May 27th, 2021
Prezentujemy protokoły do generowania ostrych i przewlekłych eksperymentalnych modeli ekspresji tików u swobodnie zachowujących się szczurów. Modele opierają się na implantacji kaniuli prążkowia, a następnie zastosowaniu antagonisty GABAA. Model ostry wykorzystuje przejściowe zastrzyki, podczas gdy model przewlekły wykorzystuje przedłużone wlewy za pomocą podskórnej wszczepionej mini-pompy osmotycznej.
Protokół ten opisuje unikalny eksperymentalny model zaburzeń tików, przedstawiając metodę wywoływania tików motorycznych u swobodnie zachowującego się szczura, w sposób przejściowy lub przewlekły. Główną zaletą tej metody jest to, że opisuje jedyny dostępny model ekspresji tików, który jest szeroko stosowany do badania zespołu Tourette'a i innych zaburzeń tikowych. Demonstracja wizualna wyjaśnia złożony proces przygotowania urządzenia na zamówienie i chirurgii implantacji.
Procedurę zademonstrują Esther Vinner, doktorantka z mojego laboratorium, oraz Katya Belelovsky, kierowniczka laboratorium. Aby rozpocząć, przygotuj kaniulę implantu, przecinając hiporurkę ze stali nierdzewnej o grubości 25 mm i wyjmowany drut wewnętrzny o średnicy 0,013 cala. Włóż ten atrapę drutu do kaniuli implantu, aż dotrze do końca i zegnij nadmiar drutu.
Następnie wytnij 70-centymetrową elastyczną polimerową rurkę z mikrootworem, aby przygotować wtryskiwacz. Przygotuj kaniulę do wstrzykiwań, przecinając hiporurkę ze stali nierdzewnej o rozmiarze 30 za pomocą narzędzia obrotowego. Włóż trzy milimetry tej kaniuli iniekcyjnej do elastycznej rurki i przyklej połączenie między nimi, aby uzyskać wtryskiwacz.
Podczas wykonywania zabiegu należy wsunąć implant cannular na uchwyt kaniuli i opuścić go do miejsca implantacji w mózgu szczura. Przymocuj wszczepioną kaniulę do czaszki szczura, nakładając cement dentystyczny. Włóż przygotowany manekin do tej kaniuli implantu i przykryj wszystkie implanty, nakładając cement dentystyczny na pozostałą część czaszki.
Aby wykonać mikroiniekcję, należy podłączyć wtryskiwacz do precyzyjnej szklanej mikrostrzykawki wypełnionej bicukuliną i skonfigurować ustawienia na szybkość 0,35 mikrolitra na minutę i całkowitą objętość 0,35 mikrolitra. Umieść szczura w klatce doświadczalnej. Wyjmij smoczek i włóż wstrzykiwacz do wszczepionej kaniuli przez koniec.
Uruchom pompę infuzyjną i śledź czas inicjacji i zakończenia tiku za pomocą stopera. Po jednej minucie od wstrzyknięcia należy wyjąć wstrzykiwacz i powoli ponownie włożyć smoczek. Przygotuj prowadnicę kaniuli, przecinając 12-milimetrową rurkę hiporurkową ze stali nierdzewnej o rozmiarze 25 mm, a kaniulę infuzyjną przecinając hiporurkę ze stali nierdzewnej o rozmiarze 30 mm.
Włóż drut o średnicy 0,005 cala do kaniuli infuzyjnej i zegnij go w kształt litery L w zamierzonym miejscu. Następnie przygotuj elastyczną rurkę cewnika, przecinając ośmiocentymetrową rurkę z polietylenu PE10. Usuń drut wewnętrzny z kaniuli infuzyjnej, przyklej prowadnicę kaniuli na trzymilimetrową zakładkę w pobliżu zgiętej części kaniuli infuzyjnej za pomocą kleju cyjanoakrylowego i akceleratora.
Następnie umieść poziomą część kaniuli infuzyjnej na rurkę cewnika. Wysuń półprzezroczystą nasadkę regulatora przepływu pompy. Zanurz adapter rurki w 70% alkoholu i przymocuj go do krótkiej części kaniuli moderatora przepływu, aż dotknie białego kołnierza.
