Name: Tani zautomatyzowany pułap przechwytujący lot do czasowego pobierania próbek owadów latających zwabionych przez sztuczne światło w nocy (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-12-29T14:15:00.000+00:00
Duration: 6 min 19 s
Description: Poznaj tani zautomatyzowany pułap przechwytujący lot do badania owadów nocnych zwabionych sztucznym światłem. Ta metoda umożliwia pobieranie próbek w zdefiniowanych interwałach czasowych bez specjalistycznych umiejętności.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Badania zostały sfinansowane przez La Trobe University Net Zero Fund, sponsorowany przez Sonepar. Badania prowadzono na podstawie pozwolenia naukowego nr 10009741 Wydziału Środowiska, Gruntów, Wody i Planowania Przestrzennego. Dziękujemy Martinowi Steinbauerowi za komentarze do wczesnego szkicu i dwóm anonimowym recenzentom.

1. Budowa pułapki
UWAGA: Wszystkie komponenty niezbędne do zbudowania pułapek znajdują się w Tabeli Materiałów. Każda pułapka została skonstruowana zgodnie z Rysunkiem 1 oraz Rysunkiem 2 przez jedną osobę w czasie poniżej 2 h.
<ol>
	<li>Używając wyrzynarki, potnij poliwęglanowe płyty dachowe (8 mm x 610 mm x 2400 mm) na sekcje o wymiarach 610 mm x 230 mm (Rycina 1, pozycja 1 i 2). Następnie wytnij w centrum każdej płyty (610 mm x 230 mm) rowek o szerokości 8 mm, sięgający do połowy wysokości, aby dwie płyty mogły zostać wsunięte jedna w drugą, tworząc krzyżową przegrodę.</li>
	<li>Wsuń ciasno krzyżowe przegrody do otworu plastikowego lejka (Rycina 1, pozycja 4) i przymocuj je do lejka za pomocą 20 mm stalowych kątowników ze stali nierdzewnej (Ryc. 1, pozycja 5b).</li>
	<li>Po dopasowaniu kątownika nawierć otwory, a następnie użyj śrub M4 i nakrętek z podkładkami (Rycina 1, pozycja 6b), aby przymocować krzyżowe przegrody do lejka.</li>
	<li>Ponownie używając wyrzynarki, wytnij z pozostałych płyt kawałek poliwęglanu (230 mm x 305 mm) i przymocuj go 20 mm stalowymi kątownikami ze stali nierdzewnej (Rycina 1, pozycja 5a) pod kątem 90° do górnej części krzyżowych przegród, aby utworzyć dach ochronny (Rycina 1, pozycja 3).</li>
	<li>Po dopasowaniu kątownika nawierć otwory, a następnie użyj śrub M4 i nakrętek z podkładkami (Rycina 1, pozycja 6a), aby przymocować dach do przegrody.</li>
	<li>Przytnij wylewkę lejka do długości ~30 mm za pomocą piłki do metalu, aby upewnić się, że tace z próbkami w automatycznym podajniku karmy dla zwierząt będą obracać się bez przeszkód w zaprogramowanych odstępach czasu.</li>
	<li>Umieść automatyczny podajnik dla zwierząt (Rycina 1, pozycja 8) w plastikowej misie o pojemności 9 L (średnica 38 mm) (Rycina 1, pozycja 7), aby chronić próbki przed warunkami atmosferycznymi.</li>
	<li>Wywierć otwór o średnicy 20 mm w górnej części misy 9 L i włóż do niego wylewkę lejka, aby umieścić ją bezpośrednio nad tacą z próbkami.</li>
	<li>Używając wiertarki z bitami imbusowymi, przymocuj plastikową misę osłaniającą podajnik do 500 mm odcinka impregnowanej sosnowej sztachety ogrodzeniowej (Rycina 1, pozycja 9) za pomocą ocynkowanych śrub z łbem imbusowym (Rycina 1, pozycja 14).</li>
	<li>Aby ustabilizować całą pułapkę przed podciągnięciem jej w górę na linach, przymocuj drewniany kołek (17 x 17 x 1200 mm, Rycina 1, pozycja 10) do odcinka impregnowanej sosnowej sztachety (Rycina 1, pozycja 9) za pomocą kątownika i drutu wiązałkowego (Rycina 1, pozycje 13, 15 i 16).</li>
</ol>
