-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Nieinwazyjna ocena funkcji mięśni zginacza grzbietowego u myszy
Nieinwazyjna ocena funkcji mięśni zginacza grzbietowego u myszy
JoVE Journal
Medicine
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
Non-invasive Assessment of Dorsiflexor Muscle Function in Mice

Nieinwazyjna ocena funkcji mięśni zginacza grzbietowego u myszy

Full Text
11,576 Views
05:31 min
January 17, 2019

DOI: 10.3791/58696-v

Frederico Gerlinger-Romero1, Alex B. Addinsall2, Richard M. Lovering3, Victoria C. Foletta4, Chris van der Poel5, Paul A. Della-Gatta4, Aaron P. Russell4

1School of Exercise and Nutrition Sciences,Deakin University, 2Centre for Molecular and Medical Research, School of Medicine,Deakin University, 3Department of Orthopaedics, School of Medicine,University of Maryland, 4Institute for Physical Activity and Nutrition (IPAN), School of Exercise and Nutrition Sciences,Deakin University, 5Department of Physiology, Anatomy and Microbiology,La Trobe University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Pomiar funkcji kurczliwości mięśni szkieletowych gryzoni jest użytecznym narzędziem, które może być używane do śledzenia postępu choroby, jak również skuteczności interwencji terapeutycznej. Opisujemy tutaj nieinwazyjną ocenę in vivo mięśni zginaczy grzbietowych, która może być powtarzana w czasie u tej samej myszy.

Model ten może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie funkcji skurczu mięśni. Takich jak mechanizm wytwarzania siły, podczas progresji choroby. Główną zaletą tej techniki jest to, że procedura ta jest nieinwazyjna, którą można wykonać na tym samym zwierzęciu w różnych punktach czasowych, w celu monitorowania postępu choroby i leczenia.

Wizualna demonstracja tej metody ma kluczowe znaczenie, ponieważ zmiana któregokolwiek z tych kroków może prowadzić do zwiększenia zmienności wyników. Dlatego praktyka może pozwolić Ci uzyskać bardziej spójne wyniki. Aby rozpocząć tę procedurę, ustaw zacisk kolanowy myszy na platformie, a także stopkę myszy na przetworniku.

Następnie włącz platformę grzewczą do 37 stopni Celsjusza. Otwórz oprogramowanie do dynamicznej kontroli mięśni na pulpicie. Z listy rozwijanej konfiguracji wybierz pozycję Trzpień natychmiastowy i zmień parametry czasu pracy na 120 sekund.

W oknie oznaczonym baza autozapisu wprowadź nazwę lokalizacji pliku autozapisu. Kliknij pole wyboru po lewej stronie okna bazy automatycznego zapisywania i zmień je, aby włączyć automatyczne zapisywanie. W górnej części ekranu sterowania DMC kliknij sekwencer, co spowoduje otwarcie nowego wyskakującego okienka.

Wybierz otwartą sekwencję i wybierz protokół, który ma być używany. Następnie kliknij załaduj sekwencję i zamknij okno. Aby przygotować zwierzę do eksperymentu, usuń włosy z prawej nogi myszy za pomocą elektrycznych maszynek do strzyżenia włosów.

Ułóż zwierzę w pozycji leżącej na podgrzewanej platformie i wyczyść prawą nogę 70% alkoholem i jodem. W tym momencie dostosuj izofluran do 2% z przepływem tlenu na poziomie jednego litra na minutę. Umieść stopę na podnóżku i zabezpiecz ją taśmą medyczną.

Następnie nałóż żel przewodzący na skórę, na którą zostaną umieszczone elektrody. Następnie zaciśnij kolano, aby ustabilizować nogę podczas zabiegu. Użyj pokręteł na platformie, aby ustawić tylną kończynę tak, aby utworzyć kąt 90 stopni w kostce.

Gdy mysz zostanie zamocowana na platformie, umieść elektrody pod skórą prawej nogi, jedną w pobliżu głowy kości strzałkowej, a drugą elektrodę bardziej dystalnie po bocznej stronie nogi. Elektrody są ustawione ostrożnie, aby uzyskać wystarczającą stymulację nerwu strzałkowego. Również tę pozycję można dostosować, aby osiągnąć stabilny szczyt, wizualizowany na ekranie.

Po wykonaniu tych kroków wyreguluj dwufazowy stymulator o dużej mocy, aby uzyskać stymulację nerwu strzałkowego, która skutkuje maksymalnym momentem zgięcia grzbietowego. Podczas stymulacji obróć przetwornik zgodnie z ruchem wskazówek zegara, aby uzyskać wartości ujemne, które są ważne, aby upewnić się, że elektrody stymulują tylko mięśnie zginaczy grzbietu przez nerw strzałkowy. Po wykonaniu tego kroku należy ustabilizować elektrody za pomocą zacisku, aby zapobiec wszelkim ruchom podczas zabiegu.

