Name: Protokół ultrasonograficzny nerwów w celu wykrycia neuropatii dysimmunologicznych (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-10-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 56 s
Description: Poznaj protokół ultrasonografii nerwów w diagnostyce neuropatii zapalnych. Metoda pozwala szybko wykryć zmiany morfologiczne nerwów obwodowych i ocenić powierzchnię przekroju poprzecznego u pacjentów.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dziękujemy za wsparcie ze strony Uniwersytetu Ruhry w Bochum dla naszych badań nad ultrasonografią nerwowo-mięśniową.

Wszystkie egzaminy do tej pracy zostały przeprowadzone zgodnie z wytycznymi instytucjonalnymi Uniwersytetu Ruhry w Bochum, Niemcy.
1. Przygotowania eksperymentalne
<ol>
	<li>Przygotowanie pacjenta
	<ol>
		<li>Sprawdź kryteria włączenia pacjenta: zbadaj dorosłych pacjentów ze zdiagnozowaną polineuropatią, podejrzanych o pochodzenie zapalne.</li>
		<li>Sprawdź kryteria wykluczenia pacjenta: nie badaj pacjentów z otwartymi ranami lub infekcjami w regionach, które mają być badane.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Instrumentalne punkty kontrolne
	<ol>
		<li>Sprawdź integralność aparatu ultrasonograficznego i wszystkich użytych materiałów (patrz Tabela materiałów).</li>
		<li>Wprowadź imię i nazwisko pacjenta oraz dane pacjenta w aparacie USG przed rozpoczęciem badania ultrasonograficznego (w zależności od urządzenia).</li>
		<li>Wybierz odpowiednią sondę ultradźwiękową (preferowaną 14-18 MHz) (patrz tabela materiałów) i ustaw ją na ultrasonografię nerwowo-mięśniową.</li>
		<li>Podczas całego badania należy wyregulować głębię i skupić się na uzyskaniu optymalnej jakości obrazu.</li>
		<li>Jeśli to możliwe, zbadaj pełny przebieg każdego nerwu w widoku przekrojowym. 
		UWAGA: Nerwy zalecane do badania to: nerw środkowy, łokciowy, promieniowy, korzenie szyjne, splot ramienny i nerw błędny, a także nerw piszczelowy, strzałkowy i łydkowy (<klasa silna = "xfig">Ryc. 3). Badanie każdego z tych nerwów jest pokazane w następnej sekcji i na filmie. Całe badanie ultrasonograficzne według poniższego protokołu zajmie ~30-45 min.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Badanie ultrasonograficzne
<ol>
	<li>Badanie nerwów ramienia należy rozpocząć od pacjenta siedzącego w neutralnej pozycji z ręką spoczywającą na supinacji na powierzchni, np. nodze.</li>
	<li>Umieść trochę żelu ultradźwiękowego na sondzie przetwornika, nadgarstku, przedramieniu, łokciu i ramieniu.</li>
	<li>W celu zbadania nerwu pośrodkowego zacznij od wykonania skanu poprzecznego na poziomie nadgarstka.</li>
	<li>Poruszaj się proksymalnie, aby podążać za anatomicznym przebiegiem nerwu pośrodkowego do ramienia.</li>
	<li>Zmierz CSA nerwu pośrodkowego w następujących miejscach: przy wejściu do kanału nadgarstka (retinaculum flexorum); na przedramieniu (10-15 cm proksymalnie do siatkówki flexorum; na łokciu (zgięcie łokcia); na ramieniu obok tętnicy ramiennej (w połowie odległości między nadkłykciem przyśrodkowym a dołem pachowym).</li>
	<li>W celu zbadania nerwu łokciowego należy rozpocząć od wykonania skanu poprzecznego na poziomie nadgarstka łokciowego do nerwu pośrodkowego.</li>
	<li>Poruszaj się proksymalnie, aby podążać za anatomicznym przebiegiem nerwu łokciowego wzdłuż bruzdy do ramienia. 
	UWAGA: Przesuwając się w kierunku ramienia, pozwól pacjentowi podnieść rękę zgiętą w łokciu, aby zbadać bruzdę i ramię.</li>
	<li>Zmierz CSA nerwu łokciowego w następujących miejscach: przy wejściu do kanału Guyona; na przedramieniu (10-15 cm proksymalnie do kanału Guyona); na łokciu (między nadkłykciem przyśrodkowym a oczaszkonem); na ramieniu (w połowie odległości między nadkłykciem przyśrodkowym a dołem pachowym).</li>
