Name: Ślepa intubacja dotchawicza u nowonarodzonych królików (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-02-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 4 s
Description: Naucz się techniki ślepej intubacji dotchawiczej u nowonarodzonych królików z wykorzystaniem zamknięcia przełyku. Ta metoda umożliwia skuteczne udrażnianie dróg oddechowych bez konieczności bezpośredniej wizualizacji.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca była wspierana przez granty z Instituto de Salud Carlos III [PFIS2017-0224], "Beca Ruza" z Sociedad Española de Cuidados Intensivos Pediátricos oraz Vanderbilt Medical Scholars Program.
Sponsorzy nie byli zaangażowani w zbieranie, analizę ani interpretację danych.
Chcielibyśmy podziękować Isabel Salas za pomoc udzieloną w laboratorium zwierzęcym oraz Panu Carlesowi Fábredze i Pani Gemmie Fernandez-Asensio z Zespołu Techników Audiowizualnych ze Szpitala Sant Joan de Déu za ich wsparcie techniczne przy nagrywaniu i produkcji wideo.

Procedura intubacji opisana poniżej została zatwierdzona przez Komitet ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt Uniwersytetu w Barcelonie (CEEA 180/19)
1. Przygotowanie eksperymentalne
<ol>
	<li>Zaopatrz się w następujące materiały: rurkę dotchawiczą z polichlorku winylu (PVC) o średnicy 2 mm, 6 francuskich (Fr) poliuretanowych rurek do karmienia, kleszcze do preparowania z płaską i szeroką końcówką oraz sterylny smar (<klasa silna = "xfig" >Rysunek 1).</li>
	<li>Podczas procesu intubacji i zabiegu chirurgicznego należy zachować sterylne warunki.</li>
</ol>
2. Znieczulenie
<ol>
	<li>Znieczulić zwierzę 5 mg/kg ksylazyny i 25 mg/kg ketaminy podawanych razem domięśniowo w obszerny boczny mięsień czworogłowy uda. Agoniści receptorów alfa-2, tacy jak deksmedetomidyna, mogą być również stosowane zamiast ksylazyny.</li>
	<li>Odczekaj 3-5 minut, aby lek zaczął działać.</li>
	<li>Tę samą dawkę należy podawać aż do uzyskania głębokiego znieczulenia (ujemne odruchy pedałowe, powiekowe i rogówkowe). Idealnie byłoby, gdyby królik utrzymywał spontaniczny oddech aż do intubacji.</li>
</ol>
3. Intubacja dotchawicza
<ol>
	<li>Umieść królika na kocu termicznym w temperaturze 37 °C. Umieść zwierzę w pozycji leżącej grzbietowej z głową w przeprostze. Ustaw głowę tak prosto i w linii środkowej, jak to możliwe. Czterocentymetrowy zwój wykonany ze sterylnej gazy umieszczony w grzbietowej części szyi może być pomocny w osiągnięciu co najmniej 45° rozciągnięcia (<silna klasa="xfig">Rysunek 2).</li>
	<li>Użyj kleszczy preparacyjnych z płaską i szeroką końcówką, aby otworzyć jamę ustną o szerokości około jednego centymetra. Używaj kleszczy z i szerokim końcem, aby uniknąć urazu jamy ustnej.</li>
	<li>Zmierz odległość między ustami a okolicą brzucha (pierwsze żebro). Wprowadzić nasmarowaną 6-francuską (Fr) poliuretanową rurkę żołądkową do wstępnie zmierzonego znaku (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 3-4).</li>
	<li>Przesuń rurkę do karmienia w lewo i przymocuj taśmą klejącą do pola operacyjnego.</li>
	<li>Wprowadzić rurkę intubacyjną z PVC o średnicy 2 mm, pokrytą sterylnym smarem, do znaku 3 cm.
	<ol>
		<li>Jeśli wystąpią jakiekolwiek trudności z przesuwaniem rury, przesuń ją całkowicie i spróbuj ponownie, aż do uzyskania płynnego ślizgu. Ryzyko urazu krtani i nagłośni jest znaczne w przypadku wielokrotnych prób intubacji. Przymocuj rurkę za pomocą taśmy klejącej do pola operacyjnego (<klasa silna = "xfig">Rysunek 5-6).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Podłącz rurkę dotchawiczą do respiratora z następującymi ustawieniami: Objętość oddechowa - 10 ml / kg; częstość oddechów: 40 oddechów/min; FiO2 100%, PEEP 6.</li>
	<li>Potwierdź prawidłowe położenie rurki poprzez wykrycie CO2 w wydychanym powietrzu (ETCO2), bezpośrednią wizualizację rozszerzania się klatki piersiowej i zaparowanie rurki. Pomocne może być również monitorowanie zwierzęcia za pomocą pulsoksymetrii i osłuchiwania płuc (<silna klasa="xfig">Ryc. 7).</li>
	<li>Na zakończenie eksperymentu należy zastosować standaryzowany protokół eutanazji, który polega na dożylnym podaniu pentobarbitalu w dawce 120-240 mg/kg. Dawki należy powtarzać aż do ustania oddechu, braku odruchów i asystolii. 
	UWAGA: W eksperymentach chirurgicznych zwierzę jest żywe podczas procesu wentylacji i ostatecznie zostaje poddane eutanazji.</li>
</ol>

