-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Izolacja i hodowla embrionalnych mysich nerwowych komórek macierzystych
Izolacja i hodowla embrionalnych mysich nerwowych komórek macierzystych
JoVE Journal
Neuroscience
Author Produced
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Isolation and Culture of Embryonic Mouse Neural Stem Cells

Izolacja i hodowla embrionalnych mysich nerwowych komórek macierzystych

Full Text
19,203 Views
09:04 min
November 11, 2018

DOI: 10.3791/58874-v

Farshad Homayouni Moghadam1, Maryam Sadeghi-Zadeh1,3, Bahareh Alizadeh-Shoorjestan1,3, Reza Dehghani-Varnamkhasti1,3, Sepideh Narimani1,2, Leila Darabi1,3, Abbas Kiani Esfahani1, Mohammad Hossein Nasr Esfahani1

1Department of Cellular Biotechnology, Cell Science Research Center, Royan Institute for Biotechnology,ACECR, 2Department of Biology, Faculty of Basic Sciences,Islamic Azad University, 3Department of Biology,ACECR Institute of Higher Education

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study introduces a novel microsurgical technique for isolating neural stem cells from the ganglionic eminence of E 13 mouse embryos. The aim is to provide a reliable and efficient protocol for the extraction and culture of these cells, which are essential for understanding neural development and stem cell biology.

Key Study Components

Area of Science

  • Cellular and Molecular Biology
  • Neuroscience
  • Stem Cell Research

Background

  • Neural stem cells play a critical role in brain development.
  • The ganglionic eminence is a key region for neurogenesis.
  • Current methods for isolating these cells can be cumbersome and inefficient.
  • This technique aims to streamline the process and improve cell yield.

Purpose of Study

  • To establish a reliable method for the isolation of neural stem cells.
  • To enhance the understanding of neurogenesis in early embryos.
  • To provide a protocol that can be utilized in various research settings.

Methods Used

  • The technique involves microsurgical dissection of E 13 mouse embryos.
  • It includes specific steps for tissue dissociation and cell plating in culture.
  • Important steps include the use of HEPES MEM buffer and careful microsurgery for brain extraction.
  • Results are obtained after culturing the cells, allowing for the observation of neurosphere formation.

Main Results

  • The protocol successfully yields a high percentage of viable neural stem cells.
  • Neurospheres form within 3 days, indicating successful stem cell proliferation.
  • Flow cytometry reveals that approximately 95% of cells are Nestin positive, confirming their identity as neural stem cells.
  • Cells show differentiation potential, with 94% exhibiting neuronal characteristics after further culture.

Conclusions

  • This study demonstrates a practical approach to isolate neural stem cells from mouse embryos.
  • The method lays the groundwork for future research into neural development and disease models.
  • It has potential implications for stem cell therapy and regenerative medicine.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of the microsurgical technique?
This technique is efficient, provides high yields of viable neural stem cells, and streamlines the isolation process compared to traditional methods.
How are the embryos harvested for the protocol?
Embryos are harvested from the uterus and subjected to micro-dissection to isolate the ganglionic eminence for neural stem cell extraction.
What types of cells are generated through this method?
The method primarily yields neural stem cells, which can differentiate into neurons and glia under appropriate culture conditions.
How can this technique be applied in research?
The isolated neural stem cells can be used for studies on neurogenesis, drug screening, and regenerative therapies, contributing to a better understanding of neural development.
What critical steps are involved in the protocol?
Key steps include careful microsurgery, tissue dissociation in neural media, and cell culture for observing neurosphere formation.
Are there any limitations to this method?
The technique requires precision in microsurgery and may necessitate advanced skills, which could limit accessibility to some researchers.

Tutaj wprowadzamy nowatorską technikę mikrochirurgiczną do izolacji nerwowych komórek macierzystych z wyniosłości zwojowej zarodka myszy E13.

Celem tego protokołu wideo jest ustanowienie źródłowego i skutecznego protokołu izolacji i hodowli embrionalnych komórek macierzystych myszy embrionalnej. Cześć, nazywam się Maryam Sadeghi-Zadeh. Jestem studentką studiów magisterskich na kierunku Biologia Komórkowa i Molekularna w Royan Institute.

Dzisiaj ja i mój kolega chcemy pokazać, jak pobrać nerwowe komórki macierzyste z 13 eminencji zwojowej zarodka myszy. Cześć, nazywam się Bahareh Alizadeh-Shoorjestan. Jestem studentką studiów magisterskich na kierunku Biologia Komórkowa i Molekularna na Wydziale Komórek Macierzystych Royan Institute for Biotechnology.

Cześć, nazywam się Reza Dehghani-Varnamkhasti. Studiuję również biologię komórkową i molekularną w Royan Institute. Zabiegi chirurgiczne obejmują pobranie każdych 13 zarodków myszy z macicy.