<img alt="Schemat rozstrzelony zestawienia mechanicznego systemu grawitacyjnego filtra do wody z opisanymi komponentami." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63156/63156fig01.jpg" data-altupdatedat="1788282455000" data-alt="Rycina 1"> 
Rycina 1: Schemat konstrukcji pułapki. (1 i 2) arkusze poliwęglanu o wymiarach 610 mm x 230 mm x 8 mm; (3) arkusz poliwęglanu o wymiarach 230 mm x 305 mm x 8 mm; (4) plastikowy lejek o średnicy 24 cm; (5a-b) kątowniki 20 mm; (6a-b) śruby M4 x 15 mm, podkładki i nakrętki; (7) plastikowa miska o pojemności 9 L i średnicy 38 cm; (8) automatyczny dozownik karmy dla zwierząt; (9) impregnowana sosnowa listwa o wymiarach 150 mm x 12 mm; (10) drewniany palik o wymiarach 17 mm x 17 mm x 1200 mm; (11) kątownik o wymiarach 125 mm x 150 mm; (12) śruby z łbem sześciokątnym 16 mm x 16 mm; (13) kątownik; (14) śruby z łbem sześciokątnym 16 mm x 16 mm; (15 i 16) stabilizator drutowy; (17) karabinek, używany do opuszczania i podnoszenia w wyznaczone miejsce. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63156/63156fig01large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
2. Rozmieszczenie pułapek
UWAGA: Pułapki przymocowano do drzew na wysokości 6 m nad ziemią (bezpośrednio pod lampami eksperymentalnymi lub kontrolnymi), aby wyłapać latające owady (Rysunek 2). Opróżnianie i zbieranie zawartości pułapek przeprowadzono w ciągu jednego dnia przez trzy osoby. W razie potrzeby można pobierać próbki w kolejne dni, opuszczając pułapkę w celu usunięcia zebranych próbek, uzupełniając dozowniki z karmą dla zwierząt i umieszczając pułapkę z powrotem na miejscu co trzy dni, zgodnie z przyjętym schematem pobierania próbek.
<img alt="Układ systemu pułapek na owady z lejem i pojemnikiem, prezentujący metodę badań ekologicznych." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63156/63156fig02.jpg" data-altupdatedat="1788282455000" data-alt="Rysunek 2"> 
Rysunek 2: Niskokosztowa zautomatyzowana pułapka przechwytująca w locie do pobierania próbek owadów w określonych przez użytkownika punktach czasowych. (A) Skrzyżowane przegrody z poliwęglanu stanowią obszar przechwytywania w locie, który umożliwia zbieranie owadów z każdej z czterech stron. Dach z poliwęglanu służy do kierowania owadów w dół i chroni zebrane próbki przed warunkami pogodowymi. Lej znajdujący się pod barierą przechwytującą służy do kierowania owadów, które zderzyły się z poliwęglanowymi przegrodami, do tacek zbierających umieszczonych w okrągłym zbiorniku. (B) Pułapka zawieszona pod eksperymentalnym oświetleniem i przymocowana do drzewa za pomocą drewnianego kołka i kątownika. Skrzynka ze sklejki pod pułapką przechwytującą zawiera detektor nietoperzy używany do pasywnego rejestrowania sygnałów echolokacyjnych emitowanych przez wolno żyjące nietoperze owadożerne. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63156/63156fig02large.jpg" target="_blank">Aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku, kliknij tutaj.</a>
<ol>
	<li>Po dotarciu do miejsca pobierania próbek wyjmij automatyczny dozownik karmy dla zwierząt (Rycina 1, pozycja 8) spod plastikowej misy.</li>
	<li>Otwórz automatyczny dozownik karmy dla zwierząt (Rycina 3A) i w każdej tacy na karmę umieść aluminiowe naczynia zawierające wodę z mydłem lub wybrany konserwant (Rycina 3B; w tym przypadku jako konserwant zastosowano 20 mL glikolu propylenowego).</li>
	<li>Zgodnie z instrukcją dołączoną do automatycznego dozownika karmy dla zwierząt ustaw czasy rotacji tac na karmę. Najpierw ustaw aktualną godzinę, a następnie zaprogramuj każdą tacę dozownika. 