Osiąganie ujemnego piku powoli i stopniowo jest ważne, aby sprawdzić, czy elektrody są umieszczone we właściwej pozycji, a napięcie jest wystarczające do osiągnięcia maksymalnej siły. Następnie zatrzymaj natychmiastowy trzpień w oprogramowaniu. Na ekranie głównym włącz przycisk oznaczony sekwencją startową", aby rozpocząć poprzednią sekwencję konfiguracji.

Po zakończeniu pomiarów siły wyjmij elektrody, usuń taśmę na stopę i zwolnij zacisk kolanowy. Wyłącz izofluran i utrzymuj dopływ tlenu przez kilka minut, aby wspomóc powrót zwierzęcia do zdrowia. Gdy mysz zacznie się poruszać i odzyska przytomność, załóż ją z powrotem do klatki.

Ten wykres przedstawia reprezentatywne dane krzywej częstotliwości siły z myszy w czasie, gdzie procedura była powtarzana raz w tygodniu, aż do zakończenia pięciu punktów czasowych. Obserwacje te wykazały stałe wartości wytwarzania siły we wszystkich punktach czasowych. Procedura ta wykazała również, że jest spójna między różnymi myszami, jak wskazano w reprezentatywnym obszarze, pod krzywą stymulacji FFC, w ciągu pięciu różnych obserwacji u sześciu myszy testowanych raz w tygodniu.

Po opracowaniu, technika ta pozwala naukowcom zajmującym się chorobami nerwowo-mięśniowymi badać czasowe zmiany w funkcjonowaniu mięśni w lustrzanych modelach choroby.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Ocena nieinwazyjna funkcja mięśnia zginacza grzbietowego skurcz mięśni produkcja siły postęp choroby model mysi oprogramowanie do dynamicznej kontroli mięśni protokół stymulacji znieczulenie izofluranem stymulacja nerwu strzałkowego pomiar momentu obrotowego procedura eksperymentalna umieszczenie elektrod ocena mięśni

Related Videos

Model in vivo urazu wywołanego skurczem u gryzoni i nieinwazyjne monitorowanie powrotu do zdrowia

08:08

Model in vivo urazu wywołanego skurczem u gryzoni i nieinwazyjne monitorowanie powrotu do zdrowia

Related Videos

14.2K Views

Izometryczna i ekscentryczna ocena generowania sił mięśni szkieletowych wyizolowanych z mysich modeli dystrofii mięśniowych

14:10

Izometryczna i ekscentryczna ocena generowania sił mięśni szkieletowych wyizolowanych z mysich modeli dystrofii mięśniowych

Related Videos

33.6K Views

Ocena funkcji mięśni mięśnia prostownika długiego mięśnia ex vivo i mięśnia piszczelowego przedniego in situ u myszy

14:36

Ocena funkcji mięśni mięśnia prostownika długiego mięśnia ex vivo i mięśnia piszczelowego przedniego in situ u myszy

Related Videos

43.3K Views

Ocena wydajności funkcjonalnej w modelu myszy Mdx

10:32

Ocena wydajności funkcjonalnej w modelu myszy Mdx

Related Videos

33.4K Views

Pomiar rdzeniowego hamowania presynaptycznego u myszy za pomocą zapisu potencjału korzenia grzbietowego in vivo

09:48

Pomiar rdzeniowego hamowania presynaptycznego u myszy za pomocą zapisu potencjału korzenia grzbietowego in vivo

Related Videos

14.3K Views

In vivo (in vivo) Elektrofizjologiczny pomiar złożonego potencjału czynnościowego mięśni z kończyn przednich w mysich modelach zwyrodnienia neuronów ruchowych

06:35

In vivo (in vivo) Elektrofizjologiczny pomiar złożonego potencjału czynnościowego mięśni z kończyn przednich w mysich modelach zwyrodnienia neuronów ruchowych

Related Videos

20.3K Views

Pomiar in vivo funkcji mięśni prostowników stawu kolanowego u myszy

08:29

Pomiar in vivo funkcji mięśni prostowników stawu kolanowego u myszy

Related Videos

5.4K Views

In vivo (in vivo) Pomiar izometrycznego momentu obrotowego zginacza grzbietowego kończyny tylnej od świni

09:41

In vivo (in vivo) Pomiar izometrycznego momentu obrotowego zginacza grzbietowego kończyny tylnej od świni

Related Videos

4.2K Views

Końcowe pomiary H-refleksu u myszy

05:38

Końcowe pomiary H-refleksu u myszy

Related Videos

6.1K Views

Model bólu pleców myszy wywołany aktywatorem plazminogenu typu urokinazy

06:20

Model bólu pleców myszy wywołany aktywatorem plazminogenu typu urokinazy

Related Videos

1.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code