7 stycznia 2019
Ten artykuł demonstruje technikę rozbudowy tradycyjnej, dwuwymiarowej (2D) elektroprzędzonej maty z nanowłókien w trójwymiarowe (3D) rusztowanie poprzez rozhermetyzowanie podkrytycznego płynu CO2. Te rozszerzone rusztowania są 3D, ściśle naśladują komórkowe wskazówki nanotopograficzne i zachowują funkcje cząsteczek biologicznych zamkniętych w nanowłóknach.
W protokole tym opisano transformację tradycyjnych elektroprzędzonych membran z nanowłókien z 2D do 3D, poprzez rozhermetyzowanie podkrytycznego płynu CO2, co wcześniej nie było realizowane. Metoda ta eliminuje wiele problemów związanych z poprzednimi podejściami, w tym stosowanie roztworów wodnych i reakcji chemicznych, procesy wieloetapowe, utratę aktywności zamkniętych w kapsułkach cząsteczek biologicznych oraz ograniczenia polimerów hydrofobowych. Tę procedurę demonstruje Shixuan Chen, doktor habilitowany z mojego laboratorium.
W szklanej probówce o średnicy 20 mililitrów rozpuść dwa gramy PCL w mieszaninie rozpuszczalników dichlorometanu i DMF, w stosunku cztery do jednego przy stężeniu 10 procent. Umieść szklaną probówkę w rotatorze laboratoryjnym, aż roztwór stanie się klarowny. Roztwór może mieszać się w ciągu nocy.
Aby skonfigurować aparat do elektroprzędzenia, najpierw dodaj roztwór PCL do 20-mililitrowej strzykawki z dołączoną igłą o rozmiarze 21. Upewnij się, że w strzykawce nie ma powietrza i odłączone rurki. Umieść obracający się stalowy bęben z kolektorem gruntowym w odległości 12 centymetrów od końcówki igły.
Za pomocą zacisków krokodylkowych podłącz prąd stały o dużej objętościtage zasilacz do igły i upewnij się, że kolektor jest uziemiony. Dla 20 mililitrów roztworu PCL ustaw parametr pompy strzykawkowej, używając średnicy 20,27 milimetra i natężenia przepływu 0,5 mililitra na godzinę. Sprawdź, czy na końcu igły tworzą się kropelki.
Zastosuj potencjał elektryczny 20 kilowoltów między dyszą przędzalniczą a kolektorem gruntowym znajdującym się w odległości 20 centymetrów od dyszy przędzalniczej. Zbierz wyrównane maty z nanowłókien w bębnie, obracając się z prędkością 2 000 obr./min. Zbierz maty z nanowłókien PCL, gdy osiągną grubość około jednego milimetra.
Zanurz maty z nanowłókien PCL w ciekłym azocie na pięć minut. Utrzymuj maty z nanowłókien PCL w ciekłym azocie i przebijaj maty z nanowłókien PCL dziurkaczem o średnicy 0,5 milimetra. Umieść maty z nanowłókien PCL w ciekłym azocie na pięć minut.
Pokrój maty na kwadraty o wymiarach jeden centymetr na jeden centymetr za pomocą ostrych nożyczek chirurgicznych, zanurzonych w ciekłym azocie, aby uniknąć deformacji krawędzi. Umieść pociętą matę w 30-mililitrowej probówce wirówkowej z około jednym gramem suchego lodu. Szczelnie zakryj pokrywę i pozwól, aby suchy lód zamienił się w ciekły dwutlenek węgla.
Gdy płyn utworzy się w rurce, szybko zwolnij ciśnienie, otwierając nakrętkę. Zdejmij i obserwuj dmuchane rusztowanie z rury. Umieść rusztowanie w nowej probówce wirówkowej z suchym lodem i powtórz tę czynność, aby uzyskać pożądaną grubość.
