Name: In vivo (in vivo) Analiza morfometryczna nerwów czaszkowych człowieka z wykorzystaniem rezonansu magnetycznego w uszach chorych Menièrea i uszach prawidłowo słyszących (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-02-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 27 s
Description: Poznaj metodę oceny zmian morfologicznych nerwów czaszkowych in vivo przy użyciu rezonansu magnetycznego u pacjentów z chorobą Menière'a. Technika ta umożliwia pomiar średnicy nerwów i może wspierać diagnostykę.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Robert Gürkov otrzymał dofinansowanie od niemieckiego Ministerstwa Badań i Edukacji BMBF, Grant No. 01 EO 0901.

Wszystkie procedury zostały zatwierdzone przez lokalną komisję etyczną (Institutional review board of the University of Munich/LMU Munich Protocol No. 093-09). Wszyscy pacjenci wyrazili świadomą zgodę na wykonywane zabiegi.
1. Badanie kliniczne
<ol>
	<li>Identyfikacja pacjentów z podejrzeniem MD we współpracy z Oddziałem Laryngologicznym (LARYNGiRNG).
	<ol>
		<li>Przeprowadź ocenę kliniczną; należy ocenić zawroty głowy, szumy uszne/dzwonienie w uchu i ubytek słuchu (prawdopodobnie wahania). Sprawdź, czy nie występują nudności i wymioty. Sprawdź czas trwania objawów.</li>
		<li>Uwzględnij wyniki badań klinicznych i funkcjonalnych w diagnostyce MD: sprawdź wyniki audiometrii, wideookulusografii kalorycznej, przedsionkowych potencjałów miogennych wywołanych (VEMP) i elektrokochleografii (ECoG) w dokumentach szpitalnych lub systemie elektronicznej dokumentacji medycznej.</li>
		<li>Sprawdź typowe wyniki w MD: audiometria może wykazać upośledzony poziom słuchu w czystym uśrednianiu tonów (PTA), nawadnianie kaloryczne może ujawnić poziomy niedowład półkolisty, stosunek SP / AP może być patologicznie wysoki w ECoG, a współczynnik amplitudy międzyusznej VEMP może być znacznie niższy u pacjentów z MD.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Akwizycja obrazu MRI u pacjentów cierpiących na MD i zdrowych osób z grupy kontrolnej
<ol>
	<li>Zastosować wstrzyknięcie gadolinu do błony bębenkowej na 24 godziny przed badaniem MRI w grupie pacjentów. Wstrzyknąć dotympanicznie 0,4 ml środka kontrastowego na bazie gadolinu (np. Magnograf rozcieńczony 8-krotnie w roztworze soli fizjologicznej) 24 godziny przed planowanym badaniem MRI.</li>
	<li>Przygotuj pacjenta do badania MRI: sprawdź, czy nie ma metalowych implantów (badania są możliwe przy użyciu rozrusznika serca, jeśli zostaną podjęte odpowiednie środki ostrożności; implanty dentystyczne są zwykle wykonalne), klaustrofobia itp. Używaj urządzeń redukujących hałas, takich jak słuchawki redukujące hałas, aby chronić słuch pacjenta.</li>
	<li>Umieść pacjenta odpowiednio w skanerze. Ustaw głowę pacjenta prosto, a następnie załóż i zamknij cewkę głowicy MR. Ustaw głowę/kość skroniową pacjenta w izocentrum skanera MR.</li>
	<li>Wykonaj rezonans magnetyczny MRI zgodnie z protokołem badania, w tym sekwencje 3D-FLAIR i 3D-rzeczywiste IR do wykrywania wodniaków endolimfatycznych w grupie pacjentów oraz silnie T2-CISS do analizy morfologicznej nerwów czaszkowych w grupie pacjentów i zdrowych osób z grupy kontrolnej.</li>
	<li>Ustaw parametry sekwencji dla skanowania morfometrycznego 3D-CISS w następujący sposób: czas powtarzania (TR) 5,79 ms, czas echa (TE) 2,58 ms, kąt odwrócenia 34°, pole widzenia (FoV) 160 x 160 mm2, rozmiar matrycy 320 x 320, liczba średnich 1, grubość warstwy 0,5 mm (tabela 1). Wykonaj skany 3D-FLAIR przy użyciu TR 9 000 ms, TE 128 ms, czasu odwrócenia 2 500 ms, kąta odwrócenia 180°, rozmiaru matrycy 384 x 384, grubości warstwy 2 mm. Ustaw parametry dla 3D-real IR w następujący sposób: TR 6 000 ms, TE 155 ms, czas inwersji 1 500 ms, kąt odwrócenia 180°, rozmiar matrycy 320 x 320, grubość warstwy 0,5 mm.</li>
</ol>
3. Kontrola jakości MRI i identyfikacja endolimfatycznych kropli w MRI
<ol>
	<li>Sprawdź jakość obrazu MRI w odniesieniu do artefaktów, takich jak artefakty fałdowe, artefakty pulsacji, artefakty metalowe, i zwróć szczególną uwagę na cel oceny, w tym przypadku nerwy czaszkowe VII i VIII przez cały ich przebieg.</li>
	<li>Oceń wodniaki endolimfatyczne w skanach MRI grupy pacjentów. Sprawdź, czy stopień uwidocznienia hydropów ślimakowych i labiryntowych endolimfis jest widoczny, badając nabyte sekwencje 3D-FLAIR i 3D-rzeczywiste sekwencje IR (<silna klasa="xfig">Rysunek 1).</li>
</ol>
4. Pomiary nerwów czaszkowych oparte na obrazach
<ol>
	<li>Przygotowania ogólne
	<ol>
		<li>Zainstaluj wybraną przeglądarkę DICOM do oceny obrazu i pomiarów na stacji roboczej do analizy, np. OsiriX lub Horos.</li>
		<li>Uruchom przeglądarkę DICOM, klikając dwukrotnie ikonę aplikacji, zostanie wyświetlone okno bazy danych.</li>
		<li>Zaimportuj dane obrazu pacjenta, klikając lewym przyciskiem myszy "Plik" w górnym menu rozwijanym, a następnie wybierz "Importuj" → "Importuj plik". W selektorze plików wybierz dane obrazu pacjenta; Imię i nazwisko pacjenta oraz dane zostaną wyświetlone w oknie bazy danych po pomyślnym zaimportowaniu. 
		UWAGA: Importowanie skompresowanych plików (np. .zip) lub nieskompresowanych katalogów plików DICOM jest możliwe za pomocą wyżej wymienionych przeglądarek DICOM.</li>
		<li>W oknie bazy danych rozwiń folder z obrazem pacjenta, klikając lewym przyciskiem myszy symbol trójkąta po lewej stronie nazwiska pacjenta. Wybierz wybraną sekwencję z tego folderu (tutaj sekwencję CISS) i kliknij ją dwukrotnie lewym przyciskiem myszy, aby otworzyć odpowiednie dane obrazu. Zostaną wyświetlone dane obrazu pacjenta.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Rekonstrukcje nerwów czaszkowych 
	Uwaga: Ze względu na długi i nie zawsze w płaszczyźnie przebieg nerwów od pnia mózgu przez kąt móżdżkowo-pontynowy (CPA) do przewodu słuchowego i dalej do dna przewodu słuchowego wewnętrznego (IAC), konieczna jest rekonstrukcja i ocena średnic nerwu i CSA na różnych poziomach.
	<ol>
		<li>Przygotuj się do rekonstrukcji przekrojów poprzecznych w następujących miejscach w całym przebiegu nerwów czaszkowych, aby uniknąć błędów pomiarowych wynikających z ukośnych przekrojów w całym przebiegu nerwu, wybierając "3D MPR" z menu rozwijanego "Przeglądarka 3D" u góry ekranu; zostanie wyświetlone okno MPR.</li>
		<li>Dostosuj poziomy powiększenia, aby dostosować się do struktur, które mają zostać zrekonstruowane (w tym przypadku nerwy czaszkowe VII i VIII), wybierając narzędzie do powiększania (szkło powiększające) z obszaru "Zmień funkcję przycisku myszy" na pasku narzędzi w lewej górnej części okna MPR. Następnie przesuń kursor myszy na każdą z 3 płaszczyzn w oknie MPR i dostosuj poziomy powiększenia, klikając lewym przyciskiem myszy i przeciągając myszą (kursor myszy zmieni się w lupę).</li>