	<li>Aby zbadać nerw promieniowy, pozwól pacjentowi trzymać rękę przed brzuchem zgiętym w łokciu i zeskanuj nerw promieniowy bezpośrednio obok kości ramiennej.</li>
	<li>Użyj trybu kolorowego dupleksu, aby uniknąć pomyłek z towarzyszącą tętnicą i żyłą. 
	UWAGA: Tryb dupleksu kolorów pokazuje przepływ krwi w tętnicy głębokiej ramienia i może wykazywać niski przepływ w odpowiedniej żyle, podczas gdy w nerwie promieniowym nie występuje przepływ. Dodatkowo żyła może być uciskana przez wywieranie nacisku zewnętrznego, a nerw nie.</li>
	<li>Zmierz CSA nerwu promieniowego w następującym miejscu: nerw promieniowy w rowku spiralnym.</li>
	<li>Kontynuuj badanie nerwu błędnego, korzeni nerwu szyjnego i splotu ramiennego.</li>
	<li>Umieść żel ultradźwiękowy na środku szyi.</li>
	<li>Aby zbadać nerw błędny, wykonaj skan poprzeczny na środku szyi i znajdź tętnicę szyjną. 
	UWAGA: Nerw błędny znajduje się bezpośrednio obok tętnicy szyjnej i żyły szyjnej.</li>
	<li>Zmierz CSA nerwu błędnego w następującym miejscu: w pochewce tętnicy szyjnej na poziomie rozwidlenia tętnicy szyjnej.</li>
	<li>W celu zbadania korzeni nerwów szyjnych, C5, C6, C7 poruszaj sondą grzbietowo i trochę w górę iw dół. 
	UWAGA: Korzenie nerwów szyjnych pojawiają się między przednim i tylnym guzkiem wyrostka poprzecznego. C7 można rozpoznać po braku guzka przedniego w jego wyrostku poprzecznym, podczas gdy zarówno guzki przednie, jak i tylne znajdują się z innymi korzeniami nerwów szyjnych.</li>
	<li>Zmierzyć CSA lub średnicę korzeni nerwu szyjnego w najbardziej proksymalnym miejscu, w którym korzeń nerwowy wychodzi nad wyrostkiem poprzecznym: C5; Klasa C6; Klasa C7.</li>
	<li>Aby zbadać splot ramienny, śledź anatomiczny przebieg korzeni nerwów szyjnych dystalnie i znajdź je wykonując pnie i pępowiny.</li>
	<li>Zmierz CSA splotu w następujących miejscach: Przestrzeń wewnątrzscalenowa (między przednim a przyśrodkowym mięśniem pochyłym); Przestrzeń nadobojczykowa (obok A. subclavia).</li>
	<li>Kontynuuj badanie nerwów nóg.</li>
	<li>Pozwól pacjentowi położyć się na bok z lekko ugiętymi nogami. Umieść trochę żelu ultradźwiękowego na sondzie przetwornika, dole podkolanowym, kości strzałkowej, kostkownicy i dolnej części nogi.</li>
	<li>W celu zbadania nerwu strzałkowego wyczuj głowę kości strzałkowej, umieść przetwornik bezpośrednio za nią, a następnie śledź przebieg nerwu do dołu podkolanowego.</li>
	<li>Zmierz CSA nerwu strzałkowego w następujących miejscach: tuż obok głowy kości strzałkowej; w dole podkolanowym.</li>
	<li>Aby zbadać nerw piszczelowy w dole podkolanowym, znajdź nerw strzałkowy i tętnicę podkolanową w dole podkolanowym. 
	UWAGA: W większości przypadków nerw piszczelowy znajduje się tuż nad tętnicą podkolanową.</li>
	<li>Zmierz CSA nerwu piszczelowego w następującym miejscu: w dole podkolanowym.</li>
	<li>W celu zbadania nerwu piszczelowego w kostce należy umieścić sondę bezpośrednio za kostką przyśrodkową. 
	UWAGA: W większości przypadków nerw piszczelowy znajduje się tuż obok tętnicy piszczelowej tylnej.</li>
	<li>Zmierz CSA nerwu piszczelowego w następującym miejscu: na poziomie przyśrodkowej kostki.</li>
	<li>W celu zbadania nerwu łydkowego umieść sondę na bocznej kostce. 
	UWAGA: W większości przypadków nerw łydkowy można znaleźć obok żyły powierzchownej.</li>
	<li>Śledź anatomiczny przebieg nerwu łydkowego proksymalnie do podudzia.</li>
	<li>Zmierz CSA nerwu łydkowego w następującym miejscu: między boczną a przyśrodkową głową mięśnia brzuchatego łydki.</li>
	<li>Wykonaj wszystkie pomiary po obu stronach.</li>
	<li>Zapisz wyniki wszystkich pomiarów (w zależności od aparatu USG) i zakończ badanie. 
	UWAGA: Rysunek 3 przedstawia przegląd wszystkich miejsc pomiarowych dla CSA.</li>
</ol>