<ol><li>Gilroy, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+of+rabbits+and+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Veterinary+Medical+Association%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation of rabbits and rodents.</a> Journal of the American Veterinary Medical Association. 179 (11), 1295(1981).</li>
<li>Graham, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Common+procedures+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22The+Veterinary+Clinics+of+North+America.+Exotic+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Common procedures in rabbits.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 9 (2), 367-388 (2006).</li>
<li>Fick, T. E., Schalm, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+technique+for+endotracheal+intubation+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">A simple technique for endotracheal intubation in rabbits.</a> Laboratory Animals. 21 (3), 265-266 (1987).</li>
<li>Conlon, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atraumatic+endotracheal+intubation+in+small+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Atraumatic endotracheal intubation in small rabbits.</a> Laboratory Animal Science. 40 (2), 221-222 (1990).</li>
<li>Johnson, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endoscopic+intubation+of+exotic+companion+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22The+Veterinary+Clinics+of+North+America.+Exotic+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Endoscopic intubation of exotic companion mammals.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 13 (2), 273-289 (2010).</li>
<li>Falcão, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technique+of+blind+tracheal+intubation+in+rabbits+%28Oryctolagus+cuniculi%29+supported+by+previous+maneuver+of+esophageal+cannulization%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cirurgica+Brasileira%22%5BJournal%5D)">Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization.</a> Acta Cirurgica Brasileira. 26 (5), 352-356 (2011).</li>
<li>Miura, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22The+Japanese+Journal+of+Veterinary+Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation in rabbits.</a> The Japanese Journal of Veterinary Anesthesiology. 19 (1), 25-29 (2012).</li>
<li>Thompson, K. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+Intubation+of+Rabbits+Using+a+Polypropylene+Guide+Catheter%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter.</a> Journal of Visualized Experiments. (129), (2017).</li>
<li>Comolli, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+endoscopic+endotracheal+intubation+and+the+v-gel+supraglottic+airway+device+for+spontaneously+ventilating+New+Zealand+white+rabbits+undergoing+ovariohysterectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Record%22%5BJournal%5D)">Comparison of endoscopic endotracheal intubation and the v-gel supraglottic airway device for spontaneously ventilating New Zealand white rabbits undergoing ovariohysterectomy.</a> Veterinary Record. , 1-8 (2020).</li>
<li>Hua, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+different+ventilation+strategies+on+lung+injury+in+newborn+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Pulmonology%22%5BJournal%5D)">Effects of different ventilation strategies on lung injury in newborn rabbits.</a> Pediatric Pulmonology. 47 (11), 1103-1112 (2012).</li>
<li>Kitchen, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+lung+inflation+and+sodium+transport+in+airway+liquid+clearance+during+lung+aeration+in+newborn+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Research%22%5BJournal%5D)">The role of lung inflation and sodium transport in airway liquid clearance during lung aeration in newborn rabbits.</a> Pediatric Research. 73 (4-1), 443-449 (2012).</li>
<li>Boon, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tubeless+tracheotomy+for+survival+airway+surgery+in+the+leporine+model%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Tubeless tracheotomy for survival airway surgery in the leporine model.</a> The Laryngoscope. 125 (3), 680-684 (2015).</li>
<li>Dion, G. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morbidity+and+mortality+associated+with+preclinical+tracheostomy+models%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Morbidity and mortality associated with preclinical tracheostomy models.</a> The Laryngoscope. 128 (2), 68-71 (2018).</li>
<li>Phaneuf, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracheal+injury+after+endotracheal+intubation+and+anesthesia+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 45 (6), 67-72 (2006).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Króliki są szeroko stosowane w eksperymentach na zwierzętach ze względu na ich dostępność, wysoki wskaźnik reprodukcji z krótkim czasem międzypokoleniowym i łatwą obsługę2. W naszym centrum wykorzystujemy 5-7-dniowe króliki nowozelandzkie (Oryctolagus cuniculus) jako model noworodka do badania neurologicznych następstw operacji pozaustrojowej na rozwijający się mózg. W związku z tym stosujemy zabiegi, które wymagają głębokiego znieczulenia i musimy stosować intubację dotchawiczą przez okr...