	UWAGA: Automatyczny dozownik karmy dla zwierząt obraca tace (1-6) w zaprogramowanych godzinach. Miski na 6 posiłków można ustawić tak, aby otwierały się o dowolnej porze dnia lub nocy, przy czym tace obracają się w kolejności sekwencyjnej. W niniejszym badaniu celem było oddzielne pobieranie próbek owadów nocnych i dziennych. Pobieranie próbek z tacy 1 rozpoczęto o godzinie 20:00 pierwszej nocy, następnie przejście na tacę 2 nastąpiło o godzinie 7:00 następnego ranka, potem taca 3 o 20:00, taca 4 o 7:00, taca 5 o 20:00 i taca 6 o 7:00. Funkcja opóźnienia pozwoliła na jednodniowy zwłokę w pobieraniu próbek, ponieważ przygotowanie wszystkich stanowisk zajęło 2 dni, co zapewniło rozpoczęcie pobierania próbek w tym samym dniu i o tej samej godzinie we wszystkich lokalizacjach.</li>
</ol>
<img alt="Montaż i widok z góry automatycznego podajnika karmy dla zwierząt; sześć przegródek; kontrola czasu i porcji." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63156/63156fig03.jpg" data-altupdatedat="1788282455000" data-alt="Rysunek 3"> 
Rysunek 3: Automatyczna miska na karmę dla zwierząt. (A) Zasilana bateryjnie miska na karmę dla zwierząt z sześcioma porcjami, użyta do pobierania próbek owadów w określonych przez użytkownika odstępach czasu. Miski z karmą zostały zaprogramowane według naprzemiennych harmonogramów w celu pobrania próbek owadów nocnych i dziennych. Na przykład: tacka 1 otwierała się o godzinie 20:00 (noc 1), tacka 2 otwierała się o godzinie 7:00 (dzień 1), tacka 3 otwierała się o godzinie 20:00 (noc 2), tacka 4 otwierała się o godzinie 7:00 (dzień 2), tacka 5 otwierała się o godzinie 20:00 (noc 3), a tacka 6 otwierała się o godzinie 7:00 (dzień 3). (B) Pokrywa zdjęta z automatycznej miski na karmę dla zwierząt, ukazująca sześć tacek kolektorskich. Foliowe naczynia zawierające glikol propylenowy jako konserwant umożliwiały łatwe usunięcie zebranych owadów. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63156/63156fig03large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
<ol start="4">
	<li>Umieść automatyczny dozownik karmy dla zwierząt z powrotem pod plastikową misą i przymocuj misę do drewnianego elementu ogrodzenia za pomocą ocynkowanych wkrętów z łbem sześciokątnym (Rycina 1, element 14).</li>
	<li>Przymocuj linę do górnej części pułapki za pomocą karabinka (Rycina 1, element 17). Używając drabiny, wciągnij pułapkę na odpowiednią wysokość i zabezpiecz ją karabinkiem pod lampami eksperymentalnymi.</li>
	<li>Przymocuj drugi drewniany kołek (17 mm x 17 mm x 1200 mm, Rycina 2B) do drzewa (lub słupa oświetleniowego) za pomocą kątownika, aby ustabilizować pułapkę podczas silnego wiatru.</li>
	<li>Pułapka spoczywa na szczycie kołka; zabezpiecz ją dwiema dużymi opaskami zaciskowymi (Rycina 2B).</li>
	<li>Aby pobrać próbki owadów, opuść pułapki za pomocą liny. Wyjmij automatyczny dozownik karmy dla zwierząt spod plastikowej misy.</li>
	<li>Zdejmij pokrywę dozownika karmy (Rycina 3A) i wyjmij aluminiowe tace, aby przelać ich zawartość do wcześniej oznakowanych probówek na próbki (Rycina 3B).</li>
</ol>

<ol><li>Epsky, N. D., Morrill, W. L., Mankin, R. W. Traps for Capturing Insects. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEpsky%2C+ND+%22Encyclopedia+of+Entomology%22">Encyclopedia of Entomology</a>. Capinera, J. L. , Springer. Dordrecht. (2008).</li>
<li>Catanach, T. A. Invertebrate sampling methods for use in wildlife studies. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCatanach%2C+TA+%22The+Wildlife+Techniques+Manual%22">The Wildlife Techniques Manual</a>. Silvy, N. J. 1, The Johns Hopkins University Press. Baltimore, Maryland. 336-348 (2012).</li>
<li>Montgomery, G. A., Belitz, M. W., Guralnick, R. P., Tingley, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standards+and+best+practices+for+monitoring+and+benchmarking+insects%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Ecology+and+Evolution%22%5BJournal%5D)">Standards and best practices for monitoring and benchmarking insects.</a> Frontiers in Ecology and Evolution. 8, 579193(2021).</li>
<li>Haddock, J. K., Threlfall, C. G., Law, B., Hochuli, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light+pollution+at+the+urban+forest+edge+negatively+impacts+insectivorous+bats%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+Conservation%22%5BJournal%5D)">Light pollution at the urban forest edge negatively impacts insectivorous bats.</a> Biological Conservation. 236, 17-28 (2019).</li>
