Name: Ultra-czyste, wielowarstwowe urządzenie do zbierania frakcjonowanego planktonu morskiego i zawieszonych cząstek (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-19T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 1 s
Description: Poznaj metodę frakcjonowanego zbierania planktonu morskiego i cząstek zawieszonych przy użyciu ultra-czystego, wielowarstwowego urządzenia. Technika ta minimalizuje stres i zanieczyszczenia próbek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Autorzy dziękują Panu/Pani Pi-Fen Lin, Panu Wei-Lung Tseng, Pannie Pei-Hsuan Lin i Dr. Jia-Lu Chuan za pomoc podczas pobierania próbek w terenie i analizy laboratoryjnej dla praktycznego rozwoju i zastosowania "CATNET." Pomoc załogi i technika na pokładzie statku badawczego Ocean Research-I i Ocean Research-II podczas ekspedycji do pobierania próbek jest bardzo doceniana. Prace te były częściowo wspierane przez tajwańskie Ministerstwo Nauki i Technologii w ramach grantów 91-2611-M-002-007, 95-2611-M-002 -009, 96-2611-M-002-004, 97-3114-M-002-006, 104-2611-M-002-019. Rękopis ten został napisany ku pamięci panny Wen-Huei Lee za jej ogromne poświęcenie i wkład w badania morskie na Tajwanie.

