Name: Nakłucie żyły podobojczykowej jako alternatywna metoda pobierania próbki krwi u szczurów (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-11-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 42 s
Description: Poznaj alternatywną metodę nakłucia żyły podobojczykowej u szczurów do pobierania krwi. Technika ta jest bezpieczna, skuteczna i pozwala uzyskać wymaganą objętość próbki przy minimalnym stresie dla zwierząt.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Brak zadeklarowany.

To badanie zostało zatwierdzone przez Komitet Etyki Uniwersytetu Centralnego Południowego ds. Badań nad Zwierzętami z Drugiego Szpitala Xiangya (Changsha, Chiny). Manuskrypt został przygotowany zgodnie z wytycznymi ARRIVE (Animal Research: Reporting of In Vivo Experiments)9.
1. Przygotowanie materiałów i zwierząt
<ol>
	<li>Przygotuj wymagane materiały: taśmę klejącą, środek do depilacji, 75% etanol, probówkę do pobierania krwi, strzykawkę 2,5 ml połączoną z igłą (24 G, 0,6 mm x 25 mm), maszynkę do golenia włosów, wagę elektroniczną i miernik (patrz tabela materiałów).</li>
	<li>Należy użyć 20 szczurów Sprague-Dawley (SD) w wieku 8-10 tygodni i o wadze 153-200 g (patrz tabela materiałów). Utrzymuj szczury zgodnie z Przewodnikiem opieki i użytkowania zwierząt laboratoryjnych10.</li>
	<li>Szczury domowe w standardowych warunkach ze swobodnym dostępem do pożywienia i wody pitnej. Trzymaj je w530 cm 2 klatkach z ściółką do golenia drewna (2 szczury w klatce). Zwierzęta należy utrzymywać w temperaturze pokojowej o kontrolowanej temperaturze około 25 °C.</li>
	<li>Wywołać znieczulenie ogólne (pentobarbital sodu 40 mg/kg) u wszystkich zwierząt poprzez wstrzyknięcie dootrzewnowe przed nakłuciem żyły podobojczykowej.</li>
	<li>Ułóż szczura w pozycji leżącej. Ustaw tylne kończyny w wygodnej pozycji i zamocuj kończynę górną równolegle do osi ciała tuż obok tułowia. 
	UWAGA: Do tej procedury nie jest potrzebna wentylacja mechaniczna (<silna klasa="xfig">Rysunek 1).</li>
	<li>Oczyść obie strony przestrzeni podobojczykowej, aby usunąć sierść (za pomocą golarki do włosów i środka do depilacji, patrz Tabela materiałów) i wszelkie widoczne zabrudzenia. Przetrzyj skórę szyi i klatki piersiowej 75% etanolem. Utrzymuj miejsce nakłucia czyste i suche gazą.</li>
</ol>
2. Procedura pobierania krwi
UWAGA: Obie strony żyły podobojczykowej nadają się do nakłucia, a tutaj wybieramy prawą stronę do nakłucia. Położenie i kierunek prawego obojczyka są identyfikowane przez lewy kciuk operatora (Rysunek 2). Doły nadmostkowe są delikatnie dotykane palcem wskazującym, ponieważ doły nadmostkowe znajdują się w kierunku igły (<silna klasa = "xfig">Rysunek 2).
<ol>
	<li>Przepłukać sterylną strzykawkę o pojemności 2,5 ml roztworem heparyny (10 j.m./ml).</li>
	<li>Zlokalizuj miejsce nakłucia 0,5 mm ogonowo do zewnętrznej 1/3 obszaru prawego obojczyka (<silna klasa = "xfig">Rysunek 3). Delikatnie wsunąć strzykawkę w skórę w miejscu wkłucia. Gdy igła wejdzie w skórę podobojczykową, zastosuj podciśnienie prawą ręką operatora (<silna klasa="xfig">Rysunek 4). 
	UWAGA: Średnia i maksymalna objętość krwi wynosi odpowiednio 1,0 ml i 1,4 ml. Kierunek igły jest skierowany w stronę dołu nadmostkowego i powinien być prawie równoległy do obojczyka tuż za nim. Zwykle do żyły podobojczykowej można dotrzeć, wbijając igłę około 2 mm w tym kierunku. Gdy igła dostanie się do żyły, krew dostanie się do strzykawki pod podciśnieniem.
	<ol>
		<li>Utrzymuj podciśnienie, aż zostanie pobrana wystarczająca ilość krwi (<silna klasa="xfig">Rysunek 5).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Jeśli pobranie krwi z żyły podobojczykowej nie powiedzie się, wycofaj igłę do obszaru podskórnego i dostosuj kierunek igły lekko do środka do mostka.
	<ol>
		<li>Jeśli trzy próby się nie powiodą, omijaj żyłę podobojczykową z tej samej strony i użyj strony przeciwległej do pobierania krwi.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Po pobraniu krwi wyjmij igłę do nakłucia i uciskaj miejsce nakłucia przez 1-2 minuty, aby zatrzymać krwawienie. 
	UWAGA: Nacisk musi być bardzo delikatny, aby zapobiec zadławieniu.</li>
</ol>
3. Przetwarzanie próbek krwi
<ol>
	<li>Przenieść próbkę krwi do probówki próżniowej pokrytej antykoagulantem (z EDTA) i odwirować przez 10 minut przy 1600 x g w celu zebrania osocza.</li>
	<li>Odessać supernatant do czystej probówki i przechowywać w temperaturze -80 °C (<klasa silna = "xfig">Rysunek 6).</li>
</ol>