<li>Steinbauer, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+ultra-violet+traps+to+monitor+autumn+gum+moth%2C+Mnesampela+private+%28Lepidoptera%3A+Geometridae%29%2C+in+south-eastern+Australia%5BTitle%5D)+AND+%22Australian+Forestry%22%5BJournal%5D)">Using ultra-violet traps to monitor autumn gum moth, Mnesampela private (Lepidoptera: Geometridae), in south-eastern Australia.</a> Australian Forestry. 66 (4), 279-286 (2003).</li>
<li>Wakefield, A., Broyles, M., Stone, E. L., Harris, S., Jones, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantifying+the+attractiveness+of+broad-spectrum+street+lights+to+aerial+nocturnal+insects%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Ecology%22%5BJournal%5D)">Quantifying the attractiveness of broad-spectrum street lights to aerial nocturnal insects.</a> Journal of Applied Ecology. 55, 714-722 (2017).</li>
<li>Williams, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+time+of+activity+of+certain+nocturnal+insects%2C+chiefly+Lepidoptera%2C+as+indicated+by+a+light-trap%5BTitle%5D)+AND+%22Transactions+of+the+Entomological+Society+of+London%22%5BJournal%5D)">The time of activity of certain nocturnal insects, chiefly Lepidoptera, as indicated by a light-trap.</a> Transactions of the Entomological Society of London. 83 (4), 523-555 (1935).</li>
<li>Bolliger, J., Collet, M., Hohl, M., Obrist, M. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+flight-interception+traps+for+interval+sampling+of+insects%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Automated flight-interception traps for interval sampling of insects.</a> PLoS ONE. 15 (7), 0229476(2020).</li>
<li>Grubisic, M., van Grunsven, R. H. A., Kyba, C. C. M., Manfrin, A., Hölker, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insect+declines+and+agroecosystems%3A+does+light+pollution+matter%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Applied+Biology%22%5BJournal%5D)">Insect declines and agroecosystems: does light pollution matter.</a> Annals of Applied Biology. 173, 180-189 (2018).</li>
<li>Owens, A. C. S., Lewis, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+impact+of+artificial+light+at+night+on+nocturnal+insects%3A+a+review+and+synthesis%5BTitle%5D)+AND+%22Ecology+and+Evolution%22%5BJournal%5D)">The impact of artificial light at night on nocturnal insects: a review and synthesis.</a> Ecology and Evolution. 8 (22), 11337-11358 (2018).</li>
<li>Rydell, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exploitation+of+insects+around+streetlamps+by+bats+in+Sweden%5BTitle%5D)+AND+%22Functional+Ecology%22%5BJournal%5D)">Exploitation of insects around streetlamps by bats in Sweden.</a> Functional Ecology. 6, 744-750 (1992).</li>
<li>Bolliger, J., Hennet, T., Wermelinger, B., Blum, S., Haller, J., Obrist, M. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+impact+of+two+LED+colors+on+nocturnal+insect+abundance+and+bat+activity+in+a+peri-urban+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Insect+Conservation%22%5BJournal%5D)">Low impact of two LED colors on nocturnal insect abundance and bat activity in a peri-urban environment.</a> Journal of Insect Conservation. 24, 625-635 (2020).</li>
<li>Rodríguez, A., Orozco-Valor, P. M., Sarasola, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Artificial+light+at+night+as+a+driver+of+urban+colonization+by+an+avian+predator%5BTitle%5D)+AND+%22Landscape+Ecology%22%5BJournal%5D)">Artificial light at night as a driver of urban colonization by an avian predator.</a> Landscape Ecology. 36, 17-27 (2021).</li>
<li>Hienton, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Summary+of+investigations+of+electric+insect+traps%5BTitle%5D)+AND+%22United+States+Department+of+Agriculture%22%5BJournal%5D)">Summary of investigations of electric insect traps.</a> United States Department of Agriculture. , Washington D.C. Technical bulletin No. 1498. Agricultural Research Service (1974).</li>
<li>Johnson, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+suction+trap+for+small+airborne+insects+which+automatically+segregates+the+catch+into+successive+hourly+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Applied+Biology%22%5BJournal%5D)">A suction trap for small airborne insects which automatically segregates the catch into successive hourly samples.</a> Annals of Applied Biology. 37 (1), 80-91 (1950).</li>
<li>Hutchins, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insect+activity+at+a+light+trap+during+various+periods+of+the+night%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Economic+Entomology%22%5BJournal%5D)">Insect activity at a light trap during various periods of the night.</a> Journal of Economic Entomology. 33 (4), 654-657 (1940).</li>