		<li>Zrekonstruuj centralny nerw VIII i ustaw płaszczyznę rekonstrukcji prostopadłą do przebiegu nerwów w środku CPA. Sprawdź i dostosuj orientację zrekonstruowanej płaszczyzny we wszystkich 3 płaszczyznach/oknach (powinna być zrekonstruowana prostopadle do kierunku skrzyżowania nerwu, aby uniknąć częściowych efektów objętości przy kolejnych pomiarach).
		<ol>
			<li>Sprawdź, czy nerw nie przechodzi poza płaszczyznę i odpowiednio skoryguj orientację płaszczyzny.
			<ol>
				<li>Aby skorygować orientację płaszczyzny, przesuń kursor myszy do środka krzyżyka osi każdej płaszczyzny w oknie MPR (gdy zostanie umieszczony prawidłowo, kursor myszy zmieni się w symbol dłoni).</li>
				<li>Chwyć krzyż celownika osi w każdej z 3 płaszczyzn/okien indywidualnie za pomocą narzędzia do chwytania wskazanego ikoną dłoni i przesuń oś w przybliżeniu do wejścia do wewnętrznego kanału akustycznego w każdej z 3 płaszczyzn.</li>
				<li>Dostosuj orientację 3 osi do przebiegu nerwu za pomocą funkcji obracania dostępnej po przesunięciu myszy na boczne aspekty każdej osi (prawidłowa funkcja obracania jest przedstawiana przez zmianę kursora myszy na ikonę krzywoliniową). Następnie przytrzymaj wciśnięty lewy przycisk myszy i przeciągnij myszą, aby dostosować orientację płaszczyzny.</li>
				<li>Dostosuj orientację płaszczyzny we wszystkich 3 oknach okna MPR. W celu zrekonstruowania płaszczyzny poprzecznej do przebiegu VIII nerwów na poziomie środka CPA, przejdź do lewego dolnego okna w oknie MPR i przesuń mysz na środek celownika osi, aby kursor myszy ponownie przekształcił się w symbol dłoni. Następnie kliknij lewym przyciskiem myszy i przeciągnij płaszczyznę (pomarańczową linię) w żądane miejsce (tutaj, do środka CPA).</li>
				<li>W razie potrzeby dostosuj poziomy powiększenia za pomocą narzędzia do powiększania (mysz zmieni swoją ikonę na lupę), klikając lewym przyciskiem myszy i przeciągając.</li>
				<li>Kliknij lewym przyciskiem myszy w prawym górnym oknie okna MPR, aby wybrać tę płaszczyznę. Wybierz "Plik" → "Eksportuj" → "Eksportuj do pliku DICOM". W oknie "Eksport DICOM" wybierz "Sekwencja:" → "Tylko bieżący obraz", klikając lewym przyciskiem myszy sąsiedni selektor okręgu.</li>
				<li>Zmień nazwę serii odpowiednio, tutaj "VIII CPA". Następnie kliknij lewym przyciskiem myszy przycisk "OK" w prawym dolnym aspekcie okna eksportu DICOM. 
				UWAGA: Spowoduje to zamknięcie okna eksportu DICOM, zapisanie zrekonstruowanego obrazu w bazie danych pacjenta i powrót do okna MPR.</li>
			</ol>
			</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Zrekonstruuj ortogonalne widoki gałęzi VIII nerwu: nerwu ślimakowego (CN), nerwu przedsionkowego górnego (SVN) i nerwu przedsionkowego dolnego (IVN) na poziomie ujścia IAC, gdzie reprezentatywna wizualizacja jest zwykle dobrze wykonalna. Sprawdź, czy nerw nie przechodzi poza płaszczyznę i odpowiednio skoryguj orientację płaszczyzny.
		<ol>
			<li>Chwyć krzyż nitkowy osi w każdej z 3 płaszczyzn/okien za pomocą narzędzia do chwytania wskazanego ikoną dłoni, przesuń oś w kierunku CN, SVN i IVN, odpowiednio na poziomie ujścia IAC, i dostosuj ich orientację do przebiegu nerwu za pomocą funkcji obracania dostępnej w bocznych aspektach każdej osi przedstawionej przez zakrzywioną ikonę, zgodnie z opisem w krokach 4.2.3.1.1 - 4.2.3.1.5.</li>
			<li>Wyeksportuj zrekonstruowane płaszczyzny i zmień ich nazwy zgodnie z krokami 4.2.3.1.6 - 4.2.3.1.7.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Zrekonstruuj ortogonalne widoki nerwu twarzowego (nerwu czaszkowego VII) na poziomie CPA, przewodu IAC i dna IAC, jak opisano w kroku 4.2.3. Sprawdź, czy nerw nie przechodzi poza płaszczyznę i odpowiednio skoryguj orientację płaszczyzny na każdym poziomie rekonstrukcji.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wymiary 
	Uwaga: Wykonaj następujące pomiary: zmierz CSA, długą średnicę (LD) i prostopadłą krótką średnicę (SD) nerwu twarzowego (nerw czaszkowy VII) i nerwu przedsionkowo-ślimakowego (nerw czaszkowy VIII) na zrekonstruowanych obrazach poprzecznych (<silna klasa="xfig">Rysunek 4 i <silna klasa="xfig">Rysunek 5). Zwróć uwagę na spójne poziomy okien między skanami, aby uniknąć częściowego wpływu na pomiary ilościowe w sposób niesystematyczny.
	<ol>
		<li>Wybrać poprzednio zrekonstruowany obraz nerwu czaszkowego VIII na poziomie CPA, klikając lewym przyciskiem myszy odpowiedni plik obrazu (poprzednio nazwany "VIII CPA") w oknie bazy danych przeglądarki DICOM. Otwórz go, klikając dwukrotnie lewym przyciskiem myszy nazwę pliku. Zrekonstruowany obraz otworzy się w jednym oknie.</li>
		<li>W razie potrzeby powiększ struktury obrazu zgodnie z instrukcjami w kroku 4.2.2. Wybierz "Długość", klikając lewym przyciskiem myszy trójkątny symbol obok "Zmień funkcję przycisku myszy" na pasku narzędzi u góry ekranu. Kliknij lewym przyciskiem myszy i przytrzymaj wciśnięty lewy przycisk myszy, aby narysować linię pomiaru dla najdłuższej średnicy nerwu czaszkowego VIII; ten pomiar to LD.</li>
		<li>Wykonaj pomiar prostopadły do LD dla pomiaru SD. 
		UWAGA: Pomiary zostaną automatycznie zapisane, jeśli używasz OsiriX lub Horos jako przeglądarki DCIOM.
		<ol>
			<li>Powtórz te pomiary LD i SD również w rekonstrukcjach nerwu VIII na poziomie ujścia IAC, mierząc w pliku obrazu z bazy danych obrazów o nazwie "VIII meatus" oraz na poziomie dna IAC, nazwa pliku "VIII dno krwi".</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Oceń CSA, najlepiej używając zamkniętego wielokątnego obszaru zainteresowania (ROI), aby uwzględnić możliwe niejednorodności w konturze przekroju poprzecznego nerwu czaszkowego. Na pasku narzędzi w górnej części ekranu naciśnij trójkątny symbol po prawej stronie obszaru "Funkcja przycisku myszy" i wybierz "Zamknięty wielokąt" (poprzednio wybrany symbol linii zmieni się w wielokąt).</li>
		<li>Nakreśl kontur nerwu czaszkowego VIII, klikając kilka razy lewym przyciskiem myszy na granicy nerwu. Aby zamknąć wielokąt, kliknij dwukrotnie lewym przyciskiem myszy w żądanym punkcie; Zostanie wyświetlony pełny kontur. 
		Uwaga: W razie potrzeby popraw położenie punktów wielokąta, klikając lewym przyciskiem myszy i przesuwając je.</li>
		<li>Otwórz poprzednio wykonaną rekonstrukcję nerwu twarzowego na poziomie CPA (nazwa pliku obrazu "VII CPA") i wykonaj pomiary LD, SD i CSA dla nerwu czaszkowego VII wykonując kroki 4.3.1 - 4.3.5.</li>
		<li>Otwórz rekonstrukcje na poziomie ujścia IAC i wykonaj pomiary LD, SD i CSA dla CN, SVN, IVN i nerwu czaszkowego VII, wykonując kroki 4.3.1 - 4.3.5.</li>
		<li>Otwórz rekonstrukcje na poziomie dna IAC i wykonaj pomiary LD, SD i CSA dla CN, SVN, IVN i nerwu czaszkowego VII, wykonując kroki 4.3.1 - 4.3.5.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Gurkov, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+visualized+endolymphatic+hydrops+and+inner+ear+functions+in+patients+with+electrocochleographically+confirmed+Meniere%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Otol+Neurotol%22%5BJournal%5D)">In vivo visualized endolymphatic hydrops and inner ear functions in patients with electrocochleographically confirmed Meniere's disease.</a> Otol Neurotol. 33 (6), 1040-1045 (2012).</li>