Autorzy deklarują, że nie ma konfliktu interesów związanego z tym manuskryptem.

USG nerwów jest pomocnym dodatkowym narzędziem diagnostycznym w polineuropatiach. Może dostarczyć informacji o możliwych przyczynach polineuropatii w zależności od zakresu i wzorca powiększenia nerwów. Ponadto opisano zmiany CSA w podłużnym przebiegu choroby u pacjentów z CIDP jako korelujące z klinicznym przebiegiem choroby i odpowiedzią na leczenie 33,34,35,36.
<st...

Obok badania klinicznego, ocena polineuropatii dużych włókien obejmuje badanie elektrofizjologiczne w celu scharakteryzowania zaangażowania układu motorycznego lub czuciowego i odróżnienia uszkodzeń aksonalnych od demielinizacyjnych1. W polineuropatii aksonalnej głównymi przyczynami są neuropatia toksyczna i cukrzycowa, podczas gdy w polineuropatiach demielinizacyjnych należy wziąć pod uwagę neuropatie dziedziczne lub zapalne, takie jak CIDP2,3,4. Powszechnie stosowanymi kryteriami diagnostycznymi CIDP są kryteria Europejskiej Federacji Towarzystw Neurologicznych/Towarzystwa Nerwów Obwodowych (EFNS/PNS) ustanowione w 2005 roku i zaktualizowane w 2010 i 2021 roku5. Określają one kliniczne i elektrofizjologiczne kryteria diagnozowania CIDP oraz opisują dodatkowe kryteria, takie jak biopsja nerwu w celu wykrycia demielinizacji lub stanu zapalnego. Jednak w niektórych przypadkach, pomimo dokładnej diagnostyki, przyczyna neuropatii pozostaje niejednoznaczna. W takich przypadkach ultrasonografia nerwów stanowi uzupełniającą metodę badania nerwów nie pod względem funkcjonalnym, ale morfologicznym6. Kilka badań dowiodło zastosowania ultrasonografii nerwów jako dodatkowego narzędzia w diagnozowaniu CIDP, dzięki czemu zmienione kryteria EFNS/PNS z 2021 r. wprowadziły ultrasonografię nerwów w guideline5. Zaletą ultrasonografii nerwów w porównaniu z innymi metodami obrazowania, takimi jak neurografia rezonansu magnetycznego (MRN), jest to, że może być stosowana bezpośrednio przez neurologów leczących jako narzędzie przyłóżkowe; Jest to stosunkowo opłacalne. Może być stosowany wielokrotnie, ponieważ jest nieinwazyjny i nie jest bolesny.
Typowe cechy CIDP obserwowane w ultrasonografii nerwów to wzrost pola przekroju poprzecznego (CSA) class7,8, również występujące w dziedzicznych polineuropatiach. W CIDP wpływa to na poszczególne segmenty nerwowe w sposób niejednorodny7,9.
Opublikowano różne protokoły egzaminacyjne10,11,12,13,14,15 próbując wyjaśnić normalne wartości CSA i określić odpowiednie pozycje anatomiczne badania ultrasonograficznego. Niektóre z tych pozycji są podobne w większości protokołów egzaminacyjnych. Nie istnieje jednak powszechnie akceptowany protokół standaryzujący proces badania i upraszczający interpretację pomiarów.
Ten artykuł demonstruje badanie ultrasonograficzne nerwów przy użyciu standardowego protokołu dla polineuropatii, przedstawia różne wartości referencyjne dla CSA i pokazuje typowe objawy patologiczne u pacjentów z neuropatiami zapalnymi.
