-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Immunology and Infection
Nowoczesne urządzenie rozgrzewające/ograniczające do skutecznych iniekcji żył ogonowych w mysim m...
Nowoczesne urządzenie rozgrzewające/ograniczające do skutecznych iniekcji żył ogonowych w mysim m...
JoVE Journal
Immunology and Infection
This content is Free Access.
JoVE Journal Immunology and Infection
A Contemporary Warming/Restraining Device for Efficient Tail Vein Injections in a Murine Fungal Sepsis Model

Nowoczesne urządzenie rozgrzewające/ograniczające do skutecznych iniekcji żył ogonowych w mysim modelu sepsy grzybiczej

Full Text
17,236 Views
06:02 min
November 6, 2020

DOI: 10.3791/61961-v

Junko Yano1, Elizabeth A. Lilly2, Mairi C. Noverr2, Paul L. Fidel1

1Center for Oral and Craniofacial Biology,Louisiana State University Health-School of Dentistry, 2Department of Microbiology and Immunology,Tulane University School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Tutaj prezentujemy skuteczną i efektywną metodę wstrzykiwania żył ogonowych gryzoni za pomocą unikalnie zaprojektowanego urządzenia rozgrzewającego/krępującego. Usprawniając inicjację procesów rozszerzania naczyń krwionośnych i ograniczania, protokół ten umożliwia dokładne i terminowe wstrzyknięcia dożylne dużym grupom zwierząt przy minimalnym stresie.

Urządzenie grzewcze i krępujące oferuje uproszczoną technikę skutecznego przeprowadzania dożylnych iniekcji do żyły ogonowej, zapewnia ogrzewanie w kontrolowanym środowisku i skuteczną obsługę w celu przeprowadzenia dożylnego wstrzyknięcia żyły ogonowej. Przed wypróbowaniem tej techniki ważne jest, aby zapoznać się z protokołem i poćwiczyć wstrzykiwanie soli fizjologicznej. Demonstracja wizualna daje możliwość pokazania wskazówek i zastrzeżeń, które pomogą w procedurze.

Junko Yano, adiunkt w moim laboratorium, ustawi sprzęt, a ja zademonstruję procedurę. Aby zainicjować urządzenie grzewcze, kontroluj urządzenie grzewcze na czystym płaskim blacie stołu i włącz je, upewniając się, że wskaźnik mocy termostatu lamp świeci na zielono. Następnie umieść materiał ściółkowy w komorze grzewczej, aby obszar był suchy i zatrzymywał ciepło.

W przypadku ustawienia urządzenia przytrzymującego należy umieścić jednostkę przytrzymującą obok jednostki grzewczej i określić odpowiednie rozmiary stożków dla zwierzęcia. Ręcznie wyreguluj szerokości podstawy giętkiego aluminiowego stożka, aby zapewnić zwierzęciu odpowiednie unieruchomienie. Alternatywnie zastąp stożek modelami dopasowanymi na zamówienie, aby pomieścić zwierzęta o różnych rozmiarach.

Ustaw termostat na żądaną temperaturę za pomocą pokrętła sterującego, upewniając się, że wskaźnik grzałki świeci na czerwono i że żarówka jest włączona. Uważnie monitoruj wyświetlacz temperatury wewnętrznej, gdy żarówka jest włączona. Aktywuje się automatycznie po osiągnięciu temperatury docelowej.

Ustawić wysokość stożka platformy przytrzymującej na optymalnym poziomie dla użytkownika za pomocą pokrętła regulacji wysokości. Po osiągnięciu temperatury docelowej delikatnie przenieść zwierzęta z klatki do komory grzewczej. W komorze grzewczej można bezpiecznie przechowywać od czterech do sześciu myszy lub jednego szczura przez maksymalnie 20 do 30 minut.

Obróbka cieplna przez 5 do 10 minut wystarczy, aby wywołać rozszerzenie naczyń krwionośnych i poprawić widoczność żył ogonowych. Monitoruj zwierzę pod kątem wszelkich oznak ostrego stresu cieplnego, takich jak szybkie oddychanie, letarg lub skakanie. Wyjmij zwierzę z komory, podnosząc je za podstawę ogona i umieść na otworze stożkowym jednostki krępującej.

Gdy zwierzę chwyta przednimi łapami daleką krawędź stożka, delikatnie pociągnij ogon do tyłu i przełóż ogon przez otwartą szczelinę. Zabezpiecz jedną z tylnych nóg wystających ze stożka tak, aby żyła boczna była widoczna w miejscu godziny 12. Chwyć ogon od połowy do 2/3 długości ręką niedominującą między kciukiem a palcem wskazującym, wywierając lekkie napięcie na żyłę boczną, aby utrzymać pozycję ogona i rozszerzenie naczyń krwionośnych.

Przetrzeć skórę w miejscu wstrzyknięcia gąbką z gazy lub wacikiem zwilżonym 70% alkoholem. Trzymać strzykawkę ręką dominującą i ustawić igłę równolegle do ogonka. Włóż igłę w kierunku przepływu krwi pod kątem od 10 do 25 stopni i wsuń się dalej w światło żyły, penetrując od dwóch do czterech milimetrów.

Powoli wstrzykiwać roztwór. W przypadku oporu lub białych pęcherzy powyżej miejsca wstrzyknięcia, należy usunąć igłę i podjąć próbę drugiego wstrzyknięcia w miejsce powyżej pierwotnego umieszczenia igły. Jeśli wstrzyknięcie jednej żyły bocznej nie powiedzie się, należy przestawić zwierzę na przeciwną stronę i podjąć więcej prób na żyle przeciwległej.