<li>Gurkov, R., Flatz, W., Louza, J., Strupp, M., Krause, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+visualization+of+endolyphatic+hydrops+in+patients+with+Meniere%27s+disease%3A+correlation+with+audiovestibular+function%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Arch+Otorhinolaryngol%22%5BJournal%5D)">In vivo visualization of endolyphatic hydrops in patients with Meniere's disease: correlation with audiovestibular function.</a> Eur Arch Otorhinolaryngol. 268 (12), 1743-1748 (2011).</li>
<li>Gurkov, R., Pyyko, I., Zou, J., Kentala, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+is+Meniere%27s+disease%3F+A+contemporary+re-evaluation+of+endolymphatic+hydrops%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurol%22%5BJournal%5D)">What is Meniere's disease? A contemporary re-evaluation of endolymphatic hydrops.</a> J Neurol. 263, Suppl 1 71-81 (2016).</li>
<li>Plontke, S. K., Gurkov, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meniere%27s+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22Laryngorhinootologie%22%5BJournal%5D)">Meniere's Disease.</a> Laryngorhinootologie. 94 (8), 530-554 (2015).</li>
<li>Klockars, T., Kentala, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inheritance+of+Meniere%27s+disease+in+the+Finnish+population%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Otolaryngol+Head+Neck+Surg%22%5BJournal%5D)">Inheritance of Meniere's disease in the Finnish population.</a> Arch Otolaryngol Head Neck Surg. 133 (1), 73-77 (2007).</li>
<li>Greco, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meniere%27s+disease+might+be+an+autoimmune+condition%5BTitle%5D)+AND+%22Autoimmun+Rev%22%5BJournal%5D)">Meniere's disease might be an autoimmune condition.</a> Autoimmun Rev. 11 (10), 731-738 (2012).</li>
<li>Ozdogmus, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Connections+between+the+facial%2C+vestibular+and+cochlear+nerve+bundles+within+the+internal+auditory+canal%5BTitle%5D)+AND+%22J+Anat%22%5BJournal%5D)">Connections between the facial, vestibular and cochlear nerve bundles within the internal auditory canal.</a> J Anat. 205 (1), 65-75 (2004).</li>
<li>Nakamichi, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishing+normal+diameter+range+of+the+cochlear+and+facial+nerves+with+3D-CISS+at+3T%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">Establishing normal diameter range of the cochlear and facial nerves with 3D-CISS at 3T.</a> Magn Reson Med Sci. 12 (4), 241-247 (2013).</li>
<li>Kang, W. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normative+diameters+and+effects+of+aging+on+the+cochlear+and+facial+nerves+in+normal-hearing+Korean+ears+using+3.0-tesla+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Normative diameters and effects of aging on the cochlear and facial nerves in normal-hearing Korean ears using 3.0-tesla magnetic resonance imaging.</a> Laryngoscope. 122 (5), 1109-1114 (2012).</li>
<li>Jaryszak, E. M., Patel, N. A., Camp, M., Mancuso, A. A., Antonelli, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cochlear+nerve+diameter+in+normal+hearing+ears+using+high-resolution+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Cochlear nerve diameter in normal hearing ears using high-resolution magnetic resonance imaging.</a> Laryngoscope. 119 (10), 2042-2045 (2009).</li>
<li>Henneberger, A., Ertl-Wagner, B., Reiser, M., Gurkov, R., Flatz, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphometric+evaluation+of+facial+and+vestibulocochlear+nerves+using+magnetic+resonance+imaging%3A+comparison+of+Meniere%27s+disease+ears+with+normal+hearing+ears%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Arch+Otorhinolaryngol%22%5BJournal%5D)">Morphometric evaluation of facial and vestibulocochlear nerves using magnetic resonance imaging: comparison of Meniere's disease ears with normal hearing ears.</a> Eur Arch Otorhinolaryngol. 274 (8), 3029-3039 (2017).</li>
<li>Zwergal, A., Brandt, T., Magnusson, M., Kennard, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DIZZYNET%3A+the+European+network+for+vertigo+and+balance+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurol%22%5BJournal%5D)">DIZZYNET: the European network for vertigo and balance research.</a> J Neurol. 263, Suppl 1 1(2016).</li>
<li>Zwergal, A., Brandt, T., Magnusson, M., Kennard, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DIZZYNET--a+European+network+initiative+for+vertigo+and+balance+research%3A+visions+and+aims%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurol%22%5BJournal%5D)">DIZZYNET--a European network initiative for vertigo and balance research: visions and aims.</a> J Neurol. 263, Suppl 1 2-9 (2016).</li>
<li>Grill, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DizzyReg%3A+the+prospective+patient+registry+of+the+German+Center+for+Vertigo+and+Balance+Disorders%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurol%22%5BJournal%5D)">DizzyReg: the prospective patient registry of the German Center for Vertigo and Balance Disorders.</a> J Neurol. , (2017).</li>
<li>Semaan, M. T., Alagramam, K. N., Megerian, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+basic+science+of+Meniere%27s+disease+and+endolymphatic+hydrops%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Otolaryngol+Head+Neck+Surg%22%5BJournal%5D)">The basic science of Meniere's disease and endolymphatic hydrops.</a> Curr Opin Otolaryngol Head Neck Surg. 13 (5), 301-307 (2005).</li>
<li>Hayashi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Usefulness+of+the+advanced+neuroimaging+protocol+based+on+plain+and+gadolinium-enhanced+constructive+interference+in+steady+state+images+for+gamma+knife+radiosurgery+and+planning+microsurgical+procedures+for+skull+base+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Neurochir+Suppl%22%5BJournal%5D)">Usefulness of the advanced neuroimaging protocol based on plain and gadolinium-enhanced constructive interference in steady state images for gamma knife radiosurgery and planning microsurgical procedures for skull base tumors.</a> Acta Neurochir Suppl. 116, 167-178 (2013).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Wykazaliśmy wykonalną i dostępną metodę oceny zmian morfometrycznych nerwów czaszkowych, ponieważ mogą one wystąpić w kilku sytuacjach patofizjologicznych, tutaj w MD w porównaniu z prawidłową kontrolą słuchu.
Modyfikacje i rozwiązywanie problemów:
Podobne pomiary do tych opisanych tutaj dla 7. i 8 . nerwuczaszkowego można wykonać przy użyciu zastosowanych skanów sekwencji 3D-CISS dla wszystkich innych nerwów czaszkowych na róż...