Wymagania techniczne dotyczące ultrasonografii nerwów 
USG nerwowo-mięśniowe wykonuje się w trybie B (tryb jasności, dwuwymiarowy obraz z poziomami szarości) przy użyciu obrazowania złożonego odpowiedniego urządzenia ultrasonograficznego6,16. Obrazowanie złożone umożliwia elektroniczne sterowanie elementami piezoelektrycznymi w sonidzie (przetworniku) w celu oświetlenia struktury docelowej pod różnymi kątami17. Fale ultradźwiękowe odbijają się w kilku kierunkach ze względu na histologiczną strukturę nerwów obwodowych. W wyniku tego, że dźwięk dociera z różnych kątów, większa część utraconych odbić wraca do sondy dźwiękowej (odbiornika) i może generować obrazy. W przypadku ultrasonografii nerwowo-mięśniowej stosuje się sondę ultradźwiękową o wysokiej rozdzielczości z przetwornikiem liniowym 18 MHz, w przypadku głębszych nerwów stosuje się dodatkową sondę liniową 12 MHz (np. do wyświetlania nerwu piszczelowego i strzałkowego w dole podkolanowym)6,16. Przetworniki o niższych częstotliwościach powodują zmniejszoną rozdzielczość przestrzenną i poprzeczną, przez co różnicowanie granic nerwowych od otaczających struktur jest mniej precyzyjne. Optymalne ustawienia można utrzymać na stałym poziomie za pomocą ustawienia wstępnego do obrazowania nerwowo-mięśniowego dostarczonego przez producenta. Podczas badania głębia obrazu i pozycja ostrości muszą być dostosowane do badanej struktury i stale dostosowywane do położenia nerwu. Wzmocnienie obrazu B i wzmocnienie zależne od głębi można regulować w celu optymalizacji obrazu przy jednolitej jasności. Naczynia krwionośne często znajdują się w pobliżu struktur nerwowych i często są używane jako punkty orientacyjne do wykonywania pomiarów w tej samej pozycji. Aby zobrazować ich anatomiczną interakcję i rozróżnić nerwy i naczynia, konieczne jest również wyświetlenie prędkości i kierunku przepływu za pomocą pulsacyjnego dopplera i kolorowej ultrasonografii dupleksowej16,18. Częstotliwość powtarzania impulsów musi być dostosowana do oczekiwanych niskich prędkości przepływu w naczyniach krwionośnych kończyn lub doppler mocy musi być wybrany do kodowania kolorami16.
Nerwy odbijają fale ultradźwiękowe różnie od różnych kątów padania, tak że obraz ultrasonograficzny różni się pod względem echogeniczności (anizotropii)16,19. Najlepszy obraz uzyskuje się pod kątem ortogradycznym, ponieważ fale ultradźwiękowe są najsilniej odbijane przez nerwy pod tym kątem. Aby uniknąć sztucznej anizotropii lub deformacji nerwów, sonda musi być trzymana w neutralnej pozycji podczas badania bez wywierania dodatkowego nacisku prostopadłego do nerwów (<silna klasa = "xfig">Rysunek 1). Pole przekroju poprzecznego (CSA) mierzy się w cienkim, hiperechogenicznym epineurium (<silna klasa="xfig">Rysunek 2), aby uniknąć zmian w tkance epinerwalnej w pomiarze19. Więcej szczegółów na temat ultrasonografii technicznej można znaleźć w References6,16,17,18,19,20,21.

