RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/58087-v
Yi Lu1,2,3, Xin-Yuan Fu3, Yongliang Zhang1,2
1Department of Microbiology and Immunology, Yong Loo Lin School of Medicine,National University of Singapore, 2Immunology Programme, Life Sciences Institute,National University of Singapore, 3Cancer Science Institute of Singapore, Yong Loo Lin School of Medicine,National University of Singapore
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Tutaj prezentujemy protokół różnicowania mysich komórek T pomocniczych (THGM) granulocytów, makrofagów, czynników stymulujących tworzenie kolonii od naiwnych limfocytów T CD4+, w tym izolację naiwnych limfocytów T CD4+, różnicowanie THGM i analizę zróżnicowanych komórek THGM. Metoda ta może być stosowana do badań nad regulacją i funkcją komórek THGM.
Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie limfocytów T CD4, takie jak to, który podzbiór komórek pomocniczych T jest głównym źródłem GM-CSF w patogenezie chorób zapalnych, takich jak stwardnienie rozsiane. Główną zaletą tej techniki jest to, że generuje ona ponad 50% komórek T z ekspresją GM-CSF z naiwnych limfocytów T CD4 bez lub z kilkoma interferującymi komórkami ekspresyjnymi gamma OI17, które stanowią niezbędne źródło komórkowe do badania regresji i funkcji THGM, nowego podzbioru komórek pomocniczych T. Procedurę zademonstruje Yi Lu, doktorant z mojego laboratorium.
Zacznij od użycia kleszczy, aby unieść skórę nad brzuchem myszy w wieku od sześciu do ośmiu tygodni i wykonać około czterocentymetrowe nacięcie poniżej klatki piersiowej po lewej stronie zwierzęcia. Otwórz worek otrzewnowy, aby odsłonić śledzionę i użyj sterylnych kleszczy, aby przenieść śledzionę na sitko o średnicy 70 mikrometrów, wstępnie zwilżone dwoma mililitrami buforu do izolacji komórek. Po pobraniu dwóch do trzech śledzion, użyj końcówki pięciomililitrowej strzykawki do maceracji tkanki śledziony i przepłucz sitko kilka razy jednym do dwóch mililitrów buforu do izolacji komórek, aż wszystkie komórki zostaną przepłukane do probówki.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
03:05
Related Videos
241 Views
03:05
Related Videos
1.8K Views
07:01
Related Videos
588 Views
08:27
Related Videos
11.7K Views
07:12
Related Videos
54.5K Views
11:05
Related Videos
18.8K Views
10:21
Related Videos
10.5K Views
08:39
Related Videos
20.5K Views
12:02
Related Videos
4.6K Views
07:46
Related Videos
4.4K Views