Name: Nowatorskie podejście do monitorowania neowaskularyzacji przeszczepu w ludzkim dziąśle (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-01-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 51 s
Description: Poznaj nieinwazyjną metodę obrazowania laserowego LSCI do monitorowania mikrokrążenia w błonie śluzowej jamy ustnej. Technika ta umożliwia śledzenie gojenia ran po zabiegach chirurgicznych z powtarzalnością i wysoką wiarygodnością w praktyce klinicznej.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Ta praca została częściowo wykonana dzięki wsparciu Węgierskiego Funduszu Badań Naukowych w ramach Grantu Numer K112364, przez Węgierskie Ministerstwo Potencjału Ludzkiego, Program Doskonałości Szkolnictwa Wyższego dla Uniwersytetu Semmelweisa, Moduł Badań nad Terapią oraz przez Narodowe Biuro Badań, Rozwoju i Innowacji KFI_16-1-2017-0409. Autorzy dziękują Dr. Bálintowi Molnárowi, współpracownik Zakładu Periodontologii Uniwersytetu Semmelweisa, który wykonał przedsionkową plastykę w prezentowanym przypadku klinicznym.

Opisana metoda została wykorzystana w badaniu klinicznym, które uzyskało aprobatę etyczną od Węgierskiego Komitetu Centrum Rejestracji i Szkolenia Zdrowia (numer zgody: 034310/2014/OTIG).
1. Konfiguracja LSCI
<ol>
	<li>Włącz komputer i wszystkie urządzenia peryferyjne.</li>
	<li>Włącz instrument LSCI, który ma być używany z przełącznikiem na tylnym panelu.</li>
	<li>Pozwól instrumentowi się rozgrzać przez co najmniej 5 minut. Przyrząd jest gotowy do pomiaru, gdy obie diody LED na tylnym panelu przestaną migać.</li>
	<li>Uruchom oprogramowanie, klikając dwukrotnie ikonę oprogramowania na pulpicie lub za pomocą menu Start.</li>
	<li>Poczekaj, aż zarówno żółta, jak i zielona dioda LED na tylnym panelu przestaną migać, co oznacza, że laser jest ciepły i inicjalizacja została zakończona. 
	Uwaga: Podczas uruchamiania systemu od czasu do czasu wyświetlany jest monit o przeprowadzenie procedury weryfikacji systemu.</li>
</ol>
2. Weryfikacja systemu
<ol>
	<li>Użyj dostarczonego pudełka kalibracyjnego. Zdejmij pokrywkę z pudełka kalibracyjnego i potrząśnij nią, aby uniknąć osadzania się w zawiesinie koloidalnej.</li>
	<li>Pozostaw pokrywkę zdjętą na 30 sekund, aby uniknąć bąbelków.</li>
	<li>Załóż pokrywkę z powrotem na pudełko kalibracyjne.</li>
	<li>Kliknij pozycję Zaawansowane | Weryfikacja | Sprawdź instrument.</li>
	<li>Wybierz opcję Rutynowa weryfikacja | Następny.</li>
	<li>Obróć głowicę o 90°, przymocuj skrzynkę kalibracyjną za pomocą zintegrowanych magnesów i kliknij Dalej.</li>
	<li>Wprowadź temperaturę w pomieszczeniu w polu tekstowym, wybierz °C i kliknij przycisk Start.</li>
	<li>Poczekaj, aż kreator zakończy procedurę weryfikacji.</li>
	<li>Po pomyślnej weryfikacji zamknij kreatora, klikając przycisk Zakończ.</li>
</ol>
3. Przygotowanie uczestników
<ol>
	<li>Upewnij się, że pomiar jest wykonywany w pomieszczeniu o kontrolowanej temperaturze (26 °C).</li>
	<li>Ułóż pacjenta w wygodnej pozycji leżącej na fotelu dentystycznym i umieść poduszkę próżniową pod jego głową (ryc. 1).</li>
	<li>Pozostaw pacjenta w spokoju przez 15 minut przed wykonaniem jakichkolwiek pomiarów.</li>
</ol>
4. Pomiar obrazu mikrokrążenia
<ol>
	<li>W menu Narzędzia wybierz i kliknij Edytor projektu. Otworzy się nowe okno, w którym można zapisać często używane ustawienia.</li>
	<li>W polu Projekty kliknij przycisk Nowy, aby utworzyć nowy projekt. Wejdź w "Przedsionek" i kliknij OK.</li>
	<li>W polu Witryny kliknij przycisk Nowa, aby utworzyć nową witrynę. Wpisz "Ząb 14" i kliknij OK.</li>
	<li>Pod panelem Zawartość zęba 14 dodaj "10 cm" jako wymaganą odległość dla odległości roboczej i wprowadź szerokość 3 cm i wysokość 2 cm w polach pomiarowych.</li>
	<li>Ustaw rozdzielczość gęstości punktów na normalną, a liczbę klatek na sekundę na 16 obrazów/s i wybierz Czas z menu rozwijanego Czas trwania, aby ustawić czas nagrywania na 0:30.</li>
	<li>Wybierz "Nagrywaj bez uśredniania" i ustaw szybkość robienia kolorowych zdjęć na 1/sekundę.</li>
	<li>Następnie kliknij "Zastosuj" i "OK", aby zapisać parametry projektu.</li>
	<li>W menu Plik wybierz i kliknij Nowe nagranie. Otworzy się nowe okno obrazu i zostanie wyświetlony panel Konfiguracja.</li>
	<li>W obszarze Recording Setup (Ustawienia nagrywania) wybierz "Vestibulum" dla projektu i "Tooth 14" (Ząb 14) dla 4.9. Strona.</li>
	<li>Otwórz menu rozwijane Temat, kliknij przycisk Nowy w oknie dialogowym Wybierz temat i wprowadź imię i nazwisko pacjenta.</li>
	<li>Kliknij przycisk OK i wprowadź nazwę nagrania w polu Rec Name: np. dzień 1 (dni, które upłynęły od operacji) oraz nazwę operatora w polu Operator.</li>
	<li>Przed przystąpieniem do pomiaru obrazu mikrokrążenia należy zmierzyć ciśnienie krwi i puls pacjenta.</li>
	<li>Usuń powietrze z poduszki próżniowej, aby unieruchomić głowę pacjenta w pozycji odpowiedniej do badanego obszaru.</li>
	<li>Poproś pacjenta, aby otworzył usta.</li>
	<li>Delikatnie cofnij usta za pomocą dwóch lusterek dentystycznych (<silna klasa="xfig">Rysunek 1).</li>
	<li>Ustaw głowicę instrumentu równolegle do mierzonego obszaru dziąsła. Wbudowany widzialny (650 nm) laser wskaźnikowy ułatwia ustawienie kamery, względem ust pacjenta.</li>
	<li>Dostosuj odległość roboczą do 10 cm, przesuwając instrument w stosunku do tkanki. Odległość jest mierzona w sposób ciągły przez urządzenie LSCI i jest wyświetlana przez oprogramowanie jako odległość robocza/wartość mierzona w ustawieniach obrazu.</li>
	<li>Poinstruuj badanego, aby pozostał nieruchomy przez cały czas trwania pomiaru.</li>
	<li>Kliknij przycisk Nagraj, aby rozpocząć nagrywanie. Kolor okna obrazu zmieni się teraz na czerwony, co oznacza, że nagrywanie jest w toku. Panel Ustawienia zostanie zastąpiony panelem Nagrywanie. Nagrywanie zatrzymuje się automatycznie po 30 sekundach. Po zakończeniu nagrywania kolor okna obrazu zmieni się na niebieski, a panel Nagrywanie zostanie zastąpiony panelem Recenzja.</li>
	<li>Usuń lusterka dentystyczne i pozwól pacjentowi zamknąć usta i przełknąć.</li>
	<li>Przełącz się z powrotem na obraz na żywo, naciskając przycisk Wznów nagrywanie.</li>
	<li>Powtórz kroki od 4.14 do 4.21 dwukrotnie.</li>
	<li>Zamknij plik. Dane są zapisywane automatycznie.</li>
	<li>Zmierz ciśnienie krwi i puls po pomiarach LSCI. </li>
</ol>
5. Analiza offline
<ol>
	<li>Analizuj obrazy LSCI za pomocą wbudowanego oprogramowania. Przejdź do widoku obrazu lub widoku podzielonego (Rysunek 2).</li>
	<li>Zdefiniuj obszary zainteresowania (ROI). Uwaga: wartości perfuzji pikseli w ROI są uśredniane i definiowane jako wartość przepływu krwi w ROI, wyrażona w dowolnej wartości zwanej jednostką perfuzji plamek laserowych (LSPU).</li>
	<li>Wybierz żądany kształt ROI na palecie Narzędzia ROI po prawej stronie.</li>
	<li>Wybierz opcję Zastosuj na palecie Narzędzia ROI, która stosuje operacje ROI do wszystkich obrazów nagrania.</li>
	<li>Narysuj ROI, klikając i przytrzymując przycisk myszy na obrazie intensywności, przeciągając ROI do żądanego rozmiaru i zwalniając przycisk myszy (kliknij i kliknij dwukrotnie, aby uzyskać dowolny ROI). Dostosuj położenie ROI, zmień jego rozmiar lub obróć, jeśli to konieczne.</li>
	<li>Powtórz kroki od 5.3. do 5.5 tyle razy, ile wynosi żądana liczba ROI (<silna klasa="xfig">Rysunek 3).</li>
	<li>Zdefiniuj interesujące Cię okresy (TOI). Pozwala to na uśrednienie perfuzji w ROI w określonym czasie (<silna klasa="xfig">Rysunek 2).</li>
	<li>Przejdź do widoku wykresu lub widoku podzielonego. Wybierz przycisk Dodaj narzędzie TOI.</li>
	<li>Kliknij i przytrzymaj wykres w miejscu, w którym ma się zaczynać TOI, a następnie przeciągnij kursor do żądanej pozycji końcowej. Następnie zwolnij przycisk myszy.</li>
	<li>Eksport danych z tabeli wartości średnich w celu dalszego przetwarzania.</li>
	<li>Skonstruuj krzywe przepływu krwi za pomocą odpowiedniego oprogramowania używanego do analizy statystycznej.</li>
</ol>