<table><tbody><tr><td>Affiniti 70</td><td>Philips GmbH</td><td>n/a</td><td>z ustawieniem wstępnym dla ultrasonografii nerwowo-mięśniowej</td></tr><tr><td>Przetwornik liniowy L18-5</td><td>Philips GmbH</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Żel do ultradźwięków</td><td>C + V Pharma Depot GmbH</td><td>n/a</td><td></td></tr></tbody></table>

protokół ultrasonograficzny nerwów w celu wykrycia neuropatii dysimmunologicznych

Nerve Ultrasound Protocol to Detect Dysimmune Neuropathies

Ultrasonografia nerwów jest coraz częściej stosowana w diagnostyce różnicowej polineuropatii jako narzędzie uzupełniające do badań przewodnictwa nerwowego. Zmiany morfologiczne nerwów obwodowych, takie jak zwiększenie pola przekroju poprzecznego (CSA), zostały opisane w różnych polineuropatiach o podłożu immunologicznym. Najbardziej widoczne zmiany morfologiczne w ultrasonografii nerwów opisano dla przewlekłej zapalnej polineuropatii demielinizacyjnej (CIDP) ze spektrum choroby. CIDP można odróżnić od dziedzicznych i innych polineuropatii poprzez pomiar zakresu i wzorca obrzęków nerwów (wzrost CSA). Typowymi objawami w demielinizacyjnych neuropatiach zapalnych są wieloogniskowe obrzęki nerwów o niejednorodnej strukturze pęczkowej, podczas gdy wzrost CSA w demielinizacyjnych neuropatiach dziedzicznych występuje w sposób bardziej uogólniony i jednorodny. W innych niezapalnych neuropatiach aksonalnych nerwy mogą pojawić się z normalnym lub niewielkim wzrostem CSA, szczególnie w typowych miejscach uwięzienia. W artykule przedstawiono wymagania techniczne dotyczące ultrasonografii nerwów, procedury badania z wykorzystaniem znormalizowanego protokołu badania, aktualne wartości referencyjne dla CSA oraz typowe ultrasonograficzne wyniki patologiczne u pacjentów z neuropatiami zapalnymi.

Każde laboratorium ultrasonograficzne powinno ustalić własne wartości referencyjne CSA poprzez gromadzenie danych od zdrowej lokalnej populacji, ponieważ specyficzne aparaty USG oraz zmienne zależne od badacza lub populacji mogą prowadzić do nieco innych wyników w każdym laboratorium. Jednakże, aby wskazać, jakie wartości CSA można uznać za prawidłowe, w tabeli 1 zestawiono dane pochodzące z dwóch czołowych niemieckich grup ultrasonografii nerwów oraz z niedawnej metaanalizy wszystkich dotychczas opublik...

Ten artykuł przedstawia protokół ultrasonografii nerwów w polineuropatiach, aby pomóc w diagnozowaniu neuropatii zapalnych.

Protokół ultrasonograficzny nerwów w celu wykrycia neuropatii dysimmunologicznych

Nerve ultrasound is increasingly used in the differential diagnosis of polyneuropathy as a complementary tool to nerve conduction studies. Morphological ...

