Name: Nieinwazyjne zapisy EEG od swobodnie poruszających się prosiąt (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-07-13T15:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 5 s
Description: Poznaj nieinwazyjną metodę rejestracji EEG u swobodnie poruszających się prosiąt bez sedacji. Technika telemetrii pozwala obserwować wzorce snu non-REM i wspiera badania nad rozwojem kory mózgowej oraz dobrostanem zwierząt.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Chcielibyśmy podziękować Helmutowi Scheu za możliwość przeprowadzenia naszych badań w zagrodzie dla świń w Hofgut Neumühle.

Wszystkie procedury zostały zatwierdzone przez lokalną komisję etyki (#23177-07/G10-1-010/G 15-15-011) i były zgodne z europejskimi i niemieckimi przepisami krajowymi (Dyrektywa Rady Wspólnot Europejskich, 86/609/ECC; Tierschutzgesetz).
Wszystkie zabiegi na zwierzętach zostały przeprowadzone zgodnie z regulaminem Komitetu ds. Opieki nad Zwierzętami Centrum Medycznego Uniwersytetu Johannesa Gutenberga w Moguncji.
1. Konfiguracja
<ol>
	<li>Przed eksperymentem sprawdź, czy nie ma zakłóceń linii i znajdź odpowiednie miejsce dla konfiguracji i anteny. Szum linii jest widoczny jako fala sinusoidalna 60 lub 50 Hz. 
	UWAGA: Umiejscowienie anteny, a zwłaszcza odległość między nadajnikiem a odbiornikiem, zależy od siły transmisji systemu. Zastosowany tutaj system jest regulowany. Był on przystosowany do stosunkowo niskiej mocy, z zasięgiem transmisji około 3 m. Dodatkowo metalowe ogrodzenia w kojcu dla świń mogą tłumić sygnał i powodować zakłócenia. W takim przypadku konieczne jest umieszczenie anteny w metalowej klatce.</li>
	<li>Użyj bębna kablowego, aby zasilić zestaw energią sieciową. Podłącz laptopa, jednostkę odbiorczą i konwerter analogowo-cyfrowy (jeśli to konieczne) do określonego systemu telemetrycznego, który jest używany. 
	UWAGA: Zastosowany tutaj system telemetryczny przesyłał dane cyfrowe do odbiornika. Może to wyglądać inaczej w przypadku innych systemów.</li>
	<li>Umieść elektrody, kleje, patyczki higieniczne i chusteczki, a także bloki mieszające na osobnym stole.</li>
	<li>Przygotuj elektrody z krótkimi. Aby to zrobić, odetnij elektrody i je ponownie na jak najkrótszą długość, w zależności od wielkości zwierzęcia. muszą być na tyle długie, aby połączyć żądane pozycje zapisu na głowie z telemetrycznym aparatem EEG, przesyłającym dane. , które są zbyt długie, należy zwinąć i pokryć elastomerem silikonowym przylepnym do skóry. Dłuższe, które muszą być zwijane, sprawiają, że silikonowa łatka jest większa i cięższa.</li>
</ol>
2. Prosiaczek
<ol>
	<li>Złap prosię, chwytając je za nogę lub klatkę piersiową. Trzymaj go i uważaj na wszelkie defekacje lub oddawanie moczu.</li>
	<li>W razie potrzeby oznacz prosiaka numerem.</li>
	<li>Zawiń prosiaka w ręcznik. Prosiaczek się uspokoi. Należy pamiętać o przegrzaniu prosiaka.</li>
