bioluminescencji ATP

08:32

Test bioluminescencji ATP

Cell Biology

48.3K Wyświetlenia

Wykrywanie reaktywnych form tlenu

09:08

Wykrywanie reaktywnych form tlenu

Cell Biology

33.2K Wyświetlenia

Wprowadzenie do śmierci komórki

10:06

Wprowadzenie do śmierci komórki

Cell Biology

56.8K Wyświetlenia

Etykietowanie załącznika V i jodku propidyny

09:09

Etykietowanie załącznika V i jodku propidyny

Cell Biology

76.8K Wyświetlenia

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code