Name: Wszechstronność protokołów treningu oporowego i oceny z wykorzystaniem drabin statycznych i dynamicznych w modelach zwierzęcych (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-12-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 31 s
Description: Poznaj protokół treningu oporowego z wykorzystaniem drabin statycznych i dynamicznych w modelach mysich. Ta metoda umożliwia ocenę siły i wytrzymałości mięśniowej oraz badanie wpływu ćwiczeń na zdrowie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca była częściowo wspierana przez Ministerio de Economía y Competitividad, Hiszpania (DEP2012-39262 do EI-G i DEP2015-69980-P do BF-G). Podziękowania dla Franka Mcleoda Hendersona Higginsa z McLeod's English Centre w Asturii w Hiszpanii za pomoc językową.

Metody przedstawione w niniejszym protokole zostały ocenione i zatwierdzone przez komisję techniczną ds. badań nad zwierzętami (numer referencyjny PROAE 04/2018, Principado de Asturias, Hiszpania).
1. Planowanie
<ol>
	<li>Starannie dobierz zwierzęta do badania na podstawie interesujących cech (modyfikacje genetyczne, modele patologiczne, wiek itp.) i zastosuj specyficzne adaptacje protokołu (wspinanie się bez obciążeń, zmniejszenie liczby szczebli do pokonania oraz kąt nachylenia).</li>
	<li>Określ rodzaj siły poddawany ocenie lub treningowi: siłę maksymalną, wytrzymałość siłową, szybkość itp., w zależności od celów badania.</li>
	<li>Dokładnie dostosuj parametry w przypadku planowania oceny funkcjonalnej lub treningu, biorąc pod uwagę, czy analiza skupia się na wynikach tych testów, czy stanowią one uzupełnienie innych rodzajów oznaczeń klinicznych, funkcjonalnych, histologicznych lub molekularnych.</li>
	<li>Zaplanuj wszystkie kwestie związane z treningiem, w szczególności harmonogram, czas trwania okresu treningowego oraz częstotliwość sesji, a następnie sporządź tabelę treningową.
	<ol>
		<li>Określ etapy rozgrzewki oraz kąt nachylenia drabiny, który pozostanie niezmienny przez cały okres treningu. Określ liczbę serii, powtórzeń, obciążenie (na podstawie wyników testów wytrzymałości przeprowadzonych przed okresem treningowym) oraz przerwy pomiędzy nimi, zwracając uwagę na zwiększanie obciążeń w oparciu o poprzednią sesję.</li>
		<li>Modyfikuj plan, podobnie jak w przypadku treningu ludzi, w zależności od dobrostanu zwierzęcia. Modyfikacje obejmują zmniejszenie liczby powtórzeń, wydłużenie czasu odpoczynku między seriami lub powtórzeniami oraz zmniejszenie obciążenia w celu uniknięcia przetrenowania i kontuzji.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Po zakończeniu przedłożyć projekt do oceny i zatwierdzenia przez komisję etyczną ds. badań na zwierzętach.</li>
</ol>
2. Urządzenia i materiały do ćwiczeń oporowych
<ol>
	<li>Urządzenia: Drabiny statyczna i dynamiczna 
	UWAGA: Do treningu oporowego i oceny można wykorzystać dwa rodzaje drabin, tzw. drabiny statyczną i dynamiczną (patrz Rysunek 1) (patrz Tabela materiałów).
	<ol>
		<li>Należy użyć pionowej drabiny z co najmniej 30 stopniami z drutu stalowego o średnicy 1.5 mm, rozmieszczonymi w odstępach 15 mm, oraz obszarem spoczynkowym o wymiarach co najmniej 20 x 20 cm na szczycie drabiny. Nachylenie drabiny musi być regulowane w zakresie od 80° do 110° względem płaszczyzny poziomej (Rysunek 1C). Należy wyznaczyć dwa pasy, aby zapobiec wspinaniu się nieliniowo.</li>
		<li>Należy użyć drabiny dynamicznej podobnej do drabiny statycznej, z barierą z plastikowych włókien na górze, którą można otworzyć w celu kontrolowania dostępu do obszaru spoczynkowego, oraz barierą z plastikowych włókien na dole, aby zapobiec schodzeniu zwierząt w dół. Kąt nachylenia drabiny musi być regulowany w zakresie od 80° do 100°, przy czym najczęściej stosowany jest kąt 85°. 
		​UWAGA: Drabina może krążyć za pomocą górnego i dolnego wału o średnicy 8 cm. Wał dolny jest napędzany silnikiem elektrycznym, który powoduje opadanie stopni z przodu i ich wznoszenie z tyłu, tworząc drabinę bezkońcową. Jest ona wyposażona w przekładnię redukcyjną i regulator prędkości pozwalający na obniżenie prędkości z 11.6 cm/s do 3.3 cm/s, przy czym najczęściej stosowana prędkość to 5.6 cm/s.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Test wspinania się myszy; schematy i konfiguracja oceniająca siłę chwytu oraz wytrzymałość na powierzchniach z siatki pod kątem." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63098/63098fig01.jpg" data-altupdatedat="1788282455000" data-alt="Rycina 1"> 
Rycina 1: Urządzenia do treningu oporowego: drabiny statyczne i dynamiczne. (A) Trening myszy z zewnętrznym obciążeniem na drabinie statycznej. (B) Dwie myszy trenujące z obciążeniem na drabinie dynamicznej. (C) Schematyczne przedstawienie kątów nachylenia drabiny podczas treningu i oceny. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63098/63098fig01large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby zobaczyć powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<ol start="2">
	<li>Materiały
	<ol>
		<li>Przygotować następujące materiały: odważniki, drut do mocowania odważników, stalny klips typu gator oraz kliniczną taśmę klejącą. 
		UWAGA: Obciążniki to stalowe cylindry o różnych masach (5, 10, 15, 20, 25 i 50 g), z otworem o średnicy 5 mm w centrum, umożliwiającym nawleczenie ich na drut (Tabela materiałów). Drut do podwieszania obciążników wykonany jest ze stali o średnicy 1–1,5 mm i długości 5–10 cm, w zależności od liczby obciążników do założenia.</li>
		<li>Odetnij kawałek elastycznego bandaża przylepnego (Tabela materiałów) o rozmiarze około 3,0–3,5 cm x 1,0–1,5 cm i przymocuj go wokół ogona zwierzęcia, aby utrzymać obciążniki. Należy uważać, aby nie zaciisnąć go zbyt mocno, ponieważ może to doprowadzić do ograniczenia przepływu krwi. 
		UWAGA: Początkowo zwierzęta będą walczyć z taśmą i próbować jej nadgryzać, jednak po kilku dniach przyzwyczają się do niej, będą pielęgnować futro w zwykły sposób i nie będą wykazywać oznak stresu.</li>
		<li>Włóż odpowiednie obciążniki do drutu i przypnij żabkę (Tabela materiałówStalowy klips typu „gator” i drut do mocowania obciążników).</li>
		<li>Przymocuj zacisk typu gator do taśmy klinicznej przyczepionej do ogona zwierzęcia.</li>