	<li>Trzymaj prosię jedną ręką przy tułowiu lub przedramieniu. Drugą ręką przytrzymaj pysk. Należy pamiętać o przegrzaniu prosiaka i upewnić się, że może swobodnie oddychać.</li>
</ol>
3. Elektrody
<ol>
	<li>Poproś drugą osobę o podłączenie elektrod.</li>
	<li>Oczyść skórę z brudu wodą lub etanolem. W razie potrzeby ogol głowę.</li>
	<li>Usuń martwe komórki naskórka za pomocą ściernego żelu EEG i patyczka higienicznego. Następnie usuń żel ścierny. Alternatywnie użyj papieru ściernego.</li>
	<li>Zamocuj elektrody samoprzylepne w żądanym miejscu. Umieść elektrodę masową nad móżdżkiem (między uszami), a elektrodę odniesienia na nosie. Umieść elektrodę rejestrującą w żądanym miejscu. 
	UWAGA: W tym przypadku wykonano zapis jednobiegunowy, ponieważ odniesienie zostało umieszczone w pozycji neutralnej (nos). Do tej pory nie ma ustandaryzowanego systemu dla prosiąt. W tym przypadku zastosowano pozycję zapisu ciemieniowego (między okiem a uchem) na prawej półkuli mózgu.</li>
	<li>Podłącz do jednostki telemetrycznej. Włącz urządzenie. W zależności od używanego systemu telemetrycznego może to być przełącznik magnetyczny lub sygnał budzenia o częstotliwości radiowej.</li>
	<li>Przykryj jednostkę telemetryczną i wszystkie, a także wszystkie elektrody dwuskładnikową gumą silikonową przylepną do skóry (patrz Tabela materiałów). Po zmieszaniu równych ilości obu składników czas utwardzania będzie mieścił się w zakresie 1 minuty. Oczy i rzęsy nie powinny być zakrywane gumą.</li>
	<li>Poczekaj, aż guma silikonowa całkowicie się utwardzi.</li>
	<li>Umieść prosię z powrotem w kojcu dla świń.</li>
	<li>Obserwuj prosię, aby zobaczyć, czy wykazuje oznaki dyskomfortu przez dłuższy czas (kilka minut).</li>
</ol>
4. Pomiar
<ol>
	<li>Poczekaj, aż prosię wyzdrowieje i zacznie synchronizować swoje zachowanie z zachowaniem rodzeństwa (karmienie, zabawa, spanie), zwykle po 30 sekundach (<silna klasa="xfig">Rysunek 1).</li>
	<li>W razie potrzeby poczekaj na fazy snu. Czas nagrywania zależy od konkretnego zagadnienia naukowego. Tutaj wykorzystano 10-minutowe sesje nagraniowe.</li>
	<li>Jeśli jednostka telemetryczna jest objęta zasięgiem więcej niż 2 innych prosiąt, sygnał może być zbyt niski dla odbiornika. Delikatnie odepchnij prosięta, jeśli śpią na górze. Uważaj na lochę; Może reagować agresywnie.</li>
	<li>Rozpocznij nagrywanie za pomocą oprogramowania do akwizycji danych (patrz tabela materiałów).</li>
</ol>
5. Zakończenie
<ol>
	<li>Po nagraniu (zwykle kilka godzin) ponownie złap prosię, jak opisano w kroku 2. Uważaj na lochę; Może reagować agresywnie.</li>
	<li>Delikatnie unieś gumę silikonową na jednej krawędzi. Następnie usuń cały plaster gumy silikonowej zawierający elektrody i jednostkę telemetryczną. Uważaj na oczy prosiaka.</li>
	<li>Umieść prosię z powrotem w kojcu dla świń.</li>
</ol>

