7 maja 2020
Opisana tutaj jest procedura stereotaktyczna, która może celować w trudne i trudno dostępne obszary mózgu (ze względu na ograniczenia przestrzenne) przy użyciu kątowego podejścia koronalnego. Protokół ten można dostosować zarówno do modeli mysich, jak i szczurzych i może być stosowany do różnych zastosowań neuronaukowych, w tym implantacji kaniuli i mikroiniekcji konstruktów wirusowych.
Protokół ten jest istotny, ponieważ jest to adaptowalna procedura stereotaktyczna, która może być stosowana zarówno u myszy, jak i szczurów, i może być stosowana do wielu nowych technik neuronaukowych. Główną zaletą tej elastycznej procedury stereotaktycznej jest jej zdolność do celowania w trudne i trudno dostępne obszary mózgu. Procedurę zademonstruje Chelsea Faber, młoda, utalentowana pracownica naukowa z tytułem doktora w laboratorium.
Po upewnieniu się, że rama i mikromanipulator zostały skalibrowane, umieść środkowy wysokościomierz w gnieździe podstawy uchwytu głowicy. Zamocuj lunetę centrującą w uchwycie narzędziowym i skieruj lunetę w dół. Dostosuj położenie mikromanipulatora, aż krzyż nitkowy zostanie wyrównany i skupiony na krzyżu nitkowym miernika, a następnie umieść nauszniki w uchwytach tak, aby linie wskaźnika po obu stronach znajdowały się na zero.
Użyj pokręteł przyśrodkowo-bocznych i przednio-tylnych na uchwycie głowy, aby wyśrodkować nauszniki w płaszczyznach X i Y nad krzyżem celownika środkowego wysokościomierza. Aby wyrównać pozycję belki dousznej w osi Z, zdejmij nauszniki z uchwytu i wyjmij środkowy miernik wysokości. Następnie wymień nauszniki i ponownie wyśrodkuj pręty na zero.
Następnie ponownie spójrz w dół lunety i użyj odpowiednio pokręteł przesunięcia w pionie i pochylenia koronalnego, aby opuścić i obrócić nauszniki, aż celownik lunety pozostanie wyśrodkowany między paskami usznymi podczas rotacji koronalnej. Aby wyrównać środkową oś obrotu dla współrzędnych kątowych, zabezpiecz lunetę centrującą w uchwycie narzędziowym i ustaw mikromanipulator na obliczonej współrzędnej. Zwróć uwagę, że współrzędna prawo/lewo dla implantacji pod kątem odpowiada długości boku A. Patrząc w dół lunety, zaznacz tę współrzędną, aby reprezentowała punkt, w którym kaniula wejdzie do mózgu, po obróceniu głowy.
Ustaw mikromanipulator nad linią środkową i użyj pokrętła nachylenia korony, aby obrócić głowę do obliczonego kąta. Jeśli krzyż nitkowy lunety nie pokrywa się ze znacznikiem odniesienia, użyj pokrętła przesuwu w pionie, aby wyregulować pozycję głowicy w osi Z, aż krzyż nitkowy zrówna się jak najbliżej znaku. W tym momencie dowolny punkt obrotu powinien być wyrównany ze środkiem obrotu stereotaksu.
Obróć głowicę z powrotem do pozycji koronalnej o zerowym stopniu przed przystąpieniem do kolejnych etapów wiercenia i mikroiniekcji. Po wykonaniu mikroiniekcji przywróć głowę do pozycji zerowego stopnia i za pomocą wiertarki ręcznej umieść dwa otwory, z przodu, i dwa otwory, z tyłu, wystarczająco daleko od kątowych otworów zadziorów współrzędnych, aby pomieścić część okucia światłowodu, która znajduje się nad czaszką. Po wywierceniu wszystkich otworów użyj małego płaskiego śrubokręta, aby włożyć kościane tak delikatnie, jak to możliwe, tak aby mocno przylegały do czaszki, nie penetrując mózgu.
Zaciśnij kaniulę światłowodową w uchwycie kaniuli i umieść uchwyt kaniuli w uchwycie narzędziowym. Obróć głowicę do obliczonego kąta, zwracając uwagę, że współrzędne mikromanipulatora nie mają zastosowania do nowego narzędzia. Użyj środka ustawionych pod kątem otworów zadziorów jako celu implantacji.
Opuść światłowód, aż dotknie opony twardej w środku otworu zadziorów i wyzeruj mikromanipulator w osi Z. Powoli opuść światłowód do współrzędnej kąta grzbietowego brzusznego, a następnie użyj żelu cyjanoakrylowego, aby połączyć tuleję światłowodową ze kotwiącymi ipsilateral. Użyj końcówki do mikropipety, aby nałożyć przyspieszacz.
Gdy żel całkowicie stwardnieje, delikatnie poluzuj i podnieś uchwyt kaniuli, aż będzie wolny od skuwki. Wszczep drugi światłowód do przeciwległej współrzędnej kątowej, a następnie wypoziomuj głowę. Dla dodatkowego bezpieczeństwa użyj żelu cyjanoakrylowego i akceleratora, aby wykonać dodatkowe połączenie między dwiema kątowymi kaniulami światłowodowymi i nałóż niewielką, stosunkowo cienką ilość cementu dentystycznego na powierzchnię czaszki, uważając, aby dokładnie pokryć kotwiące i podstawę kaniul światłowodowych.
Aby zbadać rolę neuronów jądra brzuszno-przyśrodkowego podwzgórza w kontroli glikemii, w tej reprezentatywnej analizie zastosowano standardowe, niekątowe, stereotaktyczne podejście do obustronnej mikroiniekcji wirusa rodopsyny kanału hamującego do jądra brzuszno-przyśrodkowego. Biorąc pod uwagę bliskość jądra brzuszno-przyśrodkowego do linii środkowej, ograniczenia przestrzenne nie pozwalały na implantację obustronnych światłowodów bez kąta, co wymagało opracowania chirurgicznej strategii precyzyjnego wszczepiania światłowodów pod kątem. Najważniejsze rzeczy, o których należy pamiętać, to po prostu uzbroić się w cierpliwość i nie spieszyć się, ponieważ konsekwentne i dokładne przydzielanie współrzędnych ma kluczowe znaczenie dla sukcesu.
Procedura ta może być dostosowana i zastosowana do każdej metody neuronaukowej wymagającej mikroiniekcji lub implantacji do mózgu gryzonia, w tym chemogenetyki, optogenetyki i metod fotometrii włókien.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Ten artykuł opisuje procedurę stereotaktyczną wykorzystującą ukośny dostęp korony do wskazywania trudno dostępnych obszarów mózgu zarówno w modelach mysich, jak i szczurzych. Ten adaptacyjny protokół może być stosowany w różnych zastosowaniach neuronaukowych, w tym w implantacji kaniulek i mikroiniekcjach konstrukcji wirusowych.
Targeting deep brain structures with precision remains a critical bottleneck in neuroscience-driven target validation, particularly for midline-adjacent nuclei where conventional stereotactic approaches fail due to vascular and ventricular constraints. This adaptable angled approach enables reliable access to otherwise inaccessible regions, supporting mechanistic de-risking of therapeutic hypotheses in preclinical models. By facilitating consistent hardware implantation for optogenetics, chemogenetics, and fiber photometry, it enhances predictive confidence in target engagement studies.
This method fits within the discovery biology phase, enabling precise target engagement before progressing to lead identification and preclinical efficacy testing.