Następujący protokół obejmuje pracę ze szkodliwymi chemikaliami. Prosimy o uważne zapoznanie się z kartami charakterystyki (SDS) i przestrzeganie instytucjonalnych wytycznych dotyczących bezpieczeństwa chemicznego.
1. Przygotowanie próbnika do wielowarstwowej filtracji grawitacyjnej
<ol>
	<li>Czyszczenie próbnika
	<ol>
		<li>Napełnij rurkę i jednostkę filtracyjną 1% (w/v) roztworu detergentu z anionowym enzymem proteazy i moczyć go przez 24 godziny. Dokładnie przepłukać wielowarstwowy próbnik do filtracji grawitacyjnej wodą podwójnie destylowaną (RO-DDW) z odwróconej osmozy, a następnie napełnić go 0,1% (v/v) kwasem solnym (HCl, klasa odczynnika) i moczyć przez 72 godziny.</li>
		<li>Dokładnie przepłukać próbnik wielowarstwowej filtracji grawitacyjnej podwójnie destylowaną wodą dejonizowaną (RO-DD-DIW) z odwróconą osmozą trzy do pięciu razy, za każdym razem co najmniej 20 litrów, i przechowywać zestaw w plastikowych workach.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Czyszczenie/przygotowanie pojemnika na próbkę cząstek stałych
	<ol>
		<li>Jako pojemniki na cząstki należy używać butelek z polietylenu o niskiej gęstości (LDPE, 125 ml) lub fluorowanego etylenu propylenu (FEP, 125 ml). Wyczyść butelki, mocząc je najpierw w alkalicznym detergencie (Micro, 1%), następnie w 50% (v/v) kwasie azotowym (HNO3, klasa odczynnika), a następnie 10% (v/v) roztworach HCl odpowiednio przez co najmniej 24, 48 i 24 godziny. Opłucz butelki wodą dejonizowaną (RO-DD-DIW) pomiędzy dwoma etapami namaczania.</li>
		<li>Po ostatecznym namoczeniu HCl dokładnie wypłucz butelki wodą dejonizowaną (RO-DD-DIW) i wysusz butelki w czystym pomieszczeniu lub czystej ławce klasy 100. 
		Przymocuj oczyszczoną butelkę do wielowarstwowego próbnika filtracji grawitacyjnej lub zamknij oczyszczone butelki w workach z zamkiem błyskawicznym PE i zapakuj je podwójnie do transportu.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Montaż wielowarstwowego próbnika do filtracji grawitacyjnej
	<ol>
		<li>Podłączyć sześć odpornych chemicznie rurek z elastomeru termoplastycznego o długości 4 m (średnica zewnętrzna 0,635 cm) do sześciu kierunkowych wlotów na górze próbnika.</li>
		<li>Po ich oczyszczeniu (patrz poniżej) należy zamontować trzy różne nylonowe filtry siatkowe z pojemnikami na próbki z polietylenu o niskiej gęstości (125 ml LDPE) w pomieszczeniu czystym (na stole) (patrz poniżej), z filtrem siatkowym 10 μm umieszczonym na zewnątrz, filtrem siatkowym 63 μm pośrodku i filtrem siatkowym 153 μm wewnątrz. Na czas transportu należy przechowywać wielowarstwowy próbnik filtracji grawitacyjnej w dwóch warstwach worków z polietylenu (PE), a następnie umieścić go w pojemniku transportowym z polipropylenu (PP).</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Pobieranie próbek
<ol>
	<li>Pobieranie próbek
	<ol>
		<li>Po przybyciu do miejsca pobierania próbek poproś jedną osobę o wyjęcie wielowarstwowego próbnika do filtracji grawitacyjnej z kontenera transportowego znajdującego się na pokładzie statku badawczego i otwarcie worka z próbnikiem. Następnie poproś ich, aby założyli rękawice PE, połączyli sześć rurek z termoplastycznego elastomeru o długości 4 m z króćcami wody sześciu 20-litrowych butelek do pobierania próbek pokrytych PTFE na podwyższonym układzie do pobierania próbek z wieloma butelkami i skierowali wodę morską do tej jednostki filtracyjnej. Woda morska będzie przepływać przez kierunkowe wloty, a cząstki/plankton zostaną delikatnie oddzielone/frakcjonowane przez sieci i osiądą w butelkach LDPE o pojemności 125 ml, które są zabezpieczone u podstawy sieci.</li>
		<li>Po przepłynięciu wody morskiej (zwykle 120 l dla przybrzeżnej wody morskiej i 240 l dla wód otwartego oceanu), usuń kolejno każdą sieć (najpierw 153 μm, następnie 63 μm, a na końcu 10 μm) na czystej ławce klasy 100, a następnie spryskaj sieć czystą wodą morską o czystości śladowej 0,4 μm, aby wypłukać plankton utknący na wewnętrznej powierzchni sieci. Zbierz wodę morską ze skoncentrowanymi cząstkami/planktonem w butelkach polietylenowych o pojemności 125 ml.</li>
