Name: Regulacja genów i terapia celowana w raku żołądka z przerzutami otrzewnej: wyniki radiologiczne z tomografii komputerowej o podwójnej energii i PET/CT (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 28 s
Description: Poznaj metodę dwuenergetycznej tomografii komputerowej i PET/CT do oceny przerzutów otrzewnowych raka żołądka u myszy. Technika ta umożliwia nieinwazyjne monitorowanie wzrostu guza i skuteczności terapii.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca była wspierana przez NSFC (nr U1532107) i projekt inżynierii biomedycznej Uniwersytetu Jiao Tong w Szanghaju (nr . YG2014MS53). Autorzy pragną podziękować Jianying Li i Yan Shen za ich pomocne komentarze i wysiłki związane z wsparciem technicznym w rozwoju metody obrazowania DECT i PET/CT.

Ta praca została wykonana ściśle zgodnie ze standardami ustalonymi przez Wytyczne dotyczące opieki i użytkowania zwierząt laboratoryjnych Uniwersytetu Jiao Tong w Szanghaju i została zatwierdzona przez laboratoryjną Komisję Etyki Zwierząt Szpitala Ruijin.
1. Rak żołądka Przerzuty do otrzewnej Model zwierzęcy
<ol>
	<li>Podziel umiarkowanie zróżnicowaną linię komórkową ludzkiego raka żołądka SGC-7901 na grupę SGC-7901 / sFRP1 i grupę SGC-7901 / wektor. Hodować obie grupy komórek oddzielnie w RPMI 1640 uzupełnionym 10% płodową surowicą bydlęcą, 100 jednostkami/ml streptomycyny i 100 μg/ml penicyliny w temperaturze 37 °C w wilgotnej atmosferze z 5% CO2 .</li>
	<li>Użyj 4-6 tygodniowych samic nagich myszy atymicznych BALB/c o masie ciała od 25 do 30 g. Umieść zwierzęta w określonych warunkach wolnych od patogenów w obiekcie dla zwierząt.</li>
	<li>Podziel myszy losowo na grupę nadekspresji sFPR1 i pustą grupę ładującą sFPR1. 
	UWAGA: Każda grupa miała dziesięć nagich myszy; dwadzieścia myszy losowo podzielono na grupę leczoną TGF-β1 i grupę kontrolną TGF-β1, z maksymalnie 5 nagimi myszami na klatkę zwierzęcą.</li>
	<li>Ustalić grupę modeli ksenoprzeszczepów z nadekspresją sFPR1 z przerzutami otrzewnowymi, podając 150 μl (2 x 106 komórek/ml) zawiesin komórek SGC-7901 / sFRP1 przez jamę brzuszną; Komórki SGC-7901/wektor są podawane w celu ustalenia pustej grupy obciążeniowej. 
	UWAGA: Użyj metody zliczania hemocytometru, aby określić stężenie komórek20.</li>
	<li>Ustal grupę modeli ksenoprzeszczepów z przerzutami otrzewnej, podając 150 μl (2 x 106 komórek/ml) zawiesiny komórek SGC-7901 przez jamę brzuszną. Terapię celowaną inhibitorem TGF-β1 SB431542 podawać myszom w grupie leczonej po okresie dwóch tygodni wzrostu we wstrzyknięciu dootrzewnowym w dawce 100 μl/10 g masy ciała co drugi dzień.
	<ol>
		<li>Podawać normalną sól fizjologiczną w tej samej dawce myszom w grupie kontrolnej.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Skan DECT i PET/CT należy wykonać 1 dzień przed zabiegiem i 1 dzień, 7 dni, 14 dni i 21 dni po zabiegu.</li>
</ol>
2. DECT dla modelu zwierzęcego z przerzutami do otrzewnowej
UWAGA: Eksperyment z obrazowaniem na zwierzętach został przeprowadzony na tomografie komputerowym o podwójnej energii (zobacz Tabelę materiałów). Stworzyliśmy powiązany protokół obrazowania DECT zgodnie z wcześniejszymi badaniami.
<ol>
	<li>Konfiguracja protokołu obrazowania DECT
	<ol>
		<li>Na komputerze konsoli do przetwarzania obrazu wybierz ikonę "zarządzanie protokołami", aby przejść do następnego interfejsu, a następnie kliknij opcję "zarządzanie protokołami", aby wyświetlić ekran zarządzania protokołami.</li>
		<li>W interfejsie "Protokół użytkownika" wybierz obszar brzucha, aby przejść do listy protokołów brzusznych.</li>
		<li>Kliknij puste miejsce na listach protokołów i wybierz przycisk "Nowy", aby wpisać nazwę nowego protokołu: "Skanowanie DECT zwierząt". Naciśnij "Enter" na klawiaturze i wybierz przycisk "Scout" w wyskakującym okienku, kliknij "OK", aby skonfigurować serię scout (pierwszą serię).</li>
		<li>Wybierz tryb "XY" dla "Anatomicznego punktu odniesienia" i "pozycję leżącą głową na plecach" dla "Orientacji pacjenta". Kliknij opcję "automatyczny transfer" i wybierz lokalizację stacji roboczej, do której zostanie przesłana seria obrazów. Nazwa "Faza zwiadu" w opisie serii.</li>
		<li>Na ekranie 'View Edit' upewnij się, że odpowiednie parametry skanowania są ustawione w następujący sposób: opcje "Lokalizacja początkowa" i "Lokalizacja końcowa" są ustawione odpowiednio na "S50" i "I50", "KV" na "100", "mA" na "80", "90°" dla "Bocznej pozycji zwiadowczej", "0°" oznacza "pozycję zwiadowczą AP", a "zwiadowca WW/WL" na "400/40".</li>
		<li>Następnie utwórz drugą serię dla skanowania nieulepszonego. Kliknij "Utwórz nową serię" w wyskakującym okienku, aby wybrać ikony "Osiowy" i "Utwórz po".</li>
		<li>Nazwij serię jako "-C phase" w opisie serii i włącz opcję "Pokaż lokalizator". W interfejsie typu skanowania wybierz typ skanowania "spiralnego" i 0,5 s dla "Czas obrotu", kliknij opcję "Prędkość gruba", aby ustawić parametry (Pokrycie detektora przy 40 mm, Grubość spirali przy 0,625 mm, Skok i prędkość przy 0,516:1/20,62, Czas obrotu przy 0,5 s) w wyskakującym okienku, Interwał przy 0,625 mm, Gantry Tit na 0, SFOV wybierz Small Body, kV na 100, kliknij "mA", a następnie wpisz 600 dla Manual mA.</li>
		<li>Kliknij ikonę "Parametry zwiadu" i otwórz wyskakujące okienko "Opcja zwiadu". Wybierz "Plus" w trybie zwiadu; kliknij ikonę "Slice", aby wybrać tryb "ss50 slice 50%" na ekranie "ASiR Setup". Ustaw pozostałe parametry w następujący sposób: DFOV na 25 cm, R/L i A/P Center na 0 cm, typ Recon wybierz "Stnd", Rozmiar matrycy na 512.</li>
		<li>Utwórz trzecią serię skanowania w celu rozszerzonego skanowania, powtarzając krok 2.1.8, nazwij ją jako "+C Faza kontroli jakości" i włącz opcję "Pokaż lokalizator"; pierwsza grupa to konfiguracja serii faz tętniczych.</li>
		<li>W interfejsie "Typ skanowania" kliknij "GSI (Gemstone Spectral Imaging)" i wybierz typ skanowania "spiralny", wybierz protokół "GSI-52" w oknie "Wybór ustawień wstępnych GSI brzucha". Ustaw lokalizację początkową i lokalizację końcową zgodnie z skanowaniem nierozszerzonym.
		<ol>
			<li>Kliknij ikonę "Parametry zwiadu" i otwórz wyskakujące okienko "Opcja zwiadu". W trybie zwiadowczym wybierz "Plus" i w "Opcji GSI" kliknij "QC"; Pozostałe parametry są takie same jak w kroku 2.1.8.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Kliknij ikonę "R2" i wybierz "TAK" w zakładce "Recon włączony". Wybierz "Grubość" na 0,625 i wpisz 0,625 jako "Interwał". Otwórz wyskakujące okienko "Opcja zwiadu", w trybie zwiadu wybierz "Plus"; w opcjach GSI kliknij "Mono" i ustaw keV na 70 keV; W oknie ASiR Setup wybierz tryb "GS40 40%" dla konfiguracji GSI ASiR. Pozostałe parametry ustawia się w kroku 2.1.8. Nazwij ten krok jako "+C 70keV phase".</li>
		<li>Kliknij ikonę "R3" i wybierz "TAK" w zakładce "Zwiad włączony". Ustaw "Grubość" na 1,25 i wpisz 0,625 jako "Interwał". Otwórz wyskakujące okienko "Opcja zwiadu", w trybie zwiadu wybierz "Plus" i "IQ ulepszone"; w opcjach GSI kliknij "Mono", ustaw keV na 70 keV i kliknij "GSI Data File"; upewnij się, że konfiguracja GSI ASiR jest zgodna z krokiem 13. Pozostałe parametry ustawia się jak w kroku 2.1.8. Nazwij to jako "+C Faza mono".</li>
		<li>Kliknij "Dodaj grupę", aby utworzyć dwie grupy skanowania, które będą reprezentować odpowiednio fazę portalu i fazę opóźnienia. Upewnij się, że zakresy "Lokalizacja początkowa" i "Lokalizacja końcowa" każdej fazy skanowania są spójne, a pozostałe parametry są takie same jak w fazie tętniczej. Wpisz czas opóźnienia w "Grupie przygotowawczej": pierwsza grupa (faza tętnicza) po 0 s, druga grupa (faza wrotna) po 8 s, a trzecia grupa (faza opóźniająca) po 16 s.</li>
		<li>Kliknij opcję "Akceptuj", aby zapisać protokół po wprowadzeniu wszystkich ustawień.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Proces obrazowania DECT
	<ol>
		<li>Przed każdym skanowaniem wybieraj losowo nagie myszy z grupy leczonej i kontrolnej. Umieść wybrane zwierzęta w nowych klatkach i oznacz je osobno.</li>
