Name: Ocena uszkodzeń wywołanych przez Dryocosmus Kuriphilus na Castanea Sativa (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-08-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 14 s
Description: Poznaj metodę oceny uszkodzeń spowodowanych przez Dryocosmus kuriphilus na Castanea sativa. Złożony indeks uszkodzeń pozwala realistycznie ocenić stan drzewa podczas epidemii i fazy regeneracji.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy są wdzięczni Służbie Leśnej Kantonu Ticino oraz Federalnemu Urzędowi ds. Środowiska FOEN za częściowe finansowanie tego badania.

1. Wybór drzew i ocena projektu
<ol>
	<li>Jeśli to możliwe, należy określić stadium epidemiczne badanego obszaru, określając lata przybycia Dryocosmus kuriphilus i Torymus sinensis oraz wskaźnik pasożytowania T. sinensis, korzystając z wiarygodnych źródeł (np. publikacji naukowych, służb leśnych, wiedzy zarządców gajów kasztanowych).
	<ol>
		<li>Jeśli nie są dostępne żadne wiarygodne źródła, zidentyfikuj cztery główne etapy epidemii (wczesny, szczyt, powrót do zdrowia, kontrola biologiczna), obliczając wskaźnik pasożytnictwa T. sinensis w połączeniu z obserwacjami terenowymi opisanymi poniżej.
		<ol>
			<li>Zidentyfikuj etap jako wczesną epidemię, kiedy korony drzew nie wykazują ani znacznych uszkodzeń, ani przezroczystości korony, galasy w bieżącym roku są rzadkie, a pasożytnictwo T. sinensis jest bardzo niskie lub znikome.</li>
			<li>Zidentyfikuj szczyt epidemii, gdy korony drzew wykazują wysoki stopień przezroczystości, chociaż martwe gałęzie są rzadkie, a galasy w bieżącym roku są obfite.</li>
			<li>Zidentyfikuj przedłużony szczyt epidemii, gdy galasy w bieżącym i poprzednich latach są obfite (do trzech lat wcześniej), a pasożytnictwo T. sinensis jest nadal bardzo niskie lub nie ma go wcale. Korony drzew nadal wykazują wysoką przezroczystość, a dodatkowe uszkodzenia reprezentują pierwsze dowody martwych gałęzi w koronie.</li>
			<li>Zidentyfikuj wczesny etap rekonwalescencji, gdy wskaźnik pasożytnictwa T. sinensis staje się większy niż 75%10. Uszkodzenia są nadal wysokie, ale liczba galasów w bieżącym roku maleje, a niektóre gałęzie wytwarzają pędy wolne od żółci, zwłaszcza z pąka wierzchołkowego.</li>
			<li>Zidentyfikuj etap rekonwalescencji, gdy wskaźnik pasożytnictwa T. sinensis jest trwale większy niż 75%, galasy w bieżącym roku są rzadkie i zwykle ograniczają się tylko do pojedynczych drzew, a większość gałęzi wytwarza pędy wolne od żółci. Zeszłoroczne galasy na starszych gałęziach i martwe gałęzie spowodowane atakami D. kuriphilus są nadal widoczne.</li>
			<li>Zidentyfikuj w pełni wyleczony etap, w którym uszkodzenia i galasy (w przeszłości i w bieżącym roku) są rzadkie lub nie ma ich wcale, a korony są w pełni zregenerowane. W poważnie uszkodzonych drzewach niektóre ślady (np. martwe pędy lub zgniłe galasy z poprzednich lat) wcześniejszych ataków D. kuriphilus mogą być nadal obecne wewnątrz korony. 
			UWAGA: Plik uzupełniający 1 zawiera przykładowe zdjęcia koron drzew dla każdego stadium epidemii.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Obserwuj kasztanowce na całym obszarze, aby wizualnie oszacować zmienność uszkodzeń między drzewami i w ich obrębie. Zmienność uszkodzeń jest zwykle niska we wczesnej fazie epidemii i w fazie rekonwalescencji (korony są w zasadzie zdrowe), a także w szczycie epidemii (całe korony są pełne galasów). W przeciwieństwie do tego, zmienność jest zwykle wysoka w pośrednich stadiach epidemii, kiedy martwe pędy spowodowane przeszłymi atakami D. kuriphilus są nadal obecne.</li>
	<li>Na podstawie 1.1 i 1.2 określ liczbę drzew do analizy. Niestety, nie jest możliwe lub właściwe podanie konkretnej zasady dotyczącej wielkości próby, która może się różnić w zależności od konkretnej sytuacji epidemicznej w danej dziedzinie i/lub celów badawczych. Opierając się na naszym 10-letnim doświadczeniu, w przypadku działki o powierzchni 10 hektarów zalecamy następujące rozwiązania (szczegółowe informacje znajdują się również w tabeli 1):
	<ol>
		<li>Pobieraj próbki z co najmniej dziesięciu drzew na każde miejsce, niezależnie od etapu epidemii. Chociaż we wczesnej fazie epidemii i w fazie wyzdrowienia wystarczyłyby trzy drzewa, zwiększenie wielkości próby do dziesięciu nada wynikom większą moc statystyczną.</li>
		<li>We wczesnej fazie epidemii i na etapie rekonwalescencji pobiera się próbki z jednej gałęzi na drzewo.</li>
		<li>W szczycie epidemii należy pobrać próbkę z jednej gałęzi na drzewo, jeśli galasy są równomiernie rozmieszczone w koronie drzewa, lub dwóch gałęzi na drzewo, jeśli zauważysz, że niektóre części korony zostały poważniej zaatakowane.</li>