		<li>Odkręcić te butelki od siatek i ponownie przefiltrować roztwory ze skoncentrowanymi cząstkami/planktonem przez próżniowy aparat filtracyjny przemyty kwasem ze wstępnie zważonymi, przemytymi kwasem filtrami poliwęglanowymi o średnicy 47 mm i wielkości porów 10 μm w warunkach niskiej próżni (<5 kPa).</li>
		<li>Aby zebrać cząstki/plankton mniejszy niż 10 μm, należy poczekać, aż co najmniej 20 l wody morskiej przepłynie przez próbnik, a następnie zebrać od dwóch do pięciu litrów wody w pojemniku PE o pojemności 5 litrów i przefiltrować te próbki wody za pomocą próżniowego aparatu filtracyjnego przemytego kwasem ze wstępnie zważonymi, przemytymi kwasem, 47 mm i 0,4 μm filtrami poliwęglanowymi o wielkości porów.</li>
		<li>Po filtracji próżniowej należy natychmiast przepłukać filtry próbek wodą o wysokiej czystości DDW w celu usunięcia pozostałości wody morskiej, minimalizując wpływ soli morskich na określenie suchej masy cząstek/planktonu. Utrzymuj objętość płukania tylko na kilku mililitrach, aby zapobiec uszkodzeniu delikatnego planktonu.</li>
		<li>Następnie, po tym etapie płukania, ostrożnie wyjmij filtr z jednostki filtracji próżniowej, przechowuj filtry do pobierania próbek w umytych kwasem, wstępnie zważonych akrylowych plastikowych szalkach Petriego i zamknij w zamykanych plastikowych torebkach. Worki należy przechowywać w zamrażarce o temperaturze -20 °C na pokładzie do czasu powrotu do laboratorium naziemnego w celu dalszej obróbki wstępnej próbki i analizy chemicznej.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Leczenie próbki
<ol>
	<li>Liofilizacja i trawienie cząstek
	<ol>
		<li>Umieść filtry z próbkami cząstek w komorze kolektora maszyny do liofilizacji i włącz maszynę. Gdy temperatura maszyny osiągnie -40 °C, włącz pompę próżniową maszyny i rozpocznij procesy liofilizacji. 
		UWAGA: Poziom podciśnienia powinien być stale utrzymywany poniżej 0.12 mBar. Prosimy o uważne przeczytanie instrukcji obsługi i postępowanie zgodnie ze wskazówkami producenta dla każdego kroku.</li>
		<li>Po 72 godzinach wyłącz maszynę do liofilizacji, wyjmij wysuszone filtry i zważ je. Następnie umieść wysuszone filtry próbek w wstępnie zważonych naczyniach perfluoroalkoksylowo-alkanowych (PFA) (pojemność 60 ml) i dodaj 3 ml stężonego ultraczystego kwasu azotowego do naczyń2,3,6,7.</li>
		<li>Dokręcić naczynia kluczem dynamometrycznym do stałego momentu obrotowego 2,5 kg-m i umieścić naczynia w tradycyjnym piecu w temperaturze 130 °C na 12 godzin na pierwszą sekwencję trawienia. Po schłodzeniu wyjmij naczynia z piekarnika, otwórz naczynia i dodaj do nich 2 ml ultraczystego kwasu fluorowodorowego2,3,6,7.</li>
		<li>Dokręcić naczynia momentem 2,5 kg-m i umieścić naczynia w tradycyjnym piecu w temperaturze 130 °C na 12 godzin, co jest drugą sekwencją trawienia. Po schłodzeniu otwórz naczynia i dodaj do nich 16 ml 4,5% ultraczystego roztworu kwasu borowego2,3,6,7.</li>
		<li>Dokręcić naczynia stałym momentem obrotowym 2,5 kg-metra i wytrawić próbki w piecu w temperaturze 130 °C przez 12 godzin w celu uzyskania końcowej sekwencji mineralizacji. Po schłodzeniu zważyć każde naczynie i określić masę końcową oraz masę właściwą każdego strawionego roztworu, aby uzyskać końcową objętość roztworu mineralnego. 
		UWAGA: Masę właściwą określa się, mierząc wagę dokładnie 1,00 ml roztworu fermentacyjnego.</li>
		<li>Ostrożnie wlej płyn fermentacyjny do 30 ml oczyszczonej kwasem butelki PE w celu dalszej analizy metali śladowych.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Analiza metali śladowych
	<ol>
		<li>Oznaczyć stężenia metali śladowych (Cd, Cu, Fe, Mn, Ni i Al) w strawionych roztworach cząstek za pomocą spektrometru absorpcji atomowej pieca grafitowego (GF-AAS)6.</li>