Rezonans magnetyczny (MRI) odgrywa ważną rolę w wizualizacji i analizie anatomii, a także fizjologicznych i patologicznych procesów zachodzących w ludzkim ciele. Ponieważ kliniczna i elektrofizjologiczna diagnoza choroby Menière'a (MD) może być trudna, korzystanie z dodatkowych informacji pochodzących z MRI jest więcej niż pomocne1,2,3,4. Opracowano metodę in vivo do analizy wodniaków endolimfatycznych w MD oraz zmian morfometrycznych nerwów czaszkowych za pomocą rezonansu magnetycznego. Dzięki temu połączonemu podejściu potwierdzono rozpoznanie definitywnego MD i badano zmiany morfometryczne nerwów czaszkowych na różnych poziomach w całym przebiegu nerwów. Etiologia MD jest nadal niejasna5,6,7. Zaproponowano, że utrata komórek nerwowych może być zaangażowana w MD, ale nie zostało to jeszcze potwierdzone.
Odpowiednie nerwy czaszkowe do analizy morfometrycznej w MD to7 i 8 nerw wraz z jego gałęziami, które były analizowane w tym badaniu. Tylko kilka badań można znaleźć analizujących morfometryczne aspekty tych nerwów za pomocą MRI8,9,10. W badaniu przeprowadzonym przez Hennebergera i wsp. przeanalizowano zmiany morfometryczne 7. i 8. nerwu czaszkowego w uszach MD w porównaniu z uszami normalnie słyszącymi11.
Przedstawiona tutaj metoda umożliwia wizualizację in vivo i analizę morfometryczną7 i 8 nerwuczaszkowego w całym ich przebiegu od mózgu do kości skroniowej. Za pomocą tej metody wykazaliśmy, że istnieją istotne różnice między grupą pacjentów z MD a zdrowymi uszami. Opisaną metodę proponujemy do zastosowania w kilku sytuacjach/chorobach, gdy interesujące są potencjalne zmiany morfometryczne nerwów czaszkowych. To, czy metoda ta zostanie utrwalona w klinicznych badaniach diagnostycznych, zostanie ocenione w przyszłych badaniach. Rzeczywiste alternatywy dla opisanej metody oceny in vivo zmian morfometrycznych nerwów czaszkowych nie są dostępne i chociaż tomografia komputerowa (CT) ma swoje mocne strony, takie jak szeroka dostępność, szybkość i obraz zmian kostnych, wykazuje również zbyt niskie kontrasty tkankowe, aby uwidocznić subtelne zmiany w nerwach czaszkowych w obrębie neurokranium i kości skroniowej. Analiza pośmiertna zmian w nerwach czaszkowych u pacjentów z MD pozostaje do zbadania. Dzięki specjalnym technikom obrazowania i oceny, jak opisano tutaj, możliwa jest analiza zmian morfometrycznych nerwów czaszkowych u pacjentów z MD i zdrowych osób z grupy kontrolnej za pomocą MRI. Rutynowe badania MRI mózgu często nie obejmują technik obrazowania o wysokiej rozdzielczości, silnie zależnych od T2, które są obowiązkowe do oceny zmian morfometrycznych nerwów czaszkowych 7 i 8.
Opracowana metoda może mieć dalszy wpływ diagnostyczny na ocenę różnych poziomów nasilenia MD, a także odgrywać rolę w ocenie zawrotów głowy, deficytów słuchu i szumów usznych. Wyspecjalizowane ośrodki zajmujące się diagnostyką i terapią zawrotów głowy odgrywają ważną rolę w dzisiejszych systemach opieki zdrowotnej, a nasza metoda może dostarczyć specjalistom możliwego narzędzia do ich badań diagnostycznychup12,13,14. Zawroty głowy to złożony objaw występujący w wielu chorobach, wymagający gruntownej interdyscyplinarnej współpracy między różnymi specjalizacjami, co wykazano w wyspecjalizowanych ośrodkach diagnostycznych i terapeutycznych nad zawrotami głowy12,13,14.
O ile nam wiadomo, w literaturze nie ma dostępnej metody analizy morfometrycznej in vivo nerwów czaszkowych u lekarzy medycyny i zdrowych osób z grupy kontrolnej.