<ol><li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacology%2C+Pharmacotherapeutics%22%5BJournal%5D)">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> Journal of Pharmacology, Pharmacotherapeutics. 1 (2), 87-93 (2010).</li>
<li>Korfmacher, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Utility+of+capillary+microsampling+for+rat+pharmacokinetic+studies%3A+Comparison+of+tail-vein+bleed+to+jugular+vein+cannula+sampling%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacological+and+Toxicological+Methods%22%5BJournal%5D)">Utility of capillary microsampling for rat pharmacokinetic studies: Comparison of tail-vein bleed to jugular vein cannula sampling.</a> Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 76, 7-14 (2015).</li>
<li>Feng, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheterization+of+the+carotid+artery+and+jugular+vein+to+perform+hemodynamic+measures%2C+infusions+and+blood+sampling+in+a+conscious+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Catheterization of the carotid artery and jugular vein to perform hemodynamic measures, infusions and blood sampling in a conscious rat model.</a> Journal of Visualized Experiments. (95), (2015).</li>
<li>Wickremsinhe, E. R., Renninger, M., Paulman, A., Pritt, M., Schultze, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+Repeated+Tail+Clip+and+Saphenous+Vein+Phlebotomy+on+Rats+Used+in+Toxicology+Studies%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicologic+Pathology%22%5BJournal%5D)">Impact of Repeated Tail Clip and Saphenous Vein Phlebotomy on Rats Used in Toxicology Studies.</a> Toxicologic Pathology. 44 (7), 1013-1020 (2016).</li>
<li>Takahashi, M., Makino, S., Kikkawa, T., Osumi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+rat+serum+suitable+for+mammalian+whole+embryo+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Preparation of rat serum suitable for mammalian whole embryo culture.</a> Journal of Visualized Experiments. (90), e51969(2014).</li>
<li>Cochran, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determining+Glucose+Metabolism+Kinetics+Using+18F-FDG+Micro-PET%2FCT%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Determining Glucose Metabolism Kinetics Using 18F-FDG Micro-PET/CT.</a> Journal of Visualized Experiments. (123), (2017).</li>
<li>Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drawing+blood+from+rats+through+the+saphenous+vein+and+by+cardiac+puncture%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Drawing blood from rats through the saphenous vein and by cardiac puncture.</a> Journal of Visualized Experiments. (7), 266(2007).</li>
<li>Zou, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeated+Blood+Collection+from+Tail+Vein+of+Non-Anesthetized+Rats+with+a+Vacuum+Blood+Collection+System%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System.</a> Journal of Visualized Experiments. (130), (2017).</li>
<li>Kilkenny, C., Altman, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+bioscience+research+reporting%3A+ARRIVE-ing+at+a+solution%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Animal%22%5BJournal%5D)">Improving bioscience research reporting: ARRIVE-ing at a solution.</a> Lab Animal. 44 (4), 377-378 (2010).</li>
<li>National Institute of Health. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals%22">Guide for the Care and Use of Laboratory Animals</a>. , 8th, National Academies Press (US). US (Washington DC). (2011).</li>
<li>Antonelli, D., Feldman, A., Freedberg, N. A., Turgeman, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axillary+vein+puncture+without+contrast+venography+for+pacemaker+and+defibrillator+leads+implantation%5BTitle%5D)+AND+%22Pacing+and+Clinical+Electrophysiology%22%5BJournal%5D)">Axillary vein puncture without contrast venography for pacemaker and defibrillator leads implantation.</a> Pacing and Clinical Electrophysiology. 36 (9), 1107-1110 (2013).</li>
<li>Luis, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscopic+magnetic+resonance+imaging+of+the+thoracic+venous+system+in+rats+with+congenital+diaphragmatic+hernia%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Surgery+International%22%5BJournal%5D)">Microscopic magnetic resonance imaging of the thoracic venous system in rats with congenital diaphragmatic hernia.</a> Pediatric Surgery International. 27 (2), 175-180 (2011).</li>
<li>Tsukamoto, A., Serizawa, K., Sato, R., Yamazaki, J., Inomata, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vital+signs+monitoring+during+injectable+and+inhalant+anesthesia+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Animals%22%5BJournal%5D)">Vital signs monitoring during injectable and inhalant anesthesia in mice.</a> Experimental Animals. 64 (1), 57-64 (2015).</li>
</ol>