<ol><li>Conrad, M. S., Sutton, B. P., Dilger, R. N., Johnson, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vivo+three-dimensional+magnetic+resonance+imaging-based+averaged+brain+collection+of+the+neonatal+piglet+%28Sus+scrofa%29%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">An in vivo three-dimensional magnetic resonance imaging-based averaged brain collection of the neonatal piglet (Sus scrofa).</a> PLoS ONE. 9 (9), e107650(2014).</li>
<li>de Camp, N. V., Hense, F., Lecher, B., Scheu, H., Bergeler, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Models+for+preterm+cortical+development+using+non+invasive+clinical+EEG%5BTitle%5D)+AND+%22Translational+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Models for preterm cortical development using non invasive clinical EEG.</a> Translational Neuroscience. 8, 211-224 (2017).</li>
<li>Lapray, D., Bergeler, J., Dupont, E., Thews, O., Luhmann, H. J. A novel telemetric system for recording brain activity in small animals. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/profile/Oliver_Thews/publication/229035898_A_novel_telemetric_system_for_recording_brain_activity_in_small_animals/links/02e7e516666923d52e000000/A-novel-telemetric-system-for-recording-brain-activity-in-small-animals.pdf">Telemetry: Research, Technology and Applications</a>. Barculo, D., Daniels, J. , Nova Science Publishers. 195-203 (2009).</li>
<li>Kim, D., Yeon, C., Kim, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+experimental+validation+of+a+dry+non-+invasive+multi-channel+mouse+scalp+EEG+sensor+through+visual+evoked+potential+recordings%5BTitle%5D)+AND+%22Sensors%22%5BJournal%5D)">Development and experimental validation of a dry non- invasive multi-channel mouse scalp EEG sensor through visual evoked potential recordings.</a> Sensors. 17, 326(2017).</li>
<li>Moshayedi, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+relationship+between+glial+cell+mechanosensitivity+and+foreign+body+reactions+in+the+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The relationship between glial cell mechanosensitivity and foreign body reactions in the central nervous system.</a> Biomaterials. 35, 3919-3925 (2014).</li>
<li>Barrese, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Failure+mode+analysis+of+silicon-based+intracortical+microelectrode+arrays+in+non-human+primates%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neural+Engineering%22%5BJournal%5D)">Failure mode analysis of silicon-based intracortical microelectrode arrays in non-human primates.</a> Journal of Neural Engineering. 10, 066014(2013).</li>
<li>Hellström-Westas, L., Rosén, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electroencephalography+and+brain+damage+in+preterm+infants%5BTitle%5D)+AND+%22Early+Human+Development%22%5BJournal%5D)">Electroencephalography and brain damage in preterm infants.</a> Early Human Development. 81, 255-261 (2005).</li>
<li>Lloyd, R. O., Goulding, R. M., Filan, P. M., Boylan, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Overcoming+the+practical+challenges+of+electroencephalography+for+very+preterm+infants+in+the+neonatal+intensive+care+unit%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Paediatrica%22%5BJournal%5D)">Overcoming the practical challenges of electroencephalography for very preterm infants in the neonatal intensive care unit.</a> Acta Paediatrica. , 152-157 (2015).</li>
<li>Clancy, B., Finlay, B. L., Darlington, R. B., Anand, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extrapolating+brain+development+from+experimental+species+to+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Neurotoxicology%22%5BJournal%5D)">Extrapolating brain development from experimental species to humans.</a> Neurotoxicology. 28, 931-937 (2007).</li>
<li>Iyer, K. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cortical+burst+dynamics+predict+clinical+outcome+early+in+extremely+preterm+infants%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%22%5BJournal%5D)">Cortical burst dynamics predict clinical outcome early in extremely preterm infants.</a> Brain. 138, 2206-2218 (2015).</li>
<li>Luhmann, H., de Camp, N., Bergeler, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+brain+activity+in+preterms%3A+mathematics+helps+to+predict+clinical+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%22%5BJournal%5D)">Monitoring brain activity in preterms: mathematics helps to predict clinical outcome.</a> Brain. 138, 2114-2125 (2015).</li>
<li>Dragomir, A., Akay, Y., Curran, A. K., Akay, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complexity+measures+of+the+central+respiratory+networks+during+wakefulness+and+sleep%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neural+Engineering%22%5BJournal%5D)">Complexity measures of the central respiratory networks during wakefulness and sleep.</a> Journal of Neural Engineering. 5, 254-261 (2008).</li>
<li>Peever, J., Fuller, P. M. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/29161567">The biology of REM sleep.</a> Current Biology. 27, R1237-R1248 (2017).</li>
<li>Robert, S., Dallaire, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polygraphic+Analysis+of+the+sleep-wake+states+and+the+REM+Sleep+periodicity+in+domesticated+pigs+%28Sus+scrofa%29%5BTitle%5D)+AND+%22Physiology+%26+Behavior%22%5BJournal%5D)">Polygraphic Analysis of the sleep-wake states and the REM Sleep periodicity in domesticated pigs (Sus scrofa).</a> Physiology & Behavior. 37 (2), 289-293 (1986).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Krytycznym krokiem w protokole jest odpowiedni kontakt skóry z elektrodami, zwłaszcza elektrodą masową, w celu uzyskania stabilnych nagrań o niskim poziomie szumów. Ponadto, ponieważ prosięta są bardzo zwinne, ważne jest, aby pokryć cały system gumą silikonową, aby chronić elektrody i jednostkę telemetryczną. Ponadto, jeśli eksperymenty są przeprowadzane w stajni z podłogą rusztową, należy zachować ostrożność w przypadku małych urządzeń lub łączników.
W przypadku nieodpowiedniego uchwycenia sa...