<table><tbody><tr><td>MR-scanner, np. Siemens Magnetom Verio, lub odpowiednie MR-scans w formacie DICOM, e.g. 3D-CISS</td><td>Siemens Healthcare GmbH, Erlangen, Niemcy, lub skany MR dowolnego innego producenta</td><td>1</td><td>Zamiast skanera MR, do analizy morfometrycznej można użyć odpowiednio pozyskanych skanów MR</td></tr><tr><td>Osirix lub dowolnego innego DICOM-Viewer z odpowiednimi narzędziami</td> <td>ocenyPixmeo SARL, Genewa, Szwajcaria</td><td>2</td><td>Oprogramowanie do przeglądania i oceny obrazów DICOM</td></tr><tr><td>MedCalc lub inne <silne>oprogramowanie do analizy statystycznej, np. SPSS&nbsp;</td><td>MedCalc Software bvba, Ostenda, Belgia</td><td>3</td><td>Oprogramowanie do analizy statystycznej</td></tr> <tr><td><silne>Komputer</silne> z systemem Windows lub MacOSX/macOS</td>, <td>np. Lenovo, Apple lub cokolwiek samodzielnie wyprodukowanego</td><td>4</td><td>Sprzęt, na którym można zastosować powyższe oprogramowanie</td></tr></tbody></table>

