Name: Protokół MPLEx do analiz multiomicznych próbek gleby (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-30T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 12 s
Description: Poznaj protokół MPLEx do ekstrakcji metabolitów, białek i lipidów z jednej próbki gleby dla analiz multiomicznych. Ta metoda zwiększa precyzję wyników i skraca czas przygotowania próbek w badaniach mikrobiologii gleby.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy chcieliby podziękować Nathanowi Johnsonowi za pomoc w przygotowaniu rysunków. Badania te były wspierane przez Program Pan-omiczny finansowany przez Biuro Badań Biologicznych i Środowiskowych Departamentu Energii Stanów Zjednoczonych (Genomic Science Program), Microbiomes in Transition (MinT) Laboratory Directed Research Development Initiative w Pacific Northwest National Laboratory, a także National Institutes of Health National Institute of Environmental Health Sciences (R01 ES022190) i NIH (P42 ES027704). KEBJ pragnie podziękować R21 HD084788 za wsparcie finansowe w celu opracowania i walidacji nowatorskich technik ekstrakcji multiomicznej. Praca ta została wykonana w Laboratorium Nauk Molekularnych Środowiska im. W. R. Wileya (EMSL), krajowym ośrodku naukowym DOE w Pacific Northwest National Laboratory (PNNL). PNNL jest wieloprogramowym krajowym laboratorium prowadzonym przez Battelle dla DOE w ramach kontraktu DE-AC06-76RL01830.