		<li>Pościć myszy przez 4 godziny popijając wodą, ale bez jedzenia i ściółki.</li>
		<li>Usuń myszy eksperymentalne z centrum eksperymentów na zwierzętach na 1 godzinę przed skanowaniem i upewnij się, że myszy są umieszczone w nowym, ciepłym środowisku do momentu rozpoczęcia skanowania.</li>
		<li>Znieczulij wszystkie myszy eksperymentalne wstrzyknięciem dootrzewnowym 2,5% pentobarbitalu sodu (1,0 ml / kg masy ciała) przed obrazowaniem skanowania DECT i potwierdź głębokość znieczulenia za pomocą odruchu szczypania palca u nogi. Stosuj maść na oczy, aby zapobiec wysuszeniu podczas znieczulenia. 
		UWAGA: Upewnij się, że głowa każdej nagiej myszy znajduje się w dolnej pozycji podczas wstrzykiwania leków, zmniejszając w ten sposób uszkodzenia narządów wewnętrznych. Należy zwrócić uwagę na miejsce wstrzyknięcia i głębokość wstrzyknięcia. Umieścić końcówkę strzykawki pod kątem 45° do wewnętrznej strony prawej/lewej dolnej części brzucha i upewnić się, że głębokość igły jest taka, aby uniknąć wstrzyknięcia do jelita i innych narządów.</li>
		<li>Kliknij ikonę "Nowy pacjent", wprowadź podstawowe informacje o myszy, w tym jej identyfikator pacjenta i imię i nazwisko. W "Protokole użytkownika" kliknij "protokół brzuszny" i wybierz protokół "Skanowanie DECT zwierząt", aby przejść do interfejsu operacyjnego.</li>
		<li>Po wywołaniu znieczulenia przenieś każdą mysz na platformę dla zwierząt w pozycji leżącej na plecach i przymocuj jej ogon taśmą, aby upewnić się, że się nie zgina. Wysterylizuj ogon alkoholem w celu późniejszego wstrzyknięcia środka kontrastowego do żyły ogonowej.</li>
		<li>Przesuń łóżko tomografii komputerowej tak, aby zewnętrzna linia pozycjonująca lasera znajdowała się nad dolną częścią brzucha zwierzęcia. Kliknij przycisk "resetuj" po zakończeniu pozycjonowania. 
		UWAGA: Umieszczenie zewnętrznych linii pozycjonujących nad dolną częścią brzucha zwierzęcia zapewnia, że zwierzęta znajdują się jak najdalej na zewnątrz maszyny, co ułatwia podawanie środka kontrastowego do żyły ogonowej.</li>
		<li>Kliknij ikonę "Potwierdź" i postępuj zgodnie z kolejnością przycisków na klawiaturze, aby zakończyć skanowanie zwiadowcze. Wybierz ikonę "następna seria" po zakończeniu skanowania zwiadowcy i przejdź do interfejsu dla skanowania bez ulepszonego skanowania.</li>
		<li>Na prawym ekranie ustaw "Lokalizację początkową" i "Lokalizację końcową" w widokach zwiadowczych, aby zdefiniować zakres skanowania. Utrzymuj ten sam zasięg w "Zwiadowcy bocznym" i "Zwiadowcy AP" i obejmij całą objętość ciała zwierzęcia.</li>
		<li>Kliknij ikonę "Potwierdź" i postępuj zgodnie z kolejnością przycisków na klawiaturze, aby zakończyć skanowanie zwiadowcze.</li>
		<li>Każdej myszy należy wstrzyknąć jopamidol w dawce 0,2 ml/100 g przez żyłę ogonową. 
		UWAGA: Zdecydowaliśmy się na ręczne podawanie środka kontrastowego i utrzymywanie jak najbardziej stabilnej szybkości wstrzykiwania. Najbardziej sprzyja to uchwyceniu wczesnego wzmocnienia guza podczas obrazowania.</li>
		<li>Kliknij "następna seria", aby wykonać ulepszone skanowanie. Ustaw "Lokalizację początkową" i "Lokalizację końcową" zgodnie ze skanowaniem nierozszerzonym. Kliknij ikonę "potwierdź" i postępuj zgodnie z kolejnością przycisków na klawiaturze, aby zakończyć dynamiczne ulepszone skanowanie, w tym fazę tętniczą, fazę wrotną i fazę opóźnioną. 
		UWAGA: Natychmiast kliknij ikonę "Potwierdź", aby rozpocząć skanowanie po wstrzyknięciu środka kontrastowego. Jest to niezbędne i kluczowe dla ulepszonego skanowania, aby zapewnić uzyskanie najlepszego obrazu fazy tętniczej. Jednak pewien czas opóźnienia po kliknięciu ikony "potwierdź" może zapewnić, że personel eksperymentalny bezpiecznie wycofał się z pomieszczenia skanującego.</li>
		<li>Kliknij "Zakończ egzamin", aby wyjść z interfejsu skanowania po zakończeniu skanowania; seria obrazów zostanie automatycznie przesłana do stacji roboczej.</li>
		<li>Po zakończeniu skanowania ze wszystkimi myszami umieść zwierzę w pustej klatce i obserwuj je, aż odzyskają przytomność. Nie pozostawiaj zwierzęcia bez opieki, dopóki nie odzyska wystarczającej przytomności, aby utrzymać pozycję leżącą na mostku. Następnie przenieś myszy do czystego pomieszczenia dla zwierząt.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Analiza obrazowania po DECT
	<ol>
		<li>Zlokalizuj serię myszy na interfejsie stacji roboczej DECT (patrz Tabela materiałów) i wybierz listę serii "+C Mono phase". Otwórz "GSI Volume Viewer" i wybierz protokół "GSI VV General" z interfejsu "GSI Protocol Manager".</li>
		<li>Kliknij aktywną adnotację "Typ widoku" w lewym górnym rogu okien ekranu obrazu i wybierz orientację "koronalną" z menu rozwijanego.</li>
		<li>W przypadku jednej rzutni obrazu kliknij aktywną adnotację "Wolumin 1" w lewym górnym rogu i wybierz woluminy "Mono" z menu rozwijanego. Podobnie w innej rzutni obrazu wybierz woluminy "Jod (woda)". Kliknij i przytrzymaj lewy przycisk myszy, przeciągnij obraz z rzutni "Jod (woda)" do "Mono" i zaznacz pole "mieszaj widoki", aby uzyskać obrazy z fuzją kolorów.</li>
		<li>Kliknij i przeciągnij od środka ikony "Przewijanie obrazu", aby obserwować obrazy. Zapisz obrazy, które pokazują pozytywne wyniki, jako obrazy ze stopionymi kolorami.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. PET/CT dla modelu zwierzęcego z przerzutami do otrzewnej
UWAGA: Zobacz tabelę materiałów do używanego imagera PET/CT. Utworzyliśmy powiązany protokół obrazowania PET/CT zgodnie z tym artykułem21.
<ol>
	<li>Konfiguracja protokołu obrazowania Micro-PET/CT
	<ol>
		<li>W przypadku tomografii komputerowej całego ciała ustaw prąd na 500 μA, napięcie na 80 kV, czas ekspozycji na 200 ms i 240 kroków dla obrotu o 240°. W przypadku detektora promieniowania rentgenowskiego wybierz rozdzielczość przy "niskim powiększeniu systemu" z osiowym polem obrazowania 78 mm i trybem pojedynczego łóżka. Użyj metody "Common Cone-Beam Reconstruction" i wybierz opcję "rekonstrukcja w czasie rzeczywistym", aby komputer hosta mógł połączyć się z dedykowanym komputerem do rekonstrukcji w czasie rzeczywistym (Cobra) w celu zainicjowania zadania.</li>
		<li>W przypadku akwizycji PET w opcji "pozyskiwanie według czasu" ustaw "stały czas skanowania" na 600 s (10 min). Ustaw "izotop badania" na F-18 i "poziom energii" na 350-650 keV.</li>
		<li>Aby utworzyć histogram PET, ustaw "dynamiczną klatkę" jako "czarną", aby przetwarzać dane jako jedną klatkę przez cały czas trwania w celu uzyskania skanowania statycznego. Ustaw typ histogramu na "3D" i wybierz opcję "bez korekcji rozproszenia".</li>
		<li>W przypadku rekonstrukcji PET należy zrekonstruować obrazy za pomocą algorytmu OSEM3D, a następnie MAP lub Fast MAP22 dostarczonego przez oprogramowanie stacji roboczej PET/CT (patrz tabela materiałów).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przygotowanie do obrazowania PET/CT
	<ol>
		<li>Pościć myszy, które przeszły eksperymenty DECT przez 4 godziny i przenieść myszy do nowych klatek dla zwierząt 30 minut przed obrazowaniem.</li>
		<li>Zważ myszy i zapisz ich wagę.</li>
		<li>Postępuj zgodnie z procedurami bezpieczeństwa instytutu, aby zdobyć i przewieźć paczkę zawierającą materiały radioaktywne (RAM). Użyj osłony ochronnej do przenoszenia 18F-FDG (5 mCi) i zmierz radioaktywność całkowitych 18F-FDG za pomocą kalibratora dawki.</li>
		<li>Rozcieńczyć 18F-FDG solą fizjologiczną do odpowiedniej radioaktywności wstrzyknięcia myszy. 
		UWAGA: Rozcieńczona aktywność 18F-FDG powinna być dostępna przy 100-200 μCi/100 μL dla każdej myszy.
		<ol>