in vivo (in vivo) analiza morfometryczna nerwów czaszkowych człowieka z wykorzystaniem rezonansu magnetycznego w uszach chorych menière'a i uszach prawidłowo słyszących

In Vivo Morphometric Analysis of Human Cranial Nerves Using Magnetic Resonance Imaging in Meni&#232;re's Disease Ears and Normal Hearing Ears

Analiza struktur nerwowych w chorobie Menière'a (MD) jest ważna, ponieważ utrata takich struktur była wcześniej proponowana dla tej grupy pacjentów, ale nie została jeszcze potwierdzona. Protokół ten opisuje metodę oceny in vivo zmian neuronalnych, szczególnie dobrze nadającą się do analizy nerwów czaszkowych za pomocą rezonansu magnetycznego (MRI). Pacjenci z MD i osoby normalnie słyszące byli badani w 3-T MR-scannerze przy użyciu protokołu skanowania obejmującego silnie T2-ważoną sekwencję gradientu 3D echa (3D-CISS). W grupie pacjentów MD zostało dodatkowo potwierdzone za pomocą oceny wodniaków endolimfatycznych na podstawie MRI. Analiza morfometryczna została przeprowadzona przy użyciu darmowej przeglądarki DICOM. Ocena nerwów czaszkowych obejmowała pomiary pól przekroju poprzecznego (CSA) nerwów na różnych poziomach, a także ortogonalne pomiary średnicowe.