Wysterylizuj rusztowania z ekspandowanych nanowłókien w tlenku etylenu przed inkubacją z komórkami. Skuteczność rozszerzania tradycyjnych elektroprzędzonych mat z nanowłókien 2D na rusztowania 3D poprzez rozhermetyzowanie podkrytycznego płynu CO2 pokazano po lewej stronie po drugim zabiegu. Grubość rusztowania wzrosła z jednego milimetra bez leczenia do 2,5 milimetra przy jednym zabiegu CO2, do 19,2 milimetra przy dwóch zabiegach CO2.
Porowatość rusztowań wzrosła z 79,5 procent dla mat niepoddanych obróbce, do 92,1 procent po pierwszym zabiegu, do 99,0 procent po drugim zabiegu. Jest to istotne, ponieważ stopień penetracji komórki do rusztowania, a tym samym jej skuteczność w indukowaniu regeneracji, zależy w dużej mierze od porowatości. Obrazy SEM ujawniają, że gęsto upakowana struktura strzałkowa nieobrobionych mat 2D została przekształcona w uporządkowane, warstwowe struktury z wyrównanymi nanowłóknami po rozprężeniu CO2.
W Vevo badania przeprowadzono poprzez podskórne wszczepianie szczurom rusztowań z nanowłókien ekspandowanych CO2 z kwadratowymi otworami. Pozwala to na migrację i proliferację komórek w otworach, a także dalszą infiltrację w warstwach nanowłókien, które powstały podczas ekspansji. Od pierwszego do czwartego tygodnia po implantacji rozszerzone rusztowania wykazały znaczny wzrost liczby utworzonych naczyń krwionośnych i wielojądrowych komórek olbrzymich w porównaniu z tradycyjną matą z nanowłókien.
Po tej procedurze różne cząsteczki, w tym czynniki wzrostu, związki aminomodulujące, środki hemostatyczne i środki antymikrotubularne, mogą być włączane do mat z nanowłókien i ekspandowane w podkrytycznym płynie CO2. Takie funkcjonalizowane rusztowania z ekspandowanych nanowłókien mogą być wykorzystywane do badania nowych pytań w innych dziedzinach nauki, takich jak hemostaza, zapobieganie i leczenie infekcji, immunologia oraz regeneracja i naprawa tkanek. Rozpuszczalniki organiczne są toksyczne i należy się z nimi obchodzić w kapturze chemicznym.
Ponadto do rozprężania należy użyć pojemnika, który wytrzyma wysokie ciśnienie podkrytycznego płynu CO2
.Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł demonstruje nowatorską technikę przekształcania tradycyjnych membran z nanowłókien otrzymywanych metodą elektroprzędzenia ze struktury dwuwymiarowej (2D) w rusztowanie trójwymiarowe (3D) przy użyciu depresuryzacji podkrytycznego płynu CO2. Metoda ta skutecznie rozwiązuje problemy związane z wcześniejszymi podejściami, zachowując funkcjonalność cząsteczek biologicznych zamkniętych w nanowłóknach.
Metoda ta umożliwia przekształcenie dwuwymiarowych (2D) mat z nanowłókien otrzymanych metodą elektroprzędzenia w trójwymiarowe (3D) rusztowania o kontrolowanej grubości, porowatości i nanotopografii, co rozwiązuje kluczowe ograniczenia w projektowaniu rusztowań biomimetycznych. Dzięki zachowaniu enkapsulowanych cząsteczek bioaktywnych oraz wyeliminowaniu drastycznych warunków przetwarzania, metoda ta wspiera wiarygodne modelowanie przedkliniczne oraz badania nad regeneracją tkanek. Podejście to zwiększa pewność prognostyczną w opracowywaniu terapii opartych na rusztowaniach poprzez zapewnienie regulowanych i reprodukowalnych mikrośrodowisk 3D.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum od odkrycia do badań przedklinicznych, umożliwiając generowanie fizjologicznie istotnych modeli 3D po wstępnej identyfikacji celu i przed walidacją in vivo.