Name: Segmentacja wzrostu komórek śródbłonka w 6-dołkowych płytkach na wytrząsarce orbitalnej do badań mechanobiologicznych (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-06-03T12:30:00.000+00:00
Duration: 12 min 28 s
Description: Poznaj metodę powlekania do segmentacji wzrostu komórek śródbłonka w płytkach 6-dołkowych na wytrząsarce orbitalnej. Technika ta umożliwia badanie wpływu naprężenia ścinającego na komórki w różnych strefach przepływu.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy dziękują za grant projektowy British Heart Foundation (dla PDW), grant National Medical Research Council Singapore TAAP i DYNAMO Grant (dla XW, NMRC/OFLCG/004/2018, NMRC/OFLCG/001/2017), stypendium dla absolwentów A*STAR (dla KTP) oraz stypendium British Heart Foundation Center of Research Excellence (dla MA).

1. Produkcja urządzeń i przygotowanie odczynników
<ol>
	<li>Wykonanie modułu ze stali nierdzewnej
	<ol>
		<li>Wykonaj moduł ze stali nierdzewnej ze stali nierdzewnej klasy 316 za pomocą frezarki CNC zgodnie z dostarczonym rysunkiem technicznym (<silna klasa = "xfig">Rysunek 1).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Druk 3D formy z polidimetylosiloksanu (PDMS)
	<ol>
		<li>Przygotuj model 3D do projektowania wspomaganego komputerowo (CAD) formy PDMS za pomocą SolidWorks zgodnie z dostarczonym rysunkiem technicznym (<silna klasa = "xfig">Rysunek 2).</li>
		<li>Wyeksportuj model CAD do pliku STL i zaimportuj plik STL do Cura 2.6.2.</li>
		<li>Pokrój model na warstwy z prędkością druku 50 mm/s i gęstością wypełnienia 60%.</li>
		<li>Wyeksportuj plik jako G-code i prześlij go do drukarki 3D Ultimaker2 w celu wydrukowania. Użyj kwasu polimlekowego (PLA) jako materiału do drukowania.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Odlewanie pierścienia PDMS
	<ol>
		<li>Wymieszaj bazę PDMS i utwardzacz (oba z zestawu elastomerów silikonowych) w proporcji 90,9% bazy i 9,1% utwardzacza.</li>
		<li>Wlej około 2,6 ml dobrze wymieszanego roztworu do formy wydrukowanej w 3D.</li>
		<li>Usuń pęcherzyki w próżniowej komorze odgazowywania.</li>
		<li>Utwardzać przez 1 godzinę w piecu o temperaturze 80 °C.</li>
		<li>Poczekaj, aż pierścień PDMS ostygnie do temperatury pokojowej, a następnie ostrożnie wyjmij utwardzony pierścień PDMS z formy. Rysunek techniczny pierścienia PDMS jest pokazany na Rysunek 3.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przygotowanie 1% pluronicznego F-127
	<ol>
		<li>Odważyć 5 g Pluronic F-127, przelać do szklanej butelki, a następnie dodać 100 ml sterylnej wody do szklanej butelki. Daje to 5% roztwór Pluronic F-127.</li>
		<li>Upewnij się, że cały proszek Pluronic F-127 jest zanurzony w wodzie, zamknij nakrętkę i autoklawuj ją w autoklawie za pomocą programu cyklu sterylizacji płynów.</li>
		<li>Po autoklawie pozwól roztworowi ostygnąć do temperatury pokojowej przed użyciem.</li>
		<li>Dodaj 10 ml 5% roztworu Pluronic F-127 do 40 ml autoklawowanej sterylnej wody, aby uzyskać 1% roztwór Pluronic F-127. Rozcieńczenie należy przeprowadzić w okapie komory bezpieczeństwa biologicznego (BSC).</li>
		<li>Przechowuj zarówno 1%, jak i 5% Pluronic F-127 w temperaturze pokojowej.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przygotowanie 4% paraformaldehydu (PFA)
	<ol>
		<li>Dodać 800 ml soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS) do szklanej zlewki i podgrzać do temperatury 60 °C, mieszając (mieszać od kroku 1.5.1 do 1.5.5).</li>
		<li>Odważyć 40 g proszku PFA i dodać go do ciepłego roztworu PBS. 
		UWAGA: PFA jest niebezpieczny, wykonaj kroki od 1.5.2 do 1.5.6 w dygestorium.</li>
		<li>Powoli dodawać 1 M wodorotlenek sodu (NaOH) do roztworu PFA, aż roztwory staną się klarowne.</li>
		<li>Doprowadzić pH roztworu PFA do około 7,4 za pomocą 1 M kwasu solnego (HCl).</li>
		<li>Uzupełnić roztwór do 1 litra za pomocą 1X PBS. Daje to 1 L 4% PFA.</li>
		<li>Przefiltrować roztwór PFA za pomocą filtrów 0,2 μm, aby usunąć wszelkie cząstki stałe, podwielokrotność i zamrozić w zamrażarce o temperaturze -20 °C.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Preparat 0,1% Triton-X
	<ol>
		<li>Dodaj 50 μl czystego Triton-X do 50 ml PBS, aby uzyskać 0,1% roztwór Triton-X.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przygotowanie 1% albuminy surowicy bydlęcej (BSA)
	<ol>
		<li>Odważyć 0,5 g BSA, wlać do probówki wirówkowej o pojemności 50 ml, a następnie dodać do niej 50 ml PBS.</li>
		<li>Pozostaw na wałku przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej do rozpuszczenia.</li>
		<li>Przechowywać 1% BSA w temperaturze 4 °C przez okres do dwóch tygodni.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Powłoka płytki 6-dołkowej
<ol>
	<li>Autoklaw modułu ze stali nierdzewnej, pierścienia PDMS i pęsety przed użyciem. Wszystkie kolejne procedury należy wykonać w okapie BSC i przestrzegać technik aseptycznych, aby zapewnić sterylność.</li>
	<li>Umieść pierścień PDMS w 6-dołku za pomocą pęsety. Użyj zewnętrznej krawędzi pierścienia PDMS, aby wyrównać pierścień PDMS koncentrycznie ze studnią. 
	UWAGA: Należy używać wyłącznie płytek studzienkowych niepoddanych hodowli tkankowej.</li>
	<li>Umieść moduł ze stali nierdzewnej na pierścieniu PDMS za pomocą pęsety.</li>
	<li>Włóż końcówki szczypiec do wewnętrznego pierścienia ustalającego w otwory uchwytu pierścienia ustalającego, ściśnij uchwyt, aby zmniejszyć średnicę pierścienia ustalającego. Włóż go do 6-dołka, mocno dociśnij go do modułu ze stali nierdzewnej i zwolnij szczypce, aby zabezpieczyć pierścień PDMS w studzience.</li>