		<li>Podczas pozostałych etapów epidemii należy zwiększyć liczbę gałęzi do dwóch (w przypadku drzew, które dobrze się regenerują) lub trzech (w przypadku drzew bardziej uszkodzonych) w oparciu o zmienność uszkodzeń korony każdego drzewa.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Zbieranie danych w terenie
<ol>
	<li>Przygotuj odpowiedni sprzęt, w tym podkładkę, krzesło kempingowe, sekatory, teleskopowy sekator do drzew, taśmę mierniczą 30 m oraz sprzęt do wspinania się po drzewach, jeśli górna korona powyżej 8 m wymaga analizy.</li>
	<li>Wybierz najbardziej reprezentatywne gałęzie, starając się proporcjonalnie pokryć różnorodność gałęzi w koronie drzewa (zdrowe drzewa zwykle mają podobne gałęzie, podczas gdy uszkodzone drzewa mogą mieć gałęzie o różnym stopniu uszkodzenia). Na przykład, jeśli zdecydujesz się zebrać trzy gałęzie na drzewo, zbierz najbardziej uszkodzoną gałąź, najzdrowszą i pośrednią.</li>
	<li>Jeśli to możliwe, wybieraj tylko gałęzie architektoniczne, unikając powtórzeń (trunk suckers lub reiterations sensu Hallé)16.</li>
	<li>Upewnij się, że gałęzie mają co najmniej 50 cm długości i co najmniej 10 pędów.</li>
	<li>Przymocuj początek taśmy mierniczej w pobliżu ostrza teleskopowego sekatora do drzew, aby zmierzyć wysokość gałęzi nad ziemią w miejscu cięcia.</li>
	<li>Odetnij gałąź sekatorem teleskopowym, zapisz jej wysokość cięcia, wygląd, rodzaj (architektoniczny lub powtórzeniowy) i doprecyzuj wybór gałęzi za pomocą sekatorów, aby zachować tylko część do analizy.</li>
	<li>Przypisz unikalny identyfikator do gałęzi i zapisz jej wiek, maksymalną długość (od pierwszego punktu rozgałęzienia do wierzchołka), aby uzyskać ogólne informacje.</li>
	<li>Rzuć okiem na całą gałąź, aby uzyskać pierwsze wrażenie na temat jej historii i obecnego statusu (mocno zaatakowanego lub nie) i zidentyfikuj wszystkie elementy i funkcje ważne dla obliczenia DCI za pomocą Rysunek 2 i Rysunek 3.</li>
</ol>
3. Definicja cechy gałęzi
Poniższe definicje są częściowo lub całkowicie odtworzone z Gehring et al. 20185, za zgodą Springer-Verlag Berlin Heidelberg 2017.
<ol>
	<li>Zdefiniuj kiełek (na pędzie) jako świeżo uformowany kiełek, który wyrósł w bieżącym sezonie wegetacyjnym z rozwiniętego pąka na pędzie.</li>
	<li>Zdefiniuj pęd jako kiełek z poprzedniego sezonu wegetacyjnego w odniesieniu do daty pobierania próbek (np. sezon pobierania próbek = 2017, pęd = kiełek, który wyrósł w 2016 roku). Może być żywy lub martwy.</li>
	<li>Zdefiniuj martwy strzał (Sd) jako martwy pęd po ataku D. kuriphilus lub z powodu naturalnej śmierci.</li>
	<li>Zdefiniuj żywy pęd (As) jako żywy pęd, którego nie mylić z reaktywowanym uśpionym pąkiem.</li>
	<li>Zdefiniuj reaktywowany uśpiony pączek (Bdor) jako świeżo uformowany kiełek, który wyrósł w bieżącym sezonie wegetacyjnym z uśpionego pąka na wieloletniej części gałęzi, która jest starsza niż pęd.</li>
	<li>Zdefiniuj galas na pędzie (Gons) jako żółć rozwiniętą u podstawy lub wzdłuż osi kiełka. Technicznie rzecz biorąc, powinny one być nazywane "galasami na kiełkach", ale w celu zachowania spójności z istniejącą literaturą odnosimy się do nich jako do "galasów na pędach". 
	UWAGA: Rysunek 2 i Rysunek 3 pokazuje przykłady wybranych cech gałęzi. Bardziej szczegółowe i kompletne opisy (które wykraczają poza zakres tego artykułu) można znaleźć w Gehring et al. 20185 oraz Maltoni et al. 20124.</li>
</ol>
4. Analiza gałęzi
<ol>
	<li>Policz i zapisz wszystkie żywe pędy (żywe pędy).</li>
	<li>Policz i zapisz wszystkie martwe pędy.</li>
	<li>Policz i zapisz wszystkie reaktywowane uśpione pąki.</li>
	<li>Policz i zapisz wszystkie galasy na pędach. 
	UWAGA: Plik uzupełniający 2 przedstawia przykład formularza próbkowania pól, a plik uzupełniający 3 przedstawia wypełniony formularz próbkowania.</li>
</ol>
5. Obliczanie wskaźnika kompozytu uszkodzeń
<ol>
	<li>Oblicz proporcję martwych pędów (Sd) z liczby martwych pędów podzielonej przez całkowitą liczbę pędów (martwe pędy + żywe pędy).</li>
	<li>Oblicz proporcję reaktywowanych uśpionych pąków (BdoR) z liczby reaktywowanych uśpionych pąków podzielonej przez całkowitą liczbę żywych pędów (BdoR + żywe pędy).</li>
	<li>Oblicz średnią liczbę galasów na pędach (Gons) z liczby galasów na pędach podzielonej przez liczbę żywych pędów (BdoR + żywe pędy).</li>
	<li>Oblicz DCI za pomocą wzoru DCI = (Sd * 0,479 + BdoR * 0,525 + Gons * 0,120) * 100.</li>
	<li>Skorzystaj z tabeli 2, aby ocenić dotkliwość szkód. 
	Uwaga: Skrypt języka R z funkcją DCI jest dostępny w uzupełniającym pliku kodowania 1. Jego opis znajduje się w pliku uzupełniającym nr 4.</li>
</ol>

