August 24th, 2019
Prezentowany protokół opisuje łatwe chirurgiczne usunięcie wyrostka robaczkowego (łaty kątniczej) u myszy, a następnie indukcję raka jelita grubego związanego z chorobą jelit grubego. Ten mysi model wyrostka robaczkowego umożliwia badanie biologicznej roli wyrostka robaczkowego w patogenezie chorób przewodu pokarmowego u ludzi.
Ogólny protokół opisuje łatwe do wykonania zabiegi chirurgiczne polegające na usunięciu wyrostka robaczkowego znanego jako plaster kątniczy u myszy. Mysi model wyrostka robaczkowego może być wykorzystany do badania biologicznych ról wyrostka robaczkowego w patogenezie choroby przewodu pokarmowego człowieka. Wyrostek robaczkowy człowieka jest narządem spornym.
Ostatnie badania sugerują, że wyrostek robaczkowy odgrywa ważną rolę w utrzymaniu zdrowia jelit. Aby zbadać biologiczną funkcję wyrostka robaczkowego, kluczowe znaczenie ma wygenerowanie modelu zwierzęcego związanego z wycięciem wyrostka robaczkowego związanego z chorobą. W tym protokole opiszemy prosty i bezpieczny etap chirurgiczny usuwania wyrostka robaczkowego, znany jako plaster kątniczy u myszy.
Aby zapewnić sukces tego modelu, należy wykonać trzy kluczowe kroki, jak zobaczysz w poniższym filmie. Najpierw zlokalizuj kątnicę myszy przed operacją. Po drugie, wykonaj małe nacięcie w jamie brzusznej.
Po trzecie, zdezynfekuj i zamknij kikut kątnicy. Pierwsza część, wycięcie wyrostka robaczkowego myszy. Przed zabiegiem należy przygotować sterylne narzędzia chirurgiczne i roztwory czyszczące.
Znieczulij i zabezpiecz mysz na platformie w pozycji leżącej, umieszczając cztery paski medycznej taśmy klejącej w poprzek kończyn, aby zapobiec ruchom posturalnym podczas operacji. Delikatnie dotknij całego brzucha myszy, aby poczuć guz. Przykryj serwetkę i zdezynfekuj ogolony obszar brzucha myszy tak szeroko, jak to możliwe, używając dwóch razy entojodu.
Wykonaj podłużne nacięcie w zakresie od 0,5 centymetra do jednego centymetra na linii środkowej brzucha. Zgodnie z wcześniej ustalonym położeniem kątnicy, poszukaj kątnicy i delikatnie wyeksterioryzuj ją na około jeden centymetr długości, aby zidentyfikować plamę kątnicy. Użyj wstępnie podgrzanej i sterylnej soli fizjologicznej, aby nawodnić jelito.
Aby zapobiec potencjalnym powikłaniom krwawienia pooperacyjnego i infekcji, należy podwiązać krezkowe naczynia krwionośne kątnicy za pomocą 8-0 szew. Uwodnić kątnicę solą fizjologiczną. Zaznacz obszar resekcji za pomocą szwu 4-0 z otwartą pętlą w pobliżu wierzchołka kątnicy na bliższej części okrężnicy.
Odetnij plaster kątnicy poniżej zaznaczonej resekcji za pomocą mikronożyczek i zetrzyj pozostałą zawartość kątnicy wacikami medycznymi. Zdezynfekuj kikut kątnicy entojodyną. Zamknij kikut szwem biegnącym za pomocą 8-0 szew.
Ostrożnie usuń pętlę z gwintem 4-0, wcześniej używaną do oznaczania resekcji na kikutu kątnicy. Wysterylizuj zszytą pozycję za pomocą entoilu. Ponownie nawodnić obszar cięcia solą fizjologiczną.
Zamknij warstwę mięśni szwem biegowym za pomocą 8-0 nić do szwów. Zamknij warstwy skóry za pomocą przerywanych szwów z nicią 4-0. Dwukrotnie zdezynfekuj cięcie chirurgiczne entojodem.
Następnie usuń jod za pomocą 75% alkoholu medycznego. Delikatnie odwróć mysz do tyłu. Podskórnie wstrzyknąć 0,1 miligrama na kilogram masy ciała buprenorfiny i 0,4 mililitra soli fizjologicznej.