		<li>Jako test dokładności należy użyć certyfikowanego materiału referencyjnego (CRM), takiego jak materiały referencyjne dotyczące osadów morskich z National Research Council of Canada, standardowy materiał referencyjny osadów ujściowych z USA oraz materiał referencyjny dotyczący planktonu z serwisu naukowego i wiedzy Komisji Europejskiej. Proces ten zapewnia od 95% do 107% odzysku certyfikowanej wartości dla metali śladowych podanych w CRM.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Jeandel, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0079661115000026">What did we learn about ocean particle dynamics in the GEOSECS-JGOFS era.</a> Progr. Oceanogr. 133, 6-16 (2015).</li>
<li>Lam, P., et al. <a target="_blank" href="https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0079661115000075">Methods for analyzing the concentration and speciation of major and trace elements in marine particles.</a> Progr. Oceanogr. 133, 32-42 (2015).</li>
<li>Collier, R., Edmond, J. <a target="_blank" href="https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/0079661184900089">The trace element geochemistry of marine biogenic particulate matter.</a> Progr. Oceanogr. 13, 113-199 (1984).</li>
<li>Donat, J. R., Bruland, K. W. Trace elements in the oceans. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDonat%2C+JR+%22Trace+Elements+in+Natural+Waters%22">Trace Elements in Natural Waters</a>. Steinnes, E., Salbu, B. , CRC Press. Boca Raton, FL. 247-280 (1995).</li>
<li>Wen, L. -S., Santschi, P., Tang, D. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0016703797001397">Interaction between radioactively labeled colloids and natural particles: evidence for colloidal pumping.</a> Geochim. Cosmochim. Ac. 61, 2867-2878 (1997).</li>
<li>Wen, L. -S., Warnken, K., Santschi, P. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0304420308001072">The role of organic carbon, iron, and aluminium oxyhydroxides as trace metal carriers: Comparison between the Trinity River and the Trinity River Estuary (Galveston Bay, Texas).</a> Mar. Chem. 112, 20-37 (2008).</li>
<li>Hurd, D., Spencer, D. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/book/10.1029/GM063">Marine particles: analysis and characterization.</a> American Geophysical Union. , (1991).</li>
<li>Martin, J. H., Knauer, G. A. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/0016703773901543">The elemental composition of plankton.</a> Geochim. Cosmochim. Ac. 37, 1639-1653 (1973).</li>
<li>Morel, F., Price, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biogeochemical+cycles+of+trace+metals+in+the+oceans%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The biogeochemical cycles of trace metals in the oceans.</a> Science. 300, 944-947 (2003).</li>
<li>Ho, T. -Y., et al. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.0022-3646.2003.03-090.x/abstract">The elemental composition of some marine phytoplankton.</a> J. Phycol. 39, 1145-1159 (2003).</li>
<li>McDonnell, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0079661115000099">The oceanographic toolbox for the collection of sinking and suspended marine particles.</a> Prog. Oceanogr. 133, 17-31 (2015).</li>
<li>Wen, L. -S., Li, W. -H., Zhuang, G. -Z. Multiple layer filtering and collecting device. , Taiwan Patent No. M275880 (2005).</li>
<li>Ho, T. -Y., Wen, L. -S., You, C. -F., Lee, D. -C. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.4319/lo.2007.52.5.1776/abstract">The trace-metal composition of size fractionated plankton in the South China Sea: biotic versus abiotic sources.</a> Limnol. Oceanogr. 52, 1776-1788 (2007).</li>
<li>Hsu, R., Liu, J. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0025322710002021">In-situ estimations of the density and porosity of flocs of varying sizes in a submarine canyon.</a> Mar. Geol. 276, 105-109 (2010).</li>
<li>Liao, W. -H., Yang, S. -C., Ho, T. -Y. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/lno.10564/abstract">Trace metal composition of size-fractionated plankton in the Western Philippine Sea: the impact of anthropogenic aerosol deposition.</a> Limnol Oceanogr. , (2017).</li>
<li>Grasshoff, K., Kremling, K., Ehrhardt, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGrasshoff%2C+K+%22Methods+of+seawater+analysis%22">Methods of seawater analysis</a>. , Wiley-VCH. (2007).</li>
</ol>