Prosięta to nowy model systemu dla neuronauki1. Aby wzmocnić badania translacyjne, wynaleźliśmy metodę rejestrowania nieinwazyjnych, klinicznych EEG od nieograniczonych prosiąt2 (Rysunek 1 i <silna klasa="xfig">Rysunek 2). Dwa warunki wstępne translacyjnego wykorzystania zapisów EEG, dotyczące wzorców EEG związanych z dojrzewaniem kory mózgowej, to nieinwazyjna metodologia, porównywalna z warunkami klinicznymi, oraz abstynencja od środków uspokajających lub znieczulających. Jednokanałowy system telemetryczny3 w połączeniu z elektrodami samoprzylepnymi można zamocować w około 5 minut. Następnie prosięta szybko wracają do zdrowia po procedurze obchodzenia się i synchronizują swoje zachowanie podczas karmienia i spania z zachowaniem innych prosiąt i lochy.
Mimo że już podjęto próby wykorzystania nieinwazyjnych zapisów EEG od zwierząt poddanych sedacji4, większość badań elektroencefalograficznych na zwierzętach jest przeprowadzana za pomocą metod inwazyjnych. Metody te mają skutki uboczne dotyczące procesów zapalnych wokół wszczepionych elektrod5,6 i w większości przypadków wymagają społecznej separacji zwierząt ze względu na zewnętrzne elementy wszczepionego systemu EEG. W związku z tym przełożenie tych danych na kontekst kliniczny jest trudne. Potrzeba podejścia translacyjnego staje się jasna przez fakt, że nadal nie wiadomo, w jaki sposób "normalne" dojrzewanie mózgu podczas wczesnego rozwoju kory mózgowej jest reprezentowane przez kliniczną, nieinwazyjną elektroencefalografię7. Ta luka w wiedzy jest spowodowana wyzwaniami technicznymi związanymi z zapisami EEG od wcześniaków8. W systemach modeli zwierzęcych wzorce wczesnego rozwoju kory mózgowej są lepiej dostępne, ponieważ większość zwierząt rodzi się z "przedwczesnym mózgiem" w porównaniu do rozwoju kory mózgowej człowieka9. Oprócz zachowanych wzorców rozwoju kory mózgowej u różnych gatunków2, ostatnio wykazano, że zapisy EEG od wcześniaków mogą również przewidywać indywidualne wyniki kliniczne w późniejszym życiu10,11. Opisana tutaj metoda jest szczególnie przydatna w translacyjnych aspektach neuronauki rozwojowej.

