-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Pobieranie krwi przez nakłucie żyły podobojczykowej u myszy
Pobieranie krwi przez nakłucie żyły podobojczykowej u myszy
JoVE Journal
Medicine
Author Produced
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
Blood Collection Through Subclavian Vein Puncture in Mice

Pobieranie krwi przez nakłucie żyły podobojczykowej u myszy

Full Text
38,545 Views
06:03 min
May 4, 2019

DOI: 10.3791/59556-v

Hui Yang*1, Chenlu Wu*1, Fengjiao Liu2, Mi Wang1, Pu Zou1, Yuhu He1, Qiming Liu1, Qin Zhou3, Shenghua Zhou1

1Department of Cardiology, The Second Xiangya Hospital,Central South University, 2Department of Cardiology, The Xiangya Hospital,Central South University, 3Department of General Surgery, The Second Xiangya Hospital,Central South University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a protocol for blood sample collection from the subclavian vein of mice, highlighting its safety and effectiveness. The method is designed to be economical and gentle compared to traditional techniques.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Animal Research
  • Blood Collection Techniques

Background

  • Blood collection is crucial in research involving mice.
  • Traditional methods can be harmful and stressful to the animals.
  • Subclavian vein puncture offers a less invasive alternative.
  • The protocol aims to improve animal welfare while obtaining sufficient blood volumes.

Purpose of Study

  • To introduce a new method for blood collection from the subclavian vein.
  • To assess the safety and feasibility of this technique.
  • To provide a reliable alternative to existing methods.

Methods Used

  • General anesthesia was administered to the mice.
  • The mice were positioned supine for easier access to the vein.
  • The infraclavicular area was sterilized before puncture.
  • Blood was collected using a syringe after puncturing the subclavian vein.

Main Results

  • The method successfully collected blood volumes around 200 microliters.
  • Most attempts resulted in successful blood collection within a few tries.
  • All animals survived the procedure and recovered quickly.
  • No significant differences were observed between sexes in the study.

Conclusions

  • Subclavian vein puncture is a safe and effective method for blood collection in mice.
  • This technique minimizes harm compared to traditional blood collection methods.
  • It is suitable for observational research requiring multiple time points.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of the subclavian vein puncture method?
It is a safer and less invasive technique compared to traditional blood collection methods.
How much blood can be collected using this method?
Approximately 200 microliters can be collected per procedure.
What preparations are needed before the procedure?
Mice should be anesthetized, and the infraclavicular area must be sterilized.
How long does the procedure take?
The blood collection time ranges from 35 to 126 seconds.
Are there any risks associated with this method?
The procedure is generally safe, with all animals recovering without significant issues.
Can this method be used for repeated blood sampling?
Yes, it is suitable for observational studies requiring multiple blood samples.

Tutaj prezentujemy protokół pobierania próbek krwi z żyły podobojczykowej myszy.

Pobieranie krwi przez nakłucie żyły podobojczykowej u myszy. Pobieranie próbek krwi od myszy jest niezbędne w większości laboratoriów badawczych. Konwencjonalnym podejściem do pobierania krwi u myszy jest obcinanie ogona, gdy potrzebna jest próbka o wielkości mniejszej niż 100 mikrolitrów.

Jeśli jednak wymagane jest więcej niż 100 mikrolitrów krwi w nieterminalnym punkcie czasowym, najczęściej rozważanymi technikami są krwawienie zaoczodołowe, podżuchwowe lub podmyślne pobieranie krwi. W niektórych miejscach jako metody alternatywne przyjęto nacięcie żyły szyjnej lub cewnikowanie. Niemniej jednak powyższe metody są szkodliwe dla myszy.

Na podstawie naszych formalnych badań przedstawiamy tutaj nową, ekonomiczną i delikatną strategię pobierania krwi z żyły podobojczykowej u myszy. Przedstawiono i omówiono bezpieczeństwo i wykonalność oraz uzyskaną objętość krwi za pomocą tej techniki. Po znieczuleniu ogólnym połóż mysz w pozycji leżącej.

Oczyść przestrzeń podobojczykową 75% etanolem. Potwierdź obojczyk i dół nadmostkowy przed nakłuciem. Zidentyfikuj miejsce nakłucia w środku obojczyka.

Przesuń igły w górę i w górę w kierunku dołu nadmostkowego, tuż za obojczykiem. Po przesunięciu się o trzy do czterech milimetrów do przodu, utrzymuj podciśnienie w strzykawce i powoli cofnij igłę. Krew będzie spływać do strzykawki w trakcie odstawiania.

Po pobraniu krwi delikatnie uciskaj miejsce nakłucia przez jedną do dwóch minut, aby zatrzymać krwawienie. Przygotuj wymagane materiały, w tym 75% etanol, taśmę klejącą, środek do depilacji, tubki, strzykawkę o pojemności 1,0 mililitra połączoną z igłą, wagę elektroniczną, heparynę i sól fizjologiczną. Po zadowalającym znieczuleniu ogólnym umieść mysz na stole operacyjnym w pozycji leżącej, w odległości od dwóch do czterech centymetrów od krawędzi stołu, aby ułatwić nakłucie żyły.

Unieruchom kończyny w wygodnej pozycji, jak pokazano na rysunku 2. W całym zabiegu nie była potrzebna intubacja ani wentylacja mechaniczna. Nałóż środek do depilacji wokół przestrzeni podobojczykowej za pomocą bawełnianego wacika.