Analizę statystyczną przeprowadzono przy użyciu oprogramowania do analizy statystycznej, stosując dwustronny test t dla prób niezależnych. Ocenę obrazów wykonali dwaj badacze. Istotna różnica między wartościami średnimi w grupie pacjentów (n = 21) i grupie kontrolnej osób zdrowych (n = 39) została stwierdzona dla pomiarów CSA nerwu twarzowego, CN, SVN oraz IVN (Tabela 2). Pomiary CSA w grupie pacjentów wykazały istotnie większe wartości CSA (...

Aby ocenić zmiany morfologiczne nerwów czaszkowych, takie jak utrata struktur nerwowych lub obrzęk nerwów czaszkowych w chorobie Menière'a (MD) lub u zdrowych osób in vivo, opracowano protokół oceny za pomocą obrazowania metodą rezonansu magnetycznego (MRI). Wykonano dodatkowe potwierdzenie MD za pomocą rezonansu magnetycznego.

In vivo (in vivo) Analiza morfometryczna nerwów czaszkowych człowieka z wykorzystaniem rezonansu magnetycznego w uszach chorych Menière'a i uszach prawidłowo słyszących

Analysis of neural structures in Meni&#232;re's Disease (MD) is of importance, since a loss of such structures has previously been proposed for this ...

Ogólnym celem tej procedury jest ocena zmian morfologicznych nerwów czaszkowych in vivo za pomocą rezonansu magnetycznego, co można znaleźć na przykład w zmianach zapalnych. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie medycyny, takie jak: czy w innych stanach in vivo obserwujemy zmiany struktur neuronalnych? Główną zaletą tej techniki jest to, że może być stosowana in vivo z możliwymi implikacjami dla diagnozy i terapii chorób.W naszym badaniu przyjrzeliśmy się nerwom przedsionkowym ślimaka u pacjentów z chorobą Meniere'a. Przyjrzeliśmy się średnicy nerwu, aby zobaczyć, jak gruby jest i czy występuje przerzedzenie nerwu. Możesz z łatwością użyć tej techniki również w przypadku innych nerwów czaszkowych, aby przyjrzeć się innym procesom chorobowym, dzięki czemu można ją łatwo przełożyć na inne obszary chorobowe.Zacznij od odprowadzenia pacjenta do sali rezonansu magnetycznego i położenia go na stole skanera. Upewnij się, że ich głowy są ustawione prosto w izośrodku skanera, a następnie zabezpiecz cewkę głowicy. Następnie wykonaj skan MRI zgodnie z protokołem badania, w tym zaostrzenia 3D i sekwencje 3D rzeczywistej podczerwieni w celu wykrycia wodniaków endoli

in-vivo-morphometric-analysis-human-cranial-nerves-using-magnetic

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

W niniejszym artykule opisano techniki wykonywania funkcjonalnego obrazowania rezonansu magnetycznego o wysokiej rozdzielczości z próbkowaniem 1,2 mm w obrębie ludzkiego śródmózwia i struktur podkorowych przy użyciu skanera 3T. Jako przykład przedstawiono zastosowanie tych technik do opracowania map topograficznych stymulacji wzrokowej w ludzkim wzgórzu górnym (SC).

Metody funkcjonalnego obrazowania rezonansem magnetycznym o wysokiej rozdzielczości dla ludzkiego śródmózgowia

Źródło: Flatz, W. H. et al. In vivo Analiza morfometryczna ludzkich nerwów czaszkowych za pomocą rezonansu magnetycznego Uszy Menière'a w chorobie i uszy słyszenia prawidłowego. J. Vis. exp. (2018). Ten film pokazuje zastosowanie MRI do analizy morfologii nerwów czaszkowych w uszach pacjentów cierpiących na przewlekłe zaburzenie ucha wewnętrznego. Przedstawiono w nim etapy wykonywania skanu MRI w silnym polu magnetycznym u pacjenta, rekonstrukcję obrazów przekroju poprzecznego 3D nerwów...

Analiza MRI in vivo morfologii nerwu czaszkowego u pacjenta z zaburzeniami ucha wewnętrznego

Ten film ilustruje metodę, przy użyciu klinicznego skanera 3 T, do obrazowania MR z kontrastem projekcji wzrokowej naiwnej myszy oraz do powtarzalnych i podłużnych badań in vivo zwyrodnienia nerwu wzrokowego związanego z ostrym uszkodzeniem nerwu wzrokowego i przewlekłym zwyrodnieniem nerwu wzrokowego u myszy z nokautem (p50KO).