			<li>Pobrać 200 μl roztworu 18F-FDG do strzykawki o pojemności 1 ml. Zmierzyć radioaktywność całej strzykawki za pomocą kalibratora dawki i zanotować czas przygotowania 18F-FDG.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Każdej myszy wstrzyknąć 200 μl 18F-FDG roztworem przez tylną drogę wstrzyknięcia dożylnego i zanotować czas wstrzyknięcia 18F-FDG. Po wstrzyknięciu wszystkim myszom należy natychmiast zmierzyć resztkową radioaktywność strzykawki za pomocą kalibratora dawki i zapisać czas, w którym pomiary zostały wykonane po zakończeniu wstrzyknięcia.</li>
		<li>Obliczyć aktywność 18F-FDG po wstrzyknięciu dla każdej myszy za pomocą następującego wzoru: Aktywność po wstrzyknięciu (μCi) = aktywność w strzykawce przed wstrzyknięciem - aktywność w strzykawce po wstrzyknięciu.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Proces obrazowania PET/CT
	<ol>
		<li>Umieścić zwierzę w komorze indukcyjnej znieczulenia; znieczulić mysz za pomocą wdychanego 3% izofluranu w tlenie po zakończeniu 18wstrzyknięć F-FDG. 
		UWAGA: Postępuj zgodnie ze wszystkimi wytycznymi dotyczącymi dobrostanu zwierząt odpowiednimi do eksploatacji; Utrzymuj myszy w cieple za pomocą poduszki grzewczej. Użyj maści na oczy, aby zapobiec wysuszeniu podczas znieczulenia.</li>
		<li>Po wywołaniu znieczulenia przenieś mysz na łóżko do skanowania mikrotomografii komputerowej, utrzymując ciągłe znieczulenie i ogrzewanie. Umieść głowę myszy w stożkowej masce na twarz, która w sposób ciągły dostarcza izofluran (2%) w tlenie z prędkością przepływu 2 l/min. Umieść mysz w pozycji leżącej, aby upewnić się, że postawa jest zgodna z tą na skanach DECT.</li>
		<li>Przesuń zwierzę do wejścia do skanera PET/CT, kliknij ikonę "laser" w przeglądarce paska narzędzi i użyj interfejsu sterowania panelem dotykowym, aby przesunąć łóżko tak, aby brzuch myszy znajdował się w środku pola widzenia PET i CT (FOV) podczas skanowania. W oknie "Laser Align" wybierz "pierwszy typ skanowania" jako "tomografia komputerowa" i "Akwizycja PET uwzględniona w przepływie pracy" jako opcję.</li>
		<li>Otwórz okno "Scout View" i uzyskaj zdjęcie rentgenowskie w widoku zwiadowcy. Dostosuj położenie łóżka dla zwierząt tak, aby środkowe pole view tomografu komputerowego znajdowało się na środku korpusu myszy.</li>
		<li>Wybierz wcześniej ustanowiony protokół (w kroku 3.1). Wprowadź liczbę myszy do zobrazowania (kolejno) w wyskakującym okienku i kliknij opcję "Konfiguracja", a następnie wprowadź wagę. Następnie ponownie kliknij opcję "Konfiguracja" i postępuj zgodnie z instrukcjami wyświetlanymi w wyskakującym okienku, aby zakończyć konfigurację.</li>
		<li>Kliknij ikonę "Rozpocznij przepływ pracy", aby rozpocząć skanowanie.</li>
		<li>Oceń jakość uzyskanych obrazów CT i PET po zakończeniu wszystkich skanów. Prześlij dane przez sieć do analizy po obrazowaniu w celu dalszych badań. 
		UWAGA: Dostosuj szerokość okna i poziom okna obrazu, aby upewnić się, że kontrast narządów jest wyświetlany prawidłowo. Sprawdź rozdzielczość narządów na obrazach, aby potwierdzić jakość obrazowania.</li>
		<li>Usuń zwierzę z kamery i natychmiast poddaj je eutanazji przez zwichnięcie szyjki macicy. Używaj systemu obrazowania dla kolejnego zwierzęcia po kolei.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Analiza obrazowania po PET/CT
	<ol>
		<li>Otwórz oprogramowanie stacji roboczej PET/CT, zaimportuj dane serii obrazów CT i PET do oprogramowania. W oknie "Rejestracja" kliknij opcję "Analiza ogólna", aby zarejestrować obrazy CT i PET razem, a następnie wybierz model "Sky" w oknie "Przegląd", aby pokazać idealne wyrównanie między obrazami CT i PET.</li>
		<li>Zidentyfikuj guzki otrzewnej za pomocą odniesień dostarczonych przez współzarejestrowane obrazy w oknie "Kwantyfikacja regionu zainteresowania (ROI)".</li>
		<li>W oknie "Kwantyfikacja obszaru zainteresowania (ROI)" narysuj ROI za pomocą narzędzi na połączonych obrazach, edytuj rozmiar i kształt ROI, zapiszmaksymalną wartość SUV, a następnie wyprowadź i zapisz wybrane scalone obrazy.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Ferlay, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+incidence+and+mortality+worldwide%3A+sources%2C+methods+and+major+patterns+in+GLOBOCAN+2012%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Cancer%22%5BJournal%5D)">Cancer incidence and mortality worldwide: sources, methods and major patterns in GLOBOCAN 2012.</a> Int J Cancer. 136 (5), 359-386 (2015).</li>
<li>Kobayashi, D., Kodera, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraperitoneal+chemotherapy+for+gastric+cancer+with+peritoneal+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Gastric+Cancer%22%5BJournal%5D)">Intraperitoneal chemotherapy for gastric cancer with peritoneal metastasis.</a> Gastric Cancer. 20, (Suppl 1) 111-121 (2017).</li>
<li>Gu, W., Li, X., Wang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((miR-139+regulates+the+proliferation+and+invasion+of+hepatocellular+carcinoma+through+the+WNT%2FTCF-4+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Oncol+Rep%22%5BJournal%5D)">miR-139 regulates the proliferation and invasion of hepatocellular carcinoma through the WNT/TCF-4 pathway.</a> Oncol Rep. 31 (1), 397-404 (2014).</li>
<li>Sugai, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+analysis+of+gastric+differentiated-type+intramucosal+and+submucosal+cancers%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Cancer%22%5BJournal%5D)">Molecular analysis of gastric differentiated-type intramucosal and submucosal cancers.</a> Int J Cancer. 127 (11), 2500-2509 (2010).</li>
<li>Shi, Y., He, B., You, L., Jablons, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Roles+of+secreted+frizzled-related+proteins+in+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Pharmacol+Sin%22%5BJournal%5D)">Roles of secreted frizzled-related proteins in cancer.</a> Acta Pharmacol Sin. 28 (9), 1499-1504 (2007).</li>
<li>Amin, N., Vincan, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Wnt+signaling+pathways+and+cell+adhesion%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Biosci+%28Landmark+Ed%29%22%5BJournal%5D)">The Wnt signaling pathways and cell adhesion.</a> Front Biosci (Landmark Ed). 17, 784-804 (2012).</li>
<li>Jones, S. E., Jomary, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Secreted+Frizzled-related+proteins%3A+searching+for+relationships+and+patterns%5BTitle%5D)+AND+%22Bioessays%22%5BJournal%5D)">Secreted Frizzled-related proteins: searching for relationships and patterns.</a> Bioessays. 24 (9), 811-820 (2002).</li>
<li>Qu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+levels+of+secreted+frizzled-related+protein+1+correlate+with+poor+prognosis+and+promote+tumourigenesis+in+gastric+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Cancer%22%5BJournal%5D)">High levels of secreted frizzled-related protein 1 correlate with poor prognosis and promote tumourigenesis in gastric cancer.</a> Eur J Cancer. 49 (17), 3718-3728 (2013).</li>
<li>Pan, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determining+gastric+cancer+resectability+by+dynamic+MDCT%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Radiol%22%5BJournal%5D)">Determining gastric cancer resectability by dynamic MDCT.</a> Eur Radiol. 20 (3), 613-620 (2010).</li>
<li>Pan, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gastric+cancer+staging+with+dual+energy+spectral+CT+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Gastric cancer staging with dual energy spectral CT imaging.</a> PLoS One. 8 (2), 53651(2013).</li>
<li>Kim, M. J., Hong, J. H., Park, E. S., Byun, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gastric+metastasis+from+primary+lung+adenocarcinoma+mimicking+primary+gastric+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Gastrointest+Oncol%22%5BJournal%5D)">Gastric metastasis from primary lung adenocarcinoma mimicking primary gastric cancer.</a> World J Gastrointest Oncol. 7 (3), 12-16 (2015).</li>
<li>Maeda, H., Kobayashi, M., Sakamoto, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+and+treatment+of+malignant+ascites+secondary+to+gastric+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">Evaluation and treatment of malignant ascites secondary to gastric cancer.</a> World J Gastroenterol. 21 (39), 10936-10947 (2015).</li>