<ol><li>Stone, G. N., Schönrogge, K., Rachel, J., Bellido, D., Pujade-villar, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+population+biology+of+oak+gall+wasps+%28Hymenoptera%3A+Cynipidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Entomology%22%5BJournal%5D)">The population biology of oak gall wasps (Hymenoptera: Cynipidae).</a> Annual Review of Entomology. (47), 633-668 (2002).</li>
<li>Abe, Y., Melika, G., Stone, G. N. <a target="_blank" href="http://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1080/00305316.2007.10417504">The diversity and phylogeography of cynipid gallwasps (Hymenoptera: Cynipidae) of the Oriental and eastern Palearctic regions, and their associated communities.</a> Oriental Insects. 41 (1), 169-212 (2007).</li>
<li>Aebi, A., Schoenenberger, N., Bigler, F. <a target="_blank" href="https://libra.unine.ch/Publications/Alexandre_Aebi/27304">Evaluating the use of Torymus sinensis against the chestnut gall wasp Dryocosmus kuriphilus in the Canton Ticino, Switzerland.</a> Agroscope Reckenholz-Tänikon Report. , (2011).</li>
<li>Maltoni, A., Mariotti, B., Tani, A. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/256934708_Case_study_of_a_new_method_for_the_classification_and_analysis_of_Dryocosmus_kuriphilus_Yasumatsu_damage_to_young_chestnut_sprouts">Case study of a new method for the classification and analysis of Dryocosmus kuriphilus Yasumatsu damage to young chestnut sprouts.</a> IForest. 5 (1), 50-59 (2012).</li>
<li>Gehring, E., Bellosi, B., Quacchia, A., Conedera, M. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/s10340-017-0857-9">Assessing the impact of Dryocosmus kuriphilius on the chestnut tree branch architecture matters.</a> Journal of Pest Science. 91 (1), 189-202 (2018).</li>
<li>Kato, K., Hijii, N. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1439-0418.1997.tb01363.x/abstract">Effects of gall formation by Dryocosmus kuriphilus Yasumatsu (Hym ., Cynipidae ) on the growth of chestnut trees.</a> Journal of Applied Entomology. 121 (1-5), 9-15 (1997).</li>
<li>Meyer, J. B., Gallien, L., Prospero, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+between+two+invasive+organisms+on+the+European+chestnut%3A+Does+the+chestnut+blight+fungus+benefit+from+the+presence+of+the+gall+wasp%3F%5BTitle%5D)+AND+%22FEMS+Microbiology+Ecology%22%5BJournal%5D)">Interaction between two invasive organisms on the European chestnut: Does the chestnut blight fungus benefit from the presence of the gall wasp?</a> FEMS Microbiology Ecology. 91 (11), 1-10 (2015).</li>
<li>Turchetti, T., Addario, E., Maresi, G. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/49587666_Interactions_between_chestnut_gall_wasp_and_blight_a_new_criticality_for_chestnut">Interactions between chestnut gall wasp and blight: a new criticality for chestnut.</a> Forest@ - Rivista di Selvicoltura ed Ecologia Forestale. 7 (1), 252-258 (2010).</li>
<li>Moriya, S., Shiga, M., Adachi, I. Classical biological control of the chestnut gall wasp in Japan. Proceedings of the1st International Symposium on Biological Control of Arthropods, , USDA-Forestry Service. Honolulu Hawaii. 407-415 (2003).</li>
<li>Quacchia, A., Moriya, S., Bosio, G. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/283885568_Effectiveness_of_torymus_sinensis_in_the_biological_control_of_dryocosmus_kuriphilus_in_Italy">Effectiveness of Torymus sinensis in the Biological Control of Dryocosmus kuriphilus in Italy.</a> Acta Horticulturae. 1043, 199-204 (2014).</li>
<li>Kotobuki, K., Mori, K., Sato, Y. <a target="_blank" href="http://agris.fao.org/agris-search/search.do?recordID=JP19860062861">2 methods to estimate the tree damage by chestnut gall wasp Dryocosmus-kuriphilus.</a> Bulletin of the fruit tree research station A (Yatabe). 2 (12), 29-36 (1985).</li>
<li>Sartor, C., Dini, F., et al. <a target="_blank" href="https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0304423815302338">Impact of the Asian wasp Dryocosmus kuriphilus (Yasumatsu) on cultivated chestnut: Yield loss and cultivar susceptibility.</a> Scientia Horticulturae. 1997, 454-460 (2015).</li>
<li>Johnstone, D., Moore, G., Tausz, M., Nicolas, M. <a target="_blank" href="http://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1080/03071375.2013.783746?journalCode=tarb20">The measurement of plant vitality in landscape trees.</a> Arboricultural Journal: The International Journal of Urban Forestry. 35 (1), 18-27 (2013).</li>
<li>Guyot, V., Castagneyrol, B., Deconchat, M., Selvi, F., Bussotti, F., Jactel, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tree+diversity+limits+the+impact+of+an+invasive+forest+pest%5BTitle%5D)+AND+%22Plos+One%22%5BJournal%5D)">Tree diversity limits the impact of an invasive forest pest.</a> Plos One. , (2015).</li>
<li>Gehring, E., Bosio, G., Quacchia, A., Conedera, M. <a target="_blank" href="http://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1080/09670874.2017.1364448">Adapting sampling effort to assess the population establishment of Torymus sinensis, the biocontrol agent of the chestnut gallwasp.</a> International Journal of Pest Management. , (2017).</li>
<li>Hallé, F., Oldeman, R. A. A., Tomlinson, P. B. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHall%C3%A9%2C+F+%22The+Formation+of+Trees+and+Forests.+An+architectural+analysis%22">The Formation of Trees and Forests. An architectural analysis</a>. , Springer-Verlag. New York. (1978).</li>
<li>Gyoutoku, Y., Uemura, M. <a target="_blank" href="http://agris.fao.org/agris-search/search.do?recordID=JP8702225">Ecology and biological control of the chestnut gall wasp, Dryocosmus kuriphilus Yasumatsu (Hymenoptera: Cynipidae). 1. Damage and parasitization in Kumamoto Prefecture.</a> Proceedings of the Association for Plant Protection of Kyushu (Japan). 31, 213-215 (1985).</li>
<li>Müller, E., Stierlin, H. R. <a target="_blank" href="https://www.wsl.ch/eshop/product_info.php?products_id=110">Sanasilva Kronenbilder mit Nadel- und Blattverlustprozenten.</a> Eidgenössische Forschungsanstalt für Wald, Schnee und Landschaft: Birmensdorf. , (1990).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Dryocosmus kuriphilus składa jaja w pąkach kasztanowca, wywołując wiosną tworzenie się galasów. Powtarzające się i niekontrolowane ataki D. kuriphilus powodują, oprócz powstawania żółci, ogólne uszkodzenie gałęzi, w tym śmierć wielu pędów i znaczną utratę powierzchni zielonych liści fotosyntetycznych5. Drzewa zwykle reagują, próbując wytworzyć pędy zastępcze poprzez aktywację uśpionych pąków. Z tego powodu, zwłaszcza w okresie szczytu epidemii i rekonwalescencji, klasyczny MAID (...