		<li>Niezwłocznie po wejściu na wymagany szczebel, należy zdjąć zacisk i pozwolić zwierzęciu odpocząć z taśmą kliniczną na ogonie, ale bez obciążenia (Rysunek 1).</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Aklimatyzacja
UWAGA: Prawidłowa aklimatyzacja jest niezbędna, aby uniknąć odrzucenia ćwiczeń i zminimalizować stres. Aklimatyzacja stanowi kluczowy etap przed przeprowadzeniem testów oceny oporności lub protokołów treningowych. Należy poświęcić odpowiednią ilość czasu, aby zwierzęta wykazały behawioralne oznaki komfortu. Szczegóły codziennej aklimatyzacji z drabinami statycznymi i dynamicznymi przedstawiono odpowiednio w Tabeli 1 oraz Tabeli 2.
<ol start="1">
	<li>Przyzwyczaj zwierzęta do przebywania w strefie odpoczynku na szczycie drabiny (statycznej lub dynamicznej). Pozostawiaj zwierzęta w tym miejscu w grupach czteroosobowych, wraz z ściółką z ich klatki, przez 15 min każdego dnia. Zazwyczaj po 3-5 dniach zwierzęta nie będą wykazywać oznak stresu.</li>
	<li>Naucz zwierzęta wspinania się w górę, a nie schodzenia w dół drabiny. Korzystając z drabiny statycznej, umieść myszy na szczeblu blisko szczytu, skąd będą widzieć strefę odpoczynku. Instynktownie skierują się w jej stronę. Następnie ucz je stopniowo wspinania się z pięciu szczebli (3x) pierwszego dnia, z 10 szczebli (3x) następnego dnia, aż do 15 szczebli (3x) (Tabela 1). 
	Zastosuj tę samą procedurę przy drabinie dynamicznej, najpierw bez ruchu, a następnie przy drabinie poruszającej się z prędkością 5.4 cm/s i 6.6 cm/s, podczas gdy zwierzęta wspinają się przez 2 min, wykonując pięć serii (Tabela 2).</li>
	<li>Adaptuj zwierzęta do przenoszenia obciążeń, zaczynając od trzeciego dnia aklimatyzacji. Przyklej kawałek taśmy chirurgicznej do nasady ogona, która będzie służyć do mocowania obciążników.</li>
	<li>Od siódmego dnia aklimatyzacji przymocuj małe obciążniki (5-10 g) do taśmy chirurgicznej za pomocą żabki laboratoryjnej. Unikaj wykonywania zbyt wielu serii, aby adaptacja nie zmieniła się w trening. 
	UWAGA: Aklimatyzacja grupy kontrolnej jest obowiązkowa w przypadku, gdy grupa ta przechodzi test wytrzymałościowy. Po tym okresie wykonuj przypominające wspinanie po drabinie raz w tygodniu, z taśmą, ale bez obciążników.</li>
</ol>
4. Ocena oporności
<ol start="1">
	<li>Testy inkrementalne w celu oceny maksymalnej siły 
	UWAGA: Celem tego testu jest określenie maksymalnego oporu, mierzonego jako maksymalny ciężar, przy którym zwierzęta są w stanie wspiąć się po 10 szczeblach statycznej drabiny, co definiuje maksimum dla 10 powtórzeń (10 RM)4. Protokół ten został zaadaptowany z wcześniejszych badań (omówionych w Kregel et al.15).
	<ol>
		<li>W ramach rozgrzewki wykonaj trzy serie po 10 powtórzeń, 10 kroków na powtórzenie, bez obciążenia zewnętrznego. W pierwszej serii ustaw kąt nachylenia na 90°, a w kolejnych na 85°. Pozostaw 60 s przerwy między seriami.</li>
		<li>Ustaw kąt nachylenia na 85° (aby zapobiec ocieraniu się lub zaczepianiu ciężarków o szczble drabiny).</li>
		<li>Owiń ogon zwierzęcia taśmą w celu zamocowania ciężarków i przygotuj obciążenie zgodnie z wcześniejszym opisem.</li>
		<li>Rozpocznij test od obciążenia zewnętrznego 10 g i wykonaj jedną serię 10 kroków.</li>
		<li>Zdejmij obciążenie i zapewnij 120 s odpoczynku w strefie spoczynkowej.</li>
		<li>Wykonuj kolejne serie 10 kroków, zwiększając obciążenie zewnętrzne o 5 g aż do wyczerpania. Zachowaj czas odpoczynku (120 s) między seriami.</li>
		<li>Jeśli zwierzę nie zdoła wspiąć się po 10 szczeblach przy konkretnym obciążeniu, pozwól na drugą próbę z tym samym obciążeniem po 120 s odpoczynku. Jeśli zwierzęowi uda się wspiąć z tym obciążeniem, kontynuuje test z kolejnym obciążeniem. Jeśli zawiedzie ponownie, zapisz obciążenie z ostatniej ukończonej serii jako maksymalne obciążenie zwierzęcia.</li>
		<li>Wynik testu może być wyrażony jako bezwzględny ciężar zewnętrzny (g), maksymalne obciążenie w stosunku do masy ciała (%) lub masa podniesiona na gram masy ciała, zależnie od decyzji badacza. 
		UWAGA: Powyższy protokół stanowi model, w którym możliwe są liczne modyfikacje, na przykład w celu oceny maksymalnego oporu u myszy modyfikowanych genetycznie z dysfunkcjami nerwowo-mięśniowymi. Zwierzęta te nie są w stanie wspinać się z obciążeniem zewnętrznym i mają trudności z pokonaniem 10 szczebli przy nachyleniu drabiny pod kątem 90° (dane nieopublikowane). Protokół ten polegał na wspinaniu się po pięciu szczeblach bez obciążenia zewnętrznego, zaczynając od nachylenia 110°. Kąt nachylenia zmniejszano o 5° w każdej serii aż do osiągnięcia 85°, z 120 s odpoczynku po każdej serii. W tym przypadku maksymalny opór wyrażono jako skumulowaną liczbę pokonanych szczebli (bez uwzględniania powtórzeń po niepowodzeniach). Grupa kontrolna typu dzikiego, po osiągnięciu nachylenia 85°, kontynuuje test poprzez dodawanie obciążenia zewnętrznego do ogona, zgodnie z poprzednim protokołem, aż do wyczerpania.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Test maksymalnej wytrzymałości siłowej na statycznej drabinie
	<ol>
		<li>W ramach rozgrzewki wykonaj trzy serie po 10 powtórzeń, 10 kroków na powtórzenie, bez obciążenia zewnętrznego. W pierwszej serii ustaw kąt nachylenia na 90°, a w kolejnych na 85°. Pozostaw 60 s przerwy między seriami.</li>
		<li>Ustaw kąt nachylenia na 85°.</li>
		<li>Zamocuj ciężarek do taśmy klinicznej owiniętej wokół ogona myszy. 
		UWAGA: W zależności od wieku i charakterystyki zwierząt, obciążenie zewnętrzne może być maksymalnym ciężarem uzyskanym w poprzednim teście inkrementalnym, jego procentową wartością (np. 50%) lub procentem masy ciała (np. 100%-200%). Jeśli test ten jest przeprowadzany po okresie treningowym, zaleca się zastosowanie takiego samego obciążenia jak w teście początkowym, aby ocenić zmiany.</li>
		<li>Wykonuj kolejne serie 10 kroków aż do wyczerpania. Po każdej serii nie przysługuje czas odpoczynku.</li>
		<li>Wynikiem testu jest liczba pokonanych szczebli.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Test maksymalnej wytrzymałości siłowej na dynamicznej drabinie 
	UWAGA: Zastosowanie dynamicznej drabiny pozwala badaczowi kontrolować prędkość wspinania się.
	<ol>
		<li>Ustaw kąt nachylenia na 85°.</li>
		<li>Ustaw prędkość na 4,2 cm/s.</li>
		<li>W ramach rozgrzewki wykonaj trzy serie po 100 kroków, bez obciążenia zewnętrznego. Pozostaw 60 s przerwy między seriami.</li>