UWAGA: Bardzo wilgotne gleby mogą być liofilizowane przed ekstrakcją bez szkody dla efektywności ekstrakcji. Można również użyć mokrej gleby, ale należy ją wziąć pod uwagę przy dodawaniu odczynników w określonych proporcjach.
UWAGA: Zaleca się użycie 20 g suchej masy gleby na ekstrakcję, która musi być podzielona na dwie probówki po 50 ml (maksymalnie 10 g ziemi na probówkę 50 ml). Ekstrakcje można skalować w górę lub w dół w zależności od dostępnej próbki.
UWAGA: Suche próbki gleby mogą być przesiane przez sito 3 mm w celu homogenizacji i usunięcia małych korzeni i skał. Nie przesiewaj mokrych próbek gleby, ponieważ próbka utknie na ekranie.
1. Liza komórek glebowych i ekstrakcja metabolitów, białek i lipidów (czas ~1 d)
<ol>
	<li>Na próbkę gleby o wadze 20 g należy odważyć 10 g w dwóch oddzielnych probówkach o pojemności 50 ml, które są kompatybilne z metanolem i chloroformem. Należy zachować szczególną ostrożność przy wyborze probówek, ponieważ chloroform wypłukuje większość tworzyw sztucznych, zanieczyszczając próbki. Jeśli to możliwe, używaj szkła lub plastikowych rurek wykonanych z polipropylenu lub politetrafluoroetylenu (PTFE). 
	UWAGA: Utrzymuj glebę na lodzie i w jak największym chłodzie podczas początkowych etapów ważenia i homogenizacji.</li>
	<li>Do każdej probówki dodaj 10 ml stali nierdzewnej przemytej chloroformem i kulek granatu. Do każdej probówki (jedna próbka podzielona na dwie probówki) dodać 4 ml zimnej ultraczystej wody (patrz tabela materiałów dla systemu oczyszczania) i przenieść próbki w pojemniku na lód do dygestoriów.</li>
	<li>Używając szklanej pipety serologicznej o pojemności 25 ml, szybko dodaj 20 ml lodowatego chloroformu:metanolu (v/v) w proporcji 2:1. 
	Uwaga: Chloroform: metanol ma ostre potencjalne skutki zdrowotne: podrażnienie skóry, możliwe oparzenia chemiczne i podrażnienie układu oddechowego. Może wpływać na nerki, wątrobę i serce. Nosić odpowiednie okulary ochronne, odzież i rękawice i zawsze pracować pod wyciągiem.</li>
	<li>Dokręć pokrywki i przekręć do roztworu. 2:1 choloroform: metanol pomaga rozbić ścianę komórkową prokariontów, a także dezaktywuje aktywność enzymatyczną.</li>
	<li>Przymocuj probówki do nasadek wirowych do probówek o pojemności 50 ml i jeśli to możliwe, wiruj poziomo przez 10 minut w temperaturze 4 °C w lodówce. Następnie umieść próbki w zamrażarce o temperaturze -80 °C na ~15 minut, aby całkowicie je schłodzić.</li>
	<li>Używając sonikatora sondy umieszczonej w dygestorium, poddaj każdą próbkę sonikacji sondą o średnicy 6 mm (1/4") o amplitudzie 60% przez 30 s każda na lodzie. 
	Uwaga: Podczas sonikacji zaleca się stosowanie obudowy dźwiękochłonnej i ochrony słuchu. Wysokie napięcie jest obecne w zasilaczu i wysokiej częstotliwości. Unikać dotykania dna lub boków naczynia na próbkę aktywną sondą; Może pęknąć lub stopić plastik.</li>
	<li>Umieść próbki w zamrażarce w temperaturze -80 °C na ~15 minut, ponieważ sonikacja może generować dużo ciepła.</li>
	<li>Powtórz kroki 1.5 - 1.7. 
	UWAGA: Upewnij się, że próbki pozostają zimne przez cały czas trwania procedury lizy.</li>
	<li>Odwirować próbki przy 4 000 x g przez 5 minut, w temperaturze 4 °C. W tym momencie próbka zostanie rozdzielona na górną warstwę metabolitu, warstwę pośrednią białka i dolną warstwę lipidową (i pozostałą osadkę zanieczyszczeń). Zobacz Rysunek 1.</li>
	<li>Umieścić próbki na lodzie w pojemniku na lód i za pomocą szklanej pipety serologicznej o pojemności 10 ml usunąć górne warstwy metabolitów z dwóch probówek o pojemności 50 ml do jednej dużej szklanej fiolki. 
	UWAGA: Unikaj zasysania jakiejkolwiek warstwy białka do pipety; W razie potrzeby pozostawić niewielką warstwę metabolitu.</li>
	<li>Lekko przechyl probówkę o pojemności 50 ml, aby uwolnić warstwę pośrednią białka, tak aby swobodnie unosiła się na dolnej warstwie lipidowej. Używając czystej szpatułki laboratoryjnej z płaską główką ze stali nierdzewnej, ostrożnie zgarnij obie warstwy pośrednie białka i umieść je razem w jednej nowej probówce o pojemności 50 ml.</li>
	<li>Za pomocą szklanej pipety serologicznej o pojemności 25 ml usunąć dolne warstwy lipidów z jednej dużej szklanej fiolki. 
	UWAGA: Staraj się unikać aspirujących cząstek gleby; Jednak niektóre zanieczyszczenia glebowe i cząstki aspirowane wraz z lipidami zostaną usunięte w późniejszym czasie.</li>
	<li>Umieścić oddychające membrany na wierzchu fiolek z metabolitami i szkłem lipidowym i wysuszyć w koncentratorze próżniowym aż do wyschnięcia (lipidy ~ 4 - 5 godzin, metabolity przez noc).</li>
	<li>Do probówki z próbką białka i pozostałych probówek z osadkami zanieczyszczeń dodaj 20 ml lodowatego metanolu do każdej z nich i odwiruj. Odbywa się to z granulkami gruzu, aby spłukać chloroform przed próbą rozpuszczenia ewentualnego pozostałego białka z gruzu przed jego wyrzuceniem.</li>
	<li>Odwirować granulki zanieczyszczeń i międzywarstwę białkową w temperaturze 4 000 x g przez 5 minut, 4 °C, a następnie zdekantować metanol do pojemnika na odpady niebezpieczne w dygestorium.</li>
	<li>Zawiesić białka i szczątki w ciekłym azocie i wysuszyć w liofilizatorze (o temperaturze kolektora -105 °C ze względu na metanol o bardzo niskiej temperaturze zamarzania -98 °C) przez ~ 2 godziny. 
	UWAGA: Nie przesuszaj granulek, ponieważ będą one trudniejsze do rozpuszczenia.</li>
	<li>Dodać 10 ml buforu do solubilizacji białek (4% SDS, 100 mM DTT (DL-ditiotreitol) w 50 mM buforze tris, pH 8,0; patrz Zestaw odczynników uzupełniających) do probówki międzywarstwowej białka i 20 ml do każdej z granulek zanieczyszczeń. 
	Uwaga: SDS powoduje ostrą toksyczność i jest łatwopalny. Działa drażniąco na skórę, oczy i drogi oddechowe. Nosić rękawice i okulary ochronne.</li>
	<li>W dygestorium sonda sonikuje próbki o amplitudzie 20% przez 30 sekund, aby wprowadzić je do roztworu. Wirować przez 2 min.</li>
	<li>Umieścić próbkę międzywarstwy białka w rotatorze probówki laboratoryjnej na 30 minut przy 300 obr./min, 50 °C, w celu rozpuszczenia białka.</li>
	<li>Wiruj poziomo próbki szczątków przez dodatkowe 10 minut, aby zlizować wszelkie pozostałe nienaruszone komórki, a następnie obracaj z próbkami międzywarstw białkowych przez pozostałe 20 minut.</li>
	<li>Odwirować wszystkie próbki o masie 4 500 x g przez 10 minut w temperaturze pokojowej (RT) i zebrać supernatant z każdej probówki na próbkę do dwóch probówek o pojemności 50 ml.</li>
	<li>Dodaj 10 ml buforu do rozpuszczania białek międzywarstwowych, a następnie poddaj sonicjacji i wiruj z powrotem do roztworu i odwiruj jak poprzednio.</li>
	<li>Połączyć supernatanty równomiernie w dwóch probówkach o pojemności 50 ml i odwirować przy 8 000 x g przez 10 minut, 4 °C, w wirniku kubełkowym o stałym kącie. 
	UWAGA: Konieczne jest końcowe odwirowanie w celu usunięcia nadmiernej ilości zanieczyszczających substancji humusowych.</li>
	<li>Zdekantować supernatanty do dwóch probówek o pojemności 50 ml tak, aby w każdej znajdowało się 30 ml. Następnie, za pomocą szklanej pipety serologicznej o pojemności 10 ml, dodaj 7,5 ml TCA (kwasu trichlorooctowego) do każdej probówki. Wirować w roztworze. Daje to 20% TCA w każdej próbce o pojemności 30 ml (odpowiednio dostosuj), 
	Uwaga: TCA jest, toksyczny i może powodować oparzenia skóry. Nosić rękawice i okulary ochronne.</li>
	<li>Umieścić próbki w zamrażarce w temperaturze -20 °C na 2 godziny do nocy. 
	UWAGA: Białka zazwyczaj wytrącają się w ciągu 1 godziny, ale można je pozostawić na noc (do 18 godzin). 
	UWAGA: Nie pozwól, aby ekstrakcja TCA trwała dłużej niż 18 godzin ze względu na możliwą hydrolizę kwasową białka. Jeśli próbka jest zamrożona, rozmrozić ją na lodzie; Nie pozwól, aby próbka rozgrzała się po rozmrożeniu.</li>
	<li>W celu osadzenia wytrąconego białka należy odwirować próbkę o masie 4 500 x g przez 10 minut, w temperaturze 4 °C i zdekantować supernatant do postaci odpadów.</li>
	<li>Dodaj 10 ml 100% lodowatego acetonu do każdej granulki białka, odwiruj i połącz jak granulki w jedną probówkę.</li>
	<li>Odwirować probówkę zawierającą połączone osady (za pomocą wagi), a następnie zdekantować supernatant do odpadów. 
	Uwaga: Aceton może powodować podrażnienie dróg oddechowych oraz skóry i oczu, a także jest łatwopalną cieczą i parami. Nosić okulary ochronne, rękawice i fartuch laboratoryjny, pracować w dygestorium.</li>
