1 czerwca 2019
Poniżej opisano dwa podejścia do charakteryzacji zdarzeń polaryzacji komórkowej w limfocytach B podczas formowania IS. Pierwsze obejmuje ilościową analizę rekrutacji organelli i reorganizacji cytoszkieletu w błonie synaptycznej. Drugie to podejście biochemiczne, którego celem jest charakterystyka zmian w składzie centrosomy, która ulega polaryzacji w synapsie immunologicznej.
W tej recenzji omówimy zarówno techniki obrazowania, jak i biochemiczne stosowane do badania pozycjonowania i składu organelli, a także przekształceń cytoszkieletu obserwowanych podczas formowania synapsy immunologicznej. Wczesne etapy aktywnej remodelacji pozwalają limfocytom B zwiększyć powierzchnię komórki i zmaksymalizować ilość kompleksów antygen-BCR gromadzonych w synapsie. Z drugiej strony, lokalne rekrutowanie lizosomów, wraz z centrosomowym na błonie synaptycznej, może być sprzężone z sekrecją lizosomu, która jest znana z ułatwiania ekstrakcji unieruchomionych antygenów.
Pochłonięty antygen jest następnie przetwarzany w śródplazmatycznych przegrodach lizosomalnych na peptydy, które są ładowane na cząsteczki MHC klasy II w celu prezentacji komórkom T pomocniczym. Dlatego też, badanie dynamiki organelli związanych z synapsą immunologiczną jest kluczowe dla zrozumienia, jak limfocyty B są w pełni aktywowane. Immunofluorescencja limfocytów B aktywowanych za pomocą unieruchomionych antygenów pozwala śledzić różne komponenty komórki i jak mogą być one rekrutowany do synapsy immunologicznej.
Limfocyty B mogą być aktywowane przez unieruchomione antygeny na powierzchni kulki lub nakrywki. Kulki pokryte antygenem przygotowuje się poprzez inkubację specyficznych ligandów z kulamkami aminowymi wcześniej poddanymi obróbce glutaraldehydem w celu aktywacji grup aminowych. Resuspenduj aktywowane kulki w 100 mikrolitrach PBS i wymieszaj.
Tymczasem przygotuj roztwór antygenu, dodając 100 mikrograma na mL ligandu BCR w 150 mikrolitrach PBS. Następnie dodaj 50 mikrolitrów aktywowanych kulek do roztworu antygenu i inkubatuj przez noc w czterech stopniach Celsjusza. Pamiętaj, użyj również niezwiązanego ligandu jako ujemnej kontroli.
Po inkubacji, przemyj kulki w PBS. Odsącz nadstan i zastąp PBS. Powtórz trzy razy.
Następnie zablokuj trzy grupy aminowe resuspendują kulki w 500 mikrolitrach roztworu BSA. Wreszcie resuspenduj kulki w 70 mikrolitrach PBS. Aby obliczyć końcową koncentrację, możesz użyć hemocytometru do zliczenia kulek.
Do aktywacji limfocytów B użyj 50 mL probówki i resuspenduj komórki w koncentracji 1,5 miliona na mL w CLICK uzupełnionym o 5% surowicy wołowej płodowej. Następnie dodaj 150 000 limfocytów B, co odpowiada 100 mikrolitrom mieszanki komórek i kulek do pokrywki pokrytej poli-L-lizynę i inkubatuj w 37 stopniach na różne punkty czasowe. Drugie podejście do aktywacji limfocytów B to ich zasiew na pokrywkach pokrytych antygenem.
W tym celu pokryj szklanki przeciwciałami przeciwko BCR i B220, co poprawia przyleganie komórek. Przygotuj roztwór antygenu, dodając przeciwciała przeciwko BCR i B220 w PBS do końcowej koncentracji 10 mikrograma na mL i 0,5 mikrograma na mL odpowiednio. Następnie umieść pokrywkę na pokrywie 24-dołkowej płytki pokrytej parafilmem i dodaj 40 mikrolitrów roztworu antygenu.
Zatnij płytkę i następnie inkubatuj w 4 stopniach przez noc. Aby rozpocząć aktywację na pokrywkach, najpierw przemyj je w PBS i pozwól im wyschnąć przez kilka minut. Następnie dodaj 150 000 limfocytów B i inkubatuj w 37 stopniach na różne punkty czasowe.
W obu przypadkach, podczas aktywacji za pomocą kulek lub pokrywek pokrytych antygenem, zalecamy rozpoczęcie od najdłuższego punktu czasowego, a następnie przejście do krótszych. Gdy już umieścisz suchą pokrywkę na szklanym slajdzie, możesz użyć mikroskopu epifluorescencyjnego lub konfokalnego, aby obejrzeć swoje próbki, w zależności od wymaganej rozdzielczości. Skup się na próbce używając światła przepuszczonego.
Powinieneś szukać pól, gdzie komórki i kulki współdziałają w proporcji jeden do jednego. W przypadku limfocytów B aktywowanych na pokrywkach pokrytych antygenem, użyj obiektywu 100x dla lepszej rozdzielczości. Pod względem parametrów, rozważ zrobienie z-stacku, który obejmuje całą komórkę.
Możesz oznaczyć aktynę, aby wyznaczyć dolne i górne granice komórki. W przypadku limfocytów B aktywowanych za pomocą kulek pokrytych antygenem i oznakowanych na jeden punkt, najpierw wyznacz dwa obszary: obszar komórki i obszar kulki. Następnie zidentyfikuj pozycję lub organellę za pomocą punktu i uzyskaj jej współrzędne lokalizacji.
Narysuj dwa wektory: jeden między centrum komórki a organolem, a drugi między centrum komórki a centrum kulki. Zmierzyj długość obu i zmierzyj kąt między dwoma wektorami, teraz określany jako alfa. Zrób projekcję z wektorem między centrosomowym a centrum komórki używając Guassiana alfy, a następnie oblicz wskaźnik polaryzacji organelli przez podzielenie rzutowanego wektora, a, przez b.
Tak więc wskaźnik polaryzacji między zero a jednym wskazuje na polaryzowany fenotyp. Wartości między zero a minus jednym wskazują na fenotyp niepolaryzowany. Aby określić wskaźnik polaryzacji dla bardziej rozproszonych organelli, takich jak lizosomy, możesz użyć tego samego algorytmu wspomnianego wcześniej, zmieniając współrzędne lokalizacji organelli na współ
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł omawia techniki obrazowania i metody biochemiczne służące do badania dynamiki organelli oraz reorganizacji cytoszkieletu w limfocytach B podczas tworzenia synapsy immunologicznej. Zrozumienie tych procesów ma kluczowe znaczenie dla pojęcia mechanizmów aktywacji limfocytów B.
Zrozumienie dynamiki organelli podczas formowania synapsy immunologicznej dostarcza wglądu w mechanizmy aktywacji limfocytów B, która jest krytycznym procesem w odporności humoralnej. Wiedza ta wspiera walidację celów i ograniczanie ryzyka w rozwoju leków biologicznych poprzez wyjaśnienie ścieżek prezentacji antygenu. Opisane podejścia obrazowe i biochemiczne umożliwiają ilościową ocenę rekrutacji cytoszkieletu i organelli, co pozwala określić istotność modeli przedklinicznych.
Opisane metody integrują się z kontinuum procesu badawczego – od wczesnych badań aktywacji limfocytów B po identyfikację związków wiodących – dostarczając mierzalnych, opartych na obrazowaniu wyników dotyczących tworzenia się synaps oraz dynamiki organelli.