		<li>Zamocuj ciężarek do taśmy klinicznej owiniętej wokół ogona myszy. 
		UWAGA: W zależności od wieku i charakterystyki zwierząt, obciążenie zewnętrzne może być maksymalnym ciężarem uzyskanym w poprzednim teście inkrementalnym, jego procentową wartością (np. 50%) lub procentem masy ciała (np. 100%-200%). Jeśli test ten jest przeprowadzany po okresie treningowym, zaleca się zastosowanie takiego samego obciążenia jak w teście początkowym, aby ocenić zmiany.</li>
		<li>Zacznij od prędkości 4,2 cm/s i zwiększaj ją o 1,2 cm/s co 60 s aż do wyczerpania. 
		​UWAGA: Wynikiem testu jest czas wysiłku, liczba pokonanych szczebli lub prędkość maksymalna. </li>
	</ol>
	</li>
</ol>
5. Trening oporowy z użyciem drabinki statycznej
UWAGA: Przed rozpoczęciem okresu treningowego niezbędna jest aklimatyzacja (Tabela 1) oraz zaplanowanie treningu. Aby zmniejszyć poziom lęku, adaptację i trening myszy należy przeprowadzać w grupach po cztery zwierzęta dzielące tę samą klatkę.
<ol>
	<li>W ramach codziennej rozgrzewki wykonaj trzy serie po 10 powtórzeń, po 10 stopni na powtórzenie, bez obciążenia zewnętrznego. W pierwszej serii ustaw nachylenie na 90°, a w kolejnych na 85°. Pomiędzy seriami zachowaj 60 s przerwy.</li>
	<li>Sesję treningową rozpoczyna się w strefie odpoczynku. Przymocuj gator z obciążeniem do taśmy klinicznej.</li>
	<li>Delikatnie umieść mysz 10-20 szczebli poniżej miejsca odpoczynku. Pozwól myszy chwycić szczebel i wejść do strefy odpoczynku. 
	Powtarzaj ten proces, aż zostanie ukończona liczba szczebli w danej serii (np. 10 szczebli x 10 serii).</li>
	<li>Zdejmij obciążenie z ogona myszy i odczekaj 120 s do rozpoczęcia kolejnej serii.</li>
	<li>W trakcie okresu treningowego zwiększaj liczbę kroków oraz maksymalne obciążenia w seriach, zachowując harmonogram tygodniowy. 
	UWAGA: Przykład zmienności obciążeń w planie tygodniowym przedstawiono w Tabeli 3. W skrócie: wtorek i piątek z wysokim obciążeniem (40-50 g) i niską liczbą kroków (500-400); poniedziałek i czwartek z umiarkowanym obciążeniem (25-35 g) i umiarkowaną liczbą kroków (800-600); oraz środa bez obciążenia, ale z wysoką liczbą kroków (2 000). Taki schemat ułatwia regenerację po poprzednich sesjach treningowych i zapobiega kontuzjom oraz przetrenowaniu. Przykłady 3 tygodni treningu z różnymi schematami przy użyciu drabiny statycznej przedstawiono w Tabeli 4 (odpowiednio na początku, w środku i na końcu okresu treningowego)4.</li>
</ol>
6. Trening oporowy z wykorzystaniem drabinki dynamicznej
UWAGA: Po aklimatyzacji trening na drabinie dynamicznej jest bardzo podobny do treningu na drabinie statycznej (Tabela 2). Trening przeprowadza się na 2-4 myszach jednocześnie.
<ol>
	<li>Ustaw nachylenie na 85°, zamknij drzwi do strefy odpoczynku i uruchom drabinę z pożądaną prędkością (np. 5.4 cm/s).</li>
	<li>W ramach rozgrzewki wykonaj trzy serie po 100 kroków bez obciążenia zewnętrznego. Między seriami zachowaj 60 s przerwy.</li>
	<li>Przed rozpoczęciem sesji treningowych, gdy mysz znajduje się w strefie odpoczynku, przymocuj obciążnik do ogona za pomocą taśmy klinicznej. Alternatywnie obciążnik można przymocować, gdy mysz znajduje się już na drabinie.</li>
	<li>Ostrożnie umieść mysz na górze ruchomych schodów z obciążnikiem na ogonie. Pozwól myszom chwycić szczebel i wspiąć się.</li>
	<li>Po osiągnięciu określonej liczby szczebli w danej serii (np. 100), zdejmij obciążniki. Następnie otwórz drzwi, aby zwierzę mogło przejść do strefy odpoczynku. Czas odpoczynku przed kolejną serią wynosi 120 s. 
	UWAGA: Liczba pokonanych stopni jest obliczana jako funkcja czasu wspinania przy ustawionej prędkości.</li>
	<li>Powtarzaj tę procedurę aż do zakończenia sesji treningowej. Szczegółowy dzienny program treningowy przedstawiono w Tabeli 5.</li>
</ol>
7. Ocena efektu przeniesienia treningu oporowego na wydolność wytrzymałościową
UWAGA: W tym celu przeprowadzany jest inkrementalny test na bieżni4, po 24 h odpoczynku.
<ol>
	<li>Po 3 min rozgrzewki przy prędkości 10 cm/s, rozpocznij test inkrementalny przy prędkości 10 cm/s i kącie nachylenia 10°.</li>
	<li>Zwiększaj prędkość o 3,33 cm/s co 3 min aż do wyczerpania. 
	UWAGA: Nie stosuje się wstrząsów elektrycznych, dlatego z tyłu bieżni umieszcza się pędzel malarski, aby zapobiec spadaniu myszy z urządzenia.</li>
</ol>
8. Zachowanie zwierząt podczas procedur
UWAGA: Należy prowadzić ciągły monitoring adaptacji myszy do treningu, aby wykryć skrajne zmęczenie, przetrenowanie lub urazy.
<ol>
	<li>Obserwuj oznaki dobrostanu zwierząt, w szczególności pielęgnację ciała (grooming) oraz niechęć do treningu. Normalnym zachowaniem myszy po serii intensywnych ćwiczeń jest pozostanie w bezruchu przez około jedną minutę z powodu zmęczenia. Po tym czasie zwierzęta zaczynają się myć, eksplorować otoczenie lub próbować usunąć taśmę z ogona.</li>
	<li>W przypadku myszy odmawiającej wykonania serii, należy spróbować wydłużyć przerwy lub pominąć daną serię, aby zapobiec zahamowaniu reakcji.</li>
	<li>Sporadycznie, podczas wykonywania ćwiczeń z lekkim obciążeniem, można delikatnie popchnąć ogon zwierzęcia, aby zachęcić je do ukończenia serii. Zwierzęta mogą przestać się wspinać, ponieważ zadanie nie jest dla nich wymagające. I odwrotnie, gdy zwierzęta niosą ciężki ładunek, należy delikatnie przesunąć środek ciężkości zwierzęcia, aby odciążyć je i zachęcić do ukończenia serii, a następnie pozwolić zwierzęciu odpocząć do następnej sesji treningowej. Ze względu na duże obciążenie zwierzęta mogą zatrzymać się lub nawet próbować zejść w dół.</li>
</ol>
9. Procedury bezpieczeństwa
<ol>
	<li>Procedury bezpieczeństwa dla badaczy: Badania należy przeprowadzać w laboratorium w chlewni doświadczalnej, stosując ochraniacze na obuwie, kombinezony, rękawiczki, czepki oraz maseczki. Nie ma żadnych dodatkowych wymagań poza tymi, które są specyficzne dla pracy z zwierzętami.</li>
	<li>Bezpieczeństwo zwierząt: Podczas sesji ćwiczeń należy zachować ciągłą uważność wobec zwierząt ze względu na potencjalne ryzyko, takie jak upadki lub skoki. Należy umieścić dłoń pod obciążnikami, aby złapać i podtrzymać myszy w przypadku upadku z powodu wyczerpania, gdyż ich zdolność do prawidłowego trzymania się szczebli będzie ograniczona.</li>
</ol>