<li>Nagel, R. H., Granovsky, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+turn-table+light+trap+for+taking+insects+over+regulated+periods%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Economic+Entomology%22%5BJournal%5D)">A turn-table light trap for taking insects over regulated periods.</a> Journal of Economic Entomology. 40 (4), 583-586 (1947).</li>
<li>Hill, C. J., Cemak, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+design+and+some+preliminary+results+for+a+flight+intercept+trap+to+sample+forest+canopy+arthropods%5BTitle%5D)+AND+%22Australian+Journal+of+Entomology%22%5BJournal%5D)">A new design and some preliminary results for a flight intercept trap to sample forest canopy arthropods.</a> Australian Journal of Entomology. 36, 51-55 (1997).</li>
<li>Lamarre, G. P. A., Molto, Q., Fine, P. V. A., Baraloto, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+two+common+flight+interception+traps+to+survey+tropical+arthropods%5BTitle%5D)+AND+%22ZooKeys%22%5BJournal%5D)">A comparison of two common flight interception traps to survey tropical arthropods.</a> ZooKeys. 216, 43-55 (2012).</li>
<li>Wilkening, A. J., Foltz, J. L., Atkinson, T. H., Connor, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+omnidirectional+flight+trap+for+ascending+and+descending+insects%5BTitle%5D)+AND+%22The+Canadian+Entomologist%22%5BJournal%5D)">An omnidirectional flight trap for ascending and descending insects.</a> The Canadian Entomologist. 113, 453-455 (1981).</li>
<li>Frost, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insects+captured+in+light+traps+with+and+without+baffles%5BTitle%5D)+AND+%22The+Canadian+Entomologist%22%5BJournal%5D)">Insects captured in light traps with and without baffles.</a> The Canadian Entomologist. 90 (9), 566-567 (1958).</li>
<li>Muirhead-Thompson, R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMuirhead-Thompson%2C+R+%22Trap+responses+of+flying+insects%3A+The+influence+of+trap+design+on+capture+efficiency%22">Trap responses of flying insects: The influence of trap design on capture efficiency</a>. , Academic Press. London. 287(1991).</li>
<li>Carrel, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+aerial-interception+trap+for+arthropod+sampling%5BTitle%5D)+AND+%22Florida+Entomologist%22%5BJournal%5D)">A novel aerial-interception trap for arthropod sampling.</a> Florida Entomologist. 85 (4), 656-657 (2002).</li>
<li>Steinbauer, M. J., Haslem, A., Edwards, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+meteorological+and+lunar+information+to+explain+catch+variability+of+Orthoptera+and+Lepidoptera+from+250+W+Farrow+light+traps%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Conservation+and+Diversity%22%5BJournal%5D)">Using meteorological and lunar information to explain catch variability of Orthoptera and Lepidoptera from 250 W Farrow light traps.</a> Insect Conservation and Diversity. 5, 367-380 (2012).</li>
<li>Recher, H. F., Majer, J. D., Ganesh, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Seasonality+of+canopy+invertebrate+communities+in+eucalypt+forests+of+eastern+and+western+Australia%5BTitle%5D)+AND+%22Australian+Journal+of+Ecology%22%5BJournal%5D)">Seasonality of canopy invertebrate communities in eucalypt forests of eastern and western Australia.</a> Australian Journal of Ecology. 21, 64-80 (1996).</li>
<li>van Klink, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meta-analysis+reveals+declines+in+terrestrial+but+increases+in+freshwater+insect+abundances%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Meta-analysis reveals declines in terrestrial but increases in freshwater insect abundances.</a> Science. 368, 417-420 (2020).</li>
<li>Wagner, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insect+declines+in+the+Anthropocene%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Entomology%22%5BJournal%5D)">Insect declines in the Anthropocene.</a> Annual Review of Entomology. 65, 457-480 (2020).</li>
<li>Cardoso, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scientists%27+warning+to+humanity+on+insect+extinctions%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+Conservation%22%5BJournal%5D)">Scientists' warning to humanity on insect extinctions.</a> Biological Conservation. 242, 108426(2020).</li>
<li>Saunders, M. E., Janes, J. K., O'Hanlon, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Moving+on+from+the+insect+apocalypse+narrative%3A+Engaging+with+evidence-based+insect+conservation%5BTitle%5D)+AND+%22BioScience%22%5BJournal%5D)">Moving on from the insect apocalypse narrative: Engaging with evidence-based insect conservation.</a> BioScience. 70 (1), 80-89 (2020).</li>
