28 maja 2021
Celem tego protokołu jest zbadanie ewolucji i ekspresji genów kandydujących przy użyciu danych sekwencjonowania RNA.
Protokół ten określa bioinformatyczne kroki w celu zbadania ewolucji molekularnej i ekspresji genów kandydujących. Tutaj podajemy dokładne instrukcje, aby każdy, kto ma minimalne doświadczenie bioinformatyczne, mógł przejść przez ten protokół. Ten rurociąg może być stosowany do dowolnego organizmu i dowolnej rodziny genów.
Jednym z częstych problemów podczas wykonywania bioinformatyki jest awaria skryptów powłoki. Próbując skorzystać z tego protokołu, upewnij się, że masz najnowsze oprogramowanie, przeczytaj pliki błędów i dokładnie sprawdź instrukcję. Aby rozpocząć, zaloguj się do konta klastra komputerowego w terminalu lub oknie aplikacji PuTTY.
Na terminalu pobierz Toolkit w wersji 2.8.1 za pomocą Wget, a następnie zakończ instalację programu. Wyszukaj w NCBI numer dostępu dla żądanych próbek, a następnie uzyskaj dane sekwencji RNA w oknie terminala. Uzyskaj dwa pliki FASTQ dla typu plików sparowanych.
Znajdź genom referencyjny online, jeśli taki istnieje. Aby uzyskać zestaw odniesienia, wpisz wget w oknie terminalu i wklej adres łącza. Jeśli to możliwe, skopiuj również plik GTF i plik FASTA białka dla genomu referencyjnego.
Indeksuj genom, a następnie mapuj odczyty i obliczaj wyrażenie dla każdej próbki. Zmień nazwę pliku wyników na opisową i wygeneruj macierz wszystkich zliczeń. Otwórz okno przeglądarki internetowej i przejdź do NCBI GenBank.
W pasku wyszukiwania wpisz nazwę interesującego Cię genu oraz nazwę blisko spokrewnionych gatunków, które zostały zsekwencjonowane. Po lewej stronie paska wyszukiwania wybierz Białko, a następnie kliknij w Szukaj. Wyodrębnij sekwencje, klikając przycisk Wyślij do, a następnie wybierz pozycję Plik.
W obszarze Format wybierz opcję FASTA, a następnie kliknij przycisk Utwórz plik. Przenieś plik FASTA z homologami do klastra komputerowego za pomocą lokalnego okna terminala lub FileZilla. Następnie wyszukaj geny kandydujące za pomocą BLAST+Na klastrze komputerowym utwórz bazę danych BLAST z genomu lub białka transtranskryptomu, FASTA.
Wyślij homologiczne sekwencje genów z NCBI do bazy danych interesujących gatunków, a następnie wyświetl plik wyjściowy za pomocą polecenia more. Skopiuj unikalne identyfikatory genów z interesujących gatunków do nowego pliku tekstowego. Wyodrębnij sekwencje genów kandydujących.
Aby potwierdzić adnotację genu za pomocą Reciprocal BLAST, przejdź do narzędzia BLAST Local Alignment Search Tool, wybierz BLASTP, a następnie wklej kandydujące sekwencje, wybierz bazę danych nienadmiarowych sekwencji białek i kliknij BLAST. Otwórz MEGA, kliknij Wyrównaj, a następnie Edytuj wyrównanie kompilacji, wybierz Utwórz nową linię trasowania i kliknij OK. Wybierz opcję Białko. Gdy otworzy się okno Wyrównanie, kliknij Edytuj.
Kliknij opcję Insert Sequences From File (Wstaw sekwencje z pliku) i wybierz FASTA z sekwencjami białek genów kandydujących i prawdopodobnych homologów. Wybierz opcję Wszystkie sekwencje. Znajdź symbol ramienia i najedź na niego kursorem.
Powinien mówić wyrównaj sekwencje za pomocą algorytmu mięśniowego. Kliknij symbol ramienia, a następnie kliknij przycisk Wyrównaj białko, aby wyrównać sekwencje Edytuj parametry lub kliknij przycisk OK, aby użyć parametrów domyślnych. Protokół ten został zastosowany do tkanek Hydra vulgaris, która jest słodkowodnym bezkręgowcem należącym do gromady Cnidaria.
Zbadano geny opsyny, aby uzyskać wgląd w ewolucję oczu i wykrywanie światła u zwierząt. Sekwencje genów związanych z opsyną H.vulgaris i innych gatunków zostały wyekstrahowane do pliku FASTA z NCBI GenBank. Geny opsyny zostały dopasowane w MEGA, co umożliwiło zidentyfikowanie opsyn Hydra, w których brakowało konserwatywnego aminokwasu lizyny niezbędnego do wiązania cząsteczki wrażliwej na światło.
Drzewo maksymalnego prawdopodobieństwa zostało wygenerowane przy użyciu sekwencji opsyny z Hydra vulgaris i innych gatunków. Filogeneza sugeruje, że geny opsyny ewoluują przez duplikacje specyficzne dla linii u parzydełkowców i potencjalnie przez duplikację tandemową u H. vulgaris. Następnie przeprowadzono analizę różnicową ekspresji w edgeR w celu zbadania bezwzględnej ekspresji genów opsyny.
Aby określić, czy jedna lub więcej opsyn jest regulowanych w górę w hypostomie lub głowie, przeprowadzono porównania parami hypostomu z kolumną ciała, strefą pączkowania, stopą i mackami. Stwierdzono, że 1 774 transkrypty były różnie wyrażane między hypostomem a kolumną ciała. Określono geny, które były regulowane w górę w wielu porównaniach, a następnie przeprowadzono funkcjonalne wzbogacenie w Blast2GO.
Na koniec zbadano bezwzględną ekspresję genów opsyny w różnych tkankach na różnych etapach pączkowania i w różnych punktach czasowych regeneracji. Oględziny ułożenia i drzewa potwierdzą, czy geny kandydujące należą do rodziny będącej przedmiotem zainteresowania. Geny, które są zbyt różne w sekwencji lub należą do grupy poza wszystkim innym, są prawdopodobnie częścią innej rodziny genów.
Wyniki tego protokołu można uznać za generujące hipotezy. To badanie może wyłonić geny kandydujące do funkcjonalnego zbadania w przyszłych badaniach. Po zbadaniu ekspresji opsyny Hydra, używamy teraz podobnych technik do badania powiązanych genów między gatunkami w celu zidentyfikowania podobieństw i różnic w funkcji.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół bada ewolucję molekularną i ekspresję genów kandydackich z wykorzystaniem danych z sekwencjonowania RNA, koncentrując się w szczególności na genach opsyn u Hydra vulgaris. Badanie przedstawia potok bioinformatyczny, który może zostać zastosowany w odniesieniu do różnych organizmów.
Ten potok bioinformatyczny umożliwia systematyczne badanie ewolucji i ekspresji rodzin genów, wspierając walidację celów poprzez mechanistyczną redukcję ryzyka we wczesnej fazie odkryć. Dzięki integracji analizy filogenetycznej z kwantyfikacją RNA-seq zapewnia on pewność prognostyczną przy priorytetyzacji genów kandydatów o funkcjach konserwatywnych lub dywergentnych pomiędzy gatunkami. Podejście to wspomaga selekcję portfela poprzez identyfikację hipotez opartych na mechanizmach przed przeznaczeniem zasobów na badania funkcjonalne.
Metoda ta integruje się z kontinuum procesów odkrywania leków, od identyfikacji celu po optymalizację wiodących związków, umożliwiając postęp oparty na hipotezach, od analizy sekwencji po priorytetyzację funkcjonalną.