<table><tbody><tr><td>Jednorazowe elektrody samoprzylepne powierzchniowe srebro/chlorek srebra</td><td>Spes Medica S.r.l., Genua, Włochy</td><td></td><td>Samoprzylepna elektroda hydrożelowa</td></tr><tr><td>Abralyt HiCl</td><td>Easycap GmbH</td><td></td><td>Krem ścierny</td></tr><tr><td>Body Double fast</td><td>Smooth On Inc.</td><td></td><td>Klej do skóry silikon</td></tr><tr>System <td></td><td></td><td>telemetryczny</td><td>Rozwój wewnętrzny</td></tr><tr><td>Picolog 1216</td><td>Pico Technology</td><td></td><td>AD konwerter</td></tr><tr><td>Laptop</td><td>Panasonic</td><td></td><td>Rugged</td></tr><tr><td>laptop Odbiornik</td><td></td><td></td><td>Rozwój wewnętrzny</td></tr></tbody></table>

nieinwazyjne zapisy eeg od swobodnie poruszających się prosiąt

Noninvasive EEG Recordings from Freely Moving Piglets

Metoda pozwala na rejestrację wysokiej jakości elektroencefalogramów (EEG) od swobodnie poruszających się prosiąt bezpośrednio w kojcu. Stosujemy jednokanałowy system elektroencefalografii telemetrycznej w połączeniu ze standardowymi samoprzylepnymi elektrodami hydrożelowymi. Prosięta są uspokajane bez użycia środków uspokajających. Po wypuszczeniu do kojca dla świń prosięta zachowują się normalnie – piją i śpią w tym samym cyklu co ich rodzeństwo. Ich fazy snu są wykorzystywane do zapisów EEG.

Udało nam się zarejestrować typowe wzorce EEG związane ze snem non-REM, takie jak wrzeciona snu lub pędzle delta (delta brushes), u swobodnie poruszających się prosiąt (Rycina 1 oraz Rycina 2). Byliśmy głównie zainteresowani reprezentatywnymi wzorcami podczas snu non-REM, ale zarejestrowano również fazy snu przypominającego REM12 o bardzo niskiej amplitudzie (Rycina 3). Fizjol...

Tutaj prezentujemy protokół do rejestrowania telemetrycznych elektroencefalogramów (EEG) od swobodnie poruszających się prosiąt bezpośrednio w kojcu bez użycia środka uspokajającego, umożliwiając rejestrowanie typowych wzorców EEG podczas snu non-REM, takich jak pęknięcia wrzeciona.

Nieinwazyjne zapisy EEG od swobodnie poruszających się prosiąt

The method allows the recording of high-quality electroencephalograms (EEGs) from freely moving piglets directly in the pigpen. We use a one-channel ...