Praca ta została wsparta grantem z Narodowej Fundacji Nauk Przyrodniczych Chin nr 81670269, nr 81500355 i nr 81500226.

Tutaj przedstawiamy alternatywną metodę ekstrakcji krwi z żyły podobojczykowej i pokazujemy, że ta metoda jest wykonalna, bezpieczna i ma zastosowanie do pobierania próbek krwi u szczurów. Metoda ta polega na nakłuciu żyły podobojczykowej w implantacji elektrody rozrusznika serca u pacjentów11. Żyła podobojczykowa znajduje się tuż za i ogonowo w stosunku do obojczyka i jest kontynuacją żyły pachowej. Biegnie od zewnętrznej granicy pierwszego żebra do przyśrodkowej granicy mięśnia pochyłego przedni...

Pobieranie krwi jest niezbędne w badaniach na zwierzętach. Żyły docelowe do pobierania krwi obejmują splot zaoczodołowy, żyłę szyjną, żyłę odpiszczelową, naczynia krwionośne ogona i tętnicę szyjną1,2,3,4. Czasami można było pobrać krew z aorty brzusznej, żyły głównej, a nawet serca5,6,7. W takich przypadkach zwierzęta muszą zostać uśmiercone i nie mogą być wykorzystane do późniejszej obserwacji; W związku z tym metody te są rzadziej stosowane w codziennych pracach eksperymentalnych. Pobieranie krwi z żyły ogonowej szczurów jest popularne i mniej stresujące w porównaniu z wyżej wymienionymi metodami8.
Jednak pobieranie krwi z żyły ogonowej jest czasami ograniczane przez niezadowalający wskaźnik sukcesu. Czasami trudno jest również uzyskać wystarczającą objętość krwi tą metodą. Ponieważ żyła podobojczykowa jest wystarczająco duża i znajduje się tuż pod kością obojczyka, nakłucie żyły podobojczykowej może być alternatywną metodą pobierania krwi, jeśli rutynowe metody pobierania krwi nie są skuteczne. Tutaj wprowadzamy metodę pobierania krwi za pomocą nakłucia żyły podobojczykowej u szczurów.

<table><tbody><tr><td>szczury</td><td>Hunan SJA Laboratory Animal Co., Ltd (Changsha, prowincja Hunan, Chiny)&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>oprogramowanie statyczne</td><td>SPSS Statistics 17</td><td></td><td></td></tr><tr><td>środek do depilacji</td><td>France Yi Sha Cosmetics Co., Ltd (Guangzhou, prowincja Guangdong, Chiny)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Strzykawka 2,5 ml</td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd (Weihai, prowincja Shandong, Chiny)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>golarka do włosów</td><td>Shanghai FLYCO Electric Co., Ltd (Szanghaj, Chiny)</td><td></td><td></td></tr>taśma <tr><td>klejąca</td><td>3M Deutschland GmbH(EdisonstraBe 6,59157 Kamen, Niemcy)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital sodu</td><td>Merck</td><td></td><td></td></tr><tr><td>75% etanolu</td><td>Dział Farmacji, Drugi Szpital Xiangya Rurka</td> do pobierania krwi na Uniwersytecie <td></td><td></td>Środkowo-Południowym</tr><tr><td></td><td>Hubei Jinxing Technology& Development Co., Ltd (prowincja Wuhan Hubei, Chiny) (2 ml)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>waga elektroniczna</td><td>Dongguan Shengheng Electronics Co., Ltd (Dongguan, prowincja Guangdng, Chiny)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>płócienne rękawice</td><td>do znieczulenia</td><td></td><td></td></tr><tr><td>hepain</td><td>Nanjing Xinbai Pharmaceutical&nbsp; Co., Limited (Nanjing, prowincja Jiangsu, Chiny) (2 mL, 12500 IU)</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>sól</td> <td>fizjologicznaHunan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd (Yueyang, prowincja Hunan, Chiny) (100ml)</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