In vivo (in vivo) Obrazowanie integralności włókien nerwu wzrokowego za pomocą rezonansu magnetycznego ze wzmocnieniem kontrastowym u myszy

Tutaj prezentujemy protokół do określenia minimalnej liczby obrazów, które musiały zostać zarejestrowane i uśrednione, aby rozwiązać struktury podkorowe i sprawdzić, czy poszczególne warstwy LGN mogą być rozwiązane przy braku szumu fizjologicznego.

Obrazowanie strukturalnego rezonansu magnetycznego człowieka w wysokiej rozdzielczości in vivo i post mortem

Tutaj opisujemy nowatorskie przygotowanie do obrazowania żywych lancetowatych końcówek czuciowych końcówek palisadowych, które unerwiają mieszki włosowe skóry uszu myszy podczas barwienia i odbarwiania barwnikami styrylowo-pirydyniowymi.

Monitorowanie optyczne znakowania żywych zakończeń nerwowych w lancetowatych zakończeniach mieszków włosowych skóry ucha myszy ex vivo

Tutaj opisujemy metodę obrazowania w całości w całej skórze ucha dorosłej myszy, która pozwala nam na wizualizację rozgałęzionej morfogenezy i wzoru nerwów obwodowych i naczyń krwionośnych, a także rozmieszczenia komórek odpornościowych.

Mikroskopia konfokalna z pełnym mocowaniem dla skóry ucha osoby dorosłej: modelowy system do badania morfogenezy rozgałęzień nerwowo-naczyniowych i dystrybucji komórek odpornościowych

Ten manuskrypt opisuje eksperymentalny protokół oceny cech morfologicznych i statusu funkcjonalnego synaps wstęgowych u normalnych myszy. Prezentowany model nadaje się również do modeli z ograniczeniami synaptopatii ślimakowej wywołanych hałasem i związanych z wiekiem. Omówiono również korelacyjne wyniki poprzednich badań na myszach.

Ocena morfologiczna i funkcjonalna synaps wstęgowych w określonych obszarach częstości ślimaka myszy

Audiometria odpowiedzi wywołanej pniem mózgu jest ważnym narzędziem w neurofizjologii klinicznej. Obecnie audiometria odpowiedzi wywołanej pnia mózgu jest również stosowana w naukach podstawowych i badaniach przedklinicznych obejmujących zarówno farmakologiczne, jak i genetyczne modele zwierzęce. Tutaj przedstawiamy szczegółowy opis, w jaki sposób słuchowe reakcje pnia mózgu mogą być z powodzeniem rejestrowane i analizowane u myszy.

Akwizycja i analiza danych w audiometrii odpowiedzi wywołanej pniem mózgu u myszy

Ten protokół pokazuje, jak pozyskać dane z rezonansu magnetycznego wrażliwego na neuromelaninę istoty czarnej.

Standaryzowane pozyskiwanie danych do obrazowania metodą rezonansu magnetycznego wrażliwego na neuromelaninę istoty czarnej

Dostarczyliśmy szczegółowy protokół dla ustandaryzowanej metody oceny i kwantyfikacji nerwu wzrokowego za pomocą MRI, wykorzystując powszechnie dostępną sekwencję obrazowania oraz otwarte oprogramowanie do analizy obrazu. Przestrzeganie tego ustandaryzowanego protokołu dostarczyłoby istotnych danych do porównania między różnymi pacjentami i różnymi badaniami.

Kwantyfikacja pola przekroju poprzecznego nerwu wzrokowego w rezonansie magnetycznym: nowy protokół wykorzystujący oprogramowanie Fiji

Ten artykuł szczegółowo opisuje, jak przeprowadzić in vivo (przy użyciu matryc elektrod powierzchniowych i igłowych) oraz ex vivo (przy użyciu ogniwa dielektrycznego) mięsień brzuchaty łydki gryzonia. Zademonstruje technikę zarówno na myszach, jak i szczurach oraz szczegółowo omówi dostępne modyfikacje (np. otyłe zwierzęta, młode).

Wykonywanie miografii impedancji elektrycznej in vivo i ex vivo u gryzoni

Poznaj metodę oceny zmian morfologicznych nerwów czaszkowych in vivo przy użyciu rezonansu magnetycznego u pacjentów z chorobą Menière'a. Technika ta umożliwia pomiar średnicy nerwów i może wspierać diagnostykę.

In vivo (in vivo) Analiza morfometryczna nerwów czaszkowych człowieka z wykorzystaniem rezonansu magnetycznego w uszach chorych Menièrea i uszach prawidłowo słyszących (Wideo) | JoVE Journal

In vivo (in vivo) Analiza morfometryczna nerwów czaszkowych człowieka z wykorzystaniem rezonansu magnetycznego w uszach chorych Menière'a i uszach prawidłowo słyszących

Przeglądaj więcej filmów