	<li>Umyj granulkę dwukrotnie za pomocą 1,5 ml acetonu i na koniec przenieś do probówki o pojemności 2 ml w celu ostatecznego wirowania przy 10 000 x g przez 5 minut.</li>
	<li>Zdekantować supernatant do odpadów i pozostawić granulkę do wyschnięcia odwróconą na papierowej ściereczce w dygestorium przez ~20 minut lub pod strumieniem azotu, aż osadka zacznie lekko pękać.</li>
	<li>Dodać 100 - 200 μL buforu do rozpuszczania białek, w zależności od wielkości granulki. 
	UWAGA: Objętość buforu solubilizacyjnego dodawanego do próbki powinna być jak najmniejsza. Późniejsze przygotowanie próbki wspomagane filtrem (FASP) może wykorzystywać tylko do 50 μl rozpuszczonej próbki na kolumnę; więcej musi być podzielone na wiele kolumn FASP.</li>
	<li>Sonikować i wirować osad do roztworu. Należy zauważyć, że próbka może być lepka z powodu substancji humusowych wytrącających się wraz z białkiem, które zostaną usunięte przy kolejnym odwirowaniu.</li>
	<li>Wytrząsać próbkę w inkubatorze/wytrząsarce przez 30 minut przy 300 obr./min, w temperaturze 40 °C, w celu rozpuszczenia białka do roztworu i przystąpić do trawienia białka.</li>
	<li>Próbkę należy zamrozić w ciekłym azocie i przechowywać w zamrażarce o temperaturze -80 °C, aż będzie gotowa do trawienia białka.</li>
</ol>
2. Przygotowanie lipidów (czas ~20 min)
<ol>
	<li>Po wyschnięciu próbek lipidów dodać 200 μl chloroformu:metanolu w proporcji 2:1 do fiolki, przemieszać do roztworu i przenieść do probówki polipropylenowej o pojemności 1,5 ml, dodać dodatkowe 200 μl do szklanej fiolki, odwirować i odpipetować pozostałe lipidy i przenieść do probówki.</li>
	<li>Odwirować pozostałości z próbki o sile 12 000 x g przez 5 minut w temperaturze 4 °C.</li>
	<li>Przenieść supernatant do szklanej fiolki z lipidami i przechowywać w temperaturze -20 °C do czasu analizy LC-MS/MS (dodatkowe informacje dotyczące LC-MS/MS w metodach uzupełniających).</li>
	<li>Jeżeli próbki nie mogą być analizowane bezpośrednio po przygotowaniu, lipidy należy przechowywać w rozpuszczalniku w temperaturze -20 °C, aby zapobiec utlenianiu i degradacji.</li>
</ol>
3. Przygotowanie metabolitu i derywatyzacja (Czas ~5 h)
<ol>
	<li>Następnego dnia po ekstrakcji usunąć próbki metabolitów z odkurzacza Speed Vac i przechowywać w suchym miejscu w temperaturze -20 °C do czasu, aż będą gotowe do derywatyzacji i analizy w GC. Jeśli metabolity nie są uruchamiane na GC, należy je przygotować przy użyciu odpowiedniego protokołu dla tego urządzenia.</li>
	<li>Bezpośrednio przed derywatyzacją metabolitów do analizy na GC, przenieść je z dużych szklanych fiolek, dodając 200 μl metanolu, wirując i dodając do probówki polipropylenowej o pojemności 1,5 ml. Powtórz raz.</li>
	<li>Odwirować probówkę o stężeniu 12 000 x g przez 10 minut, 4 °C. Przenieść supernatant do mniejszych szklanych fiolek, dodać oddychającą membranę do góry i całkowicie wysuszyć w Speed Vac.</li>
	<li>Metabolity należy oprowadzić, dodając 20 μl roztworu metoksyaminy do fiolki z próbką i wirować przez 30 s na wirowniku ze średnią prędkością. 
	Uwaga: Chlorowodorek metoksyaminy powoduje poważne oparzenia i poważne uszkodzenia oczu, może powodować uczulenie w kontakcie ze skórą. Nosić okulary ochronne, rękawice i fartuch laboratoryjny oraz pracować pod wyciągiem.</li>
	<li>Użyj soniku do kąpieli, aby upewnić się, że próbka jest całkowicie rozpuszczona.</li>
	<li>Inkubować próbkę w inkubatorze z pokrywą zapobiegającą kondensacji pary wodnej utrzymywanej w temperaturze 37 °C przez 1 godzinę i 30 minut, wytrząsając z prędkością 1 000 obr./min.</li>
	<li>Odwrócić fiolkę jeden raz, aby wymieszać próbki ze skondensowanymi kroplami na powierzchni kapsla. Obracać próbkę w temperaturze 1 000 x g przez 1 minutę, RT.</li>
	<li>Przeprowadzić sililację, dodając 80 μl (za pomocą strzykawki) N-metylo-N-(trimetylosililo)trifluoroacetamidu z 1% trimetylochlorosilanem. Wir przez 10s. 
	Uwaga: MSTFA + 1% TMCS może powodować działanie na skórę, poważne uszkodzenie oczu i działanie toksyczne na narządy docelowe i jest łatwopalną cieczą i parą. Nosić okulary ochronne, rękawice i fartuch laboratoryjny oraz pracować pod wyciągiem.</li>
	<li>Inkubować próbkę w inkubatorze z pokrywą zapobiegającą kondensacji pary wodnej utrzymywaną w temperaturze 37 °C przez 30 minut, wytrząsając z prędkością 1 000 obr./min.</li>
	<li>Odwrócić fiolkę jeden raz, aby wymieszać próbki ze skondensowanymi kroplami na powierzchni kapsla.</li>
	<li>Obracać próbkę przez 5 minut w temperaturze 2 000 x g, RT.</li>
	<li>Przenieść przereagowany roztwór do fiolek odpowiednich do analizy GC-MS.</li>
</ol>
4. Trawienie białka (czas ~1 d)
<ol>
	<li>Odwirować próbkę o masie 15 000 x g przez 5 minut, RT, w celu osadzenia wszelkich zanieczyszczeń.</li>
	<li>Przeprowadzić przygotowanie próbki wspomaganej filtrem (FASP) do mineralizacji przy użyciu zestawów FASP (patrz Tabela materiałów) zgodnie ze zmodyfikowanymi instrukcjami producenta31,32:
	<ol>
		<li>Dodać 400 μl 8 M buforu mocznikowego do kolumny FASP (500 μL 30K MWCO filtr wirowy).</li>
		<li>Po zakończeniu wirowania próbki odpipetować supernatant (wyrzucić osad) i dodać do 50 μl próbki do 400 μl 8 M mocznika w kolumnie. 
		UWAGA: Dodaj tylko do 50 μl próbki na kolumnę. Jeśli próbka zawiera więcej niż 50 μl, należy użyć wielu kolumn i połączyć peptydy po strawieniu. Najlepiej pozostawić tę objętość tak niską, jak to możliwe (idealnie 30 μl), aby upewnić się, że kolumna FASP usunie wszystkie SDS, które mogą radykalnie zakłócać analizę specyfikacji masy.</li>
		<li>Umieść kolumnę w dołączonej probówce o pojemności 1,5 ml i odwiruj próbkę o sile 14 000 x g przez 30 minut, RT.</li>
		<li>Usunąć przepływ do odpadów i dodać 400 μl 8 M mocznika do kolumny i ponownie odwirować.</li>
		<li>Powtórz poprzedni krok jeszcze raz, w sumie 3 płukania mocznikiem. 
		UWAGA: Upewnij się, że próbka jest bliska suchości na kolumnie, jeśli po każdym wirowaniu na filtrze pozostało więcej niż ~ 30 μL, kontynuuj wirowanie.</li>
		<li>Dodać 400 μl 50 mM NH4HCO3 i odwirować przy 14 000 x g przez 20 minut, wyrzucić odpady i powtórzyć raz.</li>
		<li>Przenieść kolumny do czystej probówki wirówkowej o pojemności 1,5 ml.</li>
		<li>Dodać 75 μl buforu do wytrawiania trypsyny do kolumn i inkubować w temperaturze 37 °C przez 3 godziny w inkubatorze z pokrywą zapobiegającą kondensacji pary wodnej przy 750 obr./min.</li>
		<li>Dodać 40 μl 50 mM NH4HCO3 do kolumn.</li>
		<li>Odwirować próbkę o masie 14 000 x g przez 15 minut, aby zebrać peptydy do probówki, utrzymując zanieczyszczenia o dużej masie cząsteczkowej na górze kolumny.</li>
		<li>Dodać 40 μl 50mM NH4HCO3 do kolumny i ponownie odwirować.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wyrzuć kolumnę, wysusz peptydy w probówce w Speed Vac do ~30 μL, a następnie test BCA (zestaw do oznaczania białek kwasu bicynchoninowego; patrz Tabela materiałów) peptydy.</li>
	<li>Opcjonalnie wykonaj krok czyszczenia, jeśli podejrzewa się zanieczyszczenie SDS (widoczne bąbelki)33. W przypadku wybrania tej opcji należy następnie przeprowadzić ekstrakcję do fazy stałej. Szczegółowe informacje na temat tej metody oczyszczania są dostępne w Metodach uzupełniających.</li>
	<li>Rozcieńczyć próbkę do analizy MS lub opcjonalnie przejść do frakcjonowania metodą HPLC (dwa następne kroki).</li>
	<li>W celu frakcjonowania należy rozcieńczyć próbki do objętości 400 μl 10 mM buforem mrówczanu amonu (pH 10,0).</li>
	<li>Rozpuścić na kolumnie C18 (patrz tabela materiałów) rozdzielając w tempie 0,5 ml/min przy użyciu systemu HPLC z fazami ruchomymi (A) 10 mM mrówczanu amonu, pH 10,0 i (B) 10 mM mrówczanu amonu, pH 10,0/acetonitrylu (10:90).
	<ol>
		<li>Dostosuj nachylenie od 100% A do 95% A przez pierwsze 10 minut, 95% A do 65% A przez min 10 do 70, od 65% A do 30% A przez min 70 do 85, utrzymuj na poziomie 30% A przez min 85 do 95.</li>
		<li>Ponownie zrównoważyć 100% A przez min 95 do 105 i utrzymać na poziomie 100% A do min 120.</li>
		<li>Zbieraj frakcje co 1,25 minuty (96 frakcji na całym gradiencie), a na koniec połącz każdy rząd, aby uzyskać łącznie 12 próbek lub co drugi rząd w celu uzyskania 24 próbek (każda z n = 8 lub n = 4 frakcje połączone).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wysuszyć wszystkie frakcje w próżni i dodać do każdej z nich 15 μl ultraczystej wody w celu przechowywania w temperaturze -20 °C do czasu analizy LC-MS/MS.</li>
</ol>