Specyficzna anatomia układu oddechowego królika komplikuje intubację dotchawiczą. Jama ustna jest głęboka i wąska, z ograniczonym zakresem otwierania ust i stosunkowo dużym językiem, co utrudnia bezpośrednią wizualizację krtani nawet przy użyciu laryngoskopu1,2. Co więcej, intubacja nowonarodzonego królika, który jest 10-20 razy mniejszy niż u dorosłego osobnika, jest jeszcze bardziej wymagającą procedurą. Oprócz tych cech anatomicznych króliki są podatne na skurcz krtani wtórny do manipulacji dróg oddechowych.
Kilka technik intubacji zostało opisanych w literaturze, takich jak laryngoskopowa intubacja tchawicy, ślepa intubacja, intubacja otoskopowa, intubacja wsteczna, intubacja endoskopowa, tracheostomia i wentylacja urządzenia nadgłośniowego3,4,5,6,7,8,9. Wszystkie te techniki zostały z powodzeniem przeprowadzone na dorosłych królikach; Istnieje jednak niewiele publikacji dotyczących zaawansowanego udrażniania dróg oddechowych u nowonarodzonego królika<klasa SUP="xref">10. Jedno z badań opisuje wykonywanie tracheostomii u zwierząt w tym wieku w celu oceny mechaniki oddychania i objętości płuc, chociaż jest to agresywna i nieodwracalna technika11. Ta metoda intubacji dotchawiczej okazała się skuteczną i tanią metodą udrażniania dróg oddechowych u nowonarodzonych królików.

<table><tbody><tr><td>Rurka dotchawicza z polichlorku winylu (PVC) o średnicy 2 mm</td><td>Vygon</td><td>520.20</td><td></td></tr><tr><td>6 Francuska poliuretanowa rurka zasilająca</td><td>Vygon</td><td>310.06</td><td></td></tr><tr><td>Znieczulenie (ketamina i ksylazyna)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Monitor wieloparametrowy Intellivue MP5</td><td>Phillips</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kleszcze preparacyjne z gładką i szeroką końcówką</td><td>LensforVision</td><td>AK005</td><td></td></tr><tr><td>Sterylny smar (Silkospray)</td><td>Wentylator Rush</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Servo 900c</td><td>Maquet</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

Ślepa intubacja dotchawicza u nowonarodzonych królików

Blind Endotracheal Intubation in Neonatal Rabbits

Nowonarodzony królik jest użytecznym modelem zwierzęcym do różnych patologii i procedur. Udrażnianie dróg oddechowych królika jest złożone ze względu na jego cechy anatomiczne, co jest jeszcze bardziej skomplikowane w przypadku noworodka. Spośród różnych metod zaawansowanego udrażniania dróg oddechowych, intubacja dotchawicza jest mniej agresywna niż tracheostomia i jest bardziej wykonalna niż leczenie nadgłośniowe, biorąc pod uwagę brak urządzeń nadgłośniowych o tak małych rozmiarach. Ponieważ bezpośrednia wizualizacja głośni jest bardzo trudna u zwierząt tej wielkości, ten ślepy model intubacji jest przedstawiany jako skuteczna alternatywa, szczególnie w przypadku eksperymentów wymagających przedłużonego znieczulenia. Tą metodą przeprowadziliśmy intubacje na ślepo z 90% skutecznością.