	<li>Dodaj 1 ml fibronektyny o stężeniu 5 μg/ml do środka lub krawędzi studzienki (w zależności od obszaru zainteresowania) przez otwór pierścienia PDMS i modułu ze stali nierdzewnej.</li>
	<li>Zakręć płytką, aby upewnić się, że roztwór fibronektyny pokrywa cały obszar zainteresowania.</li>
	<li>Inkubować przez 30 minut w temperaturze 37 °C w nawilżanym inkubatorze w 95% powietrza/5% CO2 .</li>
	<li>Usuń roztwór fibronektyny ze studzienki i przemyj dwukrotnie PBS. Całkowicie usuń PBS ze studni.</li>
	<li>Zdejmij pierścień ustalający, moduł ze stali nierdzewnej i pierścień PDMS ze studni.</li>
	<li>Dodać 1,5 ml 1% Pluronic F-127 do środka lub krawędzi studzienki (powierzchnia niepowlekana) i inkubować przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej w celu pasywacji niepowlekanej powierzchni.</li>
	<li>Usunąć roztwór Pluronic F-127 ze studzienki i przemyć trzykrotnie PBS.</li>
	<li>Powleczoną studzienkę należy natychmiast zużyć lub przechowywać w temperaturze 4 °C przez okres do dwóch tygodni z warstwą PBS w powlekanej studzience.</li>
</ol>
3. Wysiewanie HUVEC
<ol>
	<li>W eksperymencie użyj HUVEC poniżej przejścia 5.</li>
	<li>Usuń całą pożywkę hodowlaną i przemyj komórki raz PBS.</li>
	<li>Dodać 3 ml 0,05% trypsyny i inkubować przez 3 minuty w temperaturze 37 °C w wilgotnym inkubatorze w 95% powietrzu/5% CO2 . Delikatnie postukać w kolbę, aby usunąć komórki. 
	UWAGA: Ten protokół został przetestowany przy użyciu HUVEC, a stężenie trypsyny i czas jej inkubacji mogą być różne dla innych typów EC.</li>
	<li>Przenieść roztwór do probówki wirówkowej o pojemności 15 ml i zneutralizować trypsynę za pomocą 6 ml pożywki hodowlanej (np. Lonza EGM-2) podgrzanej do temperatury 37 °C.</li>
	<li>Wirować przy 200 x g przez 5 minut. Usunąć zobojętniony roztwór trypsyny i ponownie zawiesić komórki za pomocą 1 ml wstępnie podgrzanej pożywki hodowlanej.</li>
	<li>Policz komórki za pomocą hemocytometru i wysiew 180 tys. komórek na powlekanej 6-dołkowej płytce w 1,5 ml wstępnie podgrzanej pożywki hodowlanej.</li>
	<li>Potrząśnij płytką studzienki na boki, aby upewnić się, że komórki równomiernie rozprowadzają się w studzience.</li>
	<li>Pozostaw na noc w inkubatorze z wilgotnością 37 °C w 95% powietrza/5% CO2 .</li>
	<li>Usuń nieprzyłączone komórki i pożywkę hodowlaną i zastąp ją 2 ml wstępnie podgrzanej pożywki hodowlanej. 
	UWAGA: spodziewanych jest wiele nieprzyłączonych komórek unoszących się na podłożu.</li>
</ol>
4. Zastosowanie naprężenia ścinającego za pomocą wytrząsarki orbitalnej
<ol>
	<li>HUVEC powinny osiągnąć konfluencję po 3 dniach wzrostu. Zastąp pożywkę 1,9 ml wstępnie podgrzanej pożywki hodowlanej (aby osiągnąć wysokość 2 mm).</li>
	<li>Umieść płytkę na platformie wytrząsarki orbitalnej w nawilżanym inkubatorze pod 95% powietrzem/5% CO2 i obracaj ją z prędkością 150 obr./min przez 3 dni. 
	UWAGA: Wytrzyj zewnętrzną powierzchnię wytrząsarki orbitalnej przy użyciu 70% etanolu przed umieszczeniem jej w inkubatorze.</li>
	<li>(Opcjonalnie) Po 2 dniach ścinania cytokiny można dodać do pożywki hodowlanej w celu zbadania wzajemnych oddziaływań między cytokinami a stresem ścinającym. Po zabiegu ścinaj komórki przez kolejny dzień. W tym badaniu do aktywacji komórek wykorzystano TNF-α.</li>
	<li>Analizy należy wykonać po 3 dniach od przyłożenia naprężeń ścinających.</li>
</ol>
5. Barwienie i obrazowanie komórek
<ol>
	<li>Po 3 dniach ścinania wyjąć płytkę z inkubatora i dwukrotnie przemyć komórki PBS.</li>
	<li>Utrwal komórki, dodając 1,5 ml 4% PFA do studzienki i inkubuj przez 10 minut w temperaturze pokojowej.</li>
	<li>Usuń 4% PFA ze studzienki i umyj dwukrotnie PBS.</li>
	<li>Przepuszczalność komórek poprzez dodanie 0,1% Triton-X do studzienki i inkubację przez 5 minut w temperaturze pokojowej.</li>
	<li>Usunąć 0,1% roztwór Triton-X ze studzienki i dodać 1,5 ml 1% BSA do studzienki w celu zablokowania. Inkubować komórki z 1% BSA przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej.</li>
	<li>Rozcieńczyć królicze przeciwciało anty-ludzkie ZO-1 w rozcieńczeniu 1:200 w 1% BSA. Dodać 1,5 ml rozcieńczonego przeciwciała do studzienki i inkubować je z komórkami przez noc w temperaturze 4 °C.</li>
	<li>Po całonocnej inkubacji usunąć rozcieńczone przeciwciało i trzykrotnie przemyć komórki PBS.</li>
	<li>Rozcieńczyć kozie przeciwciało anty-królicze IgG znakowane kozią powłoką Fluor 488 w rozcieńczeniu 1:300 w PBS. Dodać 1,5 ml rozcieńczonego przeciwciała drugorzędowego do studzienki i inkubować je z komórkami przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej.</li>
	<li>Usunąć rozcieńczone przeciwciało drugorzędowe i dwukrotnie przemyć komórki PBS.</li>
	<li>Rozcieńczyć DRAQ5 w rozcieńczeniu 1:1000 w PBS. Dodać 1,5 ml rozcieńczonego DRAQ5 do studzienki i inkubować z komórkami przez 15 minut w temperaturze pokojowej w celu zabarwienia jąder komórkowych.</li>
	<li>Usunąć rozcieńczony DRAQ5 i przemyć trzykrotnie PBS.</li>
	<li>Wykonaj skan płytek od krawędzi do środka studni za pomocą mikroskopu konfokalnego.</li>
</ol>
6. Kwantyfikacja indeksu kształtu i liczby komórek
<ol>
	<li>Przetwarzanie końcowe obrazów za pomocą MATLAB R2016a.</li>
	<li>Odczytaj plik LIF z mikroskopu konfokalnego do MATLAB i przekonwertuj scalony skan kafelka na obraz binarny, a następnie proguj obraz według obszaru i intensywności, aby odróżnić jądra od tła.</li>
	<li>Podziel skan kafelka binarnego na segmenty promieniowe o średnicy 1 mm.</li>
	<li>Dopasuj elipsę do każdego pojedynczego jądra.</li>
	<li>Policz liczbę elipsy w każdym segmencie promieniowym, aby uzyskać numer komórki.</li>
	<li>Zdefiniuj indeks kształtu = jako SI = 4π x Powierzchnia / Obwód2. Oblicz indeks kształtu dla każdej klasy elipsa<sup="xref">18.</li>
</ol>