<ol><li>Hultman, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multi-omics+of+permafrost%2C+active+layer+and+thermokarst+bog+soil+microbiomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Multi-omics of permafrost, active layer and thermokarst bog soil microbiomes.</a> Nature. 521, 208-212 (2015).</li>
<li>White, R. A. 3rd, et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Moleculo+long-read+sequencing+facilitates+assembly+and+genomic+binning+from+complex+soil+metagenomes%5BTitle%5D)+AND+%22mSystems%22%5BJournal%5D)">Moleculo long-read sequencing facilitates assembly and genomic binning from complex soil metagenomes.</a> mSystems. 1, (2016).</li>
<li>White, R. A., Callister, S. J., Moore, R. J., Baker, E. S., Jansson, J. K. <a target="_blank" href="https://www.nature.com/articles/nprot.2016.148">The past, present and future of microbiome analyses.</a> Nat Protoc. 11, 4-8 (2016).</li>
<li>Ritchie, M. D., Holzinger, E. R., Li, R., Pendergrass, S. A., Kim, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+of+integrating+data+to+uncover+genotype-phenotype+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Genet%22%5BJournal%5D)">Methods of integrating data to uncover genotype-phenotype interactions.</a> Nat Rev Genet. 16, 85-97 (2015).</li>
<li>Jansson, J. K., Baker, E. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+multi-omic+future+for+microbiome+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Microbiol%22%5BJournal%5D)">A multi-omic future for microbiome studies.</a> Nat Microbiol. 1, (2016).</li>
<li>Domon, B., Aebersold, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Options+and+considerations+when+selecting+a+quantitative+proteomics+strategy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Options and considerations when selecting a quantitative proteomics strategy.</a> Nat Biotechnol. 28, 710-721 (2010).</li>
<li>Marx, V. <a target="_blank" href="https://www.nature.com/articles/nmeth.2285">Targeted proteomics.</a> Nat Methods. 10, 19-22 (2013).</li>
<li>Roberts, L. D., Souza, A. L., Gerszten, R. E., Clish, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+metabolomics%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Targeted metabolomics.</a> Curr Protoc Mol Biol. , Chapter 30, Unit 30 32 31-24 (2012).</li>
<li>Folch, J., Lees, M., Sloane Stanley, G. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+for+the+isolation+and+purification+of+total+lipides+from+animal+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues.</a> J Biol Chem. 226, 497-509 (1957).</li>
<li>Nakayasu, E. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MPLEx%3A+a+Robust+and+Universal+Protocol+for+Single-Sample+Integrative+Proteomic%2C+Metabolomic%2C+and+Lipidomic+Analyses%5BTitle%5D)+AND+%22mSystems%22%5BJournal%5D)">MPLEx: a Robust and Universal Protocol for Single-Sample Integrative Proteomic, Metabolomic, and Lipidomic Analyses.</a> mSystems. 1, (2016).</li>
<li>Bligh, E. G., Dyer, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rapid+method+of+total+lipid+extraction+and+purification%5BTitle%5D)+AND+%22Can+J+Biochem+Physiol%22%5BJournal%5D)">A rapid method of total lipid extraction and purification.</a> Can J Biochem Physiol. 37, 911-917 (1959).</li>
<li>Pomraning, K. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multi-omics+analysis+reveals+regulators+of+the+response+to+nitrogen+limitation+in+Yarrowia+lipolytica%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Genomics%22%5BJournal%5D)">Multi-omics analysis reveals regulators of the response to nitrogen limitation in Yarrowia lipolytica.</a> BMC Genomics. 17, 138(2016).</li>
<li>Tisoncik-Go, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrated+Omics+Analysis+of+Pathogenic+Host+Responses+during+Pandemic+H1N1+Influenza+Virus+Infection%3A+The+Crucial+Role+of+Lipid+Metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+Microbe%22%5BJournal%5D)">Integrated Omics Analysis of Pathogenic Host Responses during Pandemic H1N1 Influenza Virus Infection: The Crucial Role of Lipid Metabolism.</a> Cell Host Microbe. 19, 254-266 (2016).</li>
<li>Kyle, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uncovering+biologically+significant+lipid+isomers+with+liquid+chromatography%2C+ion+mobility+spectrometry+and+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Analyst%22%5BJournal%5D)">Uncovering biologically significant lipid isomers with liquid chromatography, ion mobility spectrometry and mass spectrometry.</a> Analyst. 141, 1649-1659 (2016).</li>
<li>Lovelace, E. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silymarin+Suppresses+Cellular+inflammation+by+inducing+reparative+stress+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22J+Nat+Prod%22%5BJournal%5D)">Silymarin Suppresses Cellular inflammation by inducing reparative stress signaling.</a> J Nat Prod. 78, 1990-2000 (1990).</li>
<li>Kim, Y. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diel+metabolomics+analysis+of+a+hot+spring+chlorophototrophic+microbial+mat+leads+to+new+hypotheses+of+community+member+metabolisms%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Diel metabolomics analysis of a hot spring chlorophototrophic microbial mat leads to new hypotheses of community member metabolisms.</a> Front Microbiol. 6, 209(2015).</li>
<li>Pomraning, K. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+Metabolomic%2C+Lipidomic+and+microscopic+profiling+of+Yarrowia+lipolytica+during+lipid+accumulation+identifies+targets+for+increased+lipogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Comprehensive Metabolomic, Lipidomic and microscopic profiling of Yarrowia lipolytica during lipid accumulation identifies targets for increased lipogenesis.</a> PLoS One. 10, e0123188(2015).</li>
<li>Huang, E. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+fungus+gardens+of+leaf-cutter+ants+undergo+a+distinct+physiological+transition+during+biomass+degradation%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Microbiol+Rep%22%5BJournal%5D)">The fungus gardens of leaf-cutter ants undergo a distinct physiological transition during biomass degradation.</a> Environ Microbiol Rep. 6, 389-395 (2014).</li>
<li>Deatherage Kaiser, B. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Multi-Omic+View+of+Host-Pathogen-Commensal+Interplay+in+Salmonella-Mediated+Intestinal+Infection%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A Multi-Omic View of Host-Pathogen-Commensal Interplay in Salmonella-Mediated Intestinal Infection.</a> PLoS One. 8, e67155(2013).</li>
<li>Kim, Y. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salmonella+modulates+metabolism+during+growth+under+conditions+that+induce+expression+of+virulence+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biosyst%22%5BJournal%5D)">Salmonella modulates metabolism during growth under conditions that induce expression of virulence genes.</a> Mol Biosyst. 9, 1522-1534 (2013).</li>
<li>Ansong, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+multi-omic+systems+approach+to+elucidating+Yersinia+virulence+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biosyst%22%5BJournal%5D)">A multi-omic systems approach to elucidating Yersinia virulence mechanisms.</a> Mol Biosyst. 9, 44-54 (2013).</li>
<li>Bordbar, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Model-driven+multi-omic+data+analysis+elucidates+metabolic+immunomodulators+of+macrophage+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Syst+Biol%22%5BJournal%5D)">Model-driven multi-omic data analysis elucidates metabolic immunomodulators of macrophage activation.</a> Mol Syst Biol. 8, 558(2012).</li>
<li>Hu, Z. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolomic+response+of+human+skin+tissue+to+low+dose+ionizing+radiation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biosyst%22%5BJournal%5D)">Metabolomic response of human skin tissue to low dose ionizing radiation.</a> Mol Biosyst. 8, 1979-1986 (2012).</li>
<li>Perera, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dengue+virus+infection+perturbs+lipid+homeostasis+in+infected+mosquito+cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Dengue virus infection perturbs lipid homeostasis in infected mosquito cells.</a> PLoS Pathog. 8, e1002584(2012).</li>
<li>Gao, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+reversed-phase+capillary+ultra-performance+liquid+chromatography-mass+spectrometry+%28UPLC-MS%29+method+for+comprehensive+top-down%2Fbottom-up+lipid+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Bioanal+Chem%22%5BJournal%5D)">A reversed-phase capillary ultra-performance liquid chromatography-mass spectrometry (UPLC-MS) method for comprehensive top-down/bottom-up lipid profiling.</a> Anal Bioanal Chem. 402, 2923-2933 (2012).</li>
<li>Sorensen, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perturbations+in+the+lipid+profile+of+individuals+with+newly+diagnosed+type+1+diabetes+mellitus%3A+Lipidomics+analysis+of+a+Diabetes+Antibody+Standardization+Program+sample+subset%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Biochem%22%5BJournal%5D)">Perturbations in the lipid profile of individuals with newly diagnosed type 1 diabetes mellitus: Lipidomics analysis of a Diabetes Antibody Standardization Program sample subset.</a> Clin Biochem. 43, 948-956 (2010).</li>
<li>Diamond, D. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporal+proteome+and+lipidome+profiles+reveal+hepatitis+C+virus-associated+reprogramming+of+hepatocellular+metabolism+and+bioenergetics%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Temporal proteome and lipidome profiles reveal hepatitis C virus-associated reprogramming of hepatocellular metabolism and bioenergetics.</a> PLoS Pathog. 6, e1000719(2010).</li>
<li>Alquier, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deletion+of+GPR40+impairs+glucose-induced+insulin+secretion+in+vivo+in+mice+without+affecting+intracellular+fuel+metabolism+in+islets%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Deletion of GPR40 impairs glucose-induced insulin secretion in vivo in mice without affecting intracellular fuel metabolism in islets.</a> Diabetes. 58, 2607-2615 (2009).</li>
<li>Ding, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+the+accurate+mass+and+time+tag+approach+in+studies+of+the+human+blood+lipidome%5BTitle%5D)+AND+%22J+Chromatogr+B+Analyt+Technol+Biomed+Life+Sci%22%5BJournal%5D)">Application of the accurate mass and time tag approach in studies of the human blood lipidome.</a> J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 871, 243-252 (2008).</li>
<li>Rasmussen, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systems+virology+identifies+a+mitochondrial+fatty+acid+oxidation+enzyme%2C+dodecenoyl+coenzyme+A+delta+isomerase%2C+required+for+hepatitis+C+virus+replication+and+likely+pathogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Systems virology identifies a mitochondrial fatty acid oxidation enzyme, dodecenoyl coenzyme A delta isomerase, required for hepatitis C virus replication and likely pathogenesis.</a> J Virol. 85, 11646-11654 (2011).</li>
<li>Manza, L. L., Stamer, S. L., Ham, A. J., Codreanu, S. G., Liebler, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sample+preparation+and+digestion+for+proteomic+analyses+using+spin+filters%5BTitle%5D)+AND+%22Proteomics%22%5BJournal%5D)">Sample preparation and digestion for proteomic analyses using spin filters.</a> Proteomics. 5, 1742-1745 (2005).</li>
<li>Wisniewski, J. R., Zougman, A., Nagaraj, N., Mann, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Universal+sample+preparation+method+for+proteome+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Universal sample preparation method for proteome analysis.</a> Nat Methods. 6, 359-362 (2009).</li>
<li>Zhou, J. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+sodium+dodecyl+sulfate-assisted+sample+preparation+method+for+LC-MS-based+proteomics+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">Simple sodium dodecyl sulfate-assisted sample preparation method for LC-MS-based proteomics applications.</a> Anal Chem. 84, 2862-2867 (2012).</li>
<li>Anderson, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decreased+abundance+of+type+III+secretion+system-inducing+signals+in+Arabidopsis+mkp1+enhances+resistance+against+Pseudomonas+syringae%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Decreased abundance of type III secretion system-inducing signals in Arabidopsis mkp1 enhances resistance against Pseudomonas syringae.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 111, 6846-6851 (2014).</li>
<li>Chourey, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+cellular+lysis%2Fprotein+extraction+protocol+for+soil+metaproteomics%5BTitle%5D)+AND+%22J+Proteome+Res%22%5BJournal%5D)">Direct cellular lysis/protein extraction protocol for soil metaproteomics.</a> J Proteome Res. 9, 6615-6622 (2010).</li>
<li>Kim, S., Gupta, N., Pevzner, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spectral+probabilities+and+generating+functions+of+tandem+mass+spectra%3A+a+strike+against+decoy+databases%5BTitle%5D)+AND+%22J+Proteome+Res%22%5BJournal%5D)">Spectral probabilities and generating functions of tandem mass spectra: a strike against decoy databases.</a> J Proteome Res. 7, 3354-3363 (2008).</li>
<li>Kim, S., Pevzner, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MS-GF%2B+makes+progress+towards+a+universal+database+search+tool+for+proteomics%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">MS-GF+ makes progress towards a universal database search tool for proteomics.</a> Nat Commun. 5, 5277(2014).</li>
<li>Cole, J. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phototrophic+biofilm+assembly+in+microbial-mat-derived+unicyanobacterial+consortia%3A+Model+systems+for+the+study+of+autotroph-heterotroph+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Phototrophic biofilm assembly in microbial-mat-derived unicyanobacterial consortia: Model systems for the study of autotroph-heterotroph interactions.</a> Front Microbiol. 5, (2014).</li>
<li>Isaacson, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sample+extraction+techniques+for+enhanced+proteomic+analysis+of+plant+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Sample extraction techniques for enhanced proteomic analysis of plant tissues.</a> Nat Protoc. 1, 769-774 (2006).</li>
</ol>