<li>Cardoso, P., Leather, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predicting+a+global+insect+apocalypse%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Conservation+and+Diversity%22%5BJournal%5D)">Predicting a global insect apocalypse.</a> Insect Conservation and Diversity. 12, 263-267 (2019).</li>
<li>Owens, A. C. S., Cochard, P., Durrant, J., Perkin, E., Seymoure, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light+pollution+is+a+driver+of+insect+declines%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+Conservation%22%5BJournal%5D)">Light pollution is a driver of insect declines.</a> Biological Conservation. 241, 108259(2020).</li>
<li>Chapman, J. A., Kinghorn, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Window+traps+for+insects%5BTitle%5D)+AND+%22The+Canadian+Entomologist%22%5BJournal%5D)">Window traps for insects.</a> The Canadian Entomologist. 87 (1), 46-47 (1955).</li>
<li>Canaday, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+insect+fauna+captured+in+six+different+trap+types+in+a+Douglas-fir+forest%5BTitle%5D)+AND+%22The+Canadian+Entomologist%22%5BJournal%5D)">Comparison of insect fauna captured in six different trap types in a Douglas-fir forest.</a> The Canadian Entomologist. 119, 1101-1108 (2012).</li>
<li>Burns, M., Hancock, G., Robinson, J., Cornforth, I., Blake, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+novel+flight-interception+trap+designs+for+low-cost+forest+insect+surveys%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Entomology+and+Natural+History%22%5BJournal%5D)">Two novel flight-interception trap designs for low-cost forest insect surveys.</a> British Journal of Entomology and Natural History. 27, 155-162 (2014).</li>
<li>Basset, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+composite+interception+trap+for+sampling+arthropods+in+tree+canopies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+Australian+Entomological+Society%22%5BJournal%5D)">A composite interception trap for sampling arthropods in tree canopies.</a> Journal of the Australian Entomological Society. 27, 213-219 (1988).</li>
<li>Russo, L., Stehouwer, R., Heberling, J. M., Shea, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+composite+insect+trap%3A+An+innovative+combination+trap+for+biologically+diverse+sampling%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">The composite insect trap: An innovative combination trap for biologically diverse sampling.</a> PLoS ONE. 6 (6), 21079(2011).</li>
<li>Knuff, A. K., Winiger, N., Klein, A. -M., Segelbacher, G., Staab, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimizing+sampling+of+flying+insects+using+a+modified+window+trap%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Ecology+%26+Evolution%22%5BJournal%5D)">Optimizing sampling of flying insects using a modified window trap.</a> Methods in Ecology & Evolution. 10 (10), 1820-1825 (2019).</li>
</ol>

Pomimo tego, że zautomatyzowana pułapka przechwytywania lotu opisana przez Bolligera i in. (2020)8 jest dobrze zaprojektowana i bardzo skuteczna w próbkowaniu w określonych przez użytkownika okresach, prawdopodobnie będzie ona zbyt kosztowna dla wielu badaczy. Badanie to pokazuje, że pasywne badania odłowu z wykorzystaniem zautomatyzowanych pułapek do pobierania podpróbek owadów latających w określonych przez użytkownika okresach mogą być przeprowadzane przy skromnym budżecie. Pułapki zostały zbud...

Istnieje wiele technik pobierania próbek stawonogów 1,2,3, ale ekolodzy często mają trudności z zastosowaniem tych metod w sposób odpowiedni do ich pytań badawczych (patrz4). Wybierając odpowiednią metodę pobierania próbek owadów, ekolodzy muszą wziąć pod uwagę gatunki docelowe, czas, wysiłek i koszty związane z różnymi technikami. Na przykład częstym ograniczeniem jest to, że może być logistycznie trudne pobieranie podpróbek w określonych okresach czasu na zreplikowanych miejscach w celu ilościowego określenia zmiennych czasowych, które wpływają na aktywność gatunków, takich jak zmiany pogody lub aktywność okołodobowa (ale zobacz5). Większość pasywnych pułapek na owady jest ustawiana na długie okresy (np. na wiele dni, tygodni, a nawet miesięcy), bez precyzyjnej rozdzielczości czasowej1. W przypadku badań ukierunkowanych na określone okresy czasu w wielu miejscach replikacji (np. nocne pobieranie próbek tylko w różnych lokalizacjach) może być wymagany duży zespół do odwiedzania miejsc przez wiele dni w tych samych punktach czasowych (np. w ciągu 30 minut od wschodu i zachodu słońca) w celu zebrania próbek i zresetowania pułapek6; W przeciwnym razie wymagane jest automatyczne urządzenie do zalewkowania5,7,8.