<ol><li>Hahn, C., Schwartz, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanotransduction+in+vascular+physiology+and+atherogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Molecular+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Mechanotransduction in vascular physiology and atherogenesis.</a> Nature Reviews Molecular Cell Biology. 10 (1), 53-62 (2009).</li>
<li>Wang, C., Baker, B. M., Chen, C. S., Schwartz, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+Cell+Sensing+of+Flow+Direction%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Endothelial Cell Sensing of Flow Direction.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 33 (9), 2130-2136 (2013).</li>
<li>Tzima, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mechanosensory+complex+that+mediates+the+endothelial+cell+response+to+fluid+shear+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A mechanosensory complex that mediates the endothelial cell response to fluid shear stress.</a> Nature. 437, 426-431 (2005).</li>
<li>Potter, C. M. F., Schobesberger, S., Lundberg, M. H., Weinberg, P. D., Mitchell, J. A., Gorelik, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shape+and+compliance+of+endothelial+cells+after+shear+stress+in+vitro+or+from+different+aortic+regions%3A+Scanning+ion+conductance+microscopy+study%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Shape and compliance of endothelial cells after shear stress in vitro or from different aortic regions: Scanning ion conductance microscopy study.</a> PLoS ONE. 7 (2), 1-5 (2012).</li>
<li>Asakura, T., Karino, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+Patterns+and+Spatial+Distribution+of+Atherosclerotic+Lesions+in+Human%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Flow Patterns and Spatial Distribution of Atherosclerotic Lesions in Human.</a> Circulation Research. 66 (4), 1045-1067 (1990).</li>
<li>Bond, A. R., Iftikhar, S., Bharath, A. A., Weinberg, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+evidence+for+a+change+in+the+pattern+of+aortic+wall+shear+stress+with+age%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Morphological evidence for a change in the pattern of aortic wall shear stress with age.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 31 (3), 543-550 (2011).</li>
<li>Giddens, D. P., Zarins, C. K., Glagov, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+fluid+mechanics+in+the+localization+and+detection+of+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+biomechanical+engineering%22%5BJournal%5D)">The role of fluid mechanics in the localization and detection of atherosclerosis.</a> Journal of biomechanical engineering. 115, 588-594 (1993).</li>
<li>Schnittler, H. J., Franke, R. P., Akbay, U., Mrowietz, C., Drenckhahn, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+in+vitro+rheological+system+for+studying+the+effect+of+fluid+shear+stress+on+cultured+cells%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+journal+of+physiology%22%5BJournal%5D)">Improved in vitro rheological system for studying the effect of fluid shear stress on cultured cells.</a> The American journal of physiology. 265, 289-298 (1993).</li>
<li>Levesque, M. J., Nerem, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+elongation+and+orientation+of+cultured+endothelial+cells+in+response+to+shear+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+biomechanical+engineering%22%5BJournal%5D)">The elongation and orientation of cultured endothelial cells in response to shear stress.</a> Journal of biomechanical engineering. 107 (4), 341-347 (1985).</li>
<li>Chiu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+the+effect+of+disturbed+flow+on+monocytic+adhesion+to+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanics%22%5BJournal%5D)">Analysis of the effect of disturbed flow on monocytic adhesion to endothelial cells.</a> Journal of Biomechanics. 36 (12), 1883-1895 (2003).</li>
<li>Venugopal Menon, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+tunable+microfluidic+3D+stenosis+model+to+study+leukocyte-endothelial+interactions+in+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22APL+Bioengineering%22%5BJournal%5D)">A tunable microfluidic 3D stenosis model to study leukocyte-endothelial interactions in atherosclerosis.</a> APL Bioengineering. 2 (1), 016103(2018).</li>
<li>Warboys, C. M., Ghim, M., Weinberg, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+mechanobiology+in+cultured+endothelium%3A+A+review+of+the+orbital+shaker+method%5BTitle%5D)+AND+%22Atherosclerosis%22%5BJournal%5D)">Understanding mechanobiology in cultured endothelium: A review of the orbital shaker method.</a> Atherosclerosis. 285, 170-177 (2019).</li>
<li>Ghim, M., Pang, K. T., Arshad, M., Wang, X., Weinberg, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+for+segmenting+growth+of+cells+in+sheared+endothelial+culture+reveals+the+secretion+of+an+anti-inflammatory+mediator%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Engineering%22%5BJournal%5D)">A novel method for segmenting growth of cells in sheared endothelial culture reveals the secretion of an anti-inflammatory mediator.</a> Journal of Biological Engineering. 12 (1), 15(2018).</li>
<li>Sage, H., Pritzl, P., Bornstein, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Secretory+phenotypes+of+endothelial+cells+in+culture%3A+comparison+of+aortic%2C+venous%2C+capillary%2C+and+corneal+endothelium%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%22%5BJournal%5D)">Secretory phenotypes of endothelial cells in culture: comparison of aortic, venous, capillary, and corneal endothelium.</a> Arteriosclerosis. 1 (6), 427-442 (1981).</li>
<li>Tunica, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteomic+analysis+of+the+secretome+of+human+umbilical+vein+endothelial+cells+using+a+combination+of+free-flow+electrophoresis+and+nanoflow+LC-MS%2FMS%5BTitle%5D)+AND+%22Proteomics%22%5BJournal%5D)">Proteomic analysis of the secretome of human umbilical vein endothelial cells using a combination of free-flow electrophoresis and nanoflow LC-MS/MS.</a> Proteomics. 9, 4991-4996 (2009).</li>
<li>Griffoni, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modification+of+proteins+secreted+by+endothelial+cells+during+modeled+low+gravity+exposure%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cellular+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Modification of proteins secreted by endothelial cells during modeled low gravity exposure.</a> Journal of Cellular Biochemistry. 112, 265-272 (2011).</li>
<li>Ghim, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+three+pathways+for+macromolecule+transport+across+cultured+endothelium+and+their+modification+by+flow%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">Visualization of three pathways for macromolecule transport across cultured endothelium and their modification by flow.</a> American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 313 (5), 959-973 (2017).</li>
<li>Levesque, M. J., Liepsch, D., Moravec, S., Nerem, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlation+of+endothelial+cell+shape+and+wall+shear+stress+in+a+stenosed+dog+aorta%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%3A+An+Official+Journal+of+the+American+Heart+Association%2C+Inc%22%5BJournal%5D)">Correlation of endothelial cell shape and wall shear stress in a stenosed dog aorta.</a> Arteriosclerosis: An Official Journal of the American Heart Association, Inc. 6 (2), 220-229 (1986).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Metoda studni wirowej jest w stanie wygenerować złożone profile przepływu w jednym odwiercie - przepływ wielokierunkowy o niskiej wielkości (LMMF) w centrum i przepływ jednoosiowy o dużej wielkości (HMUF) na krawędzi studni. Jednak wydzieliny rozpuszczalnego mediatora za pośrednictwem naprężeń ścinających zostaną zmieszane z wirującym podłożem i wpłyną na komórki w całej studzience, potencjalnie maskując prawdziwy wpływ określonego profilu naprężenia ścinającego na komórki.
Zademonstrowana tut...