Autorzy oświadczają, że nie mają konkurencyjnych interesów finansowych.

Należy zauważyć, że nie wszystkie laboratoria będą miały taki sam dostępny sprzęt, więc niektóre metody, na przykład etap lizy, można dostosować. Tutaj używamy wirowania i sonikacji, jednak użycie dużego ubijaka do koralików o pojemności 50 ml będzie działać. Jeżeli liofilizator o temperaturze kolektora do -105 °C nie jest dostępny, próbki można suszyć pod strumieniem azotu. Ponadto rodzaje gleby są bardzo zróżnicowane i mogą obejmować piasek,, glinę, torf i glinę (itp.), a także mogą się różnić w zależności od ...

Ocena zbiorowisk mikroorganizmów glebowych ma ważne implikacje dla zrozumienia obiegu węgla i zmian klimatycznych. Niedawne badania uwypukliły jednak trudności, takie jak brak zsekwencjonowanych genomów mikrobioty w różnych typach gleb oraz nieznana funkcja wielu wykrytych białek. Wyzwania te wynikają z faktu, że gleba jest najbardziej złożonym zbiorowiskiem mikrobiologicznym znanym do tej pory1,2,3. Analizy multiomiczne, które łączą wyniki badań metagenomicznych, metatranskryptomicznych, metaproteomicznych, metabolomicznych i lipidomicznych, zostały ostatnio wdrożone do licznych badań gleby, aby lepiej zrozumieć obecne drobnoustroje, jednocześnie uzyskując kompleksowe informacje na temat zmian molekularnych zachodzących w wyniku perturbacji środowiskowych1,4,5. Jednym z wyzwań związanych z badaniami multiomicznymi jest to, że pomiary metaproteomiczne, metabolomiczne i lipidomiczne oparte na spektrometrii mas (MS) zazwyczaj wymagają określonego procesu ekstrakcji, aby każda omika była zgodna ze stwardnieniem rozsianym6,7,8,9. Te precyzyjne procedury sprawiają, że ich wdrożenie jest niezwykle trudne lub niemożliwe, gdy dostępna jest tylko ograniczona ilość próbki. Wyzwania te skłoniły nas do zbadania metody jednoczesnej ekstrakcji metabolitów, białek i lipidów (MPLEx), która mogłaby wykorzystywać mniejsze objętości lub masy próbek, poprawiając dokładność i zapewniając szybsze przygotowanie próbek do wszystkich trzech analiz10. Do tej pory nie ma alternatywnych procedur ekstrakcji gleby, które mogłyby osiągnąć wszystkie te cele.
Aby umożliwić globalne analizy multiomiczne pojedynczej próbki gleby, zastosowano protokół ekstrakcji rozpuszczalnikiem organicznym oparty na separacji chloroformu, metanolu i wody10. Ta metoda została pierwotnie opracowana dla całkowitej ekstrakcji lipidów9,11, a ostatnio została zmieniona do jednoczesnej ekstrakcji metabolitów, białek i lipidów z pojedynczej próbki12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26,27,28,29, 30, co pozwala na mniejszą ilość próbek i eksperymentalną zmienność10. W protokole MPLEx chloroform nie miesza się z wodą, co stanowi podstawę do trójfazowego chemicznego rozdzielania składników próbki na odrębne frakcje. Górna faza wodna zawiera zatem metabolity hydrofilowe, po których następuje krążek białkowy, a następnie warstwa lipidowa w dolnej fazie chloroformu (<klasa silna = "xfig">Rysunek 1). Gdy MPLEx jest stosowany do większości gleb, cząstki stałe gromadzą się na samym dnie probówek do pobierania próbek i mogą być wyrzucone po zebraniu wszystkich warstw. Każdy rodzaj gleby może być jednak inny, a w glebach wysoce organicznych, takich jak torf, szczątki gleby pozostają w środkowej warstwie i nie opadają na dno rurki do pobierania próbek. MPLEx zapewnia kilka korzyści podczas izolowania wielu typów cząsteczek z tej samej próbki, takich jak 1) mniejsze ilości próbek mogą być używane do analiz multiomicznych, 2) ekstrakcje multiomiczne z tej samej próbki zmniejszają ogólną zmienność eksperymentalną oraz 3) większa liczba próbek może być przygotowana znacznie szybciej w przypadku badań o wyższej przepustowości10. Łącznie korzyści te mają zasadnicze znaczenie dla zapewnienia lepszych możliwości pomiarowych w celu oceny próbek gleby i ich złożonych zbiorowisk mikroorganizmów.