Wysoka rozdzielczość ultrasonografii jest wykorzystywana jako dodatkowe narzędzie diagnostyczne do wykrywania zmian morfologicznych nerwów obwodowych, takich jak zwiększona powierzchnia przekroju poprzecznego. W tym neuropatia immunologiczna jest jak przewlekła zapalna polineuropatia demielinizacyjna. Główną zaletą ultrasonografii nerwów jest to, że może być wykonana szybko, łatwo i bez istotnego ryzyka bezpośrednio przez neurologa.USG nerwów może pomóc w diagnozowaniu neuropatii zapalnych, ale może również pomóc w rokowaniu i obserwacji przebiegu choroby. W celu zbadania nerwów ramienia pozwól pacjentowi usiąść w neutralnej pozycji z ręką opartą na supinacji na powierzchni, takiej jak noga. Następnie nałóż żel ultradźwiękowy na nadgarstek, przedramię, łokieć i ramię sondy przetwornika.Aby zbadać nerw pośrodkowy, wykonaj skan poprzeczny na poziomie nadgarstka. Nerw pośrodkowy można łatwo zidentyfikować w kanale nadgarstka poniżej więzadła poprzecznego nadgarstka obok ścięgien zginacza palca powierzchownego i głębokiego. Następnie zmierz pole przekroju poprzecznego lub CSA nerwu pośrodkowego przy wejściu do cieśni nadgarstka.Przesuń głowicę proksymalnie, aby podążać za anatomicznym przebiegiem nerwu pośrodkowego do przedramienia i zmierz CSA na przedramieniu. Następnie postępuj zgodnie z kursem anatomicznym do łokcia. Przesuń przetwornik proksymalnie wzdłuż nerwu pośrodkowego od przedramienia do łokcia i zmierz CSA na łokciu.Następnie podążaj kursem do ramienia. Przesuń przetwornik proksymalnie wzdłuż nerwu pośrodkowego od łokcia do ramienia i zmierz CSA w górnej części ramienia obok tętnicy ramiennej. Następnie, aby zbadać nerw łokciowy, wykonaj skan poprzeczny na poziomie nadgarstka.Nerw łokciowy można zidentyfikować w nadgarstku łokciowym kanału nadgarstka bezpośrednio obok tętnicy łokciowej i kości piszczelowej, gdzie wchodzi do kanału Guyona. Zmierz CSA nerwu łokciowego przy wejściu do kanału Guyona. Przesuń przetwornik proksymalnie wzdłuż nerwu łokciowego od przedramienia do bruzdy łokciowej w łokciu, a następnie do ramienia.Po przesunięciu przetwornika proksymalnie od nadgarstka do przedramienia, zmierz CSA na przedramieniu. Śledź przebieg nerwu łokciowego do bruzdy i zmierz CSA na bruździe łokciowej na poziomie łokcia. Postępuj zgodnie z kursem anatomicznym do ramienia i zmierz CSA.Następnie, aby zbadać nerw promieniowy w rowku spiralnym, pozwól pacjentowi trzymać rękę przed brzuchem zgiętą w łokciu. Następnie zeskanuj nerw promieniowy bezpośrednio obok kości ramiennej, używając trybu kolorowego dopplera, aby uniknąć pomylenia z towarzyszącą tętnicą i żyłą. Tryb kolorowego dopplera pokazuje przepływ krwi w tętnicy głębokiej ramienia i niski przepływ w odpowiedniej żyle, podczas gdy w nerwie promieniowym nie występuje przepływ.Dodatkowo żyła i tętnica mogą być ściskane przez wywieranie ciśnienia zewnętrznego. Zmierz CSA nerwu promieniowego w rowku spiralnym. Następnie, aby zbadać nerw błędny, korzenie nerwu szyjnego i splot ramienny, nałóż żel do ultradźwięków na środek szyi pacjenta.W przypadku nerwu błędnego wykonaj skan poprzeczny na środku szyi i znajdź tętnicę szyjną i żyłę szyjną. Nerw błędny znajduje się bezpośrednio obok tętnicy szyjnej i żyły szyjnej. Następnie zmierz CSA nerwu błędnego na pochewce tętnicy szyjnej na poziomie rozwidlenia tętnicy szyjnej.Następnie, aby zbadać korzenie nerwów szyjnych, C5, C6 i C7, przesuń sondę grzbietowo i przesuń ją lekko w górę iw dół. Korzenie nerwów szyjnych pojawiają się między przednim i tylnym guzkiem wyrostka poprzecznego. C7 można