nakłucie żyły podobojczykowej jako alternatywna metoda pobierania próbki krwi u szczurów

Subclavian Vein Puncture As an Alternative Method of Blood Sample Collection in Rats

Pobieranie krwi o wystarczającej objętości krwi jest niezbędne w eksperymentach na zwierzętach. Pobieranie krwi z żyły ogonowej szczurów jest popularne i mniej stresujące w porównaniu z innymi, bardziej agresywnymi metodami, takimi jak pobieranie próbek ze splotu zaoczodołowego. Jednak ta metoda pobierania krwi jest czasami ograniczona przez niezadowalający wskaźnik sukcesu. W tym miejscu przedstawiamy metodę pobierania krwi przez nakłucie żyły podobojczykowej. Żyła podobojczykowa znajduje się tuż pod obojczykiem i jest wystarczająco duża, aby spełnić wymagania dotyczące objętości pobierania krwi. Nasze wyniki pokazują, że metoda ta jest bezpieczna i ma zastosowanie do pobierania próbek krwi o wymaganej objętości krwi. Pobieranie krwi przez nakłucie żyły podobojczykowej może służyć jako alternatywna metoda pobierania krwi w przypadku nieudanego pobrania krwi z żyły ogonowej u szczurów.

W badaniu wykorzystano łącznie 20 szczurów linii SD (samce n=10, samice n=10). Pobieranie krwi przeprowadzali doświadczeni operatorzy, którzy wykonali ponad 20 pobrań krwi z żyły podobojczykowej u szczurów, oraz operatorzy początkujący, którzy nie posiadali doświadczenia w punkcji żyły podobojczykowej u szczurów ani innych zwierząt. Przed przystąpieniem do zabiegów osoby początkujące obserwowały co najmniej 3 procedury wykonane przez doświadczonych operatorów.
<p class="jove_content" ...

Tutaj prezentujemy protokół pobierania próbek krwi z żyły podobojczykowej szczura.

Nakłucie żyły podobojczykowej jako alternatywna metoda pobierania próbki krwi u szczurów

Blood collection with enough blood volume is essential in animal experiments. Blood collection from the tail vein of rats is popular and less stressful ...