<table><tbody><tr><td>Chloroform</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>650498</td><td>przechowywany w temperaturze -20&deg; C ! Uwaga chloroform ma ostre potencjalne skutki zdrowotne, podrażnienie skóry i możliwe oparzenia chemiczne, podrażnienie układu oddechowego, może wpływać na nerki, wątrobę, serce. Nosić odpowiednie okulary ochronne, odzież i rękawice, pracować w dygestorium.</td></tr><tr><td>Metanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>34860</td><td>przechowywany w temperaturze -20&deg; C ! Uwaga Metanol może powodować podrażnienie dróg oddechowych, skóry i oczu, może uszkadzać nerwy, nerki i wątrobę. Nosić odpowiednie okulary ochronne, odzież i rękawice, pracować w dygestorium.</td></tr><tr><td>Oczyszczona woda z</td><td>systemu oczyszczania wody</td> <td>Millipore Milli-Q</td><td></td>.</tr><tr><td>Dodecylosiarczan sodu</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L6026</td><td>! Uwaga: SDS powoduje ostrą toksyczność i jest łatwopalny. Działa drażniąco na skórę, oczy i drogi oddechowe. Nosić rękawice i okulary ochronne.</td></tr><tr><td>Zestaw do ekstrakcji białek glebowych</td><td>MoBio, zestaw do ekstrakcji białek glebowych NoviPure, Qiagen</td><td>30000-20</td><td></td></tr><tr><td>DL-dithiothreitol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>43815</td><td></td></tr><tr><td>1M Trizma HCL</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T2694</td><td></td></tr><tr><td>Kwas trichlorooctowy</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T0699</td><td>! Uwaga TCA jest, toksyczny i może powodować oparzenia skóry. Nosić rękawice i okulary ochronne.</td></tr><tr><td>Aceton</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>650501</td><td>przechowywany w temperaturze -20&deg; C ! Uwaga: Aceton może powodować podrażnienie dróg oddechowych oraz skóry i oczu. Łatwopalna ciecz i para. Nosić okulary ochronne, rękawice i fartuch laboratoryjny, pracować w dygestorium.</td></tr><tr><td>Mocznik</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>208884</td><td>! Uwaga Mocznik działa drażniąco na oczy i skórę, należy używać rękawic i okularów ochronnych</td></tr><tr><td>Wodorowęglan amonu</td><td>Fluka</td><td>09830</td><td></td></tr><tr><td>Trypsyna</td><td>Promega</td><td>V528A</td><td>20&micro; g fiolki</td></tr><tr><td>Zestaw do oznaczania białek kwasu bicunchoninowego</td><td>Pierce</td><td>23227</td><td></td></tr><tr><td>Mrówczan amonu</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>09735</td><td></td></tr><tr><td>Acetonitryl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>34998</td><td>! Uwaga: Acetonitryl działa drażniąco na skórę i oczy. Wysoce łatwopalny. Nosić rękawice i okulary ochronne. Praca pod wyciągiem.</td></tr><tr><td>Kwas trifluorooctowy</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T6508</td><td>! Uwaga TFA jest niezwykle niebezpieczny w przypadku kontaktu ze skórą, kontaktu z oczami, spożycia i wdychania. Może powodować uszkodzenia tkanek, szczególnie błon śluzowych oczu, jamy ustnej i dróg oddechowych. Kontakt ze skórą może spowodować oparzenia. Nosić rękawice, fartuch laboratoryjny, okulary ochronne i pracować pod wyciągiem.</td></tr><tr><td>Chlorowodorek metoksyaminy</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>226904</td><td>! Uwaga Chlorowodorek metoksyaminy powoduje poważne oparzenia i poważne uszkodzenia oczu, może powodować uczulenie w kontakcie ze skórą. Nosić okulary ochronne, rękawice i fartuch laboratoryjny, pracować w dygestorium.</td></tr><tr><td>Pirydyna</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>270970</td><td>! Uwaga Pirydyna może powodować podrażnienie skóry i oczu, depresję ośrodkowego układu nerwowego. Para może spowodować gwałtowny pożar. Nosić okulary ochronne, rękawice i fartuch laboratoryjny, pracować w dygestorium.</td></tr><tr><td>N-metylo-N-(trimetylosililo)trifluoroacetamid z 1% trimetylochlorosilanem</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>69478</td><td>! Uwaga MSTFA + 1% TMCS może powodować działanie na skórę, poważne uszkodzenie oczu i działanie toksyczne na narządy docelowe. Łatwopalna ciecz i para. Nosić okulary ochronne, rękawice i fartuch laboratoryjny, pracować w dygestorium.</td></tr>System oczyszczania wody <tr><td>chlorek potasu</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9541</td><td></td></tr><tr><td>Milli-Q</td><td>model Millipore</td><td></td><td>MPGP04001</td></tr><tr><td>Vortex</td><td>Scientific Industries</td><td>SI-0236</td><td>Vortex Genie 2</td></tr><tr><td>Sonikator sondy</td><td>FisherBrand</td><td></td><td>model FB505</td></tr><tr><td>Wirówka z chłodzeniem</td><td>model</td><td></td><td>5810R</td></tr><tr><td>50 ml probówka wahliwy wirnik kubełkowy</td><td>Eppendorf</td><td>A-4-44</td><td></td></tr><tr><td>50mL rotor o stałym kącie</td><td>Eppendorf</td><td>FA-45-6-30</td><td></td></tr><tr><td>Balance</td><td>OHAUS</td><td></td><td>model V22PWE150IT</td></tr><tr><td>Serologiczny kontroler pipet</td><td>Eppendorf</td><td>12-654-100</td><td></td></tr><tr><td>10mL, szklane pipety serologiczne 25mL</td><td>FisherBrand</td><td>13-678-27F, 13-678-36D</td><td></td></tr><tr><td>Thermomixer z Thermotop</td><td>Eppendorf</td><td>5382000015, 5308000003</td><td></td></tr><tr><td>kulki ze stali nierdzewnej mieszanej 0,9 i 2,0 mm</td><td>NextAdvance</td><td>SSB14B</td><td></td></tr><tr><td>Koraliki granatowe 0,15 mm</td><td>MoBio</td><td>13122-500</td><td></td></tr><tr><td>Mieszadło magnetyczne</td><td>FisherBrand</td><td>11-100-16SH</td><td></td></tr><tr><td>Mieszadło magnetyczne</td><td>Paski</td><td></td> papierowe FisherBrand 14512130 <td></td></tr><tr><td>pH, pH zakres 0&ndash; 14</td><td>FisherBrand</td><td>M95903</td><td></td></tr><tr><td>15 ml, 50 ml stożkowa polipropylenowa probówka wirówkowa</td><td>Genesee Scientific</td><td>21-103 21-108</td><td>kompatybilna z chloroformem</td></tr><tr><td>50 ml nasadka wirowa</td><td>MoBio</td><td>13000-V1-50</td><td></td></tr><tr><td>Wiadro na lód</td><td>FisherBrand</td><td>02-591-44</td><td></td></tr><tr><td>Fiolki szklane 27,25x70mm</td><td>FisherBrand</td><td>03-339-22K</td><td></td></tr><tr><td>Breathe Łatwiejsze membrany płytowe</td><td>Midwest Scientific</td><td>BERM-2000</td><td></td></tr><tr><td>Chusteczki nasączone alkoholem</td><td>Diversified Biotech</td><td>BPWP-1000</td><td></td></tr><tr><td>Inkubator z wytrząsarką grzałkową</td><td>Benchmark, Incu-Shaker Mini</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Analogowy rotator rurowy z rożna</td><td>SoCal BioMed, LLC</td><td>82422001</td><td></td></tr><tr><td>Zestaw do przygotowania próbek wspomaganych filtrem</td><td>FASP; Expedeon</td><td>44250</td><td></td></tr><tr><td>Czytnik mikropłytek</td><td>Biotek, EPOCH-20</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>stopni Celsjusza Zamrażarka</td><td>Fisher</td><td>13986149-80</td><td></td></tr> <tr><td>stopni Celsjusza</td><td>Stirling Ultracold</td><td>SU78OUE</td><td></td></tr><tr><td>Q-Exactive spektrometr masowy pułapki jonowej</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Agilent 7890A sprzężony z pojedynczym kwadrupolem Spektrometr masowy 5975C</td><td>firmy Agilent Technologies, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LTQ-Orbitrap Velo</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Waters System NanoEquityTM UPLC</td><td>Millford, MA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Butelka na media 250 ml</td><td>Fiol</td> 186002805 <td></td> ka na wodę FisherBrand 1395-250 <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td> Wody Szklana fiolka na próbkę MS i wkładki MicroSolv 9502S-WCV, 9502S-02ND Szkło <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Fiolka HPLC i zatrzaski</td><td>MicroSolv</td><td>9512C-0DCV, 9502C-10C-B</td><td></td></tr><tr><td>HPLC 96-dołkowa płytka</td><td>Agilent</td><td>5042-6454</td><td></td></tr><tr><td>Duża szklana fiolka 27,25x70mm</td><td>FisherBrand</td><td>03-339-22K</td><td></td></tr><tr><td>Liofilizator</td><td>Labconco</td><td>7934021</td><td></td></tr><tr><td>Polerowana szpatułka z płaską główką ze stali nierdzewnej</td><td>Spoonula; FisherBrand</td><td>14-375-10</td><td></td></tr><tr><td>Chusteczki Kim</td><td>Kimberly-Clark</td><td>34721</td><td></td></tr><tr><td>XBridge C18, 250x4,6 mm, 5 &mu; M z kolumną ochronną 4,6x20 mm</td><td>Wody</td><td>186003117, system</td> HPLC 186003064 <td></td></tr><tr><td>serii Agilent 1100</td><td>Agilent Technologies</td><td>G1380-90000</td><td></td></tr><tr><td>1,7 ml probówka wirówkowa</td><td>Sorenson</td><td>11700</td><td></td></tr><tr><td>Hamilton Szklane strzykawki, 5 ml, 50 i mikro; L oraz 250&micro; L</td><td>Hamilton</td><td>81517, 80975, 81175</td><td></td></tr><tr><td>Pipety Pasteura</td><td>FisherBrand</td><td>13-678-20A</td> Żarówki do pipet Pasteura <td></td></tr><tr><td></td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z111597</td><td></td></tr><tr><td>Sonikator do kąpieli</td><td>Branson 1800 Myjka</td><td></td><td></td>ultradźwiękowa</tr><tr><td>Wirówka próżniowa</td><td>Labconco Centrivap Kwasoodporny system</td><td></td><td></td>koncentratorów</tr><tr><td>Kolumny MicroSpin, C18 Krzemionka</td><td>Grupa Nest</td><td>SEM SS18V</td><td></td></tr></tbody></table>

protokół mplex do analiz multiomicznych próbek gleby

The MPLEx Protocol for Multi-omic Analyses of Soil Samples

Zintegrowane badania metaproteomiczne, metabolomiczne i lipidomiczne (multiomiczne) oparte na spektrometrii mas (MS) zmieniają naszą zdolność do zrozumienia i scharakteryzowania społeczności mikrobiologicznych w systemach środowiskowych i biologicznych. Pomiary te umożliwiają nawet dokładniejsze analizy złożonych zbiorowisk mikroorganizmów glebowych, które są najbardziej złożonymi systemami mikrobiologicznymi znanymi do tej pory. Analizy multiomiczne wiążą się jednak z wyzwaniami związanymi z przygotowaniem próbki, ponieważ dla każdego badania omicznego zazwyczaj potrzebne są oddzielne ekstrakcje, co znacznie wydłuża czas przygotowania i wymaganą ilość próbki. Aby rozwiązać ten problem, stworzono metodę 3 w 1 do jednoczesnej ekstrakcji metabolitów, białek i lipidów (MPLEx) z tej samej próbki gleby, dostosowując podejście oparte na rozpuszczalnikach. Ten protokół MPLEx okazał się zarówno prosty, jak i niezawodny dla wielu typów próbek, nawet jeśli jest stosowany do ograniczonych ilości złożonych próbek gleby. Metoda MPLEx w znacznym stopniu umożliwiła również szybkie pomiary multiomiczne niezbędne do lepszego zrozumienia członków każdej społeczności drobnoustrojów, przy jednoczesnej ocenie zmian zachodzących w wyniku perturbacji biologicznych i środowiskowych.