Reakcje komórek naczyniowych na ich środowisko mechaniczne są ważne dla prawidłowego funkcjonowania naczyń krwionośnych i rozwoju choroby1. Mechanobiologia komórek śródbłonka (EC), które wyściełają wewnętrzną powierzchnię wszystkich naczyń krwionośnych, była szczególnym przedmiotem badań mechanobiologicznych, ponieważ EC bezpośrednio doświadczają naprężeń ścinających generowanych przez przepływ krwi nad nimi. Różne zmiany fenotypowe, takie jak reakcje zapalne, zmieniona sztywność i morfologia, uwalnianie substancji wazoaktywnych oraz lokalizacja i ekspresja białek połączeniowych, zależą od ekspozycji EC na naprężenie ścinające2,3,4. Właściwości śródbłonka zależne od ścinania mogą również odpowiadać za nierównomierny rozwój chorób, takich jak miażdżyca5,6,7.
Przydatne jest badanie wpływu ścinania na EC w hodowli, gdzie naprężenia mogą być kontrolowane, a EC mogą być izolowane od innych typów komórek. Powszechnie stosowane urządzenia in vitro do przykładania naprężeń ścinających do EC obejmują komorę przepływu z równoległą płytką i lepkościomierz stożkowo-płytkowy, ale można stosować tylko jednoosiowy przepływ stały, oscylacyjny i pulsacyjny8,9. Chociaż opracowano zmodyfikowane komory przepływowe o stożkowej lub rozgałęzionej geometrii i chipach mikroprzepływowych, które naśladują geometrię zwężoną, ich niska przepustowość i stosunkowo krótki czas trwania hodowli, który jest możliwy, stanowią wyzwanie10, 11.
Metoda wytrząsarki orbitalnej (lub studni wirowej) do badania mechanotransdukcji śródbłonka, w której komórki są hodowane w standardowym plastikowym naczyniu do hodowli komórkowych umieszczonym na platformie wytrząsarki orbitalnej, zyskuje coraz większą uwagę, ponieważ jest zdolna do chronicznego narzucania złożonych, przestrzennie zmiennych wzorców naprężeń ścinających na EC o wysokiej przepustowości (zobacz recenzję Warboys et al.12). Symulacje obliczeniowej dynamiki płynów (CFD) zostały wykorzystane do scharakteryzowania przestrzennej i czasowej zmienności naprężeń ścinających w wirującej studni. Wirowy ruch pożywki hodowlanej spowodowany ruchem orbitalnym platformy wytrząsającej, na której umieszczona jest płytka, prowadzi do przepływu wielokierunkowego o niskiej wielkości (LMMF lub przypuszczalnie przepływu promiażdżycowego) w centrum i przepływu jednoosiowego o wysokiej wielkości (HMUF lub przypuszczalnie przepływu miażdżycowego) na krawędzi studzienek płytki 6-dołkowej. Na przykład uśrednione w czasie naprężenie ścinające ścianki (TAWSS) wynosi około 0,3 Pa w środku i 0,7 Pa na krawędzi 6-dołkowej płytki zawirowanej z prędkością 150 obr./min o promieniu orbity 5 mm13. Metoda wymaga wyłącznie dostępnych na rynku wyrobów z tworzyw sztucznych i samej wytrząsarki orbitalnej.
Istnieje jednak wada tej metody (i innych metod narzucania przepływów in vitro): EC uwalniają rozpuszczalne mediatory i mikrocząstki w sposób zależny od ścinania14,15,16 i ten sekretom może wpływać na EC w regionach studni innych niż ten, w którym zostały uwolnione, z powodu mieszania się w wirującym medium. Może to maskować rzeczywisty wpływ naprężeń ścinających na fenotyp EC. Na przykład, Ghim i in. spekulowali, że wyjaśnia to pozornie identyczny wpływ różnych profili ścinania na transkomórkowy transport dużych cząstek17.
Tutaj opisujemy metodę promowania adhezji ludzkich komórek śródbłonka żyły pępowinowej (HUVEC) w określonych obszarach płytki 6-dołkowej za pomocą powłoki fibronektynowej przy użyciu Pluronic F-127 do pasywacji powierzchni i zapobiegania wzrostowi w innych miejscach. Metoda rozwiązuje opisane powyżej ograniczenie, ponieważ, poprzez segmentację wzrostu komórek, EC doświadczają tylko jednego rodzaju profilu ścinania i nie mają na nie wpływu sekretomy z EC wystawione na działanie innych profili w innym miejscu studni.