<ol><li>Pedersen, B. K., Saltin, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exercise+as+medicine+-+evidence+for+prescribing+exercise+as+therapy+in+26+different+chronic+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Scandinavian+Journal+of+Medicine+%26+Science+in+Sports%22%5BJournal%5D)">Exercise as medicine - evidence for prescribing exercise as therapy in 26 different chronic diseases.</a> Scandinavian Journal of Medicine & Science in Sports. 25, Suppl 3 1-72 (2015).</li>
<li>Westcott, W. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resistance+training+is+medicine%3A+effects+of+strength+training+on+health%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Sports+Medicine+Reports%22%5BJournal%5D)">Resistance training is medicine: effects of strength training on health.</a> Current Sports Medicine Reports. 11 (4), 209-216 (2012).</li>
<li>Garatachea, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exercise+attenuates+the+major+hallmarks+of+aging%5BTitle%5D)+AND+%22Rejuvenation+Research%22%5BJournal%5D)">Exercise attenuates the major hallmarks of aging.</a> Rejuvenation Research. 18 (1), 57-89 (2015).</li>
<li>Codina-Martinez, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autophagy+is+required+for+performance+adaptive+response+to+resistance+training+and+exercise-induced+adult+neurogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Scandinavian+Journal+of+Medicine+%26+Science+in+Sports%22%5BJournal%5D)">Autophagy is required for performance adaptive response to resistance training and exercise-induced adult neurogenesis.</a> Scandinavian Journal of Medicine & Science in Sports. 30 (2), 238-253 (2020).</li>
<li>Conner, J. D., Wolden-Hanson, T., Quinn, L. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+murine+exercise+endurance+without+the+use+of+a+shock+grid%3A+an+alternative+to+forced+exercise%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Assessment of murine exercise endurance without the use of a shock grid: an alternative to forced exercise.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (90), e51846(2014).</li>
<li>Meijer, J. H., Robbers, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wheel+running+in+the+wild%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+Royal+Society+B%3A+Biological+Sciences%22%5BJournal%5D)">Wheel running in the wild.</a> Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 281 (1786), 20140210(2014).</li>
<li>Suchomel, T. J., Nimphius, S., Bellon, C. R., Hornsby, W. G., Stone, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Training+for+muscular+strength%3A+Methods+for+monitoring+and+adjusting+training+intensity%5BTitle%5D)+AND+%22Sports+Medicine%22%5BJournal%5D)">Training for muscular strength: Methods for monitoring and adjusting training intensity.</a> Sports Medicine. 51 (10), 2051-2066 (2021).</li>
<li>Pousson, M., Perot, C., Goubel, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stiffness+changes+and+fibre+type+transitions+in+rat+soleus+muscle+produced+by+jumping+training%5BTitle%5D)+AND+%22Pfl%C3%BCgers+Archive%22%5BJournal%5D)">Stiffness changes and fibre type transitions in rat soleus muscle produced by jumping training.</a> Pflügers Archive. 419 (2), 127-130 (1991).</li>
<li>Marqueti, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomechanical+responses+of+different+rat+tendons+to+nandrolone+decanoate+and+load+exercise%5BTitle%5D)+AND+%22Scandinavian+Journal+of+Medicine+%26+Science+in+Sports%22%5BJournal%5D)">Biomechanical responses of different rat tendons to nandrolone decanoate and load exercise.</a> Scandinavian Journal of Medicine & Science in Sports. 21 (6), 91-99 (2011).</li>
<li>Cunha, T. S., Tanno, A. P., Costa Sampaio Moura, M. J., Marcondes, F. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+high-intensity+exercise+training+and+anabolic+androgenic+steroid+treatment+on+rat+tissue+glycogen+content%5BTitle%5D)+AND+%22Life+Sciences%22%5BJournal%5D)">Influence of high-intensity exercise training and anabolic androgenic steroid treatment on rat tissue glycogen content.</a> Life Sciences. 77 (9), 1030-1043 (2005).</li>
<li>Heinemeier, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+collagen+and+related+growth+factors+in+rat+tendon+and+skeletal+muscle+in+response+to+specific+contraction+types%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Expression of collagen and related growth factors in rat tendon and skeletal muscle in response to specific contraction types.</a> The Journal of Physiology. 582, 1303-1316 (2007).</li>
<li>Hornberger, T. A., Farrar, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physiological+hypertrophy+of+the+FHL+muscle+following+8+weeks+of+progressive+resistance+exercise+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Physiological hypertrophy of the FHL muscle following 8 weeks of progressive resistance exercise in the rat.</a> Canadian Journal of Applied Physiology. 29 (1), 16-31 (2004).</li>
<li>Yarasheski, K. E., Lemon, P. W., Gilloteaux, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+heavy-resistance+exercise+training+on+muscle+fiber+composition+in+young+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Effect of heavy-resistance exercise training on muscle fiber composition in young rats.</a> Journal of Applied Physiology. 69 (2), 434-437 (1990).</li>
<li>Khamoui, A. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aerobic+and+resistance+training+dependent+skeletal+muscle+plasticity+in+the+colon-26+murine+model+of+cancer+cachexia%5BTitle%5D)+AND+%22Metabolism%22%5BJournal%5D)">Aerobic and resistance training dependent skeletal muscle plasticity in the colon-26 murine model of cancer cachexia.</a> Metabolism. 65 (5), 685-698 (2016).</li>
<li>Kregel, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resource+book+for+the+design+of+animal+exercise+protocols%5BTitle%5D)+AND+%22American+Physiological+Society%22%5BJournal%5D)">Resource book for the design of animal exercise protocols.</a> American Physiological Society. 152, (2006).</li>
<li>Marino, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autophagy+is+essential+for+mouse+sense+of+balance%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">Autophagy is essential for mouse sense of balance.</a> The Journal of Clinical Investigation. 120 (7), 2331-2344 (2010).</li>
<li>Figueiredo, V. C., de Salles, B. F., Trajano, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Volume+for+muscle+hypertrophy+and+health+outcomes%3A+The+most+effective+variable+in+resistance+training%5BTitle%5D)+AND+%22Sports+Medicine%22%5BJournal%5D)">Volume for muscle hypertrophy and health outcomes: The most effective variable in resistance training.</a> Sports Medicine. 48 (3), 499-505 (2018).</li>
<li>Gentil, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+velocity+loss+for+monitoring+resistance+training+effort+in+a+real-world+setting%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+Physiology%2C+Nutrition%2C+and+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Using velocity loss for monitoring resistance training effort in a real-world setting.</a> Applied Physiology, Nutrition, and Metabolism. 43 (8), 833-837 (2018).</li>