Gdy protokół MPLEx został zastosowany do ekstrakcji cząsteczek z gleby z naturalnego preria w Kansas (gleba typu Mollisol), analizy w trzech powtórzeniach dostarczyły wyników dla 3376 peptydów, 105 lipidów i 102 polarnych metabolitów (wszystkie identyfikacje unikalne). Chociaż protokół MPLEx jest dobrze ugruntowany w kontekście ogólnej ekstrakcji lipidów i metabolitów12,13,14,<sup clas...

Przedstawiono protokół jednoczesnej ekstrakcji metabolitów, białek i lipidów z pojedynczej próbki gleby, co pozwala na skrócenie czasu przygotowania próbki i umożliwia analizy multiomiczną spektrometrią mas próbek o ograniczonych ilościach.

Protokół MPLEx do analiz multiomicznych próbek gleby

Mass spectrometry (MS)-based integrated metaproteomic, metabolomic, and lipidomic (multi-omic) studies are transforming our ability to understand and ...

Metoda ta jest stosowana w dziedzinie proteomiki, metabolomiki i lipidomiki, pomagając uzyskać kompleksowe informacje na temat zmian molekularnych zachodzących w zbiorowiskach mikroorganizmów związanych z glebą w wyniku perturbacji środowiskowych. Główną zaletą tej techniki jest to, że uzyskanie wielu analitów z jednej próbki gleby zwiększa precyzję i dokładność, jednocześnie skracając czas i wysiłek związany z przygotowaniem próbki. Na początek dla każdej 20-gramowej próbki gleby zważ 10 gramów w dwóch oddzielnych 50-mililitrowych probówkach kompatybilnych z metanolem/chloroformem.Używaj plastikowych rurek wykonanych z PTFE, ponieważ chloroform wypłukuje większość tworzyw sztucznych, zanieczyszczając próbki. Dodaj około 10 mililitrów stali nierdzewnej mytej chloroformem i kulek granatu do każdej tuby. Następnie, będąc na lodzie, dodaj cztery mililitry zimnej, ultraczystej wody do każdej probówki i przenieś próbki w wiadrze na lód do dygestorium.Używając 25-mililitrowej szklanej pipety serologicznej, szybko dodaj 20 mililitrów lodowatego chloroformu dwa do jednego do jednego do objętości metanolu do probówek. Dokręć pokrywki i przemieszaj mieszaninę gleby do roztworu. Chloroform-metanol pomaga rozbijać ścianę komórkową prokariontów, a także dezaktywuje aktywność enzymatyczną.Następnie przymocuj rurki do 50-mililitrowych nasadek wirowych i jeśli to możliwe, wiruj poziomo przez 10 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza w lodówce. Następnie umieść próbki w zamrażarce o temperaturze ujemnej 80 stopni Celsjusza na około 15 minut, aby całkowicie je schłodzić. Następnie, używając sonikatora sondy umieszczonej w okapie oparowym, poddaj sonikację każdej próbki za pomocą sześciomilimetrowej sondy 1/4 cala o amplitudzie 60% przez 30 sekund na lodzie.Po sonikacji umieść próbki w zamrażarce o temperaturze ujemnej 80 stopni Celsjusza, ponieważ sonikacja może generować dużo ciepła. Po powtórzeniu etapów poziomego wirowania, sonikacji i zamrażania, odwiruj próbki w temperaturze 4 000 razy większej niż grawitacja i w czterech stopniach Celsjusza przez pięć minut. W tym momencie próbka zostanie rozdzielona na górną warstwę metabolitu, warstwę pośrednią białka i dolną warstwę lipidową.Umieścić próbki na lodzie. Następnie, wewnątrz dygestoria, użyj 10-mililitrowej szklanej pipety serologicznej, aby przenieść górne warstwy metabolitów z dwóch 50-mililitrowych probówek do jednej dużej szklanej fiolki. Teraz lekko przechyl 50-mililitrową rurkę, aby uwolnić warstwę pośrednią białka, tak aby swobodnie unosiła się na dolnej warstwie lipidowej.Następnie, używając czystej szpatułki laboratoryjnej z płaską główką ze stali nierdzewnej, ostrożnie zgarnij obie międzywarstwy białka i umieść je razem w jednej nowej 50-mililitrowej tubce. Za pomocą szklanej pipety serologicznej o pojemności 25 mililitrów przenieś dolne warstwy lipidów do jednej dużej szklanej fiolki. Dodaj 20 mililitrów lodowatego metanolu do dwóch probówek z zanieczyszczeniami i do jednej probówki z międzywarstwą białkową.Krótko zawiruj probówki i odwiruj granulki gruzu i warstwę pośrednią białka pod ciśnieniem 4000 razy grawitacji i czterech stopni Celsjusza przez pięć minut. Następnie przelać metanol do pojemnika na odpady niebezpieczne w dygestorium. Zamroź granulki białka i zanieczyszczeń w ciekłym azocie i wysusz je w liofilizatorze przez około dwie godziny.Dodaj 20 mililitrów buforu do solubilizacji białek w 50-milimolowym buforze tris o pH 8,0 do każdej z granulek zanieczyszczeń i 10 mililitrów do probówki międzywarstwowej białka. W dygestorium sonda sonikuje próbki o amplitudzie 20% przez 30 sekund, aby wprowadzić je do roztworu. Wirować próbki przez dwie minuty.Następnie umieść próbkę międzywarstwy białka w rotatorze probówki laboratoryjnej w temperaturze 50 stopni Celsjusza na 30 minut, aby rozpuścić białko. Wiruj poziomo próbki szczątków przez dodatkowe 10 minut, aby zlizować wszelkie pozostałe nienaruszone komórki. Następnie obracaj się z próbkami międzywarstwy białkowej przez pozostałe 20 minut.Odwirować wszystkie próbki przy 4 500-krotności grawitacji w temperaturze pokojowej przez 10 minut i zebrać supernatant z każdej probówki na próbkę do dwóch 50-mililitrowych probówek. Dodaj 10 mililitrów buforu do rozpuszczania do osadu białkowego międzywarstwowego. Następnie poddać sonikacji i zmieszać osad z powrotem do roztworu.Po odwirowaniu równo połącz supernatanty w dwóch 50-mililitrowych probówkach z supernatantami z osadów gruzu i odwiruj probówki w wirniku kubełkowym o stałym kącie nachylenia pod kątem 8 000 razy grawitacji i czterech stopniach Celsjusza przez 10 minut, aby zebrać pozostałe zanieczyszczenia. Podzielić supernatanty na dwie 50-mililitrowe probówki. Następnie, za pomocą 10-mililitrowej szklanej pipety serologicznej, dodaj 7,5 mililitra TCA do każdej probówki.Zwirować próbki do roztworu. Następnie umieść próbki w zamrażarce o temperaturze ujemnej 20 stopni Celsjusza na dwie godziny do nocy. Aby granulować wytrącone białko, odwirować próbkę pod ciśnieniem 4 500 razy większym niż grawitacja i cztery stopnie Celsjusza przez 10 minut, a następnie zdekantować supernatant do odpadów.Dodaj 10 mililitrów 100% lodowatego acetonu do każdej granulki białka. Zwiruj rurki i połącz jak granulki w jedną rurkę. Odwirować, a następnie zdekantować aceton.Używając mniejszej objętości acetonu, umyj granulkę dwukrotnie i przenieś zawiesinę do 1,5 lub dwumililitrowej rurki na ostatnie wirowanie. Zdekantować supernatant do odpadów i pozostawić granulkę do wyschnięcia odwróconą na papierowej chusteczce w dygestorium przez około 20 minut. W zależności od wielkości osadu dodać od 100 do 200 mikrolitrów buforu do solubilizacji białek.Sonikować i wirować osad do roztworu. Należy zauważyć, że próbka może być lepka z powodu substancji humusowych wytrącających się wraz z białkiem, które zostaną usunięte przy kolejnym odwirowaniu. Na koniec wstrząsnąć próbką w inkubatorze lub wytrząsarce z prędkością 300 obr./min i w temperaturze 40 stopni Celsjusza przez 30 minut, aby rozpuścić białko do roztworu przed przystąpieniem do trawienia białka lub szybkiego zamrażania w celu przyszłego przetwarzania.Korzystając z protokołu MPLEx pokazanego w tym filmie, wyekstrahowano 3 376 peptydów, 105 lipidów i 102 metabolity polarne z rodzimej gleby preriowej Kansas, a ekstrakcja białek w protokole jest porównywana z zestawami do ekstrakcji białek i ekstrakcjami SDS przy użyciu LC-MS / MS z odwróconą fazą. Początkowe porównanie trzech powtórzeń komercyjnego zestawu do ekstrakcji białek i metod SDS wykazało, że tylko 12% peptydów pokrywało się między tymi dwiema technikami, co pokazuje złożoność społeczności drobnoustrojów i różne efekty ekstrakcji. Po porównaniu MPLEx z komercyjnym zestawem do ekstrakcji białek i ekstraktami SDS, około 38% peptydów zaobserwowanych przy użyciu metody MPLEx wykryto również podczas stosowania SDS i/lub komercyjnych ekstrakcji zestawowych.Biorąc pod uwagę liczbę gatunków w społeczności bakterii glebowych w Kansas i jej metagenom, nakładanie się identyfikacji peptydów jest uzasadnione. Jak pokazano tutaj, szerokie zastosowanie podejścia MPLEx zostało wcześniej ocenione przy użyciu archeonu S. acidocaldarius, konsorcjum unicyanobakteryjnego, tkanki kory mózgowej myszy, ludzkiego moczu i liści A.thaliana. We wszystkich przypadkach liczba białek zaobserwowanych metodą MPLEx była podobna do tej dla kontroli, co wskazuje na jej użyteczność dla wielu różnych typów próbek.Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak uzyskać białka, metabolity i lipidy z pojedynczej próbki gleby. Podczas próby tej procedury ważne jest, aby być elastycznym, ponieważ wszystkie rodzaje gleby są różne. Na przykład wielkość międzywarstwy białkowej będzie się różnić w zależności od biomasy glebowej i substancji humusowych obecnych w glebie.Nie zapominaj, że praca z chloroformem może być bardzo niebezpieczna, a podczas wykonywania tej procedury należy zawsze zachować środki ostrożności, takie jak praca pod wyciągiem.