<ol><li>Nakamoto, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-Dimensional+Real-Time+Blood+Flow+and+Temperature+of+Soft+Tissue+Around+Maxillary+Anterior+Implants%5BTitle%5D)+AND+%22Implant+Dentistry%22%5BJournal%5D)">Two-Dimensional Real-Time Blood Flow and Temperature of Soft Tissue Around Maxillary Anterior Implants.</a> Implant Dentistry. 21 (6), 522-527 (2012).</li>
<li>Kajiwara, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soft+tissue+biological+response+to+zirconia+and+metal+implant+abutments+compared+with+natural+tooth%3A+microcirculation+monitoring+as+a+novel+bioindicator%5BTitle%5D)+AND+%22Implant+Dentistry%22%5BJournal%5D)">Soft tissue biological response to zirconia and metal implant abutments compared with natural tooth: microcirculation monitoring as a novel bioindicator.</a> Implant Dentistry. 24 (1), 37-41 (2015).</li>
<li>Kemppainen, P., Forster, C., Handwerker, H. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+importance+of+stimulus+site+and+intensity+in+differences+of+pain-induced+vascular+reflexes+in+human+orofacial+regions%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">The importance of stimulus site and intensity in differences of pain-induced vascular reflexes in human orofacial regions.</a> Pain. 91 (3), 331-338 (2001).</li>
<li>Kemppainen, P., Avellan, N. L., Handwerker, H. O., Forster, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+between+tooth+stimulation+and+capsaicin-induced+neurogenic+vasodilatation+in+human+gingiva%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Dental+Research%22%5BJournal%5D)">Differences between tooth stimulation and capsaicin-induced neurogenic vasodilatation in human gingiva.</a> Journal of Dental Research. 82 (4), 303-307 (2003).</li>
<li>Riva, C., Ross, B., Benedek, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+Doppler+measurements+of+blood+flow+in+capillary+tubes+and+retinal+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Laser Doppler measurements of blood flow in capillary tubes and retinal arteries.</a> Investigative ophthalmology. 11 (11), 936-944 (1972).</li>
<li>Humeau, A., Steenbergen, W., Nilsson, H., Stromberg, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+Doppler+perfusion+monitoring+and+imaging%3A+novel+approaches%5BTitle%5D)+AND+%22Medical+%26+Biological+Engineering+%26+Computing%22%5BJournal%5D)">Laser Doppler perfusion monitoring and imaging: novel approaches.</a> Medical & Biological Engineering & Computing. 45 (5), 421-435 (2007).</li>
<li>Briers, J. D., Webster, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+speckle+contrast+analysis+%28LASCA%29%3A+a+nonscanning%2C+full-field+technique+for+monitoring+capillary+blood+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Optics%22%5BJournal%5D)">Laser speckle contrast analysis (LASCA): a nonscanning, full-field technique for monitoring capillary blood flow.</a> Journal of Biomedical Optics. 1 (2), 174-179 (1996).</li>
<li>Fazekas, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+characterization+of+collaterals+in+the+human+gingiva+by+laser+speckle+contrast+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Microcirculation%22%5BJournal%5D)">Functional characterization of collaterals in the human gingiva by laser speckle contrast imaging.</a> Microcirculation. 25 (3), 12446(2018).</li>
<li>Molnar, E., Fazekas, R., Lohinai, Z., Toth, Z., Vag, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+the+test-retest+reliability+of+human+gingival+blood+flow+measurements+by+Laser+Speckle+Contrast+Imaging+in+a+healthy+cohort%5BTitle%5D)+AND+%22Microcirculation%22%5BJournal%5D)">Assessment of the test-retest reliability of human gingival blood flow measurements by Laser Speckle Contrast Imaging in a healthy cohort.</a> Microcirculation. 25 (2), (2018).</li>
<li>Molnar, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+Laser+Speckle+Contrast+Imaging+for+the+Assessment+of+Oral+Mucosal+Blood+Flow+following+Periodontal+Plastic+Surgery%3A+An+Exploratory+Study%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Research+International%22%5BJournal%5D)">Evaluation of Laser Speckle Contrast Imaging for the Assessment of Oral Mucosal Blood Flow following Periodontal Plastic Surgery: An Exploratory Study.</a> BioMed Research International. 2017, 4042902(2017).</li>
<li>Sanz, M., Lorenzo, R., Aranda, J. J., Martin, C., Orsini, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+evaluation+of+a+new+collagen+matrix+%28Mucograft+prototype%29+to+enhance+the+width+of+keratinized+tissue+in+patients+with+fixed+prosthetic+restorations%3A+a+randomized+prospective+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Periodontology%22%5BJournal%5D)">Clinical evaluation of a new collagen matrix (Mucograft prototype) to enhance the width of keratinized tissue in patients with fixed prosthetic restorations: a randomized prospective clinical trial.</a> Journal of Clinical Periodontology. 36 (10), 868-876 (2009).</li>
<li>Nevins, M., Nevins, M. L., Kim, S. W., Schupbach, P., Kim, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+mucograft+collagen+matrix+to+augment+the+zone+of+keratinized+tissue+around+teeth%3A+a+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22The+International+Journal+of+Periodontics+and+Restorative+Dentistry%22%5BJournal%5D)">The use of mucograft collagen matrix to augment the zone of keratinized tissue around teeth: a pilot study.</a> The International Journal of Periodontics and Restorative Dentistry. 31 (4), 367-373 (2011).</li>
<li>Lorenzo, R., Garcia, V., Orsini, M., Martin, C., Sanz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+efficacy+of+a+xenogeneic+collagen+matrix+in+augmenting+keratinized+mucosa+around+implants%3A+a+randomized+controlled+prospective+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Oral+Implants+Research%22%5BJournal%5D)">Clinical efficacy of a xenogeneic collagen matrix in augmenting keratinized mucosa around implants: a randomized controlled prospective clinical trial.</a> Clinical Oral Implants Research. 23 (3), 316-324 (2012).</li>
<li>Perry, D. A., McDowell, J., Goodis, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gingival+microcirculation+response+to+tooth+brushing+measured+by+laser+Doppler+flowmetry%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Periodontology%22%5BJournal%5D)">Gingival microcirculation response to tooth brushing measured by laser Doppler flowmetry.</a> Journal of Periodontology. 68 (10), 990-995 (1997).</li>