<table><tbody><tr><td>Cell and Media</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Endothelial Growth Medium (EGM-2)</td><td>Lonza</td><td>cc-3162</td><td></td></tr><tr><td>Ludzkie komórki śródbłonka żyły pępowinowej</td><td>NA</td><td></td><td>NA Izolowane z pępowiny uzyskanej od dawców z nieskomplikowanym porodem w Hammersmith Hospital</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Odczynniki i materiały</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fuor 488-znakowana koza anty-królicza IgG</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>A11008</td><td></td></tr><tr><td>Albumina surowicy bydlęcej</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9418-50G</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 6 Well Clear Flat Bottom Nie leczony&nbsp;</td><td>Zaopatrzenie laboratoriów naukowych Sp. z o.o.&nbsp;</td><td></td><td></td>351146</tr><tr><td>Fibronektyna z osocza bydlęcego</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F1141-5MG</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyd</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>158127-500G</td><td></td></tr><tr><td>Sól fizjologiczna buforowana fosforanami</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537-6X500ML</td><td></td></tr><tr><td>Pluronic F-127</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P2443</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinowany ludzki TNF-A</td><td>Peprotech</td><td>300-01A</td><td></td></tr><tr><td>RS Pro 2,85 mm filament do drukarki 3D PLA, 1 kg</td><td>RS</td><td>832-0264</td><td></td></tr><tr><td>Stal nierdzewna 316</td><td>Metal Supermarket</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard184 Zestaw elastomerów silikonowych</td><td>Farnell</td><td>101697</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>X100-100ML</td><td></td></tr><tr><td>Roztwór trypsyny-EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T4049-100ML</td><td></td></tr><tr><td>Przeciwciało Zonula Occludens-1 (ZO-1)</td><td>Technologia sygnalizacji komórkowej</td><td>13663</td><td></td></tr><tr><td>DRAQ5 (5mM)</td><td>Bio Status</td><td>DR50200</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Equipments</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Grant Wytrząsarka orbitalna PSU-10i</td><td>Scientific Laboratory Supplies Ltd&nbsp;</td><td></td><td></td>SHA7930</tr><tr><td>Mikroskop konfokalny Leica TCS SP5</td><td></td> Szczypce do pierścieni ustalających <td>Leica</td> NA <td></td></tr> Pierścienie <tr><td>ustalające</td><td>Misumi</td><td>RTWP32-58</td><td></td></tr><tr><td>Pierścienie ustalające/Wewnętrzne/C-Type</td><td>Misumi</td><td>RTWS35</td><td></td></tr><tr><td>Ultimaker 2+Drukarka 3D</td><td>Ultimaker</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><<tr><td>strong>Softwares</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cura 2.6.2</td><td>Ultimaker</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>MATLAB</td><td>MathWorks</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Solidworks 2016</td><td>Dassault Systemes</td><td>NA</td><td></td></tr></tbody></table>

segmentacja wzrostu komórek śródbłonka w 6-dołkowych płytkach na wytrząsarce orbitalnej do badań mechanobiologicznych

Segmenting Growth of Endothelial Cells in 6-Well Plates on an Orbital Shaker for Mechanobiological Studies

Naprężenie ścinające wywierane na ścianę tętnicy przez przepływ krwi wpływa na morfologię i funkcję komórek śródbłonka. Postuluje się, że niskie naprężenia ścinające, oscylacyjne i wielokierunkowe stymulują fenotyp promiażdżycowy w komórkach śródbłonka, podczas gdy uważa się, że wysoka wielkość i jednokierunkowe lub jednoosiowe ścinanie sprzyjają homeostazie śródbłonka. Hipotezy te wymagają dalszych badań, ale tradycyjne techniki in vitro mają ograniczenia i są szczególnie słabe w nakładaniu wielokierunkowych naprężeń ścinających na komórki. 
Jedną z metod, która zyskuje coraz większe zastosowanie, jest hodowla komórek śródbłonka na standardowych płytkach wielodołkowych na platformie wytrząsarki orbitalnej; w tej prostej, taniej, wysokoprzepustowej i przewlekłej metodzie, wirujący medium wytwarza różne wzory i wielkości ścinania, w tym wielokierunkowe ścinanie, w różnych częściach studni. Ma jednak istotne ograniczenie: komórki w jednym regionie, wystawione na jeden rodzaj przepływu, mogą uwalniać mediatory do podłoża, które wpływają na komórki w innych częściach studni, wystawione na różne przepływy, zniekształcając w ten sposób pozorną zależność między przepływem a fenotypem. 
Tutaj prezentujemy łatwą i niedrogą modyfikację metody, która pozwala na wystawienie komórek tylko na określone charakterystyki naprężeń ścinających. Wysiewanie komórek jest ograniczone do określonego obszaru studzienki poprzez pokrycie obszaru zainteresowania fibronektyną, a następnie pasywację przy użyciu roztworu pasywacyjnego. Następnie płytki mogą być wirowane na wytrząsarce, co powoduje wystawienie komórek na dobrze zdefiniowane profile ścinania, takie jak ścinanie wielokierunkowe o małej wielkości lub ścinanie jednoosiowe o dużej wielkości, w zależności od ich lokalizacji. Tak jak poprzednio, zastosowanie standardowych tworzyw sztucznych do hodowli komórkowych pozwala na prostą dalszą analizę komórek. Modyfikacja pozwoliła już na zademonstrowanie rozpuszczalnych mediatorów, uwalnianych ze śródbłonka przy określonej charakterystyce naprężeń ścinających, które wpływają na komórki znajdujące się w innym miejscu studni.