Ta metoda może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie neuronauki dotyczące rozwoju kory mózgowej. Główną zaletą tej techniki jest to, że zwierzęta nie muszą być uspokojone. Ogólnie rzecz biorąc, osoby, które nie znają tej metody, będą miały trudności, ponieważ zwierzęta są obsługiwane, gdy nie śpią, a eksperymentator musi pracować szybko.Przed rozpoczęciem eksperymentu znajdź odpowiednie miejsce do konfiguracji. Użyj bębna kablowego, aby zasilić konfigurację zasilaniem liniowym i podłącz laptopa, jednostkę odbiorczą i konwerter analogowo-cyfrowy zgodnie z potrzebami dla konkretnego używanego systemu telemetrycznego. Umieść elektrody, kleje, waciki, chusteczki, bloki do mieszania, papier ścierny i abierz w oddzielnej przestrzeni, a następnie przytnij i elektrody na jak najkrótszą długość, w zależności od wielkości zwierzęcia.muszą być wystarczająco długie, aby łączyły się z elektrodą rejestrującą na głowie zwierzęcia z telemetrycznym urządzeniem EEG do transmisji danych. Kiedy wszystkie materiały są gotowe, złap prosię za nogę lub klatkę piersiową, uważając, aby być świadomym potencjalnego wypróżnienia lub oddawania moczu. W razie potrzeby oznacz prosiaka numerem i zawiń zwierzę w ręcznik, aby je uspokoić.Trzymając prosię jedną ręką przy tułowiu lub przedramieniu, a drugą ręką kontrolując pysk, poproś asystenta, aby oczyścił skórę zwierzęcia, używając odpowiedniego narzędzia, aby w razie potrzeby usunąć martwy naskórek. Umieść elektrody rejestrujące w odpowiednich miejscach doświadczalnych. Elektroda masowa nad móżdżkiem i elektroda odniesienia na pysku.Po umieszczeniu wszystkich elektrod podłącz do jednostki telemetrycznej i włącz ją. Przykryj jednostkę telemetryczną, i elektrody dwuskładnikową gumą silikonową przylepną do skóry, gdy guma silikonowa zostanie całkowicie utwardzona, umieść prosię z powrotem w kojcu i monitoruj zwierzę jeszcze przez kilka minut pod kątem jakichkolwiek oznak dyskomfortu. Przed rozpoczęciem eksperymentu sprawdź, czy nie ma szumu linii, prosię powinno dojść do siebie i zacząć synchronizować swoje zachowanie z rodzeństwem po około 30 sekundach.Poczekaj na fazę uśpienia i rozpocznij nagrywanie, delikatnie przesuwając śpiące rodzeństwo z jednostki telemetrycznej, jeśli to konieczne. Pod koniec okresu rejestracji ponownie złap prosię, nie drażniąc lochy, i delikatnie podnieś gumę silikonową na jednej krawędzi, a następnie usuń cały plaster gumy silikonowej zawierający elektrody i jednostkę telemetryczną, uważając na oczy prosiąt i zawróć prosię do kojca. Korzystając z jednostki telemetrycznej, jak pokazano, wzorce EEG związane ze snem innym niż REM, takie jak pęknięcia wrzeciona lub szczotki delta, mogą być uchwycone od swobodnie poruszających się prosiąt, a także faz snu podobnego do REM o bardzo niskiej amplitudzie.Dobrą jakość nagrania można uzyskać również w okresie laktacji. Przekaz ten może być również potencjalnie przydatny do oceny dobrostanu zwierząt. Po jej opracowaniu technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się neuronauką rozwojową do badania wzorców EEG u obudzonych zwierząt.

noninvasive-eeg-recordings-from-freely-moving-piglets

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neuronauka

Ten film demonstruje wszczepienie miękkiego zestawu elektrokortykograficznego i długoterminowe zapisy korowe u miniświnki. Przedstawiono w nim etapy związane z chirurgicznym wszczepieniem macierzy w korze słuchowej świnki miniaturowej i rejestrowaniem potencjałów czynnościowych neuronów wywołanych zarówno bodźcem podstawowym, jak i dźwiękowym.

Implantacja podtwardówkowa miękkiej matrycy elektrokortykograficznej do rejestracji elektrofizjologii kory mózgowej u świnek miniaturowych

Film demonstruje długoterminowe, ciągłe monitorowanie elektroencefalografii (EEG) u młodych gryzoni za pomocą bezprzewodowego systemu nadajników. Nadajnik zawiera dwie elektrody rejestrujące i jedną elektrodę odniesienia sięgającą do powierzchni mózgu. Po umieszczeniu szczeniaka w komorze rejestracyjnej, EEG może być stale monitorowane przez cały okres rozwoju szczeniaka do dorosłości.

Długotrwały ciągły monitoring elektroencefalograficzny u młodego gryzonia

Film demonstruje rejestrację sygnałów elektroencefalogramu (EEG) od szczurzych szczeniąt wywołanych napadami. Weźmy na przykład swobodnie poruszającego się szczeniaka, któremu wszczepiono elektrody podłączone do systemu akwizycji danych. W celu wywołania napadów padaczkowych podaje się neurotoksynę, a wynikająca z niej aktywność pękania elektrycznego jest monitorowana za pomocą sygnału EEG.