the-mplex-protocol-for-multi-omic-analyses-of-soil-samples

Research

JoVE Journal

Chemistry

Chemia

Opisujemy metodę multipleksową do wykrywania mikroorganizmów w próbce z wykorzystaniem kulek fluorescencyjnych sprzężonych z oligonukleotydami. Amplikony wszystkich organizmów w próbce są hybrydyzowane z panelem kulek sprzężonych z sondami. Do analizy typu każdej kulki oraz sygnału hybrydyzacji wykorzystywany jest instrument Luminex lub Bio-Plex.

Multipleksowa detekcja bakterii w złożonych próbkach klinicznych i środowiskowych z wykorzystaniem mikrosfer fluorescencyjnych sprzężonych z oligonukleotydami

Fosfolipidowe kwasy tłuszczowe dostarczają informacji o strukturze zbiorowisk mikroorganizmów glebowych. Przedstawiono metody ekstrakcji z próbek glebowych za pomocą jednofazowej mieszaniny chloroformu, frakcjonowania wyekstrahowanych lipidów za pomocą kolumn ekstrakcyjnych do fazy stałej oraz metalizy do produkcji estrów metylowych kwasów tłuszczowych, które są analizowane za pomocą kapilarnej chromatografii gazowej.

Ekstrakcja i analiza mikrobiologicznych fosfolipidowych kwasów tłuszczowych w glebie

To badanie przedstawia metodę wykopaliskową do badania podpowierzchniowej hydrologicznej, geochemicznej i mikrobiologicznej heterogeniczności lizymetru glebowego. Lizymetr symuluje sztuczne zbocze wzgórza, które początkowo było w jednorodnym stanie i zostało poddane działaniu około 5000 mm wody w ciągu ośmiu cykli nawadniania w okresie 18 miesięcy.

Wykopy lizymetryczne gleby do sprzężonych badań hydrologicznych, geochemicznych i mikrobiologicznych

Artykuł opisuje metodę, która zwiększa przepustowość, jednocześnie równoważąc wysiłek i dokładność ekstrakcji lipidów z błon komórkowych mikroorganizmów do wykorzystania w charakterystyce zarówno lipidów całkowitych, jak i względnej obfitości lipidów wskaźnikowych w celu określenia struktury społeczności mikroorganizmów glebowych w badaniach z wieloma próbkami.

Metoda ekstrakcji i analizy lipidów do charakteryzowania mikroorganizmów glebowych w eksperymentach z wieloma próbkami

Technologia nanoporowa do sekwencjonowania biomolekuł ma szerokie zastosowanie w naukach przyrodniczych, w tym do identyfikacji patogenów, monitorowania bezpieczeństwa żywności, analizy genomicznej, metagenomicznego monitorowania środowiska i charakterystyki oporności bakterii na antybiotyki. W artykule przedstawiono procedurę metagenomicznego sekwencjonowania DNA gleby w celu identyfikacji gatunków z wykorzystaniem technologii sekwencjonowania nanoporowego.

Sekwencjonowanie DNA w nanoporach do metagenomicznej analizy gleby

Tutaj opisujemy protokół uzyskiwania danych o sekwencji amplikonów mikrobiomów gleby, ryzosfery i korzeni. Informacje te mogą być wykorzystane do zbadania składu i różnorodności zbiorowisk mikrobiologicznych związanych z roślinami i nadają się do stosowania w odniesieniu do szerokiej gamy gatunków roślin.

Badanie mikrobiomu korzeni: ekstrakcja danych o społeczności bakteryjnej z gleby, ryzosfery i endosfery korzeni

Identyfikacja wariantów genetycznych przyczyniających się do złożonych chorób ludzkich pozwala nam zidentyfikować nowe mechanizmy. W tym miejscu demonstrujemy podejście do genotypowania multipleksowego genów kandydujących lub analizy szlaków genowych, które maksymalizuje pokrycie przy niskich kosztach i jest podatne na badania kohortowe.

Testowanie genów kandydujących w klinicznych badaniach kohortowych z genotypowaniem multipleksowym i spektrometrią mas

Wydobywanie korzeni roślin z pola, jak również przetwarzanie próbek do endosfery, ryzosfery i gleby są szczegółowo opisane, łącznie z metodami ekstrakcji DNA i analizy danych. Niniejszy artykuł ma na celu umożliwienie innym laboratoriom wykorzystania tych technik do badania mikrobiomów glebowych, endosfery i ryzosfer.

Izolacja i analiza zbiorowisk mikrobiologicznych w glebie, ryzosferze i korzeniach w eksperymentach z wieloletnimi trawami

Ten protokół opisuje pojedynczą przepustowość dla uzupełniających technik analitycznych i omicznych, której kulminacją jest w pełni sparowana charakterystyka naturalnej materii organicznej i proteomiki mikrobiologicznej w różnych ekosystemach. Podejście to pozwala na solidne porównania w celu identyfikacji szlaków i przemian metabolicznych ważnych dla opisu produkcji gazów cieplarnianych i przewidywania reakcji na zmiany środowiskowe.

Jednoprzepustowe komplementarne techniki analityczne o wysokiej rozdzielczości do charakteryzowania złożonych mieszanin naturalnej materii organicznej

Ten protokół jest skuteczną, szybką metodą hodowli drożdży i pleśni Aspergillus fumigatus z dużych zestawów próbek gleby w ciągu zaledwie 7 dni. Metody te można łatwo modyfikować w celu dostosowania do różnych pożywek inkubacyjnych i temperatur w zależności od potrzeb eksperymentów.

Izolacja drożdży i pleśni nadających się do hodowli z gleb w celu zbadania struktury populacji grzybów

Poznaj protokół MPLEx do ekstrakcji metabolitów, białek i lipidów z jednej próbki gleby dla analiz multiomicznych. Ta metoda zwiększa precyzję wyników i skraca czas przygotowania próbek w badaniach mikrobiologii gleby.

Protokół MPLEx do analiz multiomicznych próbek gleby

Przeglądaj więcej filmów