14 sierpnia 2018
Opisano metodę konstruowania drzewa filogenetycznego na podstawie homologii sekwencji SWEETs od eukariontów i SemiSWEETs od prokariontów. Analiza filogenetyczna jest użytecznym narzędziem do wyjaśniania ewolucyjnego pokrewieństwa między homologicznymi białkami lub genami z różnych grup organizmów.
Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie fitogenetyki, takie jak sposób zbierania sekwencji i wybór właściwego modelu obliczeniowego. Główną zaletą tej techniki jest to, że jest bardzo łatwa do nauczenia. Ogólnie rzecz biorąc, ci, którzy są nowicjuszami w tej metodzie, mogą zmagać się po prostu dlatego, że nie wiedzą, jak obchodzić się z danymi z powodu braku podstawowej wiedzy na temat zasad i metod filogenezy.
Metoda ta została po raz pierwszy opracowana, gdy analizowaliśmy wyrównanie eukariotycznych genów SWEET. Wizualna demonstracja tej metody ma kluczowe znaczenie, ponieważ istnieje wiele wyborów i ustawień dla różnych aspektów wyrównania. Rozpocznij tę procedurę od wyboru 35 potencjalnych białek SWEET z jednokomórkowych organizmów eukariotycznych, jak opisano w protokole tekstowym.
Dopasuj 35 sekwencji SWEET, wprowadzając je do Clustal Omega. Skopiuj i wklej sekwencje białek w formacie FASTA do pola wejściowego lub prześlij plik sekwencji w formacie FASTA. Określ, że jest to sekwencja aminokwasów, klikając ikonę pod menu rozwijanym w sekcji kroku pierwszego.
W razie potrzeby określ format wyjściowy i inne parametry w sekcji kroku drugiego. W tym badaniu ustaw format wyjściowy jako Clustal bez liczby i pozostaw inne parametry na ustawieniach domyślnych. W większości przypadków parametry domyślne działają dobrze bez żadnej specyfikacji.
Prześlij i uruchom wyrównanie w sekcji kroku trzeciego. Wyrównanie może potrwać od kilku sekund do minut. W panelu Podsumowanie wyników kliknij prawym przyciskiem myszy łącze w polu Wyrównanie w formacie CLUSTAL i zapisz wyrównane sekwencje jako 35.clustal.
Aby otworzyć plik z wynikami wyrównania w BioEdit, kliknij Sekwencja i wybierz Edytuj nastrój w pierwszym menu rozwijanym w głównym panelu BioEdit. Następnie kliknij Edytuj pozostałości w podmenu. Zaznacz wystające sekwencje po lewej stronie wyrównania z kursorem i kliknij ikonę Usuń w menu Edycja, aby usunąć wybrane sekwencje.
Zaznacz i usuń sekwencje po prawej stronie pierwszej domeny śliny MtN3 i zapisz przycięte pierwsze sekwencje domen śliny MtN3 jako 35-1.fas. Podobnie, usuń sekwencje lewej i prawej strony drugiej domeny śliny MtN3 i zapisz ją jako 35-2.fas. Pierwszą i drugą sekwencję domen śliny MtN3 można przewidzieć z wyprzedzeniem za pomocą rytmu lub TMHMM.
Otwórz plik 35-1. fas z MEGA i kliknij Wyrównaj, gdy zostaniesz o to poproszony. W menu Edycja kliknij polecenie Zaznacz wszystko.
Następnie kliknij przycisk Wybierz sekwencje. Nazwy i sekwencje taksonów zostaną wybrane w kolorze czarnym. Wybierz polecenie Kopiuj z menu Edycja, aby skopiować sekwencje do schowka, a następnie wkleić skopiowane sekwencje do pliku doc.
W pliku doc zastąp wszystkie znaki liczb znakiem większości niż, a następnie usuń wszystkie niepowiązane znaki, aby przekonwertować je na format FASTA. Dodaj 1 na końcu każdej nazwy taksonu, aby oznaczyć je jako pierwsze sekwencje domen śliny MtN3. Przetwarzaj drugie sekwencje domen śliny MtN3 zgodnie z tą samą metodą i dodaj 2 po każdej nazwie taksonu.
Teraz połącz pierwszą i drugą sekwencję domen śliny MtN3 w formacie FASTA w pliku doc. Aby to zrobić, ponownie załaduj połączone sekwencje do Clustal Omega i wyrównaj sekwencje jak poprzednio. Zapisz wynik jako 35realigned.clustal.
Otwórz plik clustal 35realigned. w BioEdit. Usuń nierówne reszty aminokwasów na obu końcach wyrównanych sekwencji, a następnie zapisz sekwencje jako 35realigned.fas.
Kliknij przycisk Tak po wyświetleniu ostrzeżenia, że nie można zapisać niektórych niestandardowych znaków. Otwórz 35ponownie wyrównany. fas w MEGA.
Kliknij menu Dane i wybierz polecenie Eksportuj wyrównanie. Następnie zapisz wyrównanie w formacie POP jako 35. następnie do późniejszego wykorzystania w MR Base.
W międzyczasie kliknij ikonę Modele na głównym panelu MEGA. Wybierz Znajdź najlepsze modele białek DNA i kliknij OK w wyskakującym okienku. Kliknij przycisk Obliczenia, aby rozpocząć proces wyszukiwania modelu.