I oprzyj mysz na poduszce grzewczej, aż odzyska przytomność. Umieść mysz z powrotem w sterylnej klatce i uważnie monitoruj mysz pod kątem oznak bólu przez trzy dni po operacji, aby zapewnić jej powrót do zdrowia. Część druga: Indukcja raka jelita grubego związanego z zapaleniem jelita grubego za pomocą azoksymetanu, AOM i siarczanu sodu dekstranu, DSS, siedem dni po wycięciu wyrostka robaczkowego.
Rozmrozić jedną porcję AOM i rozcieńczyć ją do 1 miligrama na mililitr przy użyciu 0,9% soli fizjologicznej. Cały proces przygotowania odbywa się w dygestorium. Rozpuść cztery gramy proszku DSS w 200 mililitrach autoklawizowanego roztworu wodnego, aby przygotować 2% DSS.
W każdej klatce znajduje się pięć myszy. Wykonaj dootrzewnowe wstrzyknięcie OZUŚ w ilości 0,01 mililitra na gram na mysz w zależności od jej wagi. Zastąp wodę w autoklawie 2% DSS na pięć dni.
Myszy będą karmione wodą w autoklawie przez dodatkowe dwa cykle. Część trzecia: Wyniki. Wyniki przepływu i testu ELISA wskazują na pomyślne usunięcie łaty kątniczej.
Procedura ta może przyczynić się do znacznego zmniejszenia liczby komórek plazmatycznych swoistych dla IgA, oczywistej zmiany wydzielniczej IgA w jelicie grubym, w porównaniu do 3% DSS, który ma wysoką śmiertelność i znaczną zmianę masy ciała z powodu ciężkiego krwawego stolca, wypadania odbytu i ropnia brzucha. 2% DSS jest odpowiedni dla całego procesu ze względu na wysoki wskaźnik przeżycia do prawie 80% i rozsądną zmianę masy ciała zarówno w grupach pozorowanych, jak i po wycięciu wyrostka robaczkowego. Jak pokazano na tych obrazach, udało nam się wywołać guzy jelita grubego związane z zapaleniem jelita grubego.
Na obrazach barwienia H&E strzałka oznacza owrzodzenie błony śluzowej, grot strzałki oznacza gruczolakoraka, a biała strzałka oznacza naciek neutrofili między gruczołami. Różne stadia gruczolakoraka można zaobserwować zarówno w grupach pozorowanych, jak i wyciętych wyrostka robaczkowego. Ten ekonomiczny model wycięcia wyrostka robaczkowego u myszy może być wykorzystany do udzielenia odpowiedzi na kilka ważnych pytań, takich jak: jaka jest rola wyrostka robaczkowego w regulacji bakterii jelitowych i jak uczestniczy w odpowiedzi immunologicznej w tkance limfatycznej związanej z jelitami.
Pamiętaj, że aby uniknąć uszkodzenia zrostu jelita, ważne jest wstępne położenie kątnicy i małe nacięcie skóry. Ponadto użyliśmy 2%DSS do wywołania zapalenia jelita grubego. Ale wyższe stężenie DSS może być stosowane w przypadku innych szczepów myszy.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Ten protokół opisuje prostą procedurę chirurgiczną do usunięcia wyrostka robaczkowego, nazywanego łacińskim caecal patch, u myszy. Ten model usunięcia wyrostka robaczkowego u myszy ułatwia badanie biologicznej roli wyrostka w rozwoju chorób przewodu pokarmowego u ludzi.
The murine appendectomy model enables mechanistic investigation of the appendix in gut immune regulation and microbiota homeostasis, providing a disease-relevant system to study colorectal cancer pathogenesis. By linking appendectomy to colitis-associated tumor development, the model supports target validation and de-risking of hypotheses linking lymphoid tissue to tumorigenesis. This preclinical model offers predictive value for evaluating therapeutic interventions targeting gut-associated immune pathways in oncology pipelines.
The model fits within the discovery continuum from target validation through lead identification to preclinical efficacy testing, particularly for immunomodulatory or microbiome-modulating agents.