<li>Yamaguchi, K., Nanda, R. S., Kawata, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+orthodontic+forces+on+blood+flow+in+human+gingiva%5BTitle%5D)+AND+%22Angle+Orthodontist%22%5BJournal%5D)">Effect of orthodontic forces on blood flow in human gingiva.</a> Angle Orthodontist. 61 (3), 193-203 (1991).</li>
<li>Molnár, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+heat+provocation+tests+on+the+human+gingiva%3A+the+effect+of+periodontal+disease+and+smoking%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiologica+Hungarica%22%5BJournal%5D)">Assessment of heat provocation tests on the human gingiva: the effect of periodontal disease and smoking.</a> Acta Physiologica Hungarica. 102 (2), 176-188 (2015).</li>
<li>Gleissner, C., Kempski, O., Peylo, S., Glatzel, J. H., Willershausen, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+gingival+blood+flow+at+healthy+and+inflamed+sites+measured+by+laser+Doppler+flowmetry%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Periodontology%22%5BJournal%5D)">Local gingival blood flow at healthy and inflamed sites measured by laser Doppler flowmetry.</a> Journal of Periodontology. 77 (10), 1762-1771 (2006).</li>
<li>Hinrichs, J. E., Jarzembinski, C., Hardie, N., Aeppli, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrasulcular+laser+Doppler+readings+before+and+after+root+planing%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Periodontology%22%5BJournal%5D)">Intrasulcular laser Doppler readings before and after root planing.</a> Journal of Clinical Periodontology. 22 (11), 817-823 (1995).</li>
<li>Svalestad, J., Hellem, S., Vaagbo, G., Irgens, A., Thorsen, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reproducibility+of+transcutaneous+oximetry+and+laser+Doppler+flowmetry+in+facial+skin+and+gingival+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Microvascular+Research%22%5BJournal%5D)">Reproducibility of transcutaneous oximetry and laser Doppler flowmetry in facial skin and gingival tissue.</a> Microvascular Research. 79 (1), 29-33 (2010).</li>
<li>Sasano, T., Kuriwada, S., Sanjo, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arterial+blood+pressure+regulation+of+pulpal+blood+flow+as+determined+by+laser+Doppler%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Dental+Research%22%5BJournal%5D)">Arterial blood pressure regulation of pulpal blood flow as determined by laser Doppler.</a> Journal of Dental Research. 68 (5), 791-795 (1989).</li>
<li>Ikawa, M., Ikawa, K., Horiuchi, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+thermal+and+mechanical+stimulation+on+blood+flow+in+healthy+and+inflamed+gingiva+in+man%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Oral+Biology%22%5BJournal%5D)">The effects of thermal and mechanical stimulation on blood flow in healthy and inflamed gingiva in man.</a> Archives of Oral Biology. 43 (2), 127-132 (1998).</li>
<li>Baab, D. A., Oberg, P. A., Holloway, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gingival+blood+flow+measured+with+a+laser+Doppler+flowmeter%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Periodontal+Research%22%5BJournal%5D)">Gingival blood flow measured with a laser Doppler flowmeter.</a> Journal of Periodontal Research. 21 (1), 73-85 (1986).</li>
<li>Fazekas, A., Csempesz, F., Csabai, Z., Vág, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+pre-soaked+retraction+cords+on+the+microcirculation+of+the+human+gingival+margin%5BTitle%5D)+AND+%22Operative+Dentistry%22%5BJournal%5D)">Effects of pre-soaked retraction cords on the microcirculation of the human gingival margin.</a> Operative Dentistry. 27 (4), 343-348 (2002).</li>
<li>Csillag, M., Nyiri, G., Vag, J., Fazekas, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dose-related+effects+of+epinephrine+on+human+gingival+blood+flow+and+crevicular+fluid+production+used+as+a+soaking+solution+for+chemo-mechanical+tissue+retraction%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Prosthetic+Dentistry%22%5BJournal%5D)">Dose-related effects of epinephrine on human gingival blood flow and crevicular fluid production used as a soaking solution for chemo-mechanical tissue retraction.</a> Journal of Prosthetic Dentistry. 97 (1), 6-11 (2007).</li>
<li>Tanaka, M., Hanioka, T., Kishimoto, M., Shizukuishi, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+mechanical+toothbrush+stimulation+on+gingival+microcirculatory+functions+in+inflamed+gingiva+of+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Periodontology%22%5BJournal%5D)">Effect of mechanical toothbrush stimulation on gingival microcirculatory functions in inflamed gingiva of dogs.</a> Journal of Clinical Periodontology. 25 (7), 561-565 (1998).</li>
<li>Rothamel, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biodegradation+pattern+and+tissue+integration+of+native+and+cross-linked+porcine+collagen+soft+tissue+augmentation+matrices+-+an+experimental+study+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Head+%26+Face+Medicine%22%5BJournal%5D)">Biodegradation pattern and tissue integration of native and cross-linked porcine collagen soft tissue augmentation matrices - an experimental study in the rat.</a> Head & Face Medicine. 10, 10(2014).</li>
<li>Schwarz, F., Rothamel, D., Herten, M., Sager, M., Becker, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Angiogenesis+pattern+of+native+and+cross-linked+collagen+membranes%3A+an+immunohistochemical+study+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Oral+Implants+Research%22%5BJournal%5D)">Angiogenesis pattern of native and cross-linked collagen membranes: an immunohistochemical study in the rat.</a> Clinical Oral Implants Research. 17 (4), 403-409 (2006).</li>
<li>Vergara, J. A., Quinones, C. R., Nasjleti, C. E., Caffesse, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+response+to+guided+tissue+regeneration+procedures+using+nonresorbable+and+bioabsorbable+membranes+in+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Periodontology%22%5BJournal%5D)">Vascular response to guided tissue regeneration procedures using nonresorbable and bioabsorbable membranes in dogs.</a> Journal of Periodontology. 68 (3), 217-224 (1997).</li>