Współautor, Pan Alan Chuang jest współwłaścicielem patentu i dyrektorem generalnym firmy (Sino Instruments Co., Ltd.), która wyprodukowała to urządzenie do zbierania dla zainteresowanych użytkowników. Patent wygasł 9 maja 2015 r.12.

Uzyskanie wiarygodnych stężeń metali śladowych na planktonie i zawieszonych cząstkach w wodach naturalnych, które są na ogół obecne w bardzo niskich stężeniach, wymaga dużej ostrożności podczas pobierania próbek, przetwarzania, obróbki wstępnej i analizy, w celu zmniejszenia zanieczyszczenia. W związku z tym procedury projektowania i przygotowywania narzędzi do pobierania próbek, pojemników na próbki oraz materiałów używanych do pobierania i przetwarzania próbek są kluczowymi krokami w kierunku uzyskania wysokiej jakości...

Cząsteczki w oceanie odgrywają ważną rolę w morskich cyklach biogeochemicznych1. Większość właściwości cząstek, takich jak rozmiar, mineralogia i skład, może ulec głębokim zmianom w zależności od położenia geologicznego lub hydrograficznego2. Ponadto rozmieszczenie pierwiastków w oceanie jest również związane z cyklem życia fitoplanktonu morskiego: wzrostem, śmiercią, zatonięciem i remineralizacją3,4. Cząstki morskie mają wielkość co najmniej 4 rzędów wielkości, od cząstek submikronowych do dużych agregatów (>5 mm). Większość cząstek pochodzi biologicznie, z procesów takich jak liza wirusa, wysięk, wydzielanie, produkcja granulek kałowych itp. Inne cząstki powstają w wyniku fizycznej koagulacji komórek, szczątków komórkowych lub materiałów litogenicznych1. Różne cechy chemiczne i biologiczne cząstek kontrolują zarówno cykle geochemiczne, jak i procesy biologiczne zachodzące na cząstkach i w ich obrębie4,5,6. Cząstki te są ważnymi siedliskami, a także źródłem pożywienia dla niektórych organizmów, takich jak zooplankton czy saprotrofy. W związku z tym los cząstek jest często związany z ich wielkością, która może być modyfikowana przez procesy biologiczne zachodzące na cząstkach i wokół nich.
Pobieranie próbek cząstek morskich zwykle wymaga filtracji, ale to podejście wprowadza pewną niejasność w identyfikacji właściwości cząstek, ponieważ cząstki morskie nie są jednorodne pod względem składu i wielkości. Zawieszone cząstki, składające się głównie z małych i małych cząstek, które prawie stale znajdują się w zawiesinie, są mieszane z różnymi ilościami większych i gęstszych cząstek w zawiesinie tylko przez krótki okres czasu, w zależności od warunków hydrodynamicznych7. Pierwsze doniesienia o składzie metali śladowych w próbkach planktonu zostały zebrane za pomocą holowników planktonowych lub sieci planktonowych zawieszonych na statku badawczym8. Autorzy często znajdowali w próbkach cząstki metalu i odpryski farby, co sugeruje poważny problem zanieczyszczenia podczas pobierania próbek cząstek morskich do analizy chemicznej. Inne wysiłki obejmują holowanie sieci za pomocą gumowy tratwy lub użycie wciągarki ręcznej z polichlorku winylu (PVC)3. Trudność w wiarygodnym pobieraniu próbek cząstek sprawia, że postęp w zrozumieniu składu chemicznego cząstek morskich jest trudniejszy, zwłaszcza w przypadku pierwiastków śladowych. W związku z tym najważniejsze informacje na temat stężenia pierwiastków śladowych w fitoplanktonie pochodzą z badań kulturowych9,10. To uznanie zmotywowało naukowców zajmujących się morzem do stworzenia nowych metod badania cząstek w morzu w ciągu ostatnich trzydziestu lat11.
Oceanografowie używali różnych technik pobierania próbek, w tym filtracji pokładowej, filtracji in situ i pułapek osadowych11. Przetwarzanie dużych ilości wody morskiej w celu pobrania niezanieczyszczonych próbek może być trudne, szczególnie w przypadku otwartego oceanu i głębokich wód, w których stężenia cząstek są bardzo niskie (0,001 - 0,1 mg/l). Konieczne jest również filtrowanie dużych objętości wody morskiej w celu uzyskania odpowiedniej ilości cząstek do pomiaru stężeń metali śladowych. Niektórzy badacze zastosowali metodę frakcjonowania wielkości do oddzielenia zawieszonych cząstek od cząstek tonących. Jednak wielkość cząstek, porowatość, gęstość i kształt mogą wpływać na prędkość tonięcia cząstek. Pułapki osadowe nie są praktycznymi narzędziami do zbierania zawieszonych cząstek, ponieważ są one przeznaczone do zatapiania cząstek. Dlatego ważne jest, aby opracować metody pobierania próbek i oczyszczania, które mogą zbierać wystarczające ilości zawieszonych cząstek przy minimalnym zanieczyszczeniu. W związku z tym frakcjonowanie według wielkości za pomocą filtracji in situ jest nadal obiecującym narzędziem w zestawie narzędzi oceanografów, ponieważ może ujawnić krytyczne informacje na temat dynamiki cząstek morskich. W tym miejscu opisujemy pomyślnie przetestowane, czyste pod względem śladów, wielowarstwowe urządzenie do pobierania próbek z filtracją grawitacyjną, które może oczyszczać duże objętości (120 - 240 l) wody morskiej na pokładzie w jednym przejściu z butelek do pobierania próbek wody pokrytych politetrafluoroetylenem (PTFE) w układzie do pobierania próbek z wieloma butelkami. Ten aparat do pobierania próbek wykorzystuje kolejno płukane kwasem syntetyczne siatki nylonowe, a siatki są zamknięte w pojemniku z poliwęglanu, aby delikatnie zbierać frakcjonowaną pod względem wielkości zawiesinę i fitoplankton12,13,14,15 (<silna klasa="xfig">Rysunek 1). Celem tej pracy jest dostarczenie lepszego narzędzia do badania związków metal-cząstki i dynamiki ich reakcji w środowiskach morskich, a także pogłębienie naszej wiedzy na temat losów szerokiej gamy planktonów, cząstek i metali śladowych w tych środowiskach.