Istnieje coraz więcej możliwości pracy nad wpływem sztucznego światła w nocy (ALAN) na wzorce aktywności owadów i lokalną dynamikę populacji9,10; oraz nad interakcjami między ALAN a wskaźnikami drapieżnictwa owadów4,11,12,13. Jednakże, aby zbadać wpływ ALAN na taksony owadów prowadzących nocny tryb życia, pobieranie próbek musi być ograniczone do pory nocnej. Opisano kilka różnych aktywnych pułapek świetlnych, które zostały wykorzystane do automatycznego czasowego pobierania próbek owadów prowadzących nocny tryb życia14. Niektóre przykłady obejmują proste urządzenia separujące z opadającą tarczą, w których zaczep wpada do wąskiej rury, a dysk opada co godzinę, aby oddzielić catch15, lub urządzenia rozdzielające ze stołem obrotowym, które obracają butelki zbiorcze w określonych odstępach czasu7,16,17. Te poprzednie zautomatyzowane pułapki świetlne rozwiązują problemy związane z pobieraniem próbek związanych z wymaganiami pomiarów czasowych, ale często są duże i nieporęczne oraz wykorzystują przestarzałą lub zawodną technologię. Niedawno opracowano i przetestowano nowe zautomatyzowane pasywne urządzenie do pobierania próbek8. To urządzenie wykorzystywało dostępną na rynku pułapkę przechwytującą lot w połączeniu z lekkim, specjalnie zaprojektowanym urządzeniem do zbierania próbek, składającym się z talerza obrotowego trzymającego kubek do pobierania próbek, który pozwala na zbieranie zawartości pułapki w zdefiniowanych przez użytkownika odstępach czasu8. Ta nowa zautomatyzowana pułapka wykorzystuje zaawansowane programowanie, które może być obsługiwane za pomocą smartfona, ale jest zbyt drogie w budowie i kosztuje około 700 EURO (1 000 AUD) za pułapkę8.
Pułapki przechwytujące lot są jednym z najbardziej efektywnych sposobów badania owadów latających1,18,19 i działają na zasadzie, że latające owady spadają na ziemię, gdy zderzają się z pionową powierzchnią. Pułapki przechwytujące lot są dostępne w różnych wersjach. Jednak większość z nich jest zwykle zbudowana z przezroczystej lub siatkowej powierzchni i pojemnika zbiorczego wypełnionego wodą i/lub środkiem konserwującym. Nowa pułapka opisana tutaj wykorzystuje typ poprzecznej łopatki/przegrody lub wielokierunkową pułapkę przechwytującą20, biorąc pod uwagę, że wykazano, że przegrody krzyżowe zwiększają szybkość przechwytywania14,21 i pobieraj próbki owadów ze wszystkich kierunków. Celem tej pułapki jest zbadanie nocnych owadów latających, które przyciąga sztuczne światło. Ta fototaksja powoduje, że owady krążą wokół źródła światła22; dlatego najbardziej odpowiednia jest pułapka wielokierunkowa.
Opisana tutaj jest tania automatyczna pułapka przechwytująca, która nie wymaga specjalistycznego sprzętu ani umiejętności do budowy i obsługi. Pułapka wykorzystuje dostępny na rynku automatyczny dozownik karmy dla zwierząt domowych i popularne przedmioty dostępne w sklepach ze sprzętem. Konstrukcja tego projektu kosztuje mniej niż 66 EURO (105 AUD) za pułapkę (tabela 1), co czyni ją realną opcją dla badań wymagających czasowego podpróbkowania w wielu miejscach jednocześnie.