<li>Oliver, R. C., Loe, H., Karring, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscopic+evaluation+of+the+healing+and+revascularization+of+free+gingival+grafts%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Periodontal+Research%22%5BJournal%5D)">Microscopic evaluation of the healing and revascularization of free gingival grafts.</a> Journal of Periodontal Research. 3 (2), 84-95 (1968).</li>
<li>Janson, W. A., Ruben, M. P., Kramer, G. M., Bloom, A. A., Turner, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+the+blood+supply+to+split-thickness+free+ginival+autografts%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Periodontology%22%5BJournal%5D)">Development of the blood supply to split-thickness free ginival autografts.</a> Journal of Periodontology. 40 (12), 707-716 (1969).</li>
<li>Mormann, W., Bernimoulin, J. P., Schmid, M. O. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1061715">Fluorescein angiography of free gingival autografts.</a> Journal of Clinical Periodontology. 2 (4), 177-189 (1975).</li>
<li>Busschop, J., de Boever, J., Schautteet, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Revascularization+of+gingival+autografts+placed+on+different+receptor+beds.+A+fluoroangiographic+study%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Periodontology%22%5BJournal%5D)">Revascularization of gingival autografts placed on different receptor beds. A fluoroangiographic study.</a> Journal of Clinical Periodontology. 10 (3), 327-332 (1983).</li>
<li>Fazekas, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+proposed+method+for+assessing+the+appropriate+timing+of+early+implant+placements%3A+a+case+report%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Oral+Implantology%22%5BJournal%5D)">A proposed method for assessing the appropriate timing of early implant placements: a case report.</a> Journal of Oral Implantology. , (2018).</li>
<li>Briers, J. D., Fercher, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+blood-flow+visualization+by+means+of+laser+speckle+photography%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+Ophthalmology+%26+Visual+Science%22%5BJournal%5D)">Retinal blood-flow visualization by means of laser speckle photography.</a> Investigative Ophthalmology & Visual Science. 22 (2), 255-259 (1982).</li>
<li>Srienc, A. I., Kurth-Nelson, Z. L., Newman, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+retinal+blood+flow+with+laser+speckle+flowmetry%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Neuroenergetics%22%5BJournal%5D)">Imaging retinal blood flow with laser speckle flowmetry.</a> Front Neuroenergetics. 2, (2010).</li>
<li>Choi, B., Kang, N. M., Nelson, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+speckle+imaging+for+monitoring+blood+flow+dynamics+in+the+in+vivo+rodent+dorsal+skin+fold+model%5BTitle%5D)+AND+%22Microvascular+Research%22%5BJournal%5D)">Laser speckle imaging for monitoring blood flow dynamics in the in vivo rodent dorsal skin fold model.</a> Microvascular Research. 68 (2), 143-146 (2004).</li>
<li>Ayata, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+speckle+flowmetry+for+the+study+of+cerebrovascular+physiology+in+normal+and+ischemic+mouse+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cerebral+Blood+Flow+%26+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Laser speckle flowmetry for the study of cerebrovascular physiology in normal and ischemic mouse cortex.</a> Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 24 (7), 744-755 (2004).</li>
<li>Armitage, G. A., Todd, K. G., Shuaib, A., Winship, I. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+speckle+contrast+imaging+of+collateral+blood+flow+during+acute+ischemic+stroke%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cerebral+Blood+Flow+%26+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Laser speckle contrast imaging of collateral blood flow during acute ischemic stroke.</a> Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 30 (8), 1432-1436 (2010).</li>
<li>Lindahl, F., Tesselaar, E., Sjoberg, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+paediatric+scald+injuries+using+Laser+Speckle+Contrast+Imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Burns%22%5BJournal%5D)">Assessing paediatric scald injuries using Laser Speckle Contrast Imaging.</a> Burns. 39 (4), 662-666 (2013).</li>
<li>Mirdell, R., Iredahl, F., Sjoberg, F., Farnebo, S., Tesselaar, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microvascular+blood+flow+in+scalds+in+children+and+its+relation+to+duration+of+wound+healing%3A+A+study+using+laser+speckle+contrast+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Burns%22%5BJournal%5D)">Microvascular blood flow in scalds in children and its relation to duration of wound healing: A study using laser speckle contrast imaging.</a> Burns. , (2016).</li>
<li>Zotterman, J., Bergkvist, M., Iredahl, F., Tesselaar, E., Farnebo, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+of+partial+and+full+venous+outflow+obstruction+in+a+porcine+flap+model+using+laser+speckle+contrast+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Plastic%2C+Reconstructive+%26+Aesthetic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Monitoring of partial and full venous outflow obstruction in a porcine flap model using laser speckle contrast imaging.</a> Journal of Plastic, Reconstructive & Aesthetic Surgery. 69 (7), 936-943 (2016).</li>
<li>Hecht, N., Woitzik, J., Dreier, J. P., Vajkoczy, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraoperative+monitoring+of+cerebral+blood+flow+by+laser+speckle+contrast+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgical+Focus%22%5BJournal%5D)">Intraoperative monitoring of cerebral blood flow by laser speckle contrast analysis.</a> Neurosurgical Focus. 27 (4), E11(2009).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Celem pracy było wprowadzenie nowej techniki monitorowania neowaskularyzacji przeszczepu w dziąśle człowieka. Zgodnie z naszymi poprzednimi wynikami, LSCI ocenia perfuzję krwi w dziąśle z dobrą powtarzalnością i odtwarzalnością9, gdy spełnione jest ścisłe wdrożenie każdego kroku planowanego protokołu jako krytycznego wymogu. LSCI jest uważana za technikę półilościową, która wymaga okresowej kalibracji w celu zapewnienia dokładności i stabilności. Podczas weryfikacji temperatura w pomieszczeniu mus...