Włóż elastyczną rurkę cewnika do adaptera rurki i przytrzymaj jej długą część kaniuli za pomocą stojaka na klips, jednocześnie sklejając wszystkie połączenia. Owiń mini pompę osmotyczną papierową chusteczką i zamocuj ją pionowo otworem skierowanym do góry za pomocą stojaka z klipsem. Napełnić pompę płynem płynu mózgowo-rdzeniowego za pomocą strzykawki z igłą o rozmiarze 27, uważając, aby nie dostać się powietrza.
Napełnij długą kaniulę rurki infuzyjnej płynem płynu mózgowo-rdzeniowego za pomocą strzykawki z igłą o rozmiarze 27. I włóż go do pompy. Umieść pompę w zlewce z solą fizjologiczną na co najmniej cztery do sześciu godzin w temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Stwórz podskórną kieszeń na grzbiecie szczura, naprzemiennie otwierając i zamykając wysterylizowany alkoholem hemostat pod skórą przez środkową linię łopatki. Wyjmij pompę z łaźni wodnej i umieść ją na grzbiecie szczura przykrytym papierową chusteczką. Przesuń prowadnicę kaniuli rurki infuzyjnej na uchwycie kaniuli.
Trzymaj pompkę z hemostatem i delikatnie włóż ją do kieszonki podskórnej. Wszczepić kaniulę infuzyjną w cel i przykleić ją do czaszki za pomocą kleju żelowego. Zamocuj kaniulę infuzyjną, upewnij się, że cewnik jest wolny od załamań, aby umożliwić ruch szyi i pokryj wszystkie implanty cementem dentystycznym.
Aby przeprowadzić operację wymiany pompy, należy rozpocząć wstrzykiwanie bicukuliny do pompy za pomocą strzykawki z igłą igłą o rozmiarze 27. Kontynuować wstrzykiwanie bicukuliny podczas wyjmowania strzykawki, aby zapobiec przedostawaniu się powietrza. Włóż regulator przepływu do pompy i umieść pompę w zlewce z solą na co najmniej cztery do sześciu godzin w łaźni wodnej o temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Wykonaj nacięcie na skórze nad wszczepioną pompą. Umyj kieszeń płynem CSF o temperaturze pokojowej i osusz ją gazikami. Odłączyć pompę wypełnioną CSF od moderatora przepływu za pomocą hemostatu i wyrzucić ją.
Podobnie odłącz i wyrzuć moderator przepływu od pompy wypełnionej bicukuliną. Delikatnie przymocuj pompę wypełnioną bicukuliną do wszczepionego moderatora przepływu i przyklej linię nacięcia klejem tkankowym. W modelu ostrym tiki zaczynają pojawiać się kilka minut po mikroiniekcji bicukuliny i utrzymują się przez kilkadziesiąt minut, a następnie ostatecznie zanikają i ustają.
W modelu przewlekłym tiki zwykle zaczynają pojawiać się pierwszego dnia po implantacji pompy wypełnionej bicukuliną, która zmienia się w ciągu dnia i jest najbardziej widoczna w stanie cichego czuwania. Tiki motoryczne mają stereotypową sygnaturę kinematyczną, którą można wykryć w sygnałach akcelerometru i żyroskopu. Podobnie, tik tików można również ocenić za pomocą sygnału potencjału pól lokalnych w całym szlaku korowo-podstawno-zwojowym ze względu na pojawienie się przejściowych skoków LFP o dużej amplitudzie.
Modele te umożliwiły badanie ekspresji tików po różnych interwencjach behawioralnych, środowiskowych i farmakologicznych przez dłuższy czas.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Ten protokół opisuje unikalny eksperymentalny model zaburzeń tykowych poprzez opisanie metody wywoływania tyków motorycznych u szczurów swobodnie poruszających się, zarówno w sposób przejściowy, jak i przewlekły. Główną zaletą tej metody jest to, że opisuje jedyny dostępny model ekspresji tyków, który jest szeroko stosowany do badania zespołu Tourette'a i innych zaburzeń tykowych.
Establishing reliable animal models of motor tic expression enables mechanistic de-risking in early discovery for neuropsychiatric targets. These acute and chronic rat models support target validation by linking striatal GABAA modulation to behavioral phenotypes relevant to Tourette syndrome and related disorders. The ability to study tic dynamics over varying timescales enhances predictive confidence in pathway modulation strategies.
The method integrates into discovery biology for hypothesis testing, screening for assay readiness, and translational research for preclinical continuity.