Trzy minuty później umyj środek do depilacji wilgotnym wacikiem, aby usunąć sierść i wszelkie widoczne zabrudzenia. Wysterylizuj przestrzeń podobojczykową 75% etanolem, a następnie osusz czystą gazą. Zidentyfikuj położenie kości obojczyka i dołu nadmostkowego jednym palcem.

Zlokalizuj miejsce nakłucia, blisko środka kości obojczyka i zaczep się o nie. Przyłóż lewy palec wskazujący bokiem do miejsca nakłucia, aby unieruchomić skórę i tkankę podskórną. Przesuń igłę w górę w ułożeniu czaszki w kierunku dołu nadmostkowego.

Gdy igła wejdzie w tkankę podskórną, palec serdeczny prawej ręki musi przesunąć się do tyłu, aby wytworzyć podciśnienie. Przesunąć strzykawkę do przodu o trzy do czterech milimetrów, ale przerwać, jeśli nie ma odpływu krwi do strzykawki. Następnie powoli odciągnij strzykawkę i utrzymuj w niej podciśnienie.

W większości przypadków krew dostanie się do strzykawki w trakcie cofania się. Gdy krew dostanie się do strzykawki, należy ją zamocować i utrzymywać podciśnienie, aż do uzyskania wymaganej objętości krwi zebranej w strzykawce. Po pobraniu krwi wyjmij igłę do nakłucia i lekko dociśnij miejsce nakłucia wacikiem przez jedną do dwóch minut, aby zatrzymać krwawienie, a następnie wyślij myszy z powrotem do klatek.

Przenieś próbkę krwi do naszej probówki z heparyną. Powtórzyliśmy tę procedurę na 10 myszach Quimi. Dziewięć zabiegów zakończyło się sukcesem po prawej stronie.

Jeden przypadek nie powiódł się w ciągu trzech prób po prawej stronie, a pobranie krwi powiodło się po lewej stronie. Przebieg czasowy wahał się od 35 do 126 sekund. Objętość pobierania krwi ustalono na około 200 mikrolitrów.

Pobranie krwi zakończyło się sukcesem po jednej lub czterech próbach. Pobieranie próbek krwi powiodło się za pierwszym razem u dwóch myszy i przy czterech próbach u jednej myszy, przy dwóch do trzech próbach u innych myszy. Wszystkie dane przedstawiono w tabeli 1.

Wszystkie zwierzęta przeżyły i wyzdrowiały w ciągu 30 minut po pobraniu krwi. Nie stwierdzono istotnej różnicy między płciami dla wszystkich obserwowanych parametrów. Podsumowując, nakłucie żyły podobojczykowej jest bezpieczną i skuteczną metodą pobierania krwi u myszy.

Oprócz przecięcia żyły ogonowej i pobrania krwi ze splotu zaoczodołowego, metoda ta jest wykonalna i odpowiednia do badań obserwacyjnych w kilku punktach czasowych u myszy.

Explore More Videos

Pobieranie krwi nakłucie żyły podobojczykowej myszy pobieranie próbek krwi laboratoria badawcze krwawienie zaoczodołowe krwawienie podżuchwowe nacięcie żyły szyjnej zabieg znieczulający przestrzeń podobojczykowa nakłucie igły heparyna objętość krwi metody etyczne

Related Videos

Nakłucie żyły podobojczykowej jako alternatywna metoda pobierania próbki krwi u szczurów

06:42

Nakłucie żyły podobojczykowej jako alternatywna metoda pobierania próbki krwi u szczurów

Related Videos

15.1K Views

Zmodyfikowane pobieranie krwi z żył ogonowych myszy nieznieczulonych za pomocą próżniowego systemu pobierania krwi i lupy okularowej

07:42

Zmodyfikowane pobieranie krwi z żył ogonowych myszy nieznieczulonych za pomocą próżniowego systemu pobierania krwi i lupy okularowej

Related Videos

20K Views

Powtarzające się pobieranie próbek krwi z żyły podobojczykowej przytomnego szczura

04:52

Powtarzające się pobieranie próbek krwi z żyły podobojczykowej przytomnego szczura

Related Videos

6.3K Views

Pobieranie próbek krwi z żyły podobojczykowej u przytomnych szczurów

03:52

Pobieranie próbek krwi z żyły podobojczykowej u przytomnych szczurów

Related Videos

4K Views

Nakłucie żył twarzy do pobierania krwi myszy

05:01

Nakłucie żył twarzy do pobierania krwi myszy

Related Videos

1.1K Views

Pobieranie krwi sercowej przez nakłucie podobojczykowe u myszy

04:47

Pobieranie krwi sercowej przez nakłucie podobojczykowe u myszy

Related Videos

3K Views

Procedura nakłucia podwiązania kątnicy

11:53

Procedura nakłucia podwiązania kątnicy

Related Videos

56.5K Views

Podawanie środków terapeutycznych przez wstrzyknięcie domózgowo-komorowe (ICV) i dożylne (IV) u myszy

05:55

Podawanie środków terapeutycznych przez wstrzyknięcie domózgowo-komorowe (ICV) i dożylne (IV) u myszy

Related Videos

63.6K Views

Pobieranie biomarkerów zdrowotnych z wysuszonej kropli krwi w celu maksymalizacji udziału w badaniach populacyjnych

07:20

Pobieranie biomarkerów zdrowotnych z wysuszonej kropli krwi w celu maksymalizacji udziału w badaniach populacyjnych

Related Videos

37.3K Views

Przyżyciowe pomiary wideomikroskopii przepływu krwi w siatkówce u myszy

10:16

Przyżyciowe pomiary wideomikroskopii przepływu krwi w siatkówce u myszy

Related Videos

6.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code