Monitorowanie długoterminowych zmian w mikrokrążeniu dziąseł u ludzi w sytuacji klinicznej jest gorącym tematem w chirurgii jamy ustnej i periodontologicznej. Jednak wiarygodna ocena perfuzji może być trudna. Istnieje tylko kilka metod, które nie mierzą inwazyjnie zmian w krążeniu krwi w błonie śluzowej człowieka. Dwa z nich wykorzystują wiązkę laserową1,2,3,4, ale w inny sposób. Laserowa przepływomierz dopplerowska (LDF) wykorzystuje przesunięcie dopplerowskie w wiązce laserowej5,6, podczas gdy metoda laserowego obrazowania z kontrastem plamkowym (LSCI) opiera się na wzorze plamkowym światła laserowego rozpraszanego wstecznie w celu zmierzenia prędkości czerwonych krwinek7.
LDF mierzy tylko w jednym punkcie, a powtarzalna standaryzacja pozycji czujników jest pożądanym, ale trudnym zadaniem. Innym problemem jest to, że sonda LDF ma małą średnicę (1 mm2). Pomiar w określonych punktach przed operacją jest zbyt specyficzny i może być ślepy na pooperacyjne zmiany w krążeniu, podczas gdy obrzęk, usunięcie tkanki, ruch tkanki lub wszczepiony przeszczep powodują znaczące zmiany w pooperacyjnej geometrii dotkniętej chorobą tkanki miękkiej. Odległość pomiarowa LDF jest mniejsza niż 1 mm, co wyklucza użycie szyny dentystycznej z wcześniej określonym otworem na sondę w przypadku zmiany objętościowej tkanki. LSCI nie wymaga żadnych specjalnych narzędzi do lokalizacji i może mierzyć w obszarach o powierzchni kilkucm2. W rezultacie gojenie się ran można śledzić w całym polu operacyjnym. Ponadto LSCI może wyświetlać perfuzję krwi na kolorowych obrazach w ułamku sekundy, z rozdzielczością do 20 μm.
Urządzenie LSCI przedstawione w tym artykule jest najczęściej używane do zastosowań badawczych na zwierzętach, gdzie pożądana jest wysoka rozdzielczość w małych obszarach pomiarowych. Ponieważ jednak struktura i histologia błony śluzowej jamy ustnej człowieka różnią się w zależności od obszaru (przyczepione dziąsło, dziąsło brzeżne, błona śluzowa przedsionkowa), krążenie krwi jest również niejednorodne8. Dlatego LSCI o wysokiej rozdzielczości ma ogromną przewagę nad LSCI o normalnej rozdzielczości, która jest zwykle stosowana w testach na ludziach.
Instrument LSCI wykorzystuje niewidzialny laser (długość fali 785 nm). Wiązka jest rozbieżna, aby oświetlić obszar pomiaru, tworząc wzór plamki. Kamera CCD obrazuje wzór plamek w oświetlonym obszarze. Kamera CCD zastosowana w tym systemie ma aktywny obszar obrazowania 1386 x 1034 pikseli, a jego rozdzielczość mieści się w zakresie 20–60 μm/piksel w zależności od wielkości obszaru pomiarowego i ustawień oprogramowania (niski, średni, wysoki). Może robić zdjęcia z prędkością 16 klatek na sekundę, a nawet więcej, do 100 klatek na sekundę, jeśli rozmiar obrazu zostanie zmniejszony. Perfuzja krwi jest obliczana przez wbudowane oprogramowanie. Analizuje zmiany we wzorze plamek i określa ilościowo kontrast. Powstały strumień jest kodowany kolorami w celu uzyskania obrazu perfuzyjnego. Zgodnie z naszymi poprzednimi wynikami, LSCI ocenia perfuzję krwi w dziąśle z dobrą powtarzalnością i odtwarzalnością9. Oznacza to, że jest to niezawodne narzędzie do monitorowania zmian w mikrokrążeniu błony śluzowej jamy ustnej nie tylko w krótkoterminowych eksperymentach, ale także podczas długoterminowych badań mających na celu śledzenie postępu choroby lub gojenia się ran10.
W tym artykule prezentujemy opis przypadku klinicznego, aby wykazać, że wysoka rozdzielczość przestrzenna LSCI umożliwia ujawnienie wzorca neowaskularyzacji ksenogennego przeszczepu kolagenu. Co więcej, przypadek ten wskazuje, że LSCI, ze względu na swoją wysoką niezawodność, może z dużą czułością wykrywać indywidualne zmiany. Jest to ważne, ponieważ znaczna miejscowa zmienność anatomiczna i różne tło systemowe między przypadkami utrudniają standaryzację interwencji chirurgicznej w badaniach klinicznych chirurgii periodontologicznej.