Adhezja HUVECs do obszarów płytki do hodowli niepokrytych fibronektyną została zniesiona dzięki pasywacji Pluronic F-127; wzrost komórek ograniczał się do obszaru pokrytego fibronektyną nawet po 72 h hodowli, zarówno przy zastosowaniu, jak i bez zastosowania naprężenia ścinającego (Rycina 4A, Rycina 4C). Bez pasywacji Pluronic F-127 komórki HUVECs przytwierdziły się do powierzchni pozbawionej fibronektyny i uległy dalszej prolife...

Ten protokół opisuje metodę powlekania w celu ograniczenia wzrostu komórek śródbłonka do określonego obszaru 6-dołkowej płytki w celu przyłożenia naprężeń ścinających przy użyciu modelu wytrząsarki orbitalnej.

Segmentacja wzrostu komórek śródbłonka w 6-dołkowych płytkach na wytrząsarce orbitalnej do badań mechanobiologicznych

Shear stress imposed on the arterial wall by the flow of blood affects endothelial cell morphology and function. Low magnitude, oscillatory and ...

Protokół ten opisuje metodę powlekania w celu ograniczenia wzrostu komórek śródbłonka do określonego obszaru płytki 6-dołkowej w celu zastosowania czystego stresu przy użyciu modelu wytrząsarki orbitalnej. Powszechnym sposobem badania wpływu przepływu na śródbłonek jest hodowla komórek śródbłonka na wielodołkowych płytkach hodowlanych na wytrząsarce orbitalnej. Wytrząsarka orbitalna indukuje falę, która obraca się wokół studni.Komórki w centrum studni doświadczają przepływów, które uważa się za prowadzące do miażdżycy. Komórki znajdujące się bliżej krawędzi doświadczają przepływu, który uważa się za ochronny. Zakłada się, że właściwości komórek w każdym regionie zależą od samych naprężeń, których doświadczają.W tej logice jest jednak potencjalna dolna granica. Komórki śródbłonka uwalniają mediatory w sposób zależny od przepływu. Mediatory te osiągną jednolite stężenie w wirującym podłożu i dlatego będą wpływać na komórki w regionach innych niż ten, w którym zostały uwolnione.Może to zniekształcić lub ukryć prawdziwy wpływ ścinania na zachowanie komórki. Efekt nie ogranicza się do systemu studzienek wirowych. Może wystąpić nawet w prostych modelach, takich jak równoległa komora przepływowa płyty.Można tego uniknąć, hodując komórki tylko w jednej części systemu. Tutaj opisujemy metody umożliwiające adhezję komórek tylko w środku lub tylko na krawędzi wirującej studzienki. Wykonanie modułu ze stali nierdzewnej.Wykonaj moduł ze stali nierdzewnej ze stali nierdzewnej klasy 316 zgodnie z rysunkiem technicznym provided. 3D drukowania na PDM. Przygotuj model 3D CAD formy PDM za pomocą SOLIDWORKS zgodnie z dostarczonym rysunkiem technicznym.Eksportuj model CAD do pliku STL i zaimportuj plik STL do Cura 2.6.2. Pokrój model na warstwy z prędkością drukowania 50 milimetrów na sekundę i gęstością wypełnienia 60%Eksportuj plik jako GCode. Przesłano go do drukarki 3D Ultimaker w celu wydrukowania.Użyj kwasu polimlekowego jako materiału do drukowania. Odlewanie pierścienia PDMS. Dobrze wymieszaj bazę PDMS i utwardzacz w proporcjach 90,9% bazy i 9,1% utwardzacza.Wlej dobrze wymieszany roztwór do formy wydrukowanej w 3D. Usuń pęcherzyki w próżniowej komorze odgazowywania. Utwardzaj przez godzinę w piecu o temperaturze 80 stopni.Poczekaj, aż pierścień PDMS ostygnie do temperatury pokojowej. Następnie ostrożnie wyjmij utwardzony pierścień PDMS z formy. Przygotowanie 1%Pluronicznego F-127.Odważ pięć gramów Pluronic F-127. Wlej go do szklanej butelki. Następnie dodaj sto mil wody Milli-Q do szklanej butelki.Daje to 5% roztwór Pluronic F-127. Upewnij się, że cały proszek Pluronic F-127 jest zanurzony w wodzie. Zamknij nakrętkę i autoklaw za pomocą programu cyklu sterylizacji płynów.Przed użyciem pozwól roztworowi ostygnąć do temperatury pokojowej. Dodaj 10 mil 5% roztworu Pluronic F-127 do 40 mil autoklawizowanej wody Milli-Q, aby uzyskać 1% roztwór Pluronic F-127. Rozcieńczenie należy przeprowadzić w pokrywie komory bezpieczeństwa biologicznego.Przechowuj zarówno 1%, jak i 5% Pluronic F-127 w temperaturze pokojowej. Powłoka płytki 6-dołkowej. Autoklaw modułu ze stali nierdzewnej, pierścienia PDMS i pęsety przed użyciem.Wszystkie kolejne procedury należy wykonywać w okapie BSC i przestrzegać technik aseptycznych, aby zapewnić sterylność. Umieść pierścień PDMS w 6-dołku za pomocą pęsety. Użyj zewnętrznej krawędzi pierścienia PDMS, aby ustawić pierścień PDMS koncentrycznie w studni.Należy pamiętać, że należy używać wyłącznie płytek studzienkowych niepoddanych hodowli tkankowej. Umieść moduł ze stali nierdzewnej na pierścieniu PDMS za pomocą pęsety. Włóż końcówki szczypiec do wewnętrznego pierścienia ustalającego do uchwytów pierścienia ustalającego.