<table><tbody><tr><td>Rurki z elastomeru termoplastycznego (C-Flex)</td><td>Cole Palmer</td><td>EW-06424-67 OD</td><td>0,635 cm, nieprzezroczyste białe 1/8 "ID x 1/4" OD, 25 stóp/opakowanie</td></tr><tr><td>Butelka LDPE (Nalgene)</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>2103-0004</td><td>125 mL, Butelki LDPE Nalgene z szerokim otworem z zamknięciem</td></tr><tr><td>anionowy detergent do detergentu z enzymem proteazy anionowej (Tergazyme)</td><td>Alconox</td><td>1104-1</td><td>1 i razy; Pudełko 4 funty (1,8 kg)</td></tr><tr><td>Kwas solny</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>258148</td><td>Odczynnik klasy</td></tr><tr><td>Kwas azotowy</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>695025</td><td>Odczynnik</td></tr><tr><td>alkaliczny detergnet (Micro)</td><td>Cole Palmer</td><td>EW-99999-14</td><td>Micro-90 Roztwór czyszczący filtr</td></tr><tr><td>poliwęglanowy, 47 mm, 0,4 i mikro; m</td><td>Membrany</td><td></td><td>wytrawione śladowo WHA111107 Whatman Nuclepore, średnica 47 mm, wielkość porów 0,4 &mu; M,</td></tr><tr><td>Filtr z poliwęglanu i poliwęglanu, 47 mm, 10 & m</td><td></td><td></td><td>Membrany wytrawione śladowo WHA111115 Whatman Nuclepore, średnica 47 mm, wielkość porów 10 &mu; m,</td></tr><tr><td>naczynie PFA z poliwęglanu, pojemność 60 ml</td><td>Savillex</td><td>300-060-03</td><td>60 ml Naczynie do wytrawiania, płaskie wnętrze, płaska strona zewnętrzna, przypora gwintowana górna Kwas</td></tr><tr><td>azotowy, ultraczysty</td><td>Seastar Chemicals</td><td>N/A</td><td>BASELINE Kwas azotowy</td></tr><tr><td>HF, ultraczysty</td><td>Seastar Chemicals</td><td>N/A</td><td>BASELINE Kwas borowy</td></tr><tr><td>, ultraczysty</td><td>Seastar Chemicals</td><td>N/A</td><td>BASELINE Rękawice polietylenowe (PE) z kwasem bromomowodorowym</td></tr><tr><td>Strefa</td><td>bezpieczeństwa</td><td>GDPL-MD-5</td><td>Przezroczyste bezpudrowe rękawice polietylenowe</td></tr><tr><td>Wielowarstwowe urządzenie filtrujące i zbierające</td><td>Sino Instrumnets Co., Ltd</td><td>niedostępne</td><td>Wielowarstwowe urządzenie filtrujące i zbierające, CATNET</td></tr><tr><td>10 um Filtry nylonowe, Nitex</td><td>Dynamic Aqua-Supply Ltd.</td><td>NTX 10</td><td>Nitex - Standardowe szerokości (40 - 44 cale)</td></tr><tr><td>Filtry nylonowe 60 um, Nitex</td><td>Dynamic Aqua-Supply Ltd.</td><td>NTX 60</td><td>Nitex - Standardowe szerokości (40 - 44 cale)</td></tr><tr><td>Filtry nylonowe 150 um, Nitex</td><td>Dynamic Aqua-Supply Ltd.</td><td>NTX 150</td><td>Nitex - Standardowe szerokości (40 - 44 cale)</td></tr><tr><td>klucz dynamometryczny</td><td>Halfords</td><td>200238</td><td>Halfords Profesjonalny klucz dynamometryczny 8-60 Nm</td></tr><tr><td>do pobierania próbek z wieloma butelkami, Rozeta</td><td>General Oceanics</td><td>Model 1018</td><td>Rosette Sampler</td></tr><tr><td>Butelki do pobierania próbek z powłoką PTFE, GO-Flo</td><td>General Oceanics</td><td>108020T</td><td>Próbnik wody GO-Flo pokryty teflonem</td></tr><tr><td>Odniesienie do osadów morskich materiały</td><td>Krajowa Rada ds. Badań Naukowych Kanada</td><td>MESS-3</td><td></td></tr><tr><td>Standardowy materiał referencyjny osadów ujścia rzeki</td><td>Narodowy Instytut Standaryzacji i Technologii</td><td>1646a</td> Materiał referencyjny dotyczący planktonu Służba <td></td></tr><tr><td></td><td>Komisji Europejskiej ds. nauki i wiedzy</td><td>CRM414</td><td></td></tr></tbody></table>

ultra-czyste, wielowarstwowe urządzenie do zbierania frakcjonowanego planktonu morskiego i zawieszonych cząstek

An Ultra-clean Multilayer Apparatus for Collecting Size Fractionated Marine Plankton and Suspended Particles