<table><tbody><tr><td>PeriCam PSI-HR</td><td>Perimed AB, Sztokholm, Szwecja</td><td></td><td>System PeriCam PSI to system obrazowania oparty na technologii LASCA (LAser Speckle Contrast Analysis). System mierzy powierzchowne ukrwienie krwi na dużych obszarach z dużą szybkością wychwytywania. To sprawia, że idealnie nadaje się do badań zarówno przestrzennej, jak i czasowej dynamiki mikrokrążenia w prawie każdej tkance.</td></tr><tr><td>PIMSoft</td><td>Perimed AB, Sztokholm, Szwecja</td><td></td><td>PIMSoft to oprogramowanie do akwizycji i analizy danych, przeznaczone do użytku wraz z systemem PeriCam PSI i systemem PeriScan PIM 3, do pomiaru i obrazowania powierzchownej perfuzji krwi.</td></tr><tr><td>Geistlich Mucograft</td><td>Geistlich, Szwajcaria</td><td></td><td>Jest to wyjątkowa matryca kolagenowa 3D zaprojektowana specjalnie do regeneracji tkanek miękkich. Jest wskazany do uzyskania zrogowaciałej tkanki i pokrycia recesji.</td></tr><tr><td>Omron M4</td><td>Omron Healthcare Inc., Kioto, Japonia</td><td></td><td>Ciśnieniomierz, który zapewnia dokładne odczyty.</td></tr><tr><td>Nikon D5200</td><td>Nikon Corportation, Tokio, Japonia</td><td></td><td>Wykonywanie zdjęć wewnątrzustnych</td></tr><tr><td>MS Excel</td><td>Microsoft Corporation, Redmond, Waszyngton, USA</td><td></td><td>Oprogramowanie służące do zarządzania danymi</td></tr><tr><td>IBM SPSS Statistics 25</td><td>IBM Corp., Armonk, NY, USA</td><td></td><td>Oprogramowanie wykorzystywane do analizy statystycznej</td></tr></tbody></table>