rozpoznać po braku guzka przedniego w jego wyrostku poprzecznym, podczas gdy zarówno guzek przedni, jak i tylny występują w C5 i C6. Zmierz CSA korzeni nerwowych w przestrzeni wewnątrzscalenowej proksymalnie do powstania oka tułowia w widoku przekrojowym.Następnie przesuń przetwornik dystalnie wzdłuż tułowia i splotu do przestrzeni nadobojczykowej. Aby zbadać splot ramienny, należy śledzić anatomiczny przebieg korzeni nerwów szyjnych dystalnie, a następnie znaleźć pnie i sznury splotu. Zmierz CSA splotu w przestrzeni nadobojczykowej.Alternatywnie, w celu oceny korzeni nerwowych, wykonaj skan podłużny, aby wyświetlić korzenie nerwowe. Zmierz średnicę korzeni nerwu szyjnego w najbardziej proksymalnym miejscu, w którym korzeń nerwowy wychodzi nad wyrostkiem poprzecznym w widoku podłużnym. Aby kontynuować badanie nerwów nóg, pozwól pacjentowi położyć się na boku z lekko ugiętą nogą.Następnie umieść trochę żelu ultradźwiękowego na sondzie przetwornika, dole podkolanowym, kości strzałkowej i dolnej części nogi. Aby zbadać nerw strzałkowy, wyczuj głowę kości strzałkowej i umieść przetwornik bezpośrednio za nią. Zidentyfikuj nerw strzałkowy obok głowy kości strzałkowej.Zmierz CSA nerwu strzałkowego obok głowy kości strzałkowej. Następnie przesuń przetwornik proksymalnie wzdłuż nerwu strzałkowego od głowy kości strzałkowej do dołu podkolanowego. Następnie zmierz CSA nerwu strzałkowego w dole podkolanowym.Aby zbadać nerw piszczelowy w dole podkolanowym, znajdź ponownie nerw strzałkowy i tętnicę podkolanową w dole podkolanowym. W większości przypadków nerw piszczelowy znajduje się tuż nad tętnicą podkolanową. Zmierz CSA nerwu piszczelowego w dole podkolanowym.Aby uniknąć wielu zmian w pozycji pacjenta, kontynuuj badanie nerwu łydkowego w tej samej pozycji, zanim przejdziesz do nerwu piszczelowego na kostce przyśrodkowej. Aby zbadać nerw łydkowy, umieść sondę w bocznej kostce. W większości przypadków nerw łydkowy znajduje się obok żyły powierzchownej.Zmierz CSA nerwu łydkowego między boczną i przyśrodkową głową mięśnia niedokrwistości żołądkowej. Na koniec, aby zbadać nerw piszczelowy w kostce, pozwól pacjentowi usiąść lub położyć się na plecach z lekko ugiętymi kolanami. Następnie umieść żel ultrasonograficzny na kostce, a sondę bezpośrednio za kostką przyśrodkową.Nerw piszczelowy znajduje się tuż obok tętnicy piszczelowej tylnej. Zmierz CSA nerwu piszczelowego na poziomie przyśrodkowej kostki. Po wykonaniu wszystkich pomiarów po obu stronach zapisz wyniki i zakończ badanie.Referencyjne wartości CSA dla pacjentów badanych zgodnie z tym protokołem przedstawiono tutaj. Przedstawiono tutaj reprezentatywne obrazy sześciu miejsc nerwowych wykorzystanych w skorygowanym wyniku ultrasonograficznym Bochum u zdrowej osoby. Miejsca te to nerw pośrodkowy na przedramieniu i ramieniu, nerw promieniowy na ramieniu, nerw łokciowy na przedramieniu i na ramieniu oraz nerw łydkowy na łydce.Podobne obrazy pacjenta z przewlekłą zapalną polineuropatią demielinizacyjną przedstawiono tutaj. Każde z tych sześciu miejsc jest oceniane jednym punktem, jeśli nerw wykazuje patologiczne powiększenie CSA po jednej lub obu stronach ciała Neurografia immunologiczna to kolejna metoda wykrywania zmian morfologicznych nerwów obwodowych, szczególnie w przypadku nerwów proksymalnych nóg i splotu lędźwiowo-krzyżowego, gdzie ultrasonografia nerwów jest trudna do zastosowania. Dalsze badania nad ultrasonografią nerwowo-mięśniową są interesujące, ponieważ zmiany morfologiczne mogą dać wgląd w aspekty patofizjologiczne, takie jak stan zapalny.