<li>Fernández-Sanjurjo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Is+physical+performance+%28in+mice%29+increased+by+Veillonella+atypica+or+decreased+by+Lactobacillus+bulgaricus%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Sport+and+Health+Science%22%5BJournal%5D)">Is physical performance (in mice) increased by Veillonella atypica or decreased by Lactobacillus bulgaricus.</a> Journal of Sport and Health Science. 9 (3), 197-200 (2020).</li>
<li>Shiguemoto, G. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+resistance+training+on+matrix+metalloproteinase-2+activity+and+biomechanics+and+physical+properties+of+bone+in+ovariectomized+and+intact+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Scandivavian+Journal+of+Medicine+%26+Science+in+Sports%22%5BJournal%5D)">Effects of resistance training on matrix metalloproteinase-2 activity and biomechanics and physical properties of bone in ovariectomized and intact rats.</a> Scandivavian Journal of Medicine & Science in Sports. 22 (5), 607-617 (2012).</li>
<li>de Sousa Neto, I. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+resistance+training+on+matrix+metalloproteinase+activity+in+skeletal+muscles+and+blood+circulation+during+aging%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Physiology%22%5BJournal%5D)">Effects of resistance training on matrix metalloproteinase activity in skeletal muscles and blood circulation during aging.</a> Frontiers in Physiology. 9, 190(2018).</li>
<li>Ghosh, S., Golbidi, S., Werner, I., Verchere, B. C., Laher, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selecting+exercise+regimens+and+strains+to+modify+obesity+and+diabetes+in+rodents%3A+an+overview%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Science%22%5BJournal%5D)">Selecting exercise regimens and strains to modify obesity and diabetes in rodents: an overview.</a> Clinical Science. 119 (2), 57-74 (2010).</li>
<li>Mônico-Neto, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resistance+training+minimizes+catabolic+effects+induced+by+sleep+deprivation+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+Physiology%2C+Nutrition%2C+and+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Resistance training minimizes catabolic effects induced by sleep deprivation in rats.</a> Applied Physiology, Nutrition, and Metabolism. 40 (11), 1143-1150 (2015).</li>
<li>Hawley, J. A., Hargreaves, M., Joyner, M. J., Zierath, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrative+biology+of+exercise%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Integrative biology of exercise.</a> Cell. 159 (4), 738-749 (2014).</li>
<li>Booth, F. W., Laye, M. J., Spangenburg, E. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gold+standards+for+scientists+who+are+conducting+animal-based+exercise+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Gold standards for scientists who are conducting animal-based exercise studies.</a> Journal of Applied Physiology. 108 (1), 219-221 (1985).</li>
<li>Kruger, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+and+muscular+adaptations+in+an+experimental+model+for+isometric+strength+training+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Functional and muscular adaptations in an experimental model for isometric strength training in mice.</a> PLoS One. 8 (11), 79069(2013).</li>
<li>Hendrickse, P. W., Krusnauskas, R., Hodson-Tole, E., Venckunas, T., Degens, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endurance+exercise+plus+overload+induces+fatigue+resistance+and+similar+hypertrophy+in+mice+irrespective+of+muscle+mass%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Physiology%22%5BJournal%5D)">Endurance exercise plus overload induces fatigue resistance and similar hypertrophy in mice irrespective of muscle mass.</a> Experimental Physiology. 105 (12), 2110-2122 (2020).</li>
<li>Knab, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeatability+of+exercise+behaviors+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Physiology+%26+Behavior%22%5BJournal%5D)">Repeatability of exercise behaviors in mice.</a> Physiology & Behavior. 98 (4), 433-440 (2009).</li>
<li>Konhilas, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loaded+wheel+running+and+muscle+adaptation+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">Loaded wheel running and muscle adaptation in the mouse.</a> American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 289 (1), 455-465 (2005).</li>
<li>Reiter, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+measures+of+grip+strength+and+gait+remain+altered+long-term+in+a+rat+model+of+post-traumatic+elbow+contracture%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Biomechanical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Functional measures of grip strength and gait remain altered long-term in a rat model of post-traumatic elbow contracture.</a> The Journal of Biomechanical Engineering. , (2019).</li>
<li>Stieglitz, T., Schuettler, M., Schneider, A., Valderrama, E., Navarro, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+measurement+of+torque+development+in+the+rat+foot%3A+measurement+setup+and+results+from+stimulation+of+the+sciatic+nerve+with+polyimide-based+cuff+electrodes%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Transactions+on+Neural+Systems+and+Rehabilitation+Engineering%22%5BJournal%5D)">Noninvasive measurement of torque development in the rat foot: measurement setup and results from stimulation of the sciatic nerve with polyimide-based cuff electrodes.</a> IEEE Transactions on Neural Systems and Rehabilitation Engineering. 11 (4), 427-437 (2003).</li>
<li>Seo, D. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Humanized+animal+exercise+model+for+clinical+implication%5BTitle%5D)+AND+%22Pfl%C3%BCgers+Archiv%22%5BJournal%5D)">Humanized animal exercise model for clinical implication.</a> Pflügers Archiv. 466 (9), 1673-1687 (2014).</li>
<li>Tanaka, H., Swensen, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+resistance+training+on+endurance+performance.+A+new+form+of+cross-training%5BTitle%5D)+AND+%22Sports+Medicine%22%5BJournal%5D)">Impact of resistance training on endurance performance. A new form of cross-training.</a> Sports Medicine. 25 (3), 191-200 (1998).</li>
<li>Hakkinen, K., Mero, A., Kauhanen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specificity+of+endurance%2C+sprint+and+strength+training+on+physical+performance+capacity+in+young+athletes%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Sports+Medicine+and+Physical+Fitness%22%5BJournal%5D)">Specificity of endurance, sprint and strength training on physical performance capacity in young athletes.</a> The Journal of Sports Medicine and Physical Fitness. 29 (1), 27-35 (1989).</li>
<li>Vellers, H. L., Kleeberger, S. R., Lightfoot, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inter-individual+variation+in+adaptations+to+endurance+and+resistance+exercise+training%3A+genetic+approaches+towards+understanding+a+complex+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22Mammalian+Genome%22%5BJournal%5D)">Inter-individual variation in adaptations to endurance and resistance exercise training: genetic approaches towards understanding a complex phenotype.</a> Mammalian Genome. 29 (1), 48-62 (2018).</li>
</ol>