nowatorskie podejście do monitorowania neowaskularyzacji przeszczepu w ludzkim dziąśle

A Novel Approach to Monitoring Graft Neovascularization in the Human Gingiva

Laserowe obrazowanie z kontrastem plamkowym (LSCI) to nowatorska metoda pomiaru powierzchownej perfuzji krwi na dużych obszarach. Ponieważ jest nieinwazyjny i unika bezpośredniego kontaktu z mierzonym obszarem, nadaje się do monitorowania zmian przepływu krwi podczas gojenia się ran u ludzi. Przedsionkowoplastyka to operacja periodontologiczna przedsionka jamy ustnej, mająca na celu przywrócenie głębokości przedsionkowej przy jednoczesnym powiększeniu zrogowaciałego dziąsła. W tym szczególnym przypadku klinicznym płat o podzielonej grubości został uniesiony w pierwszym górnym przedtrzonie, a ksenogenna matryca kolagenowa została dostosowana do powstałego łoża biorcy. LSCI wykorzystano do monitorowania re- i neowaskularyzacji przeszczepu i otaczającej błony śluzowej przez jeden rok. Wprowadzono protokół prawidłowego dostosowania pomiaru mikrokrążenia w błonie śluzowej jamy ustnej, podkreślając trudności i możliwe awarie.
Przedstawione studium przypadku klinicznego wykazało, że - zgodnie z odpowiednim protokołem - LSCI jest odpowiednią i niezawodną metodą śledzenia mikrokrążenia w gojącej się ranie w błonie śluzowej ludzkiej jamy ustnej i dostarcza użytecznych informacji na temat integracji przeszczepu.

Vestibuloplastyka jest zabiegiem chirurgii periodontologicznej wykonywanym w obrębie przedsionka jamy ustnej, mającym na celu zwiększenie głębokości przedsionka, obszaru dziąsła zkeratynizowanego oraz grubości tkanek miękkich w celu poprawy estetyki i funkcji. Często stosowaną procedurą vestibuloplastyki jest przesunięcie w kierunku apikalnym płata o grubości dzielonej w połączeniu z macierzą kolagenową. Ksenogeniczna macierz kolagenowa stanowi realną alternatywę dla autogennego przeszcze...

To badanie wprowadza protokół pomiaru mikrokrążenia w błonie śluzowej jamy ustnej człowieka za pomocą laserowego obrazowania z kontrastem. Monitorowanie gojenia się ran po przedsionkowoplastyce w połączeniu z ksenogennym przeszczepem kolagenu przedstawiono na przykładzie klinicznym.

Nowatorskie podejście do monitorowania neowaskularyzacji przeszczepu w ludzkim dziąśle

Laser speckle contrast imaging (LSCI) is a novel method for measuring superficial blood perfusion over large areas. Since it is non-invasive and avoids ...

Laserowe obrazowanie z kontrastem plamkowym (LSCI) może pomóc w monitorowaniu długoterminowych zmian w mikrokrążeniu dziąseł u ludzi w klinice, aby śledzić postęp poszczególnych chorób i gojenie się ran. Głównymi zaletami tej techniki jest to, że jest nieinwazyjna i ocenia perfuzję krwi w dziąśle z dobrą powtarzalnością i odtwarzalnością. Ta metoda nie wymaga żadnych specjalnych narzędzi do lokalizacji głowicy pomiarowej, a gojenie się ran pooperacyjnych można śledzić w polu operacyjnym o powierzchni do sześciu centymetrów kwadratowych.Aby skonfigurować obrazowanie z kontrastem laserowym, włącz komputer i urządzenia peryferyjne, a następnie włącz przyrząd do obrazowania z kontrastem laserowym. Po rozgrzaniu instrumentu przez co najmniej pięć minut otwórz oprogramowanie i posadź pacjenta w wygodnej pozycji leżącej na krześle dentystycznym. Umieść mankiet na ramieniu pacjenta i poduszkę próżniową pod głową pacjenta.Następnie pozwól pacjentowi odpocząć w spokoju przez 15 minut przed wykonaniem jakichkolwiek pomiarów. W międzyczasie w menu Narzędzia wybierz i kliknij Edytor projektu. Otworzy się nowe okno, w którym można zapisać często używane ustawienia.W polu Projekty kliknij przycis

a-novel-approach-to-monitoring-graft-neovascularization-human

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Nasz zespół opracował system hodowli w bioreaktorze, który naśladuje fizjologiczne naprężenia pulsacyjne układu sercowo-naczyniowego w celu regeneracji wszczepialnych zastążek naczyniowych o małej średnicy.

Projektowanie biologicznych przeszczepów naczyniowych z wykorzystaniem bioreaktora pulsacyjnego

Opisujemy nowatorską technikę obrazowania in vivo, która łączy fluorescencyjne chimeryczne myszy z oknami wewnątrzczaszkowymi i mikroskopią 2-fotonową o wysokiej rozdzielczości. Ta platforma obrazowania wspomaga badania dynamicznych zmian w tkance mózgowej i mikrokrążeniu na poziomie pojedynczej komórki, po patologicznych urazach i jest przystosowana do oceny wewnątrzczaszkowego dostarczania i dystrybucji leków.