Przecięcie przedniej części ciemiączka zarodka za pomocą wygiętej końcówki igły w celu wyjęcia mózgu z czaszki. Mikropreparacja izolowanego mózgu w celu pobrania wyniosłości zwojowej. Dysocjacja pobranej tkanki w pożywce dla nerwowych komórek macierzystych w celu uzyskania zawiesiny pojedynczej komórki.

I wreszcie, posiewanie komórek w kulturze zawiesinowej w celu wytworzenia komórek nerwowych. Oczyść i zdezynfekuj skórę brzucha, spryskując ją 70% etanolem. Kontroluj skórę w górę brzucha, a następnie przetnij skórę i podkreśl twarz nożyczkami, aby odsłonić jamę brzuszną i rogi macicy.

Usuń nożyczkami rogi macicy zawierające zarodki i przenieś je do stożkowej probówki o pojemności 50 ml zawierającej 25 ml zimnego buforu MEM HEPES. Umieść stożkową rurkę pod okapem z przepływem laminalnym. Otwórz korek pod maską.

Wyjmij rogi macicy z probówki i spłucz trzy razy wystarczającą ilością świeżego zimnego buforu HEPES MEM, aby usunąć zanieczyszczenia i krew. Przenieść tkankę macicy na 10-centymetrową szalkę Petriego zawierającą od 7 do 10 ml zimnego buforu HEPES MEM. Otwórz rogi macicy za pomocą cienkich nożyczek i przenieś zarodki do nowego naczynia zawierającego od 7 do 10 ml zimnego buforu HEPES MEM.

Teraz umieść 10-centymetrową szalkę z zarodkami pod mikroskopem preparacyjnym w celu przeprowadzenia operacji mikrosekcji. Zegnij końcówkę igły strzykawki, naciskając jej końcówkę na stalowy uchwyt ostrza skalpela. Zegnij końcówkę igły, aż końcówka zostanie zgięta pod kątem od 70 do 90 stopni.

Sprawdź końcówkę igły pod mikroskopem preparacyjnym, aby zobaczyć zagięcie na końcu igły. Oczywiście zarodki mają w tym pozycję boczną. Nie zmieniając ich położenia, przytrzymywały szyję i ciało zarodka cienkimi kleszczami, a następnie wbiły zgiętą część igły głęboko w przód ciemiączka głowy zarodka.

Wystąpiłoby tam niewielkie krwawienie lub skrzep krwi. Przesuń końcówkę igły powierzchownie, podczas gdy zgięta część znajduje się wewnątrz wybrzuszenia w kierunku czoła, a następnie w kierunku tyłu głowy. Upewnij się, że przecinasz skórę i czaszkę, aby nie uszkodzić leżącego pod spodem mózgu.

Popchnij skórę końcówką igły na boki, aby odsłonić mózg. Wbić igłę od bocznej strony skóry do spodu ramy od bocznej strony skóry do obszaru pod mózgiem. A następnie usuń mózg z tej skóry głowy, popychając go tak, aby wyszedł z wypreparowanej czaszki.

Wyniosłość zwojowa jest wyraźnie pokazana na wideo z jej przyśrodkowymi i bocznymi częściami. Trzymał mózg stabilnie za pomocą kleszczy pielęgnacyjnych, a następnie za pomocą mikronożyczek przecinał korę każdej półkuli, aby odsłonić wyniosłość zwojową. Trzymał mózg i umieszczał wypreparowaną wyniosłość zwojową w 15 ml probówce wirówkowej zawierającej pożywkę z nerwowych komórek macierzystych.

Powtarzaj tę procedurę, aż cały mózg zostanie poddany mikrosekcji. Przeciąć wypreparowaną wyniosłość zwojową, przykładając końcówkę pipety do dna probówki i pipetując zawiesinę w górę iw dół przez 2 5 razy, aby rozbić tkankę i uzyskać zawiesinę pojedynczej komórki. Odwirować zawiesinę o stężeniu 110 g przez 5 minut.

Usunąć supernatant i ponownie zawiesić komórki w 1 ml probówki 0,05% w EDTA. Inkubować zawiesinę komórkową w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 10 minut. A następnie dodaj równoważną objętość inhibitora trypsyny sojowej, aby zatrzymać aktywność trypsyny.

Pipetować zawiesinę komórek w górę iw dół, aby upewnić się, że trypsyna została całkowicie dezaktywowana. Odwirować zawiesinę komórkową o masie 110 g przez 5 minut. Usunąć supernatant i ponownie zawiesić komórki w 1 ml kompletnej pożywki dla nerwowych komórek macierzystych i policzyć liczbę komórek.

Umieścić komórki na pożywce nerwowych komórek macierzystych w kolbie do hodowli tkankowej o odpowiedniej wielkości. Przenieść 5 ml 2T25, 20 ml do T75 i 40 ml do kolb T175. Neurosfery pojawią się po 3 dniach hodowli w temperaturze 37 stopni Celsjusza w nawilżanym inkubatorze z 5% CO2.