Nakłucie żyły podobojczykowej jako alternatywna metoda pobierania próbki krwi u szczurów. Po znieczuleniu ogólnym ułóż szczury w pozycji leżącej na plecach i wysterylizuj przestrzeń podobojczykową 75% etanolem. Zidentyfikuj górny dół mostka przed nakłuciem.Zlokalizuj miejsce nakłucia, ogonowo do zewnętrznej jednej trzeciej obszaru obojczyka po tej samej stronie. Kierunek igły był ustawiony w kierunku górnego dołu mostka i powinien być prawie równoległy do obojczyka, tuż za nim. Po pobraniu krwi uciskaj miejsce nakłucia przez jedną do dwóch minut, aby zatrzymać krwawienie.W doświadczeniach na zwierzętach zawsze konieczne jest pobranie krwi o wystarczającej objętości. Pobieranie krwi z żyły ogonowej szczura jest popularne i mniej stresujące niż niektóre agresywne metody, takie jak pobieranie próbek ze splotu oczodołowego. Jednak ta metoda jest ograniczona przez wskaźnik sukcesu.Tutaj przedstawiamy naszą metodę pobierania krwi o pożądanej objętości krwi z żyły podobojczykowej. Nasze wyniki pokazują, że ta metoda jest bezpieczna i praktyczna i może być brana pod uwagę w przypadku, gdy pobieranie krwi z żyły ogonowej nie powiedzie się. Na początek przygotuj taśmę klejącą, środek do depilacji, 75% etanol, probówkę do pobierania krwi, dwupunktową pięciomililitrową strzykawkę, maszynkę do golenia włosów, wagę elektroniczną, heparynę i sól fizjologiczną.Szczury domowe w standardowych warunkach, ze swobodnym dostępem do pożywienia i wody pitnej, trzymane w klatkach o powierzchni 530 centymetrów kwadratowych z drewnianą ściółką do golenia. Wywołać znieczulenie ogólne u wszystkich zwierząt poprzez wstrzyknięcie dootrzewnowe przed nakłuciem. Ułóż szczura w pozycji leżącej, ułóż tylne kończyny w wygodnej pozycji i ułóż kończyny górne równolegle do ciała, tuż obok tułowia.Oczyść obie strony przestrzeni podobojczykowej, aby usunąć sierść i wszelkie widoczne zabrudzenia. Przetrzyj skórę szyi i klatki piersiowej 75% etanolem i utrzymuj obszar czysty i suchy gazą. Obie strony żyły podobojczykowej nadają się do nakłucia, a tutaj wybieramy prawą stronę do nakłucia.Zidentyfikuj położenie i kierunek prawego obojczyka lewym kciukiem operatora i delikatnie zlokalizuj górny dół mostka palcem wskazującym. Przepłucz naszą strzykawkę roztworem heparyny w ilości 10 jednostek na mililitr. Zlokalizuj miejsce nakłucia, skieruj pięć milimetrów ogonowo na zewnętrzną jedną trzecią obszaru prawego obojczyka.Delikatnie wsunąć strzykawkę w skórę w miejscu wkłucia. Gdy igła wejdzie w skórę podobojczykową, należy zastosować aktywny nacisk przez prawą rękę operatora. Kierunek igły jest ustawiony w kierunku górnego dołu mostka i powinien być prawie równoległy do obojczyka, tuż za nim.Zwykle do żyły podobojczykowej można dotrzeć, wbijając igłę na około dwa milimetry w tym kierunku. Gdy igła dostanie się do żyły, krew dostanie się do strzykawki pod aktywnym ciśnieniem. Następnie należy utrzymać aktywne ciśnienie do momentu pobrania odpowiedniej objętości krwi.Po pobraniu krwi wyjmij igłę do nakłucia i uciskaj miejsce nakłucia przez jedną do dwóch minut, aby zatrzymać krwawienie. Zwróć uwagę: nacisk musi być bardzo delikatny, aby zapobiec zadławieniu. Przenieś próbkę krwi do antykoagulowanej probówki próżniowej z EDTA i odwiruj przy 1600G przez 10 minut w celu zebrania osocza.Odessać supernatent w celu ponownego oczyszczenia probówki i przechowywać w temperaturze minus 18 stopni Celsjusza. Aby porównać wskaźnik sukcesu między wykwalifikowanymi operatorami a początkującymi, 20 szczurów SD podzielono losowo na dwie grupy. Wyniki pokazują, że przez prawą żyłę podobojczykową udało się odpowiednio dziewięciu szczurom w grupie wykwalifikowanej i ośmiu szczurom w grupie początkującej.Następnie pobranie krwi od pozostałych trzech szczurów powiodło się przez lewą stronę. Wskaźnik sukcesu nie miał znaczącej różnicy między tymi dwiema grupami. Przebieg czasowy był nieco inny w tych dwóch grupach.W trakcie lub po operacji nie wystąpiły żadne poważne powikłania, takie jak odma opłucnowa, odma opłucnowa i krwotok. Wszystkie zwierzęta przeżyły po pobraniu krwi. Aby zademonstrować trudności w nauce procedury nakłuwania, porównaliśmy liczbę wycofań między grupą wykwalifikowaną i początkującą.Jak pokazano w tabeli drugiej, średnia liczba wypłat w grupie wykwalifikowanej jest nieco mniejsza niż w grupie początkującej, ale nie ma istotności statystycznej. Podsumowując, nasze wyniki pokazują, że strategia nakłuwania żyły podobojczykowej w celu pobrania krwi jest bezpieczna i wykonalna u szczurów. Ta metoda jest cenna, zwłaszcza w sytuacjach, gdy potrzebna jest duża ilość krwi.Ta metoda może być optymalną alternatywą, jeśli konwencjonalne pobieranie krwi nie powiedzie się.

subclavian-vein-puncture-as-an-alternative-method-blood-sample

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Pobieranie krwi jest niezbędne w wielu badaniach, na przykład w celu analizy profilu farmakokinetycznego związku. W niniejszym materiale demonstrujemy, jak pobierać krew od szczurów, stosując dwie techniki: pobranie krwi z żyły saphrenous lub poprzez punkcję serca.