Ściśnij uchwyt, aby zmniejszyć średnicę pierścienia ustalającego. Włóż go do 6-dołka, mocno dociśnij go do modułu ze stali nierdzewnej i zwolnij szczypce, aby zabezpieczyć pierścień PDMS w studzience. Dodaj jeden mil pięciu mikrogramów na mikrolitr fibronektyny do środka lub krawędzi studzienki, w zależności od obszaru zainteresowania, przez otwór pierścienia PDMS i modułu ze stali nierdzewnej.Zakręć płytką, aby upewnić się, że roztwór fibronektyny pokrywa cały obszar zainteresowania. Inkubować przez 30 minut w temperaturze 37 stopni w wilgotnym inkubatorze pod 95% powietrzem i 5% CO2. Usuń roztwór fibronektyny ze studzienki.A teraz umyj dwa razy za pomocą PBS. Po zakończeniu całkowicie usuń PBS ze studni. Zdejmij pierścień ustalający, moduł ze stali nierdzewnej i pierścień PDMS ze studni.Dodaj 1,5 mililitra 1% Pluronic F-127 do studzienki i inkubuj przez godzinę w temperaturze pokojowej, aby pasywować niepowlekaną powierzchnię. Usunąć roztwór Pluronic F-127 ze studzienki i przemyć trzykrotnie PBS. Po umyciu należy natychmiast zużyć dobrze pokrytą warstwę lub przechowywać w temperaturze czterech stopni przez okres do dwóch tygodni z warstwą PBS w powlekanej studzience.Wysiewanie komórek śródbłonka. Policz komórki za pomocą hemocytometru i umieść 180 000 komórek na powlekanej 6-dołkowej płytce w 1,5 milimetra wstępnie podgrzanej pożywki do hodowli komórek. Potrząśnij płytką studzienki na boki, aby upewnić się, że komórki równomiernie rozprowadzają się w studzience.Pozostaw go na noc w inkubatorze o temperaturze 37 stopni pod 95% powietrzem i 5% CO2. Przyłożenie naprężeń ścinających za pomocą wytrząsarki orbitalnej. Komórki powinny osiągnąć zbieg po trzech dniach wzrostu.Zastąp pożywkę 1,9 mil pożywki do hodowli komórkowych przed ostrzeżeniem, aby osiągnąć wysokość dwóch milimetrów. Umieść płytkę studzienkową na platformie wytrząsarki orbitalnej w nawilżanym inkubatorze i obracaj ją z prędkością 150 obr./min przez trzy dni. Opcjonalnie, po dwóch dniach ścinania, cytokiny można dodać do pożywki do hodowli komórkowej w celu zbadania wzajemnych oddziaływań między cytokinami a czystym stresem.Po zabiegu ścinaj komórki przez kolejny dzień. W tym badaniu TNF-alfa został użyty do aktywacji komórek. Wykonaj analizę po trzech dniach od przyłożenia naprężenia ścinającego.Obrazy mikroskopowe pokazują, że Pluronic F-127 zapobiegał adhezji HUVEC do obszaru bez powłoki fibronektyny. Żadne HUVEC nie zostały przymocowane do części powierzchni studzienki, która nie została wstępnie potraktowana fibronektyną przed pasywacją Pluronic F-127 po 24 godzinach, na rysunku A i 72 godzinach, na rysunku C, wzrostu. Bez pasywacji Pluronic F-127, HUVEC zostały przyczepione do powierzchni bez fibronektyny, 24 godziny po wysiewie, na rysunku B, i są dalej namnażane przez 72 godziny, na rysunku D. Pasek skali jest równy 500 mikrometrów.Jądrowa czerwona plama pokazuje morfologię ściętych HUVEC, A w środku i B na krawędzi pełnej studzienki. Pasek skali jest równy stu mikrometrom. A i B pokazują również kontury komórek nakreślone przez barwienie immunologiczne ZO-1.Zwróć uwagę na wyrównanie i wydłużenie komórek na krawędzi, ale nie na środku. Nie wykazano znaczącej różnicy we wskaźniku kształtu jądra, wskazującym na okrągłość, między HUVEC wyhodowanymi w pełnej studni a segmentowanymi dołkami, które zaobserwowano w przypadku HUVEC niepoddanych działaniu TNF-alfa. Komórki były bardziej wydłużone w pobliżu krawędzi studni.Tendencja do większego wydłużenia w HUVEC poddanych działaniu TNF-alfa nie była konsekwentnie istotna we wszystkich lokalizacjach. Nie zaobserwowano istotnej różnicy między studzienkami pełnymi i segmentowymi pod względem gęstości A, niepoddanych działaniu substancji i B, HUVEC poddanych działaniu TNF-alfa w różnych lokalizacjach promieniowych. W obu przypadkach na jednostkę powierzchni na krawędzi znajdowało się więcej komórek niż w środku studni.Podsumowując, metoda, którą tutaj opisaliśmy, pozwala na hodowlę komórek tylko w jednym regionie wirującej studni, a właściwie dowolnego systemu hodowli komórkowych na bazie tworzywa sztucznego. Oznacza to, że komórki w jednej części studni doświadczające jednego rodzaju przepływu nie są pod wpływem mediatorów uwalnianych z komórek w innym regionie, w którym występują różne przepływy. Co więcej, możemy przyjrzeć się komórkom hodowanym w jednym regionie, podczas gdy komórki są hodowane w innych regionach lub bez nich.Pozwala to na wykazanie działania takich rozpuszczalnych mediatorów. Testowanie wpływu kondycjonowanej pożywki na naiwne komórki pozwala na to samo. Analizując podłoże warunkowe, można zidentyfikować mediatory.

segmenting-growth-endothelial-cells-6-well-plates-on-an-orbital

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioinżynieria

To badanie wykorzystało wielodołkowy system mikroprzepływowy, znacznie zwiększając przepustowość badań toczenia komórek pod fizjologicznie istotnym przepływem ścinającym. Biorąc pod uwagę znaczenie zwijania komórek w wieloetapowej kaskadzie naprowadzania komórek oraz znaczenie naprowadzania komórek po ogólnoustrojowym dostarczeniu egzogennych populacji komórek u pacjentów, system ten oferuje potencjał jako platforma przesiewowa w celu ulepszenia terapii opartej na komórkach.