<li>Bensinger, S. J., Christofk, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+aspects+of+the+Warburg+effect+in+cancer+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">New aspects of the Warburg effect in cancer cell biology.</a> Semin Cell Dev Biol. 23 (4), 352-361 (2012).</li>
<li>Smyth, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+prospective+evaluation+of+the+utility+of+2-deoxy-2-%5B%2818%29+F%5Dfluoro-D-glucose+positron+emission+tomography+and+computed+tomography+in+staging+locally+advanced+gastric+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer%22%5BJournal%5D)">A prospective evaluation of the utility of 2-deoxy-2-[(18) F]fluoro-D-glucose positron emission tomography and computed tomography in staging locally advanced gastric cancer.</a> Cancer. 118 (22), 5481-5488 (2012).</li>
<li>Oka, S., Uramoto, H., Shimokawa, H., Iwanami, T., Tanaka, F. The expression of Ki-67, but not proliferating cell nuclear antigen, predicts poor disease free survival in patients with adenocarcinoma of the lung. Anticancer Res. 31 (12), 4277-4282 (2011).</li>
<li>Zhao, C. H., Bu, X. M., Zhang, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypermethylation+and+aberrant+expression+of+Wnt+antagonist+secreted+frizzled-related+protein+1+in+gastric+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">Hypermethylation and aberrant expression of Wnt antagonist secreted frizzled-related protein 1 in gastric cancer.</a> World J Gastroenterol. 13 (15), 2214-2217 (2007).</li>
<li>Cheson, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+functional+imaging+in+the+management+of+lymphoma%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Role of functional imaging in the management of lymphoma.</a> J Clin Oncol. 29 (14), 1844-1854 (2011).</li>
<li>Fuster, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preoperative+staging+of+large+primary+breast+cancer+with+%5B18F%5Dfluorodeoxyglucose+positron+emission+tomography%2Fcomputed+tomography+compared+with+conventional+imaging+procedures%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Preoperative staging of large primary breast cancer with [18F]fluorodeoxyglucose positron emission tomography/computed tomography compared with conventional imaging procedures.</a> J Clin Oncol. 26 (29), 4746-4751 (2008).</li>
<li>Lin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Secreted+frizzled-related+protein+1+overexpression+in+gastric+cancer%3A+Relationship+with+radiological+findings+of+dual-energy+spectral+CT+and+PET-CT%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Secreted frizzled-related protein 1 overexpression in gastric cancer: Relationship with radiological findings of dual-energy spectral CT and PET-CT.</a> Scientific Reports. 7, 42020(2017).</li>
<li>Cadena-Herrera, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Validation+of+three+viable-cell+counting+methods%3A+Manual%2C+semi-automated%2C+andautomated%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Rep+%28Amst%29%22%5BJournal%5D)">Validation of three viable-cell counting methods: Manual, semi-automated, andautomated.</a> Biotechnol Rep (Amst). 7, 9-16 (2015).</li>
<li>Wang, X., Minze, L. J., Shi, Z. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+imaging+of+brown+fat+in+mice+with+18F-FDG+micro-PET%2FCT%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Functional imaging of brown fat in mice with 18F-FDG micro-PET/CT.</a> J Vis Exp. (69), (2012).</li>
<li>Grootjans, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Performance+of+3DOSEM+and+MAP+algorithms+for+reconstructing+low+count+SPECT+acquisitions%5BTitle%5D)+AND+%22Z+Med+Phys%22%5BJournal%5D)">Performance of 3DOSEM and MAP algorithms for reconstructing low count SPECT acquisitions.</a> Z Med Phys. 26 (4), 311-322 (2016).</li>
<li>Chang, H. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+gastric+cancer+preclinical+studies+using+diverse+in+vitro+and+in+vivo+model+systems%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Cancer%22%5BJournal%5D)">Improving gastric cancer preclinical studies using diverse in vitro and in vivo model systems.</a> BMC Cancer. 16, 200(2016).</li>
<li>Chang, H. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HNF4alpha+is+a+therapeutic+target+that+links+AMPK+to+WNT+signalling+in+early-stage+gastric+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Gut%22%5BJournal%5D)">HNF4alpha is a therapeutic target that links AMPK to WNT signalling in early-stage gastric cancer.</a> Gut. 65 (1), 19-32 (2016).</li>
<li>Zheng, H. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BTG1+expression+correlates+with+pathogenesis%2C+aggressive+behaviors+and+prognosis+of+gastric+cancer%3A+a+potential+target+for+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Oncotarget%22%5BJournal%5D)">BTG1 expression correlates with pathogenesis, aggressive behaviors and prognosis of gastric cancer: a potential target for gene therapy.</a> Oncotarget. 6 (23), 19685-19705 (2015).</li>
<li>Yamada, A., Oguchi, K., Fukushima, M., Imai, Y., Kadoya, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+2-deoxy-2-%5B18F%5Dfluoro-D-glucose+positron+emission+tomography+in+gastric+carcinoma%3A+relation+to+histological+subtypes+depth+of+tumor+invasion%2C+and+glucose+transporter-1+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Nucl+Med%22%5BJournal%5D)">Evaluation of 2-deoxy-2-[18F]fluoro-D-glucose positron emission tomography in gastric carcinoma: relation to histological subtypes depth of tumor invasion, and glucose transporter-1 expression.</a> Ann Nucl Med. 20 (9), 597-604 (2006).</li>
<li>Hirose, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+between+2-deoxy-2-%5B%2818%29F%5D-fluoro-d-glucose+uptake+and+clinicopathological+factors+in+patients+with+diffuse+large+B-cell+lymphoma%5BTitle%5D)+AND+%22Leuk+Lymphoma%22%5BJournal%5D)">Relationship between 2-deoxy-2-[(18)F]-fluoro-d-glucose uptake and clinicopathological factors in patients with diffuse large B-cell lymphoma.</a> Leuk Lymphoma. 55 (3), 520-525 (2014).</li>
<li>Tchou, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Degree+of+tumor+FDG+uptake+correlates+with+proliferation+index+in+triple+negative+breast+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Imaging+Biol%22%5BJournal%5D)">Degree of tumor FDG uptake correlates with proliferation index in triple negative breast cancer.</a> Mol Imaging Biol. 12 (6), 657-662 (2010).</li>
<li>Coleman, R. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concurrent+PET%2FCT+with+an+integrated+imaging+system%3A+intersociety+dialogue+from+the+Joint+Working+Group+of+the+American+College+of+Radiology+the+Society+of+Nuclear+Medicine%2C+and+the+Society+of+Computed+Body+Tomography+and+Magnetic+Resonance%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Coll+Radiol%22%5BJournal%5D)">Concurrent PET/CT with an integrated imaging system: intersociety dialogue from the Joint Working Group of the American College of Radiology the Society of Nuclear Medicine, and the Society of Computed Body Tomography and Magnetic Resonance.</a> J Am Coll Radiol. 2 (7), 568-584 (2005).</li>
<li>Brepoels, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+corticosteroids+on+18F-FDG+uptake+in+tumor+lesions+after+chemotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Nucl+Med%22%5BJournal%5D)">Effect of corticosteroids on 18F-FDG uptake in tumor lesions after chemotherapy.</a> J Nucl Med. 48 (3), 390-397 (2007).</li>
<li>Spaepen, K., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12601498">[18)F]FDG PET monitoring of tumour response to chemotherapy: does [(18)F]FDG uptake correlate with the viable tumour cell fraction.</a> Eur J Nucl Med Mol Imaging. 30 (5), 682-688 (2003).</li>
</ol>