Kasztanowata osa Dryocosmus kuriphilus Yasumatsu (Hymenoptera: Cynipidae) jest najważniejszym globalnym szkodnikiem owadzim z rodzaju Castanea1,2,3. Poprzez powtarzające się działanie zacierania zapobiega i hamuje normalny rozwój pędów4,5, powodując postępujące zmniejszanie powierzchni liści, a w konsekwencji utratę zielonej biomasy i wigoru drzew5,6, reaktywacja uśpionych pąków5 i wzrost śmiertelności gałęzi gallosy po wschodach7,8.
Europejskie doświadczenia związane z epidemią osy żółciowej pokazują, że niekontrolowane i powtarzające się ataki osy żółciowej mogą wywołać wysoki poziom uszkodzenia korony u kasztanowca szlachetnego (Castanea sativa Mill.). Może to spowodować utratę powierzchni liści korony do 70%, która nie jest kompensowana przez zastępcze liście wytwarzane przez aktywację uśpionych pąków ani przez tworzenie drugich rzutów w tym samym okresie wegetacji5.
Jedyną skuteczną metodą na zmniejszenie populacji szkodników i umożliwienie kasztanowcom odtworzenia się jest kontrola biologiczna poprzez jej naturalnego antagonistę, parazytoida Torymus sinensis Kamijo (Hymenoptera: Torymidae)9,10. Po osiągnięciu kontroli biologicznej przez swojego naturalnego wroga, kasztanowce zaczynają wytwarzać nowe, zdrowe pędy. Jeśli poziom uszkodzenia drzewa jest bardzo wysoki, może to nastąpić dopiero od końcowego pąka, ze względu na fakt, że jest on zwykle wolny od inwazji ze względu na jego powstanie po aktywności składania jaj przez osę żółciową4. Oznacza to długi proces regeneracji, zanim cała korona drzewa zostanie ponownie ustanowiona5.
W celu sprawdzenia pozytywnej reakcji kasztanowców po osiągnięciu kontroli biologicznej przez Torymus sinensis, oraz w celu sprawdzenia potrzeby interwencji w zakresie uprawy leśnej (przycinanie, trzebież), zarządcy lasów i hodowcy kasztanowców potrzebują metody szybkiej i wiarygodnej oceny poziomu uszkodzeń i związanej z tym architektury gałęzi oraz ewolucji obszaru liści podczas epidemii osy żółciowej, od początkowej fazy inwazji szkodnika do odbudowy po kontroli biologicznej przez jego antagonista. Do tej pory na całym świecie opracowano i stosowano kilka metod oceny stopnia porażenia galasami (MAID), takich jak pomiar proporcji zaatakowanych pąków11 lub średnia liczba galasów na pączek12. MAID nie mierzy bezpośrednio zielonej biomasy (np. powierzchni liści), struktur rezerwowych, takich jak uśpione pąki, struktur reakcyjnych (np. reaktywowane uśpione pąki i drugie rzuty) lub uszkodzeń z poprzedniego roku (np. martwych pędów) jako głównych wskaźników aktualnej żywotności i wigoru drzew6,13,14. Co więcej, większość MAID opiera się jedynie na liczbie galasów znalezionych na gałęziach drzew i zaniża rzeczywiste uszkodzenia gałęzi, zwłaszcza w szczycie epidemii szkodników (ryc. 1).
W tym artykule opisujemy podejście do wskaźnika złożonego szkód (DCI) zaproponowane przez Gehringa i in. 20185, które uwzględnia wskaźniki zastępcze zielonej biomasy, rezerwy takie jak uśpione pąki i reakcje drzew (reaktywacja uśpionych pąków i drugie rzuty), umożliwiając realistyczną, wiarygodną i w miarę szybką ocenę szkód we wszystkich etapach epidemii, zwłaszcza w połączeniu z optymalizacją wysiłku oceny zaproponowaną przez Gehringa,et al. 201715.
W szczególności, cele tego artykułu to: 1) szczegółowe opisanie protokołu terenowego, w tym odpowiednich cech gałęzi, które mają być oceniane, 2) przedstawienie formuły wskaźnika złożonego uszkodzenia, oraz 3) zaproponowanie ulepszonej konwersji skali dotkliwości dla DCI.