Rozmieszczenie wielu pierwiastków śladowych w oceanie jest silnie związane ze wzrostem, śmiercią i remineralizacją planktonu morskiego oraz cząstek zawieszonych/tonących. Tutaj prezentujemy wykonany w całości z tworzywa sztucznego (polipropylen i poliwęglan), wielowarstwowy system filtracji do zbierania zawieszonych cząstek stałych (SPM) na morzu. To ultraczyste urządzenie do pobierania próbek zostało zaprojektowane i opracowane specjalnie do badań nad pierwiastkami śladowymi. Staranny dobór wszystkich materiałów niemetalicznych i zastosowanie procedury przepływowej in-line minimalizuje ewentualne zanieczyszczenie metalami podczas pobierania próbek. System ten został pomyślnie przetestowany i zmodyfikowany do oznaczania metali śladowych (np. Fe, Al, Mn, Cd, Cu, Ni) na cząstkach o różnej wielkości w przybrzeżnych i otwartych wodach oceanicznych. Wyniki badań na Morzu Południowochińskim w stacji SEATS (South East Asia Time-Series) wskazują, że dobowe zmiany i przestrzenne rozmieszczenie planktonu w strefie eufotycznej mogą być łatwo rozpoznane i rozpoznane. Analiza chemiczna cząstek frakcjonowanych wielkościowo w wodach powierzchniowych Cieśniny Tajwańskiej sugeruje, że większe cząstki (>153 μm) były w większości pochodzenia biologicznego, podczas gdy mniejsze cząstki (10 - 63 μm) składały się głównie z materii nieorganicznej. Oprócz Cd stężenia metali (Fe, Al, Mn, Cu, Ni) zmniejszały się wraz ze wzrostem rozmiaru.

Wraz z rozwojem nowoczesnej oceanografii powszechną praktyką stało się stosowanie „technik czystych” w celu uzyskania dokładnych stężeń śladowych metali w cząstkach morskich lub planktonie. Ponieważ większość cząstek w wodach naturalnych występuje w stężeniach od niskich wartości rzędu mg/L do µg/L zakres, niezbędne jest przetwarzanie dużych objętości wody morskiej w celu zbadania efektów geochemicznych i biologicznych metali śladowych w odniesieniu do różnych cząstek w środowiskach natur...

Plankton i zawieszone cząstki odgrywają główną rolę w cyklach biogeochemicznych w oceanie. W tym przypadku zapewniamy ultraczystą, bezstresową metodę zbierania różnych rozmiarów cząstek i planktonu na morzu, która jest w stanie poradzić sobie z dużymi ilościami wody morskiej.

Ultra-czyste, wielowarstwowe urządzenie do zbierania frakcjonowanego planktonu morskiego i zawieszonych cząstek

The distributions of many trace elements in the ocean are strongly associated with the growth, death, and re-mineralization of marine plankton and those ...

Ogólnym celem niniejszej procedury jest filtrowanie dużych objętości wody morskiej w warunkach niskiego stresu i braku zanieczyszczeń w celu gromadzenia cząstek zawieszonych oraz planktonu. Metoda ta może pomóc w udzieleniu odpowiedzi na kluczowe pytania z dziedziny oceanografii, takie jak stechiometria i skład metali śladowych cząstek zawieszonych oraz morskiego planktonu. Metoda ta może być również wykorzystana do badania transferu troficznego, biotransformacji i biomagnifikacji w planktonie morskim.Główną zaletą tej techniki jest jej elastyczność, wyjątkowa czystość oraz łatwość w użytkowaniu. Najpierw należy oczyścić próbnik, wypełnić rurki oraz jednostkę filtracyjną 1% detergentem enzymatycznym z proteazą anionową i pozostawić do namoczenia na 24 godziny. Następnie należy dokładnie przepłukać wielowarstwowy próbnik do filtracji grawitacyjnej wodą z odwróconej osmozy, dwukrotnie destylowaną.Następnie należy napełnić go 0,1% kwasem solnym i pozostawić do namoczenia na trzy dni. Po 72 godzinach moczenia w rozcieńczonym kwasie, próbnik należy dokładnie przepłukać wodą z odwróconej osmozy, dwukrotnie destylowaną i dejonizowaną, od trzech do pięciu razy. Należy użyć minimum 20 litró

an-ultra-clean-multilayer-apparatus-for-collecting-size-fractionated

Research

JoVE Journal

Environment

Środowisko

W niniejszym filmie przedstawiono proces filtracji dużych objętości (≥20 L) biomasy drobnoustrojowej o średnicy od 0.22μm do 2.7μm z kolumny wody.

Filtracja próbek wody morskiej z wybrzeża o dużej objętości (20L+)

Niniejszy film dokumentuje filtrację małych objętości (~1 L) biomasy mikrobowej z kolumny wody.