Autorzy nie mają do zadeklarowania konfliktu interesów.

Modele zwierzęce są szeroko stosowane w badaniu mechanizmów molekularnych leżących u podstaw raka żołądka oraz do eksperymentowania z różnymi strategiami terapeutycznymi 23,24,25. W tym badaniu opisaliśmy szczegółowy protokół modelowania nagich myszy z przerzutami raka żołądka do otrzewnej, wykorzystując DECT i PET / CT do obrazowania guzów żołądka w celu identyfikacji proliferacji komórek nowotworowych w czasie rzeczywistym ora...

Rak żołądka (GC) pozostaje czwartym najczęściej występującym nowotworem złośliwym i drugą najczęstszą przyczyną zgonów z powodu nowotworów na świecie1. Chociaż dokładność diagnozowania i leczenia raka żołądka uległa znacznej poprawie, przerzuty do otrzewnej są najbardziej kluczowym punktem rokowania lub nawrotu raka żołądka i są ostatecznym wyznacznikiem zgonu pooperacyjnego2. Ogólnie przyjmuje się, że rozsiew otrzewnowy jest zagrażającym życiu sposobem przerzutów, w którym choroba staje się niekontrolowana, a rokowanie pacjenta jest złe po ustaleniu rozsiewu otrzewnowego. Dlatego wykrycie i ocena efektu terapeutycznego raka żołądka z przerzutami otrzewnej ma kluczowe znaczenie dla praktyki klinicznej.
Rosnąca częstość występowania i śmiertelność raka żołądka skłoniła badaczy do zidentyfikowania jego mechanizmów molekularnych. Wysoka ekspresja genów, takich jak wydzielane białko 1 związane z kędzierzawym włoszeniem (sFRP1), może prowadzić do aktywacji szlaku sygnałowego we wczesnych stadiach raka żołądka, promując proces wzrostu, proliferacji, różnicowania i apoptozy guza3,4,5,6,7. Komórki z nadekspresją sFRP1 wykazały wzrost ekspresji TGFβ, jego dalszych celów i EMT8. Wcześniejsze badania wykazały, że poziom TGF-β1 jest skorelowany z przerzutami do otrzewnej i stadiami TNM raka żołądka. Opisaliśmy zmiany w proliferacji komórek rakowych regulowanych przez nadekspresję sFRP1 i hamowanie TGF-a1 oraz ustaliliśmy modele zwierzęce dla przerzutów do otrzewnej, aby pokazać wydajność obrazowania guza pod wpływem regulacji genów.
Modele zwierzęce raka żołądka są niezbędnymi narzędziami do badania rozwoju nowotworów i eksperymentowania z różnymi strategiami terapeutycznymi bez konieczności poświęcania zwierząt. Modele zwierzęce okazały się przydatne w badaniu mechanizmów powstawania nowotworów i komórek pochodzenia, określaniu obecności nowotworowych komórek macierzystych oraz badaniu różnych nowych strategii terapeutycznych. Dlatego nieinwazyjna technika w czasie rzeczywistym może zapewnić dokładny opis rozwoju guzów żołądka i odpowiedzi guza na leczenie, które może zidentyfikować rozwój guzków przerzutów otrzewnowej u nagich myszy i monitorować zmiany guza w odpowiedzi na różne interwencje eksperymentalne i terapeutyczne.
Obecnie, wielodetektorowa tomografia komputerowa (MDCT) odgrywa ważną rolę w ocenie stopnia zaawansowania TNM raka żołądka i jest przydatna do przewidywania możliwości resekcji guza przed operacją9. Jednak badania radiologiczne pacjentów z potwierdzonym histologicznie rakiem żołądka opierały się głównie na morfologii. Obrazowanie DECT rozszerza parametry w celu odzwierciedlenia informacji funkcjonalnych, dostarczając obrazy monochromatyczne i może być pomocne w poprawie dokładności oceny stopnia zaawansowania N w przypadku raka żołądka. Co więcej, technika ta umożliwi uzyskanie obrazów rozkładu materiału, które mogą być przydatne do rozróżnienia między zróżnicowanym i niezróżnicowanym rakiem żołądka oraz między przerzutowymi i nieprzerzutowymi węzłami chłonnymi10. Wraz z wprowadzeniem DECT aspekt obrazowania funkcjonalnego tomografii komputerowej został również dodany do zastosowań klinicznych, przyczyniając się do oceny skuteczności terapeutycznej i przewidywania rokowań pacjentów11,12,13. PET/CT jest przydatną techniką obrazowania do wykrywania i oceny stopnia zaawansowania raka żołądka i może skutecznie ocenić nawrót nowotworu14. Zarówno proliferacja komórek nowotworowych, jak i angiogeneza zostały uznane za niezbędne do rozwoju wykrywalnego nowotworu15, guzki nowotworowe wykazały pozytywną wydajność z wyższymSUV max w PET/CT. W oparciu o ich preferencję do glikolizy tlenowej, 18F-FDG, analog glukozy, został wykorzystany jako obiecujący znacznik w diagnostyce nowotworów złośliwych, w połączeniu z PET/CT16. Metoda ta opiera się na szybkim zużyciu glukozy w tkance nowotworowej i ma szerokie zastosowania kliniczne, w tym pomoc w wykrywaniu, ocenie stopnia zaawansowania i oceny rokowania nowotworów, a także monitorowanie odpowiedzi guzów na terapię17,18. Jako metody nieinwazyjne, DECT i PET/CT są wykorzystywane do diagnozowania nowotworów złośliwych i oceny odpowiedzi guza na różne terapie.
Nasza grupa używała tej nieinwazyjnej metody obrazowania za pomocą skanerów DECT i PET/CT do wykrywania i monitorowania procesu wzrostu guza i przerzutów u żywych myszy19. Zbadaliśmy wyniki obrazowania wywołane nadekspresją sFRP1 w komórkach raka żołądka in vivo przy użyciu nagich myszy, z DECT i PET / CT, i opisaliśmy zmianywartości maksymalnej SUV po terapii celowanej inhibitorem TGF-a1 w celu potwierdzenia rozwoju guzków nowotworowych w otrzewnej po indukcji genu, a także badaliśmy zmiany w guzkach nowotworowych w odpowiedzi na eksperymentalne leczenie. W artykule przedstawiono szczegółowe procedury modelowania przerzutów do otrzewnej guza żołądka u myszy oraz ich wykrywania i monitorowania za pomocą DECT i PET/CT.