Autor korespondencyjny zapewnia, że wszyscy autorzy nie mają konfliktu interesów.

Trening to interwencja mająca wiele zastosowań w badaniach, poza badaniem samych ćwiczeń. W związku z tym w ostatnich latach wiele uwagi poświęcono analizie jego wpływu na starzenie się20 lub niektóre stany patologiczne oraz fizjoterapię21. Ponadto wielu autorów analizowało wpływ interwencji farmakologicznych22 lub dietetycznych21 na sprawność fizyczną. W tym kontekście pojawiło się zainteresowanie analizą różnych modalności ć...

Ćwiczenia fizyczne są czynnikiem determinującym styl życia dla promowania zdrowia i zmniejszania częstości występowania najbardziej rozpowszechnionych chorób przewlekłych, jak również niektórych rodzajów raka u ludzi1.
Ćwiczenia oporowe wzbudziły zainteresowanie ze względu na ich ogromne znaczenie dla zdrowia przez całe życie2, szczególnie ze względu na korzyści w przeciwdziałaniu chorobom związanym z wiekiem, które wpływają na układ ruchu, takim jak sarkopenia, osteoporoza, itp3. Co więcej, ćwiczenia oporowe wpływają również na tkanki i narządy, które nie są bezpośrednio zaangażowane w wykonywanie ruchu, takie jak brain4. To znaczenie w ostatnich latach zachęciło do opracowania modeli ćwiczeń oporowych u zwierząt w celu zbadania podstawowych mechanizmów mięśniowych i molekularnych, gdy nie jest to możliwe u ludzi lub gdy zwierzęta zapewniają lepszy wgląd i są bardziej kontrolowanym modelem.
W przeciwieństwie do ćwiczeń oporu u ludzi, w przypadku modeli zwierzęcych badacze zazwyczaj polegają na procedurach wymuszonych. Jednak w tym kontekście należy unikać bodźców awersyjnych, głównie w celu zachowania dobrostanu zwierząt, zmniejszenia stresu i zmniejszenia surowości procedur eksperymentalnych5. Należy zauważyć, że zwierzęta lubią ćwiczyć nawet na wolności6. Z tych powodów konieczna jest poprawa adaptacji do eksperymentu poprzez przedłużoną aklimatyzację stopniową.
Urządzenia, materiały i protokoły używane do treningu oporu i oceny u zwierząt doświadczalnych muszą umożliwiać precyzyjną kontrolę i modulację wielu zmiennych: obciążenia, objętości, prędkości i częstotliwości7. Powinny również umożliwiać wykonywanie różnych rodzajów skurczów mięśni: koncentrycznych, ekscentrycznych lub izometrycznych. Biorąc pod uwagę powyższe, stosowane protokoły powinny być w stanie specyficznie ocenić lub trenować pod kątem różnych zastosowań siły: siły maksymalnej, hipertrofii, szybkości i wytrzymałości.
Istnieje kilka metod treningu siłowego, takich jak skakanie w wodzie8,9, pływanie z obciążeniem w wodzie10, lub elektrostymulacja mięśni11. Jednak drabiny statyczne i dynamiczne są uniwersalnymi urządzeniami, które są szeroko stosowane12,13,14.
Ocena odporności w eksperymentalnych modelach zwierzęcych dostarcza cennych informacji dla wielu środowisk badawczych, takich jak opisywanie cech fenotypowych zwierząt modyfikowanych genetycznie, ocena wpływu różnych protokołów interwencyjnych (suplementacja składnikami diety, leczenie farmakologiczne, przeszczepianie mikrobioty, itp.), czy ocena efektu protokołów treningowych. Modele treningowe dostarczają wglądu w fizjologię adaptacji do ćwiczeń siłowych, co pomaga lepiej zrozumieć wpływ ćwiczeń na stan zdrowia i patofizjologię.
W związku z tym, nie ma uniwersalnego protokołu do treningu oporowego lub funkcjonalnej oceny siły w modelach zwierzęcych, więc potrzebne są wszechstronne protokoły.
Celem tego badania jest zidentyfikowanie najistotniejszych czynników, które należy wziąć pod uwagę podczas projektowania i stosowania protokołu treningu oporu i oceny przy użyciu drabin statycznych i dynamicznych w modelach zwierzęcych, a także dostarczenie konkretnych przykładów.

<table><tbody><tr><td>Drabina dynamiczna</td><td>własnej produkcji</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Elastyczny bandaż samoprzylepny 6 cm x 2,5 m</td><td>BSN 4005556</td><td></td><td></td></tr><tr><td>medyczny Gator Clip Stalowy NON-INSUL 10A</td><td>Digikey elektronika</td><td>BC60ANP</td><td></td></tr><tr><td>Drabina statyczna</td><td>własnej produkcji</td> Odważniki własnej produkcji <td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Drut do przytrzymywania Waży</td> własną <td>produkcję</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

wszechstronność protokołów treningu oporowego i oceny z wykorzystaniem drabin statycznych i dynamicznych w modelach zwierzęcych

Versatility of Protocols for Resistance Training and Assessment Using Static and Dynamic Ladders in Animal Models

Trening oporowy to model ćwiczeń fizycznych, który przynosi ogromne korzyści dla zdrowia przez całe życie. Wykorzystanie modeli zwierzęcych do ćwiczeń oporowych jest sposobem na uzyskanie wglądu w podstawowe mechanizmy molekularne, które koordynują te adaptacje. Celem artykułu jest opisanie modeli ćwiczeń i protokołów treningowych przeznaczonych do treningu siłowego i oceny oporu w modelach zwierzęcych oraz podanie przykładów. W tym artykule trening siłowy i ocena wytrzymałości opierają się na aktywności wspinaczkowej po drabinie, przy użyciu drabin statycznych i dynamicznych. Urządzenia te pozwalają na różnorodność modeli treningowych, a także zapewniają precyzyjną kontrolę głównych zmiennych, które determinują ćwiczenia oporowe: objętość, obciążenie, prędkość i częstotliwość. Co więcej, w przeciwieństwie do ćwiczeń oporowych u ludzi, jest to ćwiczenie wymuszone. Dlatego w tej interwencji należy unikać bodźców awersyjnych, aby zachować dobrostan zwierząt. Przed wdrożeniem konieczny jest szczegółowy projekt wraz z okresem aklimatyzacji i nauki. Aklimatyzacja do urządzeń treningowych, takich jak drabinki, ciężarki i taśmy kliniczne, a także do wymaganych manipulacji, jest konieczna, aby uniknąć odrzucenia ćwiczeń i zminimalizować stres. W tym samym czasie zwierzęta uczą się wspinać po drabinie, a nie schodzić, do miejsca odpoczynku na szczycie drabiny. Ocena oporu może scharakteryzować siłę fizyczną i umożliwić dostosowanie i ilościowe określenie obciążenia treningowego oraz reakcji na trening. Ponadto można ocenić różne rodzaje wytrzymałości. Jeśli chodzi o programy treningowe, przy odpowiednim zaprojektowaniu i zastosowaniu urządzenia, mogą być one wystarczająco wszechstronne, aby modulować różne rodzaje siły. Ponadto powinny być na tyle elastyczne, aby można je było modyfikować w zależności od reakcji adaptacyjnej i behawioralnej zwierząt lub obecności urazów. Podsumowując, trening oporowy i ocena przy użyciu drabin i ciężarów są wszechstronnymi metodami w badaniach na zwierzętach.