Rejestracja indukowanych napadów za pomocą elektroencefalografii u swobodnie poruszających się szczeniąt szczurów

Ten film demonstruje zapis sygnałów mózgowych od swobodnie poruszającego się prosiaka. Głowa prosiąt jest czyszczona, a elektrody są mocowane. Elektrody te są następnie podłączane do jednostki telemetrycznej. Zestaw jest zabezpieczony gumą silikonową. Prosięt może się zaaklimatyzować przed zapisaniem danych.

Rejestrowanie sygnałów mózgowych od swobodnie poruszających się prosiąt

encefalopatia niedotlenieniowo-niedokrwienna po uduszeniu okołoporodowym może być badana na modelach zwierzęcych. Przedstawiono procedury niezbędne do ustalenia modelu encefalopatii niedotlenieniowo-niedokrwiennej noworodków u prosiąt.

Model prosięcia encefalopatii niedotlenieniowo-niedokrwiennej noworodków

Tutaj wprowadzamy nowatorską technikę przeznaczoną do rejestrowania elektroencefalografii (EEG) u swobodnie poruszających się noworodków z padaczką i opisujemy jej procedury, cechy i zastosowania. Ta metoda pozwala na rejestrację EEG przez więcej niż 1 tydzień.

Rejestracja EEG u noworodków szczurów poruszających się w swobodnym ruchu przy użyciu nowej metody

To badanie bada nowatorskie zastosowanie technologii matryc mikroelektrod opartych na enzymach (MEA) do monitorowania in vivo aktywności neuroprzekaźników  u prosiąt.Postawiono hipotezę, że rozregulowanie glutaminianu przyczynia się do mechanizmu neurotoksyczności znieczulającej. W tym miejscu przedstawiamy protokół adaptacji technologii MEA do badania mechanizmu neurotoksyczności wywołanej znieczuleniem.

Adaptacja technologii matryc mikroelektrod do badania neurotoksyczności wywołanej znieczuleniem w nienaruszonym mózgu prosiąt

Tutaj prezentujemy protokół nieinwazyjnej elektrokardiografii (EKG), zoptymalizowany dla myszy po urodzeniu, który nie wymaga stosowania środków znieczulających.

Nieinwazyjna elektrokardiografia u myszy okołoporodowej

Opisana jest prosta konstrukcja wózka, zbudowana do wykonywania badań echokardiograficznych u stojących w stanie czuwania miniświnek, wraz z rozważaniami dotyczącymi budowania, technikami treningowymi i reprezentatywnymi obrazami ultrasonograficznymi.

Zapis echokardiograficzny u obudzonych miniaturowych świń

Tutaj prezentujemy metodę długoterminowej oceny wydajności i bezpieczeństwa miękkich matryc elektrod podtwardówkowych w modelu minipig, opisując metodę i narzędzia chirurgiczne, pooperacyjny rezonans magnetyczny, elektrofizjologię kory słuchowej, właściwości elektrochemiczne implantu oraz immunochemię pośmiertną.

Implantacja matrycy podtwardówkowej miękkiej elektrokortykografii (ECoG) i długotrwała rejestracja kory mózgowej u świnek miniaturowych

W badaniu przedstawiono skalowalną, wiarygodną i odtwarzalną metodę powtarzających się przewlekłych zapisów korowych w modelu świni. Metoda ma zastosowanie w różnych dziedzinach neuronauki, w tym w badaniach nad bólem i diagnostyce chorób neurologicznych.

Technika przewlekłego okna czaszkowego do powtarzających się zapisów korowych podczas znieczulenia u świń

Poznaj nieinwazyjną metodę rejestracji EEG u swobodnie poruszających się prosiąt bez sedacji. Technika telemetrii pozwala obserwować wzorce snu non-REM i wspiera badania nad rozwojem kory mózgowej oraz dobrostanem zwierząt.

Nieinwazyjne zapisy EEG od swobodnie poruszających się prosiąt

Przeglądaj więcej filmów