<table><tbody><tr><td>Nazwa materiału/sprzętu</td><td>Firma</td><td>Numer katalogowy</td><td>Komentarze</td></tr><tr><td>Schowek</td><td>Dowolna marka</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Krzesło kempingowe (Krzesło składane i lekkie)</td><td>Dowolna marka</td><td></td><td>Firmy: Kelty, Campz, Half-Ton.</td></tr><tr><td>Sekator ogrodowy Felco 9 (Nożyce do przycinania jednoręczne)</td><td>Felco</td><td></td><td>Inne firmy: Bahco.</td></tr><tr><td>AP-5M-Słup aluminiowy (teleskopowy słup do przycinania drzew)</td><td>Bahco</td><td>8152079</td><td>Inne firmy: Spear & Jackson, Zimorodek, Hortex, Fiskars.</td></tr><tr><td>P34-37 sekator górny (teleskopowa głowica sekatora do drzew)</td><td>Bahco</td><td>8002787</td><td></td></tr><tr><td>100 ft Długa taśma z włókna szklanego (taśma miernicza 30 m)</td><td>Stanley</td><td>34-790</td><td>Inne firmy: Tjima, Freemans, Astor, Lux.</td></tr><tr><td>Równoległy 10,5 mm (lina stalowa o niskiej rozciągliwości, elastyczna i lekka do dostępu linowego)</td><td>Petzl</td><td>R077AA03</td><td>Podstawowe wyposażenie do wspinaczki po drzewach&nbsp; (w razie potrzeby). Do wspinania się po drzewach można wykorzystać wiele innych konfiguracji sprzętu, w zależności od sytuacji i preferencji jednego operatora. Używaliśmy sprzętu Pezl, ale wiele innych firm oferuje podobne produkty (np. Edelrid, Notch, Climbing technologies, DMM, ...). Aby uzyskać pełny przegląd sprzętu i firm, zalecamy wyszukiwanie w google&nbsp; "sprzęt do wspinaczki po drzewach" jako słowo kluczowe wyszukiwania. UWAGA: wspinaczka po drzewach powinna być wykonywana wyłącznie przez profesjonalistów i podlega określonym przepisom regulacyjnym w zależności od kraju.</td></tr><tr><td>Avao Sit (Uprząż do pracy w pozycji i podwieszenia)</td><td>Petzl</td><td>C69AFA 2</td><td></td></tr><tr><td>Rig (Kompaktowy zjazd z hamulcem samohamującym)</td><td>Petzl</td><td>D21A</td><td></td></tr><tr><td>Ascension (Uchwyt zaciskowy do wspinaczki po linie)</td><td>Petzl</td><td>B17ALA</td><td></td></tr><tr><td>Eclipse (Schowek na linę do rzucania)</td><td>Petzl</td><td>S03Y</td><td></td></tr><tr><td>Airline ( Throw-line)</td><td>Petzl</td><td>R02Y 060</td><td></td></tr><tr><td>Jet (Throw-bag)</td><td>Petzl</td><td>S02Y 300</td><td></td></tr><tr><td>Vertex best (Wygodny kask do pracy na wysokości i ratownictwa)</td><td>Petzl</td><td>A10BYA</td><td></td></tr><tr><td>Zillon (Regulowana smycz do pracy do pielęgnacji drzew)</td><td>Petzl</td><td>L22A 040</td><td></td></tr><tr><td>Ok (Lekki owalny karabinek)</td><td>Petzl</td><td>M33A SL</td><td></td></tr></tbody></table>