Wyniki z zastosowaniem drabinki statycznej 
Protokół treningu oporowego progresywnego, stosowany i opisany przez Codina-Martinez i wsp.4 (Tabela 4), został przetestowany w badaniu wstępnym obejmującym 7 tygodni treningu na drabince statycznej z udziałem 6-miesięcznych myszy szczepu C57BL6J typu dzikiego (n = 4). W tym badaniu wstępnym przed i po okresie treningowym przeprowadzono testy inkrementalne w celu oceny siły maksymalnej. Zaobserwowano wzrost siły maksy...

Obecny protokół opisuje trening i testowanie oporu za pomocą statycznych i dynamicznych drabin w modelach zwierzęcych.

Wszechstronność protokołów treningu oporowego i oceny z wykorzystaniem drabin statycznych i dynamicznych w modelach zwierzęcych

Resistance training is a physical exercise model with profound benefits for health throughout life. The use of resistance exercise animal models is a way ...

Ten protokół treningu oporowego jest znaczący, ponieważ może być stosowany w badaniach na zwierzętach w celu wyjaśnienia wpływu treningu siłowego na zdrowie. Główną zaletą tej metody jest to, że można ją stosować do różnych modeli treningu siłowego i ocen siły. Technika ta zapewnia wgląd w sprawność fizyczną, w szczególności siłę, i może być stosowana do badania chorób ogólnoustrojowych i wpływu leczenia na wydajność mięśni.Pozwala na trening i ocenę siły myszy, ale ma obowiązkowy wymóg, którym jest realizacja wystarczającej aklimatyzacji. Wizualna demonstracja tej metody ma kluczowe znaczenie, ponieważ wizualizacja obsługi, szkolenia i oceny odporności myszy jest bardziej znacząca niż tekst. Procedurę zademonstrują doktor Cristina Tomas-Zapico i doktor Manuel Fernandez Sanjurjo z laboratorium doktora Benjamina Fernandeza-Garcii.Na początek starannie wybierz zwierzęta do badania na podstawie interesujących Cię cech. Zaplanuj wszystkie kwestie związane z treningiem, w szczególności harmonogram, czas trwania okresu szkolenia i częstotliwość sesji, a także narysuj tabelę treningową. Następnie przyzwyczaj myszy do pozostania w miejscu odpoczynku na szczycie drabiny, pozostawiając zwierzęta w tym obszarze w grupach po cztery z pościelą z klatki na 15 minut każdego dnia.Naucz myszy wspinać się i przewracać drabinę. W tym celu użyj drabiny statycznej i umieść mysz na szczeblu blisko szczytu drabiny, skąd mogą zobaczyć miejsce odpoczynku i instynktownie do niego przejść. Naucz je stopniowo wspinać się z 5 szczebli pierwszego dnia do 10 szczebli następnego dnia, aż do 15 szczebli.Następnie zastosuj tę samą procedurę z drabiną dynamiczną, najpierw bez ruchu, a następnie z drabiną poruszającą się z prędkością 5,4 i 6,6 centymetra na sekundę, a myszy wspinają się w górę przez 2 minuty, kończąc 5 serii. Następnie przygotuj następujące materiały do ćwiczeń oporowych, ciężarki, drut do trzymania ciężarów, stalowy klips aligatora i kliniczną taśmę klejącą. Trzeciego dnia aklimatyzacji odetnij kawałek klinicznej taśmy klejącej i przymocuj ją do ogona myszy, aby dostosować ją do przenoszenia ciężarów.W siódmym dniu aklimatyzacji włóż małe ciężarki do drutu i zaczep zacisk aligatora. Zaciśnij aligator do taśmy klinicznej przymocowanej do ogona myszy i umieść mysz na drabinie, Natychmiast po tym, jak mysz wspiął się na wymagane szczeble, zdejmij zacisk i pozwól myszy odpocząć z taśmą kliniczną na ogonie, ale bez ciężaru. Przed wykonaniem testów przyrostowych w celu oceny maksymalnej siły wykonaj sesję rozgrzewkową składającą się z trzech serii po 10 powtórzeń, 10 kroków na powtórzenie bez obciążenia zewnętrznego.Ustaw nachylenie pod kątem 90 stopni dla pierwszej serii, a następnie pod kątem 85 stopni. Odczekaj okres odpoczynku wynoszący 60 sekund między seriami. Po przymocowaniu zewnętrznego obciążenia o wadze 10 gramów do ogona myszy, jak pokazano wcześniej, rozpocznij test z nachyleniem ustawionym na 85 stopni i wykonaj jedną serię 10 kroków.Usuń ciężar i odczekaj 120 sekund na odpoczynek w obszarze odpoczynku. Następnie wykonaj kolejną serię 10 kroków zwiększających obciążenie zewnętrzne o pięć gramów, aż do wyczerpania. Odczekaj 120-sekundowy okres odpoczynku między seriami.Jeśli mysz nie zdoła pokonać 10 stopni z określonym obciążeniem, pozwól na kolejną próbę z tym samym obciążeniem po 120 sekundach odpoczynku. Jeśli ponownie się nie powiedzie, zapisz obciążenie z ostatniej zakończonej serii jako maksymalne obciążenie. Jeśli uda mu się wznieść wraz z obciążeniem, kontynuuj test z następnym obciążeniem.Aby wykonać test przyrostowy z dynamiczną drabinką do oceny maksymalnej siły, przypnij odpowiedni ciężar do taśmy klinicznej i rozpocznij test z prędkością 4,2 centymetra na sekundę. Zwiększaj prędkość o 1,2 centymetra na sekundę co 60 sekund, aż do wyczerpania i zapisuj w ten sposób czas. Aby wykonać test maksymalnej wytrzymałości wytrzymałościowej za pomocą drabinki statycznej po sesji rozgrzewkowej bez ciężarów, jak pokazano wcześniej, przypnij odpowiedni ciężar do taśmy klinicznej umieszczonej wokół ogona myszy.Następnie, utrzymując drabinę pod kątem 85 stopni, wykonuj kolejne serie 10 stopni aż do wyczerpania bez czasu na odpoczynek między każdą serią i zapisuj liczbę przebytych szczebli. Aby wykonać test maksymalnej wytrzymałości za pomocą drabiny dynamicznej, ustaw nachylenie na 85 stopni i prędkość na 4,2 centymetra na sekundę. Na rozgrzewkę wykonaj trzy serie po 100 kroków bez obciążenia zewnętrznego i pozostaw 60-sekundowy okres odpoczynku między seriami.Po rozgrzewce odczekaj 120 sekund przed rozpoczęciem testu. Następnie przypnij aligator z zewnętrznym obciążeniem, umieść mysz na drabinie biegowej i uruchom stoper. Test kończy się, gdy mysz nie jest już w stanie utrzymać prędkości wynurzania.W przypadku treningu oporowego z drabinką statyczną rozpocznij sesję treningową w obszarze odpoczynku i wykonaj sesję rozgrzewki bez obciążenia zewnętrznego. Następnie przypnij aligatora ciężarkiem do taśmy klinicznej i delikatnie umieść mysz 10 do 20 szczebli poniżej miejsca spoczynku. Pozwól myszy chwycić szczebel i wspiąć się do obszaru spoczynku.Powtarzaj ten proces, aż liczba szczebli w serii zostanie zakończona. Usuń ciężar z ogona myszy i poczekaj 120 sekund do następnej serii. Zwiększaj liczbę kroków i maksymalne obciążenie serii przez cały okres treningowy zgodnie z planem treningowym.W przypadku treningu oporowego z drabinką dynamiczną, po ustawieniu nachylenia na 85 stopni, zamknij drzwi do miejsca odpoczynku i uruchom drabinkę z żądaną prędkością. Po zabiegu rozgrzewki, gdy mysz znajduje się w obszarze spoczynku, przypnij aligatora ciężarkiem na taśmie klinicznej. Alternatywnie obciążnik można przymocować, gdy mysz znajduje się na drabinie.Następnie delikatnie umieść mysz na szczycie ruchomej drabiny z ciężarem na ogonie i pozwól myszom chwycić szczebel i wspiąć się. Po osiągnięciu liczby szczebli w tej serii obciążniki są usuwane, a drzwi są otwierane, aby zwierzę mogło przejść do miejsca odpoczynku. Czas odpoczynku wynosi 120 sekund przed kolejną serią.Powtarzaj tę procedurę, aż sesja treningowa zostanie zakończona. Wpływ na opór po sześciu tygodniach treningu siłowego na drabinie dynamicznej pokazano tutaj. Zmienność siły maksymalnej wykazuje istotny wzrost po treningu w grupach wytrzymałościowych siłowych i wytrzymałościowych, podczas gdy parametr ten nie uległ zmianie w grupie kontrolnej.Wytrzymałość mierzona pod koniec okresu treningu była znacznie wyższa w grupie wytrzymałościowej w porównaniu z grupą siłową i kontrolną. Ważna jest właściwa aklimatyzacja, w tym nauka wspinania się i przystosowanie do taśmy klinicznej i ciężarów. Procedura ta pozwala naukowcom zaprojektować różne rodzaje interwencji w zakresie treningu oporowego.Siła ma znaczenie dla zdrowia i starzenia się człowieka. Naukowcy mogą wykorzystać te metody do zbadania wpływu ćwiczeń i interwencji farmakologicznych na odporność.