Nowatorska technika obrazowania in vivo o wysokiej rozdzielczości do badania dynamicznej odpowiedzi struktur wewnątrzczaszkowych na wzrost guza i terapie

Opisujemy test czopa matrigelowego, aby zilustrować potencjał angiogenny puli czynników wydzielanych przez komórki nowotworowe za pomocą dwóch uzupełniających się metod obrazowania, ultradźwięków i endomikroskopii. Matrigel, żel naśladujący macierz zewnątrzkomórkową (ECM), jest wykorzystywany do wprowadzenia gospodarza (myszy) z czynnikami angiogennymi wydzielanymi do kondycjonowanego podłoża (CM).

Monitorowanie funkcjonalności i morfologii układu krwionośnego rekrutowanego przez czynniki wydzielane przez szybko rosnące komórki nowotworowe

Protokół krok po kroku do międzypozycyjnego umieszczania naczyń TEV (Tissue Engineered Departments) w tętnicy szyjnej owcy za pomocą zespolenia end-to-end i cyfrowej oceny w czasie rzeczywistym in vivo, aż do uśmiercenia zwierzęcia.

Technika chirurgiczna implantacji przeszczepów naczyniowych wykorzystujących inżynierię tkankową, a następnie monitorowanie in vivo

Implantacja autologicznych i allogenicznych przeszczepów kostnych stanowi akceptowane metody leczenia dużych ubytków kości twarzoczaszki. Jednak wpływ składu przeszczepu na wzajemne oddziaływanie między neowaskularyzacją, różnicowaniem komórek i tworzeniem kości jest niejasny. Przedstawiamy protokół obrazowania multimodalnego, którego celem jest wyjaśnienie współzależności angiogenezy i osteogenezy w pobliżu przeszczepu.

Tomografia komputerowa i obrazowanie optyczne sprzężenia osteogeneza-angiogeneza w celu oceny integracji autoprzeszczepów kości czaszki i alloprzeszczepów

Opisujemy prosty test biologiczny oparty na komórkach do wykrywania, ilościowego określania i monitorowania aktywności członków rodziny ligandów czynnika wzrostu śródbłonka naczyniowego. Test wykorzystuje receptory chimeryczne ulegające ekspresji w linii komórkowej zależnej od czynnika, aby zapewnić półilościową lub ilościową ocenę wiązania receptora i sieciowania przez ligand.

Prosty test biologiczny do oceny czynników wzrostu śródbłonka naczyń krwionośnych

Tutaj prezentujemy protokół wizualizacji tworzenia naczyń krwionośnych in vivo i w czasie rzeczywistym na rusztowaniach 3D za pomocą mikroskopii wielofotonowej. Angiogenezę w genetycznie zmodyfikowanych rusztowaniach badano w mysim modelu krytycznego ubytku kości kalwarycznej. W grupie leczonej wykryto więcej nowych naczyń krwionośnych niż w grupie kontrolnej.

Wizualizacja angiogenezy za pomocą mikroskopii wielofotonowej in vivo w genetycznie zmodyfikowanym rusztowaniu 3D-PLGA/nHAp do naprawy krytycznego ubytku kości calowej

Celem protokołu jest zbudowanie modelu zapalenia ludzkiego dziąsła in vitro. Ten model tkankowy współhoduje trzy typy komórek ludzkich, keratynocyty HaCaT, fibroblasty dziąseł i makrofagi THP-1, w warunkach trójwymiarowych. Model ten można zastosować do badania chorób przyzębia, takich jak zapalenie dziąseł i przyzębia.

Trójwymiarowe zapalne odpowiedniki tkanek ludzkich dziąsła

Opisano tutaj krok po kroku protokół do nieniszczącego i długoterminowego monitorowania procesu przebudowy naczyń krwionośnych i degradacji rusztowań w czasie rzeczywistym biodegradowalnych naczyń krwionośnych opartych na polimerowych rusztowaniach z pulsacyjną stymulacją za pomocą optycznej koherentnej tomografii.

Nieniszczące monitorowanie rozwoju naczyń krwionośnych opartych na degradowalnych rusztowaniach za pomocą optycznej koherentnej tomografii

To badanie przedstawia dwuwymiarowy (2D) test migracji ran drapanych i trójwymiarowy (3D) test kiełkowania sferoidów, wraz z odpowiednimi metodami analizy, w tym ekstrakcją RNA i immunocytochemią, jako odpowiednie testy do badania angiogenezy in vitro.

Badanie angiogenezy na poziomie funkcjonalnym i molekularnym poprzez wykorzystanie testu migracji ran drapanych i testu kiełkowania sferoidalnego

Celem niniejszego protokołu jest zapewnienie standaryzowanego podejścia do ilościowej oceny integralności bariery nabłonkowej dziąseł u myszy poprzez miejscowe nałożenie fluoroforowo oznaczonych dektranów o różnej wielkości cząsteczkowої na powierzchnię dziąseł in vivo, z późniejszym obrazowaniem ex vivo za pomocą systemu mikroskopu jednofotonowego.

Ocena funkcjonalności bariery nabłonkowej dziąseł mysich za pomocą fluorescencyjnych znaczników

Poznaj nieinwazyjną metodę obrazowania laserowego LSCI do monitorowania mikrokrążenia w błonie śluzowej jamy ustnej. Technika ta umożliwia śledzenie gojenia ran po zabiegach chirurgicznych z powtarzalnością i wysoką wiarygodnością w praktyce klinicznej.

Nowatorskie podejście do monitorowania neowaskularyzacji przeszczepu w ludzkim dziąśle

Przeglądaj więcej filmów