Pobieranie krwi u szczurów z żyły saphenous oraz poprzez punkcję serca

Próbki krwi są przydatne do oceny biomarkerów stanów fizjologicznych lub chorób in vivo. Tutaj opisujemy metodologię pobierania krwi z bocznej żyły ogonowej u szczura. Ta metoda zapewnia szybkie pobieranie próbek przy minimalnym bólu i inwazyjności.

Pobieranie próbek krwi z bocznej żyły ogonowej szczura

Tutaj opisujemy prostą metodę pobierania próbek krwi z żyły ogonowej u szczurów nieznieczulonych za pomocą systemu probówek do ekstrakcji próżniowej. Metoda ta zmniejsza ryzyko bezpośredniego kontaktu z krwią i upraszcza pobieranie wielu próbek z jednego nakłucia żyły.

Wielokrotne pobieranie krwi z żyły ogonowej szczurów nieznieczulonych za pomocą próżniowego systemu pobierania krwi

Tutaj prezentujemy protokół pobierania próbek krwi z żyły podobojczykowej myszy.

Pobieranie krwi przez nakłucie żyły podobojczykowej u myszy

Obecny protokół opisuje prostą i efektywną metodę pobierania krwi z żyły podobojczykowej u szczurów. Umożliwia szybkie, terminowe i łatwe do zidentyfikowania pobieranie próbek bez znieczulenia oraz pozwala uzyskać wysokiej jakości krew dzięki powtarzalnemu pobieraniu próbek.

Powtarzające się pobieranie próbek krwi z żyły podobojczykowej przytomnego szczura

Tutaj prezentujemy protokół oferujący szybkie, łatwe i niezawodne alternatywy pobierania krwi dla modelu szczurzego. Opisujemy trzy różne metody pobierania krwi w zależności od kontekstu: nakłucie żyły ogonowej w znieczuleniu lub na przytomnym zwierzęciu oraz nakłucie żyły grzbietowej prącia w znieczuleniu.

Zmodyfikowane nakłucie żyły ogonowej i żyły prącia do pobierania krwi w modelu szczurzym

Tutaj prezentujemy kombinację skutecznych metod ograniczania szczurów i nakłuwania żył podobojczykowych, które umożliwiają szybkie, bezpieczne i wielokrotne pobieranie krwi u szczurów bez znieczulenia.

Pobieranie próbek krwi z żyły podobojczykowej u przytomnych szczurów

Mysi model podwiązania i perforacji kątnicy jako wartościowe narzędzie do badania sepsy u ludzi.

Procedura ligacji i punkcji kątnicy

Biomarkery są bezpośrednio mierzonymi biologicznymi wskaźnikami choroby lub zdrowia. W naukach populacyjnych i społecznych biomarkery muszą być łatwe do uzyskania, transportu i analizy. Pobieranie suszonych plam krwi (DBS) spełnia tę potrzebę, może być zbierane w terenie z wysokimi wskaźnikami odpowiedzi i analizowane pod kątem różnych biomarkerów.

Pobieranie biomarkerów zdrowotnych z wysuszonej kropli krwi w celu maksymalizacji udziału w badaniach populacyjnych

Obecna praca ilustruje wygodę stosowania immunoterapii podjęzykowej w celu wzmocnienia wrodzonej odpowiedzi immunologicznej w płucach i zapewnienia ochrony przed ostrym pneumokokowym zapaleniem płuc u myszy.

Immunoterapia podjęzykowa jako alternatywa dla indukowania ochrony przed ostrymi infekcjami dróg oddechowych

Poznaj alternatywną metodę nakłucia żyły podobojczykowej u szczurów do pobierania krwi. Technika ta jest bezpieczna, skuteczna i pozwala uzyskać wymaganą objętość próbki przy minimalnym stresie dla zwierząt.

Nakłucie żyły podobojczykowej jako alternatywna metoda pobierania próbki krwi u szczurów

Przeglądaj więcej filmów