Wyjąć igłę i mocno docisnąć kciukiem miejsce wstrzyknięcia, aby zapobiec cofaniu się wstrzykniętego roztworu lub krwi. Kontynuuj delikatny ucisk czystą gazą lub chusteczką higieniczną, aż krwawienie zostanie zatrzymane. Wróć zwierzę do klatki i monitoruj je przez pięć minut, upewniając się, że zwierzę wznawia normalną aktywność bez dalszego krwawienia.

Po uruchomieniu grzałki komory grzewczej, emisja ciepła przez żarówkę gwałtownie podnosi temperaturę wewnętrzną w ciągu pierwszych 5 do 15 minut, w zależności od temperatury docelowej. Grzałka dezaktywuje żarówkę, jeśli wykryta temperatura wewnętrzna przekroczy ustawioną temperaturę. Następnie urządzenie automatycznie powtarza cykl grzewczy, aby utrzymać temperaturę wewnętrzną.

W mysim modelu kandydozy krwioobiegu prowadzącej do sepsy, dożylne podanie Candida albicans u szwajcarskich myszy Webster spowodowało szybki początek sepsy i rozprzestrzenianie się organizmów, prowadząc do wysokiej śmiertelności w ciągu trzech do czterech dni. Natomiast zwierzęta mogą być chronione przed sepsą poprzez wstępne szczepienie lub szczepienie awirulentowym szczepem Candida dubliniensis, osiągając ponad 95% przeżywalności po śmiertelnym prowokacji dożylnej zjadliwymi C. albicans. Nieszczepione zwierzęta ze śmiertelną infekcją miały znaczny wzrost zachorowalności wywołanej sepsą, podczas gdy grupa zaszczepiona wykazywała minimalne objawy po śmiertelnym prowokacji.

Wyniki dotyczące postępującej śmiertelności w porównaniu z ochroną za pośrednictwem szczepionki uzyskano w sposób powtarzalny w czterech niezależnych eksperymentach. Zachowaj ostrożność podczas ustawiania zwierzęcia w stożku, aby prawidłowo ustawić igłę, aby uzyskać dostęp do żyły, wyregulować igłę do żyły i wstrzyknąć żyłę. Ta usprawniająca technika oferuje wydajny i skuteczny sposób przeprowadzania iniekcji do żył ogonowych, co poprawi wyniki naukowe badaczy.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Iniekcje do żył ogonowych urządzenie rozgrzewające urządzenie krępujące zastrzyki dożylne model mysi posocznica grzybicza kontrola temperatury obchodzenie się ze zwierzętami rozszerzenie naczyń krwionośnych obróbka cieplna demonstracja protokołu ostry stres cieplny unieruchamianie zwierząt

Related Videos

Wstrzyknięcie żyły ogonowej: metoda podawania komórek rakowych do badań przerzutowych w modelu mysim

04:01

Wstrzyknięcie żyły ogonowej: metoda podawania komórek rakowych do badań przerzutowych w modelu mysim

Related Videos

12.7K Views

Dosercowe dostarczanie wektorów wirusowych: technika wstrzykiwania wektorów wirusowych dosierdziowo w celu zbadania przerzutów do trzustki w modelu mysim

04:38

Dosercowe dostarczanie wektorów wirusowych: technika wstrzykiwania wektorów wirusowych dosierdziowo w celu zbadania przerzutów do trzustki w modelu mysim

Related Videos

4.4K Views

Konstytutywne i indukowalne systemy do genetycznej modyfikacji in vivo mysich hepatocytów za pomocą hydrodynamicznej iniekcji żyły ogonowej

09:35

Konstytutywne i indukowalne systemy do genetycznej modyfikacji in vivo mysich hepatocytów za pomocą hydrodynamicznej iniekcji żyły ogonowej

Related Videos

14.9K Views

Nowa najlepsza praktyka walidacji iniekcji do żył ogonowych u szczurów za pomocą środków znakowanych w bliskiej podczerwieni

04:19

Nowa najlepsza praktyka walidacji iniekcji do żył ogonowych u szczurów za pomocą środków znakowanych w bliskiej podczerwieni

Related Videos

22K Views

Mysi model zwężenia żyły centralnej z wykorzystaniem przetoki aortalno-caval ze zwężeniem odpływu

06:17

Mysi model zwężenia żyły centralnej z wykorzystaniem przetoki aortalno-caval ze zwężeniem odpływu

Related Videos

7.7K Views

Analiza patologiczna przerzutów do płuc po bocznym wstrzyknięciu komórek nowotworowych do żyły ogonowej

08:54

Analiza patologiczna przerzutów do płuc po bocznym wstrzyknięciu komórek nowotworowych do żyły ogonowej

Related Videos

9.7K Views

Model obrzęku limfatycznego mysiego ogona

04:38

Model obrzęku limfatycznego mysiego ogona

Related Videos

6.4K Views

Model krwawienia z przecięcia żyły ogonowej u myszy z hemofilią A w pełni znieczuloną

08:13

Model krwawienia z przecięcia żyły ogonowej u myszy z hemofilią A w pełni znieczuloną

Related Videos

7K Views

Wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa i inwazyjna ocena hemodynamiczna w modelu nadciśnienia tętniczego płucnej myszy wywołanego niedotlenieniem

08:51

Wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa i inwazyjna ocena hemodynamiczna w modelu nadciśnienia tętniczego płucnej myszy wywołanego niedotlenieniem

Related Videos

1.8K Views

Konsekwentne dostarczanie wirusa związanego z adenowirusem poprzez boczne wstrzyknięcie żyły ogonowej u dorosłych myszy

05:03

Konsekwentne dostarczanie wirusa związanego z adenowirusem poprzez boczne wstrzyknięcie żyły ogonowej u dorosłych myszy

Related Videos

2.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code