W laboratorium technikę tę wykonuje personel medyczny posiadający doświadczenie w eksperymentach z królikami nowozelandzkimi oraz wiedzę specjalistyczną w zakresie udrażniania dróg oddechowych u dzieci. Procedura została przeprowadzona przez jednego badacza u 10 zwierząt, przy czym ogólny wskaźnik sukcesu wyniósł 90%. Wcześniej inny badacz ćwiczył optymalizację zarówno ułożenia zwierzęcia, jak i prawidłowej długości fiksacji rurki. Żadne z zwierząt nie zostało intubowane do przełyku. Tylk...

Opisujemy technikę intubacji dotchawiczej u nowonarodzonych królików po cewnikowaniu przełyku za pomocą sondy żołądkowej.

The newborn rabbit is a useful animal model for various pathologies and procedures. Airway management of the rabbit is complex due to its anatomical ...

Wprowadzenie.Nowonarodzony królik jest przydatny jako model zwierzęcy różnych patologii i procedur. Niektóre z tych procedur wymagają zaawansowanego udrażniania dróg oddechowych i mogą być trudne ze względu na złożoną charakterystykę dróg oddechowych i niewielki rozmiar zwierzęcia. Przedstawiamy nowatorską technikę intubacji dotchawiczej wykonywanej poprzez okluzję przełyku i wprowadzenie rurki do dróg oddechowych bez bezpośredniej wizualizacji. Materiałów.Będziemy potrzebować rurki dotchawiczej z PVC o średnicy dwóch milimetrów, sześcioma francuskich rurki do karmienia z poliuretanu oraz kleszczy preparacyjnych gładkich i z szeroką końcówką. Możemy również użyć sterylnego lubrykantu. Znieczulenie. Uspokój zwierzę ksylazyną pięć miligramów na kilogram i ketaminę 25 miligramów na kilogram.Stosować razem domięśniowo w obszerny boczny mięsień czworogłowy uda. Odczekaj od trzech do pięciu minut, aby lek zaczął działać. Powtarzaj je, aż do uzyskania ujemnego odruchu pedału.Oceń, że królik utrzyma spontaniczny oddech aż do intubacji. Intubacja dotchawicza. Umieść zwierzę w pozycji leżącej grzbietowej z głową w przeprostu.Pomocny może być zwój wykonany ze sterylnej gazy i umieszczony w grzbietowej okolicy szyi. Użyj zwykłych kleszczy preparacyjnych z szeroką końcówką, aby otworzyć jamę ustną o szerokości około jednego centymetra. Wprowadzić sześciofrancuską poliuretanową sondę żołądkową aż do ustania jej postępu.Rurka podająca jest przesuwana i naprawia ją. Wprowadzić rurkę dotchawiczą z PVC o średnicy dwóch milimetrów nasączoną sterylnym smarem, aż osiągnie znak trzech centymetrów. Jeśli wystąpią jakiekolwiek trudności z przesuwaniem rury, należy ją całkowicie usunąć i próbować ponownie, aż do uzyskania płynnego ślizgu.Rurka jest również zamocowana. Wyniki. Zabieg wykonano u 10 zwierząt. Ich zakres wagowy wynosił od 110 do 210 gramów w zależności od dnia życia i stanu odżywienia.Globalny wskaźnik sukcesu wyniósł 90%Jedyna awaria wystąpiła u najmniejszego królika z powodu jego wąskich dróg oddechowych. Konkluzja. Opisywany przez nas model intubacji nowonarodzonych królików nie wymaga użycia specjalistycznego sprzętu, jest łatwy do opanowania i może być wykonany przez jedną osobę bez konieczności korzystania z pomocy asystenta. Wszystkie techniki ślepego dostępu do dróg oddechowych wiążą się z pewnym ryzykiem, ale uważamy, że ta technika jest opcją, gdy wizualizacja sterowana jest trudna, jak u bardzo małych zwierząt.

blind-endotracheal-intubation-in-neonatal-rabbits

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Ten film pokazuje chirurgiczne tworzenie otworu w tchawicy królika w celu włożenia kaniuli tchawicy do sztucznego wentylacji płuc.

Kaniulacja tchawicy w modelu królika: procedura wprowadzania kaniuli tchawicy do tchawicy królika

W tym filmie pokazujemy intubację tchawicy — inwazyjną procedurę wprowadzania rurki dotchawiczej przez usta w modelu królika. Zabieg ten pozwala na mechaniczną wentylację płuc.