<table><tbody><tr><td>Iohexol</td><td>BEJING BEILU PHARMACEUTICAL CO, LTD</td><td>NMPN:</td>H20053800 <td>niejonowy środek kontrastowy do skanowania DECT</td></tr><tr><td>sól fizjologiczna</td><td>HUNAN KELUN PHARMACEUTICAL CO,LTD</td><td>NMPN:</td>H43020455 <td>placebo grupy kontrolnej</td></tr><tr><td>BALB/c nagie myszy&nbsp;</td><td>SLAC LABORATORY ANIMAL</td><td>BALB/cASlac-nu</td><td>model zwierzęcy</td></tr><tr><td>SGC-7901&nbsp; komórki</td><td>Biblioteka typowej kultury Chińskiej Akademii Nauk</td><td>TCHu 46</td><td>komórka raka żołądka&nbsp;</td></tr><tr><td>SB431542</td><td>Selleck</td><td>nr S1067</td><td>TGF-&beta; 1 inhibitor</td></tr><tr><td>GE Discovery CT750 HD</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td>spektralny tomograf komputerowy o podwójnej energii&nbsp;</td></tr><tr><td>AW Volumeshare5</td><td>Stacja robocza do dwuenergetycznej tomografii spektralnej GE</td><td>Healthcare</td><td></td></tr><tr><td>Siemens Inveon micro-PET/CT</td><td>Siemens Preclinical Solution</td><td></td><td>pozytonowa tomografia emisyjna/ tomografia komputerowa&nbsp;</td></tr><tr><td>Inveon Acquisition Workplace</td><td>Rozwiązanie przedkliniczne Siemens Stacja</td><td></td><td>robocza PET-CT</td></tr></tbody></table>