<table><tbody><tr><td>Baterie (ogniwo C) &ndash; 10 sztuk</td><td>Duracell</td><td>MN1400B10</td><td>https://www.duracell.com.au/product/alkaline-c-batteries/</td></tr> <tr><td>Zasilana bateryjnie automatyczna miska na 6 posiłków dla zwierząt domowych &ndash; każdy</td><td>OEM Chiny</td><td>XR-P006-002</td><td>Zautomatyzowane 6-posiłkowe miski na karmę dla zwierząt domowych różnią się ceną w zależności od dostawcy, na przykład w Wielkiej Brytanii można je kupić za &funt; 19 GBP (36 AUD).</td></tr><tr><td>Ocynkowane z sześciokątnym (10-16 x 16 mm) &ndash; 100 sztuk</td><td>Bunnings Warehouse</td><td>1-311-9151-CTPME</td><td>Bunnings Warehouse to australijska sieć sklepów z artykułami w Australii i Nowej Zelandii. Przedmioty zakupione w Bunnings Warehouse można znaleźć w większości sklepów z narzędziami. https://www.bunnings.com.au/</td></tr> <tr><td>Kątownik ze stali ocynkowanej (125 x 150 mm) &ndash; szt</td>. <td>Bunnings Warehouse</td><td>AZ11</td><td>https://www.bunnings.com.au/</td></tr> <tr><td>Drut wiązałkowy ocynkowany (0,70 mm x 75 m) &ndash; na rolkę</td><td>Bunnings Warehouse</td><td>50218</td><td>https://www.bunnings.com.au/</td></tr> <tr><td>Umywalka plastikowa (38 cm, 9 L okrągła) &ndash; każdy</td><td>FBA31541</td><td></td> <td>Ezy Storagehttps://www.ezystorage.com/product/laundry/basic-accessories/9l-round-basin/</td></tr> <tr><td>Lejek plastikowy (24 cm) &ndash; szt</td>. <td>Sandleford</td><td>Pf24</td><td>https://www.sandleford.com.au/plastic-funnel-24cm</td></tr><tr><td>Kątownik ze stali nierdzewnej (20 mm) &ndash; 16 sztuk</td><td>Bunnings Warehouse</td><td>WEB2020</td><td>https://www.bunnings.com.au/</td></tr> <tr><td>i nakrętki ze stali nierdzewnej (M4 x 15 mm) &ndash; 18 sztuk</td><td>Bunnings Warehouse</td><td>SFA394</td><td>https://www.bunnings.com.au/</td></tr> <tr><td>Podkładki ze stali nierdzewnej (3/16" i M5) &ndash; 50 sztuk</td><td>Bunnings Warehouse</td><td>EBM5005</td><td>https://www.bunnings.com.au/</td></tr> <tr><td>Blacha dachowa z poliwęglanu Sunlite (8 mm x 610 mm x 2,4 m) &ndash; szt</td>. <td>Suntuf (Palram Industries Ltd)</td> <td>SL8CL2.4</td><td>https://www.palram.com/au/product/sunlite-polycarbonate-multi-wall/</td></tr> <tr><td>Impregnowana folia sosnowa (150 x 12 mm) &ndash; każda</td><td>STS Timber Hurtownia P/L</td><td>n/A</td><td>https://www.ststimber.com.au/sts-timber-wholesale-products/fencing</td></tr><tr><td>Drewniane kołki (1200 x 17 x 17 mm) &ndash; 10 sztuk</td><td>Kratownikarki</td><td>nie dotyczy</td><td>https://latticemakers.com/product/tomato-stakes-17x17mm-pack-of-10/</td></tr></tbody></table>

tani zautomatyzowany pułap przechwytujący lot do czasowego pobierania próbek owadów latających zwabionych przez sztuczne światło w nocy

Low-Cost Automated Flight Intercept Trap for the Temporal Sub-Sampling of Flying Insects Attracted to Artificial Light at Night

Metody pobierania próbek są wybierane w zależności od gatunku docelowego lub przestrzennych i czasowych wymagań badania. Jednak większość metod pasywnego pobierania próbek od owadów latających ma słabą rozdzielczość czasową, ponieważ jest to czasochłonne, kosztowne i/lub logistycznie trudne do wykonania. Skuteczne pobieranie próbek owadów latających przyciąganych przez sztuczne światło w nocy (ALAN) wymaga pobierania próbek w zdefiniowanych przez użytkownika punktach czasowych (tylko w nocy) w dobrze odtworzonych miejscach, co skutkuje dużym nakładem czasu i pracy badawczej lub kosztownymi zautomatyzowanymi technologiami. Opisana tutaj jest tania zautomatyzowana pułapka przechwytująca, która nie wymaga specjalistycznego sprzętu ani umiejętności do budowy i obsługi, co czyni ją realną opcją dla badań, które wymagają czasowego podpróbkowania w wielu miejscach. Pułapka może być wykorzystana do rozwiązania wielu innych problemów ekologicznych, które wymagają większej skali czasowej i przestrzennej niż jest to możliwe w przypadku poprzedniej technologii pułapek.

Pułapki zostały przetestowane w ankiecie owadów latających zwabionych przez eksperymentalne oświetlenie w czterech rezerwatach buszu w Melbourne w Australii. Stanowiska składały się z resztkowego lub porośniętego roślinnością buszu otoczonego zabudową mieszkalną i były oddalone od siebie średnio o 15 km (zasięg 3-24 km) i powierzchnię 45 ha (zasięg 30-59 ha). W sumie zainstalowano szesnaście pułapek, po cztery w każdym miejscu, z oświetleniem eksperymentalnym i bez niego (3 światła i 1 kontrolna na miejsce) i badano je p...

Aby zbadać wpływ sztucznego światła w nocy (ALAN) na nocne owady latające