Otworzy się nowy panel postępu. Proces ten trwa od kilku minut do kilku dni w zależności od złożoności załadowanych sekwencji i wydajności komputera. Tabela przedstawiająca wyniki zostanie otwarta po zakończeniu procesu wyszukiwania modelu.
Najmniejszy wynik BIC zostanie wymieniony jako pierwszy, a następnie seria różnych modeli ze stopniowo rosnącymi wynikami BIC. Pierwszy model LG+G+F z najmniejszym wynikiem BIC jest zalecanym modelem dla drzewa uczenia maszynowego na podstawie 35realigned. Plik FAS.
Następnie kliknij ikonę Filogeneza na głównym panelu MEGA. Kliknij opcję Zbuduj/Przetestuj drzewo maksymalnego prawdopodobieństwa, a następnie kliknij przycisk Tak w panelu podręcznym. Otworzy się nowe okno z różnymi parametrami, które należy określić.
Najpierw ustaw wartość bootstrap w teście pola filogenezy. 500 lub 1 000 jest wystarczające w większości przypadków. W ramach modelu substytucji wybierz aminokwas jako typ podstawienia.
Celem wyboru modelu podstawiania jest oszacowanie rzeczywistej różnicy między sekwencjami na podstawie ich obecnych stanów. Wybierz LG z modelem Freqs w polu Model i metoda. W polu Rates and Patterns (Współczynniki i wzorce) wybierz opcję gamma distributed (Rozkład gamma), aby opisać różnice w różnych lokacjach, na przykład przywiązując większą wagę do zmian w wolno zmieniających się lokacjach.
W polu Podzbiór danych wybierz opcję Całkowite usunięcie, aby usunąć wszystkie kolumny zawierające łączniki. Zachowaj wszystkie inne parametry w ich stanach domyślnych. Po określeniu tych parametrów kliknij ikonę Oblicz, aby rozpocząć obliczenia.
Filogenetyczne drzewo ML zostanie zaprezentowane po zakończeniu obliczeń przy użyciu MEGA. W menu rozwijanym ikony Plik w panelu Drzewo wybierz opcję Zapisz bieżącą sesję, aby zapisać wynik. W niniejszym badaniu wynik został zapisany jako 35.mas.
W panelu Drzewo wyświetlanych jest wiele parametrów, takich jak długość kladu, styl drzewa, topologia drzewa, czcionka nazwy taksonu, rozmiar i kolor, które można ustawić na różne opcje. Zapisz końcowy plik drzewa, klikając ikonę Obraz i zapisz rysunek w różnych formatach lub skopiuj obraz jako źródło do edycji zdjęć. Kontynuuj analizę relacji między SWEETs i semiSWEETs, a także korzystając z konstrukcji drzewa filogenetycznego dopasowania sekwencji z MR Base, jak opisano w protokole tekstowym.
Drzewa filogenetyczne pokazują, że wszystkie pierwsze domeny śliny MtN3 z 35 sekwencji SWEET grupowały się w jeden klad, a drugie domeny śliny MtN3 sekwencji SWEET grupowały się w inny klad. Ponadto wyniki dopasowania SWEETs i semiSWEET pokazują, że niektóre semiSWEET z Alpha-Proteobacteria dostosowały się do pierwszej domeny śliny MtN3 sekwencji SWEET, podczas gdy semiSWEET z Methanobacteria wyrównały się z drugą domeną śliny MtN3 sekwencji SWEET. Wyniki te razem sugerują, że dwie domeny śliny MtN3 zawierające SWEET mogą pochodzić z ewolucyjnej fuzji bakteryjnego semiSWEET i archeanu.
Po opanowaniu tej techniki można ją wykonać w ciągu jednej godziny do kilku dni, w zależności od złożoności danych. Podczas próbowania tego protokołu ważne jest, aby wcześniej zebrać sekwencje wysokiej jakości. Po jego opracowaniu protokół ten utorował drogę naukowcom zajmującym się ewolucją do zbadania relacji między genami homologicznymi.
Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak skonstruować drzewo filogenetyczne.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł opisuje metodę konstruowania drzewa filogenetycznego w oparciu o homologię sekwencji białek SWEET z organizmów eukariotycznych oraz SemiSWEET z prokariontów. Technika ta jest przystępna dla użytkownika i pomaga w zrozumieniu relacji ewolucyjnych między homologicznymi białkami lub genami.
Analiza filogenetyczna rodzin białek, takich jak transportery SWEET, umożliwia mechanistyczne ograniczanie ryzyka we wczesnej fazie odkrywania poprzez wyjaśnienie pochodzenia ewolucyjnego i dywergencji funkcjonalnej. Podejście to wspiera walidację celu, odróżniając domeny konserwatywne od innowacji specyficznych dla danej linii, co zmniejsza niejednoznaczność podczas formułowania hipotez. Wgląd w zdarzenia fuzji genów dostarcza informacji dla strategii biomarkerów translacyjnych oraz wyboru modeli przedklinicznych dla szlaków związanych z transportem.
Metoda ta integruje się z kontinuum procesu odkrywania – od testowania hipotez dotyczących celu po identyfikację wiodących cząsteczek – dostarczając kontekstu ewolucyjnego dla funkcji białek.