Systematyczna analiza walcowania komórek in vitro przy użyciu systemu mikroprzepływowego z wielodołkową płytką

Różne poziomy i wzorce ścinania płynu są znane z modulowania ekspresji genów śródbłonka, fenotypu i podatności na choroby. Omawiamy montaż i zastosowanie "pierścieni ścinających": modelu, który wytwarza jednokierunkowe, okresowe wzorce naprężeń ścinających. Pierścienie ścinane są proste w montażu, ekonomiczne i mogą wytwarzać wysoką wydajność ogniw.

Montaż i zastosowanie "pierścieni ścinających": nowy model śródbłonka dla orbitalnego, jednokierunkowego i okresowego przepływu płynów oraz naprężeń ścinających

Utrzymanie zasięgu bariery krew-mózg jest kluczowe dla homeostazy ośrodkowego układu nerwowego. Protokół ten opisuje techniki in vitro w celu nakreślenia podstawowych i patologicznych procesów, które modulują pokrycie bariery krew-mózg.

In vitro Testy oceniające tworzenie i rozrywanie naczyń przypominających siatkę bariery krew-mózg

Tutaj prezentujemy protokół korzystania z naczyń w kształcie litery O, wyspecjalizowanych do hodowli zawiesinowych agregatów komórkowych, z wytrząsaniem orbitalnym. Komórki HEK293 wyhodowane w tej torbie tworzą bardziej jednorodne agregaty niż te hodowane w konwencjonalnych naczyniach hodowlanych.

Orbitalna hodowla wstrząsowa komórek ssaków w naczyniach w kształcie litery O w celu wytworzenia jednolitych agregatów

Trójwymiarowy system testowania angiogenezy sferoidalnej w kokulturze został zaprojektowany tak, aby naśladować fizjologiczną angiogenezę. Sferoidy kohodowlane są tworzone przez dwa prekursory ludzkich komórek naczyniowych, ECFC i MSC, i zatopione w żelu kolagenowym. Nowy system jest skuteczny w ocenie modulatorów angiogennych i dostarcza bardziej istotnych informacji do badania in vivo.

Trójwymiarowy system oznaczania angiogenezy wykorzystujący sferoidy współhodowlane utworzone przez komórki tworzące kolonie śródbłonka i mezenchymalne komórki macierzyste

Ten test wykorzystuje embrionalne komórki macierzyste myszy zróżnicowane w ciała embrionalne hodowane w żelu 3D-collagen do analizy procesów biologicznych, które kontrolują angiogenezę kiełkowania in vitro. Technika ta może być stosowana do testowania leków, modelowania chorób oraz do badania określonych genów w kontekście delecji, które są śmiertelne dla zarodka.

In vitro Trójwymiarowy test angiogenezy w kiełkowaniu przy użyciu embrionalnych komórek macierzystych myszy do modelowania chorób naczyniowych i testowania leków

Opisano tutaj prosty proces różnicowania komórek śródbłonka od ludzkich pluripotencjalnych komórek macierzystych, a następnie szczegółowy protokół ich mechanicznej stymulacji. Pozwala to na badanie mechanobiologii rozwojowej komórek śródbłonka. Podejście to jest kompatybilne z dalszymi testami żywych komórek pobranych z chipa hodowlanego po stymulacji mechanicznej.

In vitro Model płodu ludzkiego naczynia na chipie do badania mechanobiologii rozwojowej

Prezentujemy protokół do wysokoprzepustowej produkcji kanałów naczyniowych o elastycznych rozmiarach i pożądanych wzorach na standardowej sześciodołkowej płytce przy użyciu technologii biodruku 3D, określanej jako naczynia na płytce (VOP). Platforma ta ma potencjał, aby przyspieszyć rozwój terapii zaburzeń związanych z upośledzonym śródbłonkiem.

Wysokoprzepustowa metoda biodruku do modelowania przepuszczalności naczyń krwionośnych na standardowych płytkach sześciodołkowych z elastycznością rozmiaru i wzoru

Istnieje krytyczna potrzeba modeli 3D raka, które rejestrują przesłuchy heterokomórkowe do badania przerzutów nowotworowych. Nasze badanie przedstawia wytwarzanie heterowielokomórkowego nabłonka podścielisko-podścieliskowego w środowisku wolnym od rusztowań i rusztowań, które można wykorzystać do badania inwazji i przestrzennych rozkładów komórkowych.

Heterowielokomórkowe komórki zrębu w wolnych od rusztowań hodowlach 3D nabłonkowych komórek nowotworowych w celu napędzania inwazji

Mikrofluidyczne komory przepływowe, wytrawione metodą fotolitografii i wykonane z PDMS, są stosowane do badania wyników funkcjonalnych związanych z dysfunkcją EC i stanem zapalnym. W reprezentatywnym eksperymencie wykazano zdolność różnicowego naprężenia ścinającego do modulowania adhezji komórek monocytarnych do monowarstw EC aktywowanych cytokinami.

Fenotypowanie zapalne śródbłonka na chipie

Poznaj metodę powlekania do segmentacji wzrostu komórek śródbłonka w płytkach 6-dołkowych na wytrząsarce orbitalnej. Technika ta umożliwia badanie wpływu naprężenia ścinającego na komórki w różnych strefach przepływu.

Segmentacja wzrostu komórek śródbłonka w 6-dołkowych płytkach na wytrząsarce orbitalnej do badań mechanobiologicznych

Przeglądaj więcej filmów