Intubacja tchawicy w celu wentylacji mechanicznej: procedura wprowadzania rurki dotchawiczej do tchawicy modelu królika

Intubacja dotchawicza u królików jest trudna ze względu na ich nietypową anatomię. Tutaj przedstawiamy technikę bezpośredniej intubacji tchawicy przy użyciu cewnika polipropylenowego jako przewodnika. Ta metoda wykorzystuje stosunkowo niedrogie materiały eksploatacyjne, wymaga minimalnego szkolenia i może być łatwo wykonana w dowolnym środowisku klinicznym.

Intubacja dotchawicza królików za pomocą polipropylenowego cewnika prowadzącego

Ta metoda opisuje umieszczanie przeszczepów żył interpozycyjnych u królików, transdukcję przeszczepów i osiągnięcie trwałej ekspresji transgenu. Pozwala to na badanie fizjologicznych i patologicznych ról transgenów i ich produktów białkowych w przeszczepionych żyłach oraz testowanie terapii genowych w chorobach przeszczepów żył.

Króliczy model trwałej ekspresji transgenu w przeszczepach interpozycji żyły szyjnej do tętnicy szyjnej wspólnej

Rozwój i testowanie urządzeń wewnątrznaczyniowych do leczenia tętniaków wewnątrzczaszkowych jest nadal bardzo ważne. Większość stosowanych obecnie modeli tętniaków pomija albo ważne cechy zwyrodniałej ściany tętnicy, albo hemodynamikę prawdziwego rozwidlenia. Dlatego naszym celem było zaprojektowanie nowatorskiego modelu bifurkacji worka tętniczego u królików.

Worek tętniczy Model tętniaka bifurkacji mikrochirurgicznej u królika

Preparat z izolowanych płuc królika jest złotym standardem w badaniach płuc. Niniejsza publikacja ma na celu opisanie techniki opracowanej do badania fizjologicznych i patologicznych mechanizmów związanych z reaktywnością dróg oddechowych, zachowaniem płuc oraz badaniami przedklinicznymi w zakresie transplantacji płuc i obrzęku płuc.

Izolowany system perfuzji płuc w modelu królika

Obecne badanie demonstruje wysoce powtarzalny model zwierzęcy ostrego regionalnego niedokrwienia mięśnia sercowego i uszkodzenia reperfuzyjnego u królików przy użyciu mini-torakotomii lewej dla przypadków przeżycia lub sternotomii linii środkowej dla przypadków nieprzeżytych.

Model uszkodzenia niedokrwiennego i reperfuzyjnego u królików

Tutaj wprowadzamy ustandaryzowaną procedurę intubacji dotchawiczej poprzez tracheotomię, a następnie torakotomię u szczurów, mającą na celu zwiększenie precyzji i powtarzalności aplikacji nieprzeżywalnych, wymagających inwazyjnej wentylacji i ekspozycji narządów klatki piersiowej w modelach szczurów in vivo.

Intubacja dotchawicza przez tracheotomię, a następnie torakotomia u szczurów w zastosowaniach nieprzeżywalnych

Mechanizmy nagłej niespodziewanej śmierci w epilepsji (SUDEP) są słabo poznane i trudne do przetłumaczenia z obecnych modeli. Transgeniczne króliki mogą oferować wgląd w te mechanizmy. Opisujemy metodę długoterminowych, ciągłych zapisów elektroencefalografii i elektrokardiografii u transgenicznych królików w celu oceny poważnych zdarzeń, które mogą prowadzić do śmierci.

Implantacja urządzeń telemetrycznych do elektroencefalogramu i elektrokardiogramu w zestawach dla noworodków

Opracowaliśmy prostą, niezawodną i stosunkowo tanią metodę intubacji dotchawiczej u myszy za pomocą bezpośredniej laryngoskopii przy użyciu otoskopu z wziernikiem 2,0 mm. Technika ta jest atraumatyczna i może być stosowana do powtarzania pomiarów w przewlekłych eksperymentach. Uważamy, że jest lepsza od tracheostomii lub wcześniej opisanych technik niechirurgicznych.

Intubacja dotchawicza u myszy za pomocą laryngoskopii bezpośredniej przy użyciu otoskopu

Naucz się techniki ślepej intubacji dotchawiczej u nowonarodzonych królików z wykorzystaniem zamknięcia przełyku. Ta metoda umożliwia skuteczne udrażnianie dróg oddechowych bez konieczności bezpośredniej wizualizacji.

Ślepa intubacja dotchawicza u nowonarodzonych królików

Przeglądaj więcej filmów