regulacja genów i terapia celowana w raku żołądka z przerzutami otrzewnej: wyniki radiologiczne z tomografii komputerowej o podwójnej energii i pet/ct

Gene Regulation and Targeted Therapy in Gastric Cancer Peritoneal Metastasis: Radiological Findings from Dual Energy CT and PET/CT

Rak żołądka pozostaje na czwartym miejscu pod względem zachorowalności na raka na świecie z pięcioletnim przeżyciem wynoszącym zaledwie 20%-30%. Przerzuty do otrzewnej są najczęstszym rodzajem przerzutów, które towarzyszą nieoperacyjnemu rakowi żołądka i są ostatecznym wyznacznikiem rokowania. Zapobieganie i kontrolowanie rozwoju przerzutów do otrzewnej może odegrać rolę w przedłużeniu przeżycia pacjentów z rakiem żołądka. Nieinwazyjna i skuteczna technika obrazowania pomoże nam zidentyfikować proces inwazji i przerzutów do otrzewnej oraz monitorować zmiany w guzkach nowotworowych w odpowiedzi na leczenie. Umożliwi to uzyskanie dokładnego opisu procesu rozwoju i mechanizmów molekularnych raka żołądka. Niedawno opisaliśmy eksperyment z wykorzystaniem platform CT o podwójnej energii (DECT) i pozytonowej tomografii emisyjnej/tomografii komputerowej (PET/CT) do wykrywania i monitorowania przerzutów guza żołądka w nagich modelach myszy. Wykazaliśmy, że cotygodniowe ciągłe monitorowanie za pomocą DECT i PET/CT może zidentyfikować dynamiczne zmiany w przerzutach otrzewnej. Nadekspresja sFRP1 w modelach raka żołądka u myszy wykazała dodatnią wydajność radiologiczną, wyższy wychwyt FDG i rosnące wzmocnienie, a SUVmax (standaryzowana wartość wychwytu) guzków wykazała oczywisty trend zmian w odpowiedzi na celowaną terapię inhibitora TGF-a1. W tym artykule opisaliśmy szczegółowe nieinwazyjne procedury obrazowania w celu przeprowadzenia bardziej złożonych badań nad przerzutami raka żołądka do otrzewnej z wykorzystaniem modeli zwierzęcych i przedstawiliśmy reprezentatywne wyniki obrazowania. Zastosowanie nieinwazyjnych technik obrazowania powinno umożliwić nam lepsze zrozumienie mechanizmów nowotworzenia, monitorowanie wzrostu guza i ocenę efektów interwencji terapeutycznych w przypadku raka żołądka.

Skanowanie DECT oraz PET/CT przeprowadzono u myszy nago dwa tygodnie po wstrzyknięciach linii komórkowych. Obrazy GSI dały doskonałe wyniki w obrazowaniu przerzutów podskórnych wykraczających poza obrys brzucha w grupie z nadekspresją sFRP1, a przerzuty z obwodowym wzmocnieniem potwierdzono na obrazach w skali kolorystycznej (Rysunek 1a-c). Obrazy PET/CT wykazały ogniskowo nieprawidłowy wychwyt FDG w przerzutach, w tym w przerzutach otrzewnow...

Ten protokół opisuje wartość metod obrazowania TK o podwójnej energii i PET/CT w obrazowaniu guza i ocenie skuteczności. W artykule przedstawiono metody badawcze i wyniki uzyskane za pomocą dwuenergetycznej tomografii komputerowej i PET/CT w celu oceny regulacji genów i celowanego leczenia przerzutów raka żołądka do otrzewnej.

Regulacja genów i terapia celowana w raku żołądka z przerzutami otrzewnej: wyniki radiologiczne z tomografii komputerowej o podwójnej energii i PET/CT

Gastric cancer remains fourth in cancer incidence worldwide with a five-year survival of only 20%-30%. Peritoneal metastasis is the most frequent type of ...