versatility-protocols-for-resistance-training-assessment-using-static

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Zadanie chodzenia po szczeblach drabiny jest nowym testem służącym do oceny umiejętności chodzenia oraz pomiaru precyzji stawiania kończyn przednich i tylnych, kroku oraz koordynacji między конечноściami.

Zadanie chodzenia po szczeblach drabiny: system punktacji i jego praktyczne zastosowanie.

Lokomocja jest często badana jako wynik behawioralny w różnych modelach chorób w dziedzinach takich jak neuronauka i ortopedia. Niniejszy artykuł wideo ma na celu opisanie metody pomiaru sił reakcji podłoża oraz kinematyki u szczurów podczas swobodnej lokomocji.

Wyznaczanie kinematyki i siły reakcji podłoża: demonstracja ilościowej oceny zdolności lokomocyjnych szczurów młodych, dorosłych w średnim wieku oraz geriatrycznych

Wykazaliśmy, że wszczepienie mikroelektrody w korze ruchowej szczurów powoduje natychmiastowe i trwałe deficyty motoryczne. Proponowane tutaj metody obejmują operację wszczepienia mikroelektrod i trzy zadania behawioralne gryzoni w celu wyjaśnienia potencjalnych zmian w funkcji motorycznej małej lub dużej spowodowanej uszkodzeniem kory ruchowej spowodowanym implantacją.

Testy behawioralne gryzoni w celu oceny deficytów funkcjonalnych spowodowanych implantacją mikroelektrod w korze ruchowej szczura

Obecne badanie miało na celu zautomatyzowanie kwantyfikacji deficytów motorycznych u szczurów. Wstępny model oceny ocenia utratę motoryczną wynikającą z implantacji mikroelektrody wewnątrzkorowej w korze ruchowej. Informujemy o rozwoju i wykorzystaniu algorytmu śledzenia za pomocą łatwego do adaptacji, prostego i łatwo dostępnego oprogramowania do kodowania.

Nowatorski system śledzenia funkcji motorycznych pojedynczego zwierzęcia za pomocą prostego, łatwo dostępnego oprogramowania

Celem tego badania jest przedstawienie programu treningu zwinności dla osób starszych. Opisano wykonalność tego programu, a protokół szkoleniowy zademonstrowano za pomocą obrazowania wideo.

Program szkoleniowy z wykorzystaniem drabiny zręcznościowej dla osób starszych mieszkających w społecznościach lokalnych

Obecny protokół opisuje zwięzłe szczegóły eksperymentalne dotyczące oceny i interpretacji danych in vivo dotyczących momentu obrotowego uzyskanych za pomocą elektrycznej stymulacji wspólnego nerwu strzałkowego u znieczulonych świń.

In vivo (in vivo) Pomiar izometrycznego momentu obrotowego zginacza grzbietowego kończyny tylnej od świni

Ta procedura opisuje tłumaczalny model treningu oporu z progresywnym kołem do biegania u myszy. Podstawową zaletą tego modelu treningu oporowego jest to, że jest on całkowicie dobrowolny, co zmniejsza stres dla zwierząt i obciążenie badacza.

Prosty i niedrogi model koła do jazdy do progresywnego treningu oporowego u myszy

Obecny protokół opisuje unikalną technikę zwaną treningiem oporowym dostosowanym do dawki (DART), która może być włączona do precyzyjnych badań rehabilitacyjnych przeprowadzanych na małych zwierzętach, takich jak myszy.

Trening oporowy dostosowany do dawki u myszy ze zmniejszonym ryzykiem uszkodzenia mięśni

Ten protokół zapewnia prostą metodę tworzenia statycznego sprzętu treningowego dla myszy. Urządzenie utrzymuje izometryczny skurcz mięśni kończyn myszy, aby zweryfikować interwencyjny wpływ tradycyjnych ćwiczeń na cukrzycę typu 2 (T2DM) i zapewnia nową terapię ruchową w klinicznym leczeniu cukrzycy typu 2.

Metoda treningu siły statycznej dla myszy z cukrzycą typu 2

Tutaj prezentujemy protokół dla opracowanego ostatnio wszechstronnego testu zachowania, testu belki drabiny. Test ten ma tę zaletę, że wykrywa subtelną ataksję móżdżkową spowodowaną defektem działania hormonów tarczycy w ośrodkowym układzie nerwowym w porównaniu z konwencjonalnymi testami behawioralnymi oceniającymi sprawność motoryczną.

Wszechstronna, behawioralna metoda badania wpływu hormonów tarczycy na funkcjonowanie móżdżku

Ten artykuł przedstawia protokół, który pozwala na nieinwazyjną i automatyczną ocenę sprawności motorycznej, a także adaptacyjne i asocjacyjne uczenie się motoryczne w przypadku wyzwań, przy użyciu urządzenia zwanego Drabiną Erasmusa. Trudność zadania można dostosować w celu wykrycia upośledzenia motorycznego w zakresie od dużego do subtelnego stopnia.

Monitorowanie uczenia się motorycznego małego i asocjacyjnego u myszy za pomocą drabiny Erasmusa

Poznaj protokół treningu oporowego z wykorzystaniem drabin statycznych i dynamicznych w modelach mysich. Ta metoda umożliwia ocenę siły i wytrzymałości mięśniowej oraz badanie wpływu ćwiczeń na zdrowie.

Wszechstronność protokołów treningu oporowego i oceny z wykorzystaniem drabin statycznych i dynamicznych w modelach zwierzęcych

Przeglądaj więcej filmów