ocena uszkodzeń wywołanych przez dryocosmus kuriphilus na castanea sativa

Evaluating Dryocosmus Kuriphilus-induced Damage on Castanea Sativa

Dryocosmus kuriphilus Yasumatsu stał się głównym szkodnikiem dla Castaneasativa od czasu jego przybycia do Europy. Jego działanie zacierające powoduje powstawanie różnych typów żółci i zapobiega rozwojowi normalnych pędów. Powtarzające się i niekontrolowane ataki powodują, oprócz produkcji galasów i towarzyszącego temu związanego z galasem zmniejszenia powierzchni liści, postępujące uszkodzenie architektury gałęzi, w tym śmierć części gałęzi i wzrost aktywacji uśpionych pąków. Do tej pory podjęto niewiele prób ilościowego określenia uszkodzeń architektury gałęzi. Co więcej, różne metody oceny stopnia porażenia (MAID), które zostały opracowane, koncentrują się wyłącznie na obecności i liczebności galasów.
Wykorzystując relację powierzchni liści do powierzchni bielu jako wskaźnika zielonej biomasy, opracowaliśmy w poprzednim badaniu wskaźnik szkód (DCI), który uwzględnia najważniejsze cechy architektury gałęzi, pozwalając na realistyczną ocenę szkód podczas całego procesu epidemii. 
Celem tego badania jest przedstawienie tej nowatorskiej metody i podkreślenie różnic w opisie szkód w stosunku do innych powszechnie stosowanych wskaźników. Wyniki pokazują, że DCI lepiej obrazuje uszkodzenia oddziałów, zwłaszcza podczas szczytu epidemii, w porównaniu z MAID, które mają tendencję do ich zaniżania. Na zakończenie sugerujemy, jak prawidłowo ocenić ogólny wpływ szkodnika za pomocą naszego złożonego wskaźnika uszkodzeń, stopnia porażenia przy użyciu klasycznych metod oraz oceny przezroczystości korony.

W latach 2013–2016 odwiedzono łącznie 25 lokalizacji w Ticino w Szwajcarii, aby stworzyć gradient czasowy obejmujący wszystkie stadia epidemii osy galowej. W sumie zebrano i przeanalizowano 94 gałązki w 5 lokalizacjach na wczesnym etapie epidemii (pojawienie się szkodnika i początek uszkodzeń drzew), 200 gałązek w 5 lokalizacjach w szczycie epidemii (umiarkowane do silnych uszkodzenia wynikające z wysokiego poziomu ataku D. kuriphilus), 200 gałązek w 5 lokalizacjach na etapie reg...

Powszechną praktyką jest ocenianie szkód spowodowanych przez Dryocosmus kuriphilus na podstawie obfitości samych galasów, a nie na podstawie powiązanego uszkodzenia gałęzi. Proponujemy złożony indeks uszkodzeń, który uwzględnia najważniejsze cechy gałęzi, umożliwiając tym samym bardziej realistyczną ocenę szkód.

Ocena uszkodzeń wywołanych przez Dryocosmus Kuriphilus na Castanea Sativa

Dryocosmus kuriphilus Yasumatsu has become a major pest for Castaneasativa since its arrival in Europe. Its galling activity results in the formation of ...