Ogólnym celem tej nieinwazyjnej procedury obrazowania jest połączenie badań nad rakiem żołądka, przerzutami otrzewnej i mechanizmami nowotworzenia oraz monitorowanie wzrostu guza i wpływu interwencji terapeutycznych na raka żołądka. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kilka kluczowych pytań w sporze o badania nad nowotworami, takich jak funkcjonowanie mechanizmu przerzutów do otrzewnej oraz sposób prowadzenia wczesnej diagnozy, leczenia, monitorowania odpowiedzi i rokowania. Główną zaletą tej techniki jest to, że może zidentyfikować region i proces przerzutów raka żołądka oraz może monitorować nerki w odpowiedzi na leczenie.Aby rozpocząć tę procedurę, należy ustalić model zwierzęcy raka żołądka z przerzutami otrzewnej i skonfigurować tomografię komputerową o podwójnej energii, zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Po wybraniu i znieczuleniu myszy eksperymentalnych kliknij ikonę nowego pacjenta w programie DECT. Wprowadź podstawowe informacje o myszy, w tym identyfikator pacjenta i imię i nazwisko.Następnie w sekcji protokołu użytkownika kliknij protokół brzuszny i wybierz protokół skanowania DECT zwierzęcia, aby przejść do interfejsu operacyjnego. Przenieś każdą znieczuloną mysz

gene-regulation-targeted-therapy-gastric-cancer-peritoneal-metastasis

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Ten artykuł opisuje multimodalność obrazowania tkanek nowotworowych za pomocą diagnostyki PET i CT przy użyciu radioznacznika 18F-FDG. Tkanka nowotworowa o wysokiej aktywności glikolitycznej wychwytuje więcej 18F-FDG.

Skan PET/CT oparty na FDG: metoda wykorzystania radioznacznika do nieinwazyjnego obrazowania metabolizmu guza

Przerzuty raka jajnika charakteryzują się licznymi rozlanymi zmianami wewnątrzotrzewnowymi, tak że dokładne wizualne określenie obciążenia guzem jest trudne.  W niniejszym artykule opisano metodę ilościowego oznaczania obciążenia guzem przerzutowym in situ i ex vivo przy użyciu komórek nowotworowych znakowanych białkiem czerwonej fluorescencji (RFP) i obrazowania optycznego.

Kwantyfikacja przerzutów do raka jajnika do zatrzewnej

W przeszłości, napromienianie małych zwierząt było zazwyczaj wykonywane bez możliwości celowania w dobrze zdefiniowaną objętość guza. Celem było naśladowanie leczenia glejaka u ludzi u szczurów. Korzystając z platformy do napromieniania małych zwierząt, przeprowadziliśmy konforemne napromienianie 3D pod kontrolą MRI ze zwiększeniem podobjętości na podstawie PET w warunkach przedklinicznych.

Napromienianie pod kontrolą PET i MRI szczurzego modelu glejaka przy użyciu mikropromiennika

W tym protokole opisujemy, jak wykorzystać pozytonową tomografię emisyjną [18F]-2-fluoro-2-deoksy-D-glukozy i obrazowanie tomografii komputerowej (18F-FDG PET/CT) do pomiaru odpowiedzi metabolicznej guza na terapię celowaną MLN0128 w mysim modelu raka płuc z mutacją Kras/Lkb1 oraz obrazowania sprzężonego z autoradiografią ex vivo o wysokiej rozdzielczości i histologią ilościową.

Wykorzystanie obrazowania PET/CT 18F-FDG i histologii ilościowej do pomiaru dynamicznych zmian w metabolizmie glukozy w mysich modelach raka płuc

Dobrze zróżnicowane guzy neuroendokrynne nadmiernie eksprymują receptory somatostatyny, które mogą być wykorzystane do diagnostyki obrazowej za pomocą radioznakowanego analogu somatostatyny 68Ga-DOTATATE. Protokół ten szczegółowo opisuje znakowanie radioizotopowe 68Ga-DOTATATE, kontrolę jakości, przygotowanie pacjenta i późniejsze obrazowanie PET/CT. Pod uwagę brane jest bezpieczeństwo radiologiczne i ograniczenia czasowe wynikające z krótkiego okresu połowicznego rozpadu wynoszącego 68Ga.

Praktyczny przewodnik po wytwarzaniu i obrazowaniu PET/CT 68GA-DOTATATE w guzach neuroendokrynnych w codziennej praktyce klinicznej

Tutaj prezentujemy protokół do testowania skuteczności terapii celowanych, wybranych na podstawie składu genomowego guza. Protokół opisuje identyfikację i walidację strukturalnych rearanżacji DNA, wszczepianie guzów pacjentów myszom oraz testowanie odpowiedzi na odpowiednie leki.

Testowanie terapii celowanych w nowotworach z wykorzystaniem analizy zmian strukturalnych DNA i ksenoprzeszczepów pochodzących od pacjentów

Ten protokół proponuje całościowe procedury laboratoryjne wymagane do wykrywania polimorfizmów pojedynczego nukleotydu w próbkach raka żołądka w oparciu o platformę sekwencjonowania półprzewodników jonowych. Szczegółowo opisano również sekwencje docelowe, adaptery ligaturujące, wzmacnianie i oczyszczanie biblioteki oraz kryteria kontroli jakości.

Wykrywanie wielogenowego polimorfizmu pojedynczego nukleotydu w raku żołądka w oparciu o platformę sekwencjonowania półprzewodników jonowych

Opisano metodę propagacji ludzkich guzów siatkówczaka u myszy. Komórki nowotworowe są wstrzykiwane bezpośrednio do oczu myszy z niedoborem odporności. Guzy wtórne zostały pomyślnie wywołane z wykorzystaniem zarówno komórek pobranych bezpośrednio z ludzkich guzów, jak i hodowanych tumorsfer.

Ustanowienie i propagacja guzów retinoblastomy ludzkiej u myszy z niedoborem odporności

W niniejszej pracy opisujemy metody konstruowania, wizualizacji i kwantyfikacji reakcji bioluminescencyjnych enzymów lucyferazy świetlikowej oraz renilla, wykazujących ekspresję w komórkach przerzutowego raka piersi podczas ich wzrostu i przerzutowania in vivo.

In vivo dwusubstratowe obrazowanie bioluminescencyjne

W niniejszej pracy proponujemy proste metody testowania i oceny obecności reaktywnych form tlenu w komórkach.

Produkcja i detekcja reaktywnych form tlenu (ROS) w nowotworach

Poznaj metodę dwuenergetycznej tomografii komputerowej i PET/CT do oceny przerzutów otrzewnowych raka żołądka u myszy. Technika ta umożliwia nieinwazyjne monitorowanie wzrostu guza i skuteczności terapii.

Regulacja genów i terapia celowana w raku żołądka z przerzutami otrzewnej: wyniki radiologiczne z tomografii komputerowej o podwójnej energii i PET/CT (Wideo) | JoVE Journal

Regulacja genów i terapia celowana w raku żołądka z przerzutami otrzewnej: wyniki radiologiczne z tomografii komputerowej o podwójnej energii i PET/CT

Przeglądaj więcej filmów