Aby zassać kulturę neurosfer, przenieś pożywkę z zawieszonymi neurosferami do wirówki, aby wirować przy 110 g przez 5 minut, a następnie odrzuć supernatant. W 1 ml 0,05% trypsyny EDTA i inkubować w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 10 minut. Następnie dezaktywuj trypsynę za pomocą inhibitora tyrpsyny sojowej i delikatnie pipetuj neurosfery w górę iw dół, aby stały się pojedynczymi komórkami.

Odwirować zawiesinę komórkową o masie 110 g przez 5 minut. Odrzucić supernatant i ponownie zawiesić komórki w 1 ml pożywki z nerwowymi komórkami macierzystymi. Komórki te są gotowe do następnego etapu hodowli lub hodowli na laminacie i w pełni pokrytej powierzchni do zaawansowanych eksperymentów.

Hodując milion pierwotnych nerwowych komórek macierzystych po siedmiu dniach, liczba komórek wzrośnie do trzech do czterech milionów. Po sześciu do siedmiu dniach kulki powinny mieć średnicę od 150 do 200 mikrometrów i będą gotowe do hodowli na laminowanych szalkach pokrytych poliornityną w przypadku braku bFGF i EGF do różnicowania neuronów. Wyniki testu cytometrii przepływowej pokazują, że blisko 95% komórek tworzących neurosfery było Nestin dodatnich, które są znanym markerem nerwowych komórek macierzystych.

Testy z użyciem beta tubuliny III i przeciwciał przeciwko białkom włóknistym zwojów ujawniają, że poprzez hodowlę nerwowych komórek macierzystych na powlekanej powierzchni około 94% wykazuje fenotyp neuronalny, a około 5% fenotyp glejowy. W tym krótkim filmie technika laboratoryjna do szybkiej izolacji nerwowych komórek macierzystych z 13 wyniosłości zwojowej zarodka myszy. Mam nadzieję, że odniesiesz sukces w hodowli nerwowych komórek macierzystych.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Embrionalne komórki macierzyste myszy embrionalnej izolacja hodowla wyniosłość zwojowa pożywka nerwowych komórek macierzystych zawieszenie pojedynczych komórek zabiegi chirurgiczne mikrorozwarstwienie bufor HEPES MEM biologia komórkowa i molekularna Royan Institute komórki nerwowe szalka Petriego mikroskop preparacyjny

Related Videos

Hodowla prekursorów mysich neuronalnych komórek macierzystych

27:44

Hodowla prekursorów mysich neuronalnych komórek macierzystych

Related Videos

20.6K Views

Ustanowienie embrionalnej hodowli nerwowych komórek macierzystych myszy za pomocą testu neurosfery

11:54

Ustanowienie embrionalnej hodowli nerwowych komórek macierzystych myszy za pomocą testu neurosfery

Related Videos

25.6K Views

Izolacja i hodowla embrionalnych neuronów ruchowych myszy na podstawie lektyny

09:25

Izolacja i hodowla embrionalnych neuronów ruchowych myszy na podstawie lektyny

Related Videos

18.6K Views

Izolacja i hodowla komórek grzebienia nerwowego z embrionalnej mysiej cewy nerwowej

12:48

Izolacja i hodowla komórek grzebienia nerwowego z embrionalnej mysiej cewy nerwowej

Related Videos

17.9K Views

Izolacja i hodowla dorosłych nerwowych komórek macierzystych ze strefy podmodzelowej myszy

05:31

Izolacja i hodowla dorosłych nerwowych komórek macierzystych ze strefy podmodzelowej myszy

Related Videos

564 Views

Technika generowania nerwowych komórek progenitorowych z embrionalnych komórek macierzystych myszy

02:22

Technika generowania nerwowych komórek progenitorowych z embrionalnych komórek macierzystych myszy

Related Videos

681 Views

Izolacja komórek macierzystych z poporodowego móżdżku myszy i różnicowanie w komórki nerwowe

04:04

Izolacja komórek macierzystych z poporodowego móżdżku myszy i różnicowanie w komórki nerwowe

Related Videos

448 Views

Jedna mysz, dwie kultury: izolacja i hodowla dorosłych nerwowych komórek macierzystych z dwóch stref neurogennych poszczególnych myszy

09:52

Jedna mysz, dwie kultury: izolacja i hodowla dorosłych nerwowych komórek macierzystych z dwóch stref neurogennych poszczególnych myszy

Related Videos

39.2K Views

Różnicowanie neuronalne embrionalnych komórek macierzystych myszy w hodowli jednowarstwowej bez surowicy

06:09

Różnicowanie neuronalne embrionalnych komórek macierzystych myszy w hodowli jednowarstwowej bez surowicy

Related Videos

14.6K Views

Izolacja i hodowla dorosłych nerwowych komórek macierzystych ze strefy podmodzelowej myszy

09:24

Izolacja i hodowla dorosłych nerwowych komórek macierzystych ze strefy podmodzelowej myszy

Related Videos

16K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code