29 grudnia 2017
Ten protokół opisuje elastyczny, tani system do pomiaru ruchu myszy w teście aktywności w otwartym polu. Pokazujemy, że 6-minutowy test ambulacyjny oparty na tym systemie wykrywa spadek dobrowolnego ruchu u myszy mdx i dokładnie rozróżnia poprawę w ratowaniu tych zwierząt specyficznym dla mięśni
.Ogólnym celem tego testu jest pomiar dobrowolnego poruszania się w mysich modelach dystrofii mięśniowej. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie dystrofii mięśniowej dotyczące progresji osłabienia mięśni w mysich modelach dystrofii mięśniowej oraz skuteczności potencjalnych terapii. Główną zaletą tej techniki jest to, że zapewnia ona nieinwazyjny i powtarzalny pomiar aktywności zwierząt, który można łatwo dostosować do wielu różnych warunków badawczych.
W cichym pomieszczeniu o kontrolowanej temperaturze o stałej porze dnia umieść kamerę na drucianej siatce nad komorą aktywności, aby umożliwić nagrywanie na całej arenie i wyczyść komorę środkiem dezynfekującym. Bezpośrednio przed rejestracją aktywności pozwól myszy chwycić drążek cyfrowego miernika siły i delikatnie pociągnij do tyłu, aż drążek zostanie zwolniony. Zapisz napięcie szczytowe w niutonach dla każdej próby.
Z jedną minutą odpoczynku między próbami. Natychmiast po teście siły chwytu umieść mysz w komorze i rozpocznij nagrywanie wideo, pozwalając myszy na swobodną eksplorację. Po sześciu minutach zatrzymaj nagrywanie i umieść mysz z powrotem w klatce domowej.
Aby śledzić analizę danych wideo, najpierw otwórz nagranie w odpowiednim oprogramowaniu do edycji wideo i ustaw prędkość na dwa razy. Wyeksportuj zdziesiątkowane wideo w formacie pliku mp4 w celu analizy śledzenia i otwórz wideo w odpowiednim programie do analizy wideo. Aby ustawić kalibrację nagrania wideo, użyj narzędzia linii, aby narysować linię wzdłuż jednej strony komory.
Kliknij prawym przyciskiem myszy na linię, wybierz kalibruj miarę i wprowadź rzeczywisty rozmiar boku komory w centymetrach. Aby rozpocząć półautomatyczne śledzenie pozycji myszy, kliknij kursor ruchu. Zaczynając od początkowej klatki filmu, kliknij prawym przyciskiem myszy punkt, który chcesz śledzić.
Punkt śledzenia zostanie oznaczony niebieskim kółkiem. Użyj strzałki w prawo na klawiaturze, aby przesunąć ramkę. Punkt śledzenia powinien poruszać się automatycznie w zależności od położenia podstawy ogona.
Jeśli pozycja śledzenia nie jest wyrównana z punktem zainteresowania w danej klatce, ręcznie wyrównaj niebieskie kółko do pozycji śledzenia. Gdy cały film zostanie śledzony, zapisz wideo i nakładkę śledzenia, a następnie wybierz opcję eksportuj do arkusza kalkulacyjnego, aby wyeksportować dane pozycyjne śledzenia. Zgodnie z wynikami przedstawionymi w podobnych testach, myszy z dystrofiną zerową mdx, którym bezpośrednio przed testem poddano próbę wykonania protokołu ćwiczeń, wykazują znacznie mniej dobrowolnych ruchów w sześciominutowym teście na otwartym polu niż zwierzęta typu dzikiego.
Rzeczywiście, po łagodnym wysiłku związanym z wyzwaniem siły chwytu, myszy mdx zazwyczaj pozostawały nieruchome przez pierwsze kilka minut protokołu ambulacji, z niewielkim wzrostem ruchu o cztery do pięciu minut. Porównując zwierzęta typu dzikiego i mdx bez wyzwania związanego z ćwiczeniami, nie wykrywa się jednak żadnych różnic w przebytej odległości. Myszy Mdx transgeniczne pod względem ekspresji utrofiny są nie do odróżnienia od zwierząt typu dzikiego, bez znaczących różnic w całkowitej przebytej odległości lub w którymkolwiek z obserwowanych punktów czasowych kommulacji.
Aby określić efekt zmniejszenia częstotliwości próbkowania, zmierzono całkowitą odległość przebytą od jednej minuty pełnoklatkowego wideo i porównano ją z pomiarami odległości uzyskanymi z wersji zestawu danych próbkowanych w dół. Zmniejszenie liczby klatek na sekundę o połowę zmniejszyło zmierzoną odległość o 5% pierwotnie obliczonej odległości. Dokładność zmierzonej odległości gwałtownie spada po tym punkcie, chociaż nawet silnie zdziesiątkowane zestawy danych nadal bardzo przybliżają ścieżkę zwierzęcia, podkreślając znaczenie uwzględnienia liczby klatek na sekundę i przetwarzania sygnału w ocenie aktywności zwierząt oraz pokazując, że wysoka rozdzielczość przestrzenna może zostać zachowana w próbkowanych w dół danych wideo.
Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak rejestrować i analizować ruch myszy w otwartym terenie. Po opanowaniu analiza ta może zostać zakończona w ciągu 15 do 30 minut, jeśli zostanie wykonana prawidłowo. Ten tani i nieinwazyjny test pozwala naukowcom badać aktywność motoryczną w mysich modelach dystrofii mięśniowej i może służyć jako pouczający pierwszy krok do dalszych pomiarów funkcjonalnych.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół opisuje elastyczny, niskokosztowy system pomiaru aktywności ruchowej myszy w teście otwartego pola. Metoda ta zapewnia nieinwazyjny i powtarzalny pomiar aktywności zwierząt, który może być dostosowany do różnych warunków badawczych.
Pomiar dobrowolnego chodzenia w modelach mysich dostarcza translacyjnych danych dotyczących funkcji motorycznych w dystrofii mięśniowej, będąc bezpośrednim odpowiednikiem punktów końcowych stosowanych w klinice, takich jak 6-minutowy testy chodzenia. Ten niskokosztowy test oparty na analizie wideo umożliwia powtarzalną, nieinwazyjną ocenę progresji choroby oraz odpowiedzi na terapię w badaniach przedklinicznych. Dzięki wykrywaniu deficytów aktywności u myszy mdx z brakiem dystrofiny oraz ich niwelowaniu poprzez ekspresję utrofiny, metoda ta wspiera walidację celów terapeutycznych i ograniczanie ryzyka mechanistycznego w procesie odkrywania leków w chorobach nerwowo-mięśniowych.
Test ten wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków, od walidacji celu po identyfikację związku wiodącego, stanowiąc funkcjonalny pomost między mechanizmami molekularnymi a efektami fenotypowymi w modelach dystrofii mięśniowej.