Filtracja małych objętości (1–3 l) próbek przybrzeżnej wody morskiej

Source: Heng, S. &amp; Ceballos, R. M. Environmental Sampling of Photosynthetic Microbes and Their Viruses: From Field to Lab. J. Vis. Exp. (2025)This video demonstrates the isolation and concentration of viruses from seawater using sequential filtration and centrifugal ultrafiltration. It outlines the steps for size-based viral separation and recovery of a concentrated suspension for downstream analysis.

Enrichment of Marine Viruses via Size-Based Filtration and Centrifugal Concentration

Tutaj prezentujemy kompleksowy protokół do oceny dostępności organicznych i nieorganicznych składników odżywczych oraz obfitości i struktury społeczności mikroorganizmów i wirusów w odległych środowiskach morskich.

Odkrywanie niewidzialnych graczy w oceanie - przewodnik terenowy po chemii wody i mikrobiologii morskiej

Ten protokół opisuje architekturę systemu do wykonywania automatycznych separacji cząstek o małej objętości (0,15–1,5 ml) za pomocą urządzenia mikroprzepływowego i omawia metody optymalizacji wydajności i działania urządzenia akustycznego.

Platforma mikroprzepływowa do precyzyjnego przetwarzania próbek o małej objętości i jej wykorzystanie do wymiarowania oddzielnych cząstek biologicznych za pomocą mikrourządzenia akustycznego

Wprowadzamy VacuSIP, prostą, nieinwazyjną i niezawodną metodę czystego i dokładnego punktowego pobierania próbek wody. System został opracowany i oceniony pod kątem jednoczesnego zbierania wody wdychanej i wydychanej przez dozowniki zawiesiny bentosowej in situ, w celu czystego pomiaru usuwania i wydalania cząstek stałych i rozpuszczonych związków.

VacuSIP, ulepszona metoda InEx do pomiaru in situ cząstek stałych i rozpuszczonych związków przetwarzanych przez aktywne podajniki zawiesiny

Poniższy protokół opisuje metodologię: pobierania próbek mikroplastiku na powierzchni morza, separacji mikroplastiku i chemicznej identyfikacji cząstek. Protokół ten jest zgodny z zaleceniami dotyczącymi monitorowania mikrodrobin plastiku opublikowanymi przez Podgrupę Techniczną ds. Odpadów Morskich ds. Dyrektywy Ramowej w sprawie Strategii Morskiej.

Protokół pobierania próbek mikrodrobin plastiku z powierzchni morza i analizy próbek

Większość dotychczasowych badań nad mikroplastikiem miała miejsce w systemach morskich, gdzie poziom zawieszonych ciał stałych jest stosunkowo niski. Uwaga skupia się obecnie na systemach słodkowodnych, które mogą charakteryzować się dużą ilością osadów i pływającymi szczątkami. Protokół ten dotyczy zbierania i analizowania próbek mikroplastiku ze środowisk wodnych, które zawierają wysokie zawieszone ładunki stałe.

Pobieranie próbek, sortowanie i charakteryzowanie mikrodrobin plastiku w środowisku wodnym z dużą ilością zawieszonych osadów i dużymi pływającymi odpadami

Przedstawiona tutaj jest metoda ekstrakcji mikroplastiku z gleby i identyfikacji ich typów polimerów. Metoda została zoptymalizowana pod kątem wykonania, możliwości zastosowania i opłacalności. Stanowi ona naukowe podstawy do standaryzacji metody analitycznej do identyfikacji mikrodrobin plastiku w glebie.

Separacja i identyfikacja konwencjonalnych mikrodrobin plastiku z gleb użytków rolnych

Tutaj przedstawiamy szczegółowy opis pobierania próbek wód gruntowych z otworu wiertniczego do analizy mikroplastików, wykorzystując opatentowany system pobierania próbek opracowany w tym celu. Protokół szczegółowo opisuje metody pobierania próbek mikroplastików z otworów wiertniczych, a także separację i identyfikację chemiczną mikroplastików.

Pobieranie próbek i identyfikacja mikroplastików w wodach gruntowych

Poznaj metodę frakcjonowanego zbierania planktonu morskiego i cząstek zawieszonych przy użyciu ultra-czystego, wielowarstwowego urządzenia. Technika ta minimalizuje stres i zanieczyszczenia próbek.

Ultra-czyste, wielowarstwowe urządzenie do zbierania frakcjonowanego planktonu morskiego i zawieszonych cząstek

Przeglądaj więcej filmów