nerve-ultrasound-protocol-to-detect-dysimmune-neuropathies

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Niniejsze streszczenie opisuje nowatorską metodę oceny rozwoju neurotoksyczności u pacjentów poddawanych chemioterapii. Podczas gdy konwencjonalne metody oceny mają ograniczone możliwości wykrywania wczesnych zmian w funkcji nerwów, techniki badania pobudliwości nerwów umożliwiają wczesną identyfikację pacjentów zagrożonych ciężką neurotoksycznością oraz dostarczają wiedzy na temat patofizjologii.

Ocena pobudliwości nerwów w neurotoksyczności indukowanej chemioterapią

W celu zbadania zmian nocyceptywnych wewnątrznaskórkowych włókien nerwowych (IENF) w bolesnych neuropatiach (PN), opracowaliśmy protokoły, które mogłyby bezpośrednio badać trójwymiarowe zmiany morfologiczne obserwowane w nocyceptywnych IENFach.  Trójwymiarowa analiza IENF ma potencjał do oceny zmian morfologicznych IENF w PN.

Trójwymiarowe obrazowanie nocyceptywnych śródnaskórkowych włókien nerwowych w biopsjach ludzkiej skóry

Ta praca przedstawia metodologię stosowania ultradźwięków o wysokiej intensywności do blokowania potencjałów czynnościowych cukrzycowych nerwów neuropatycznych.

Narzędzie ultradźwiękowe do blokowania przewodnictwa nerwowego w modelach szczurów z cukrzycą

Techniki pobudliwości aksonalnej dostarczają potężnego narzędzia do badania patofizjologii i zmian biofizycznych, które poprzedzają nieodwracalne zdarzenia zwyrodnieniowe. Manuskrypt ten demonstruje zastosowanie tych technik na nerwie łokciowym znieczulonych szczurów.

In vivo (in vivo)Pomiar elektrofizjologiczny nerwu łokciowego szczura z badaniem pobudliwości aksonalnej

To badanie ustanawia eksperymentalny model czystej neuropatii małych włókien z resiniferatoksyną (RTX). Unikalna dawka RTX (50 μg/kg) jest optymalna do opracowania modelu neuropatii małowłóknistych, który naśladuje charakterystykę pacjenta i może pomóc w zbadaniu nocyceptywnego znaczenia molekularnego leżącego u podstaw bólu neuropatycznego.

Ustalenie mysiego modelu czystej neuropatii drobnowłóknistej z ultrasilnym agonistą przejściowego potencjału receptora waniloidowego typu 1

Tutaj prezentujemy protokół wykorzystujący badania przewodnictwa nerwowego i ultradźwięki do wykrywania potencjalnych zwyrodnień aksonów związanych z zespołem cieśni nadgarstka. Ustala się kryteria różnicowania. W porównaniu z konwencjonalnymi podejściami metoda ta jest nieinwazyjna, wygodna i wydajna, z ogólnie zadowalającą dokładnością, czułością i swoistością.

Badania przesiewowe zwyrodnienia aksonów w zespole cieśni nadgarstka z wykorzystaniem ultrasonografii i badań przewodnictwa nerwowego

Protokół ten opisuje system mocowania głowicy ultradźwiękowej specjalnie zaprojektowany do stymulacji ultradźwiękowej rdzenia kręgowego u obudzonych myszy. Metoda wykorzystuje system fiksacji, aby zapewnić dokładne ustawienie przetwornika ultradźwiękowego, jednocześnie umożliwiając uczestnikom eksperymentu swobodne poruszanie się bez uszczerbku dla precyzji stymulacji.

Mocowanie przetworników ultradźwiękowych do neuromodulacji rdzenia kręgowego u myszy

Mikroskopia konfokalna rogówki jest nieinwazyjną techniką kliniczną, która może być wykorzystana do ilościowej oceny uszkodzeń włókien C w celu diagnozy i stratyfikacji pacjentów z rosnącym stopniem nasilenia neuropatii.

Konfokalna mikroskopia rogówki: Nowoczesna nieinwazyjna metoda ilościowej oceny patologii małych włókien w neuropatiach obwodowych

Przedstawiono krótki protokół badania klinicznego, który ma pomóc w wykrywaniu klasycznej i nietypowej trzęsawki owiec i kóz.

Protokół badania klinicznego w celu wykrycia trzęsawki atypowej i klasycznej u owiec

Opisujemy protokół obrazowania, który umożliwia klinicystom wizualizację, w czasie rzeczywistym, objętości przestrzeni wewnątrznaczyniowej i zewnątrznaczyniowej pacjenta oraz odpowiednie ustawienie parametrów diurezy i usuwania płynów dla bezpiecznego i skutecznego leczenia obrzęku płuc.

Przyłóżkowe badanie ultrasonograficzne do kierowania usuwaniem płynów u pacjentów z obrzękiem płuc: protokół Reverse-FALLS

Poznaj protokół ultrasonografii nerwów w diagnostyce neuropatii zapalnych. Metoda pozwala szybko wykryć zmiany morfologiczne nerwów obwodowych i ocenić powierzchnię przekroju poprzecznego u pacjentów.

Protokół ultrasonograficzny nerwów w celu wykrycia neuropatii dysimmunologicznych

Przeglądaj więcej filmów