Metoda ta została opracowana poprzez powiązanie utraty powierzchni liści spowodowanej atakiem osy żółciowej z głównymi cechami gałęzi, takimi jak uśpione pąki, galasy i martwe pędy. Uwzględnienie i połączenie tych cech w złożony indeks uszkodzeń pozwala na realistyczną ocenę stanu drzewa podczas całego procesu epidemii, w tym fazy zdrowienia. Główną zaletą jest to, że ujawnia rzeczywistą zmianę gałęzi nawet w fazie rekonwalescencji, kiedy obecność galasów staje się słaba.Po raz pierwszy wpadliśmy na pomysł tej metody, gdy zdaliśmy sobie sprawę, że atak Dryocosmus kuriphilus powoduje również uszkodzenie architektury gałęzi, oprócz zmniejszenia powierzchni liści związanego z galasem. Chociaż metoda ta jest specyficzna dla gatunku, metodologia zastosowana do jej stworzenia może być dostosowana i wdrożona do każdego innego gatunku drzew i powiązanych szkodników. W celu zebrania danych należy zaopatrzyć się w schowek, krzesło kempingowe, sekatory, teleskopowy sekator do drzew i 30-metrową taśmę mierniczą.Zaopatrz się w sprzęt do wspinaczki po drzewach do analizy, jeśli górna korona znajduje się powyżej ośmiu metrów. Podczas zbierania zbierz trzy rodzaje gałęzi, które reprezentują uszkodzone, najzdrowsze i pośrednią, która stanowi całą różnorodność gałęzi. Następnie przymocuj początek taśmy mierniczej w pobliżu ostrza teleskopowego sekatora do drzew.Następnie użyj sekatora teleskopowego, aby przyciąć gałąź. Po przycięciu gałęzi zapisz jej wysokość cięcia, wygląd i to, czy typ gałęzi jest architektoniczny, czy powtórzony. Następnie, aby zebrać ogólne informacje o gałęzi, przypisz unikalny identyfikator i zapisz wiek oraz maksymalną długość gałęzi od pierwszego punktu rozgałęzienia do wierzchołka.Najpierw poszukaj kiełka, który jest świeżo uformowaną strukturą, która wyrosła w obecnym sezonie wegetacyjnym z rozwiniętego pąka na pędzie. Następnie zbierz żywy pęd, który jest kiełkiem, który rozwinął się z poprzedniego sezonu wegetacyjnego w stosunku do daty pobierania próbek, a następnie martwy pęd, który obumarł albo z powodu ataku D. kuriphilus, albo naturalnie. Następnie zbierz reaktywowane uśpione pąki, które są świeżo uformowanymi pędami, które wyrosły w obecnym sezonie wegetacyjnym z uśpionego pąka na wielowarstwowej części gałęzi, która jest starsza niż pęd.Na koniec poszukaj żółci na pędzie, która zwykle rozwija się u podstawy lub wzdłuż osi kiełka. Następnie policz i zapisz wszystkie żywe i martwe pędy, reaktywowane uśpione pąki i wszystkie galasy na pędach. Aby obliczyć złożony wskaźnik uszkodzeń, wybierz sekcję odpowiadającą martwemu pędowi, a następnie oblicz proporcję martwego pędu.Następnie oblicz proporcję reaktywowanego uśpionego pąka. Po zmierzeniu reaktywowanej populacji uśpionych pąków oblicz liczbę galasów na pędach. Następnie zmierz złożony wskaźnik uszkodzeń, biorąc pod uwagę populację martwych pędów, reaktywowany uśpiony pąk i liczbę galasów.Następnie zmierz dotkliwość uszkodzeń na podstawie skali złożonego wskaźnika uszkodzeń. Ten wykres reprezentuje wczesne etapy infestacji w porównaniu między DCI a dwoma MAID w gałęziach. Na wykresie oś Y reprezentuje ustandaryzowaną skalę dotkliwości, w której zarówno DCI, jak i dwa MAID są bardzo niskie, co wskazuje na minimalne uszkodzenia we wczesnych stadiach.Wykres ten porównuje DCI i dwie MAID w szczytowych stadiach inwazji. DCI reprezentuje bardzo wysoki poziom obrażeń w porównaniu z obydwoma MAID wykazującymi średnie uszkodzenia. Co ciekawe, w fazie szczytu i odbudowy obserwuje się niejednorodny wzorzec gałęzi na podstawie szkód poniesionych na podstawie poziomu korupcji gałęzi.W przypadku wysokiego poziomu korupcji MAID mają tendencję do zaniżania rzeczywistych szkód, ponieważ opierają się tylko na obecności galasów. Kolejne dwa wykresy reprezentują DCI i MAID w etapach odzyskiwania i odzyskiwania po inwazji. Na etapie rekonwalescencji wykres pokazuje mniejsze, ale znaczące różnice między DCI a dwoma MAIDs.Nie ma jednak żadnej różnicy między indeksami w fazie odzyskania, przy czym DCI i dwa MAID wykazują nieco podobne wartości. Złożony indeks uszkodzeń pozwala ocenić rzeczywiste szkody wyrządzone przez Dryocosmus kuriphilus na architekturze gałęzi. Połączenie tej procedury z innymi metodami, takimi jak metoda przezroczystości korony Sanasilva i tradycyjna metoda oceny stopnia porażenia, zapewnia dokładną ocenę szkodników.W szczególności użyj tej procedury, aby ocenić uszkodzenie architektury gałęzi. Do oceny populacji szkodników należy zastosować tradycyjną metodę oceny stopnia porażenia, taką jak proporcja zaatakowanej kory, a do ogólnej oceny korony należy użyć wskaźnika przezroczystości korony Sanasilva. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak zastosować złożony wskaźnik uszkodzeń, aby prawidłowo ocenić wpływ Dryocosmus kuriphilus na architekturę gałęzi kasztanowca.

evaluating-dryocosmus-kuriphilus-induced-damage-on-castanea-sativa

Research

JoVE Journal

Environment

Środowisko

Niniejszy film wyjaśnia mechanizmy odporności rośliny żywicielskiej na roślinożerność oraz demonstruje test bez wyboru (no-choice test), który pozwala oszacować względny wkład antybiozy i tolerancji w odporność gatunków Brachiaria na spittlebugi.

Charakterystyka mechanizmów odporności na roślinożerców: przykład pluskwiaków piankowych na gatunkach Brachiaria

Przedstawiono metodę szybkiego przesiewania substancji lotnych roślin żywicielskich poprzez pomiar odpowiedzi elektrofizjologicznej czułków dorosłych osobników omacnicy brzoskwiniowej (Amyelois transitella) na pojedyncze składniki oraz mieszaniny za pomocą analizy elektroantenograficznej.

Bioassay elektroantenograficzny jako narzędzie przesiewowe dla lotnych substancji rośliny żywicielskiej

Choroba kory buka jest inicjowana przez działania żywieniowe owadów łuskowych, które tworzą punkty wejścia grzyba w korze. Drzewa, które są odporne na owada łuskowego, są również odporne na choroby. Tutaj prezentujemy opracowany przez nas protokół do badania poszczególnych drzew bukowych pod kątem odporności na łuski.

Technika przesiewania buka amerykańskiego pod kątem odporności na owada łuskowatego (Cryptococcus fagisuga Lind.)

Ten manuskrypt opisuje wielospektralny czujnik optyczny, który skutecznie wykrywał uszkodzenia bawełny na początku sezonu, sztucznie zainfekowanej różnymi gęstościami populacji przędziorków dwuplamistych.

Teledetekcyjna ocena uszkodzeń przędziorków dwuplamistych na bawełnie szklarniowej

Ten artykuł demonstruje nowe techniki opracowane do doustnego dostarczania dwuniciowego RNA (dsRNA) przez tkanki naczyniowe roślin w celu interferencji RNA (RNAi) u owadów żywiących się sokiem łyka.

Dwuniciowe metody doustnego dostarczania RNA w celu wywołania interferencji RNA u łyka i owadów hemipteran żywiących się sokiem roślinnym

Ten protokół przedstawia metodę oceny szybkości żerowania skorupiaka drążącego drewno, Limnoria, poprzez pomiar produkcji granulek kałowych. Metoda ta jest przeznaczona do stosowania w laboratoriach niespecjalistycznych i może zostać włączona do standardowych protokołów testowych w celu oceny zwiększonej trwałości drewna w warunkach morskich.

Szybkie badania odporności drewna na biodegradację przez skorupiaki morskie

Obecny protokół wyjaśnia metodę karmienia larwami samotnicy, pszczoły samotnicy, Osmia excavata, skażonymi pestycydami. W ramach procedury bada się ekotoksyczność pestycydu dla larw pszczół samotnic.

Ocena wpływu pestycydów na larwy pszczół samotnic

Metoda wykorzystująca zielone owoce kawy (GFs) została opracowana w celu zbadania toksyczności insektycydów przeciwko omacnicy kawowej (CBB). Insektycydy lub substancje toksyczne stosowano do zdezynfekowanych GF przed lub po inwazji CBB. Oceniano śmiertelność owadów, odstraszalność i zdolność reprodukcyjną, a także inne parametry.

Metodyka badania środków kontrolnych i insektycydów przeciwko omacnicy kawowej Hypothenemus hampei

W tym artykule przedstawiono znormalizowane metody ekotoksykologiczne do oceny biomarkerów u neotropikalnych gatunków bezogonowych. W szczególności w artykule tym szczegółowo opisano kilka metodologii w różnych skalach oceny ekotoksykologicznej, takich jak poziom genetyczny, komórkowo-histologiczny, biochemiczny, morfologiczny i indywidualny.

Metodologie ekotoksykologiczne do oceny biomarkerów w różnych skalach u anuranów neotropikalnych

Udostępniamy krok po kroku protokół oceny odporności topoli na patogeny raka łodygi za pomocą metody inokulacji in vivo liści. Metoda ta jest szczególnie przydatna do wielkoskalowej oceny odporności na raka Cytospora chrysosperma i Botryosphaeria dothidea u potomstwa hodowlanego topoli w Chinach.

Inokulacja liści in vivo: alternatywna metoda oceny odporności klonów hybrydowych na choroby zakaźne w hodowli topoli na raka łodygi

Poznaj metodę oceny uszkodzeń spowodowanych przez Dryocosmus kuriphilus na Castanea sativa. Złożony indeks uszkodzeń pozwala realistycznie ocenić stan drzewa podczas epidemii i fazy regeneracji.

Ocena uszkodzeń wywołanych przez Dryocosmus Kuriphilus na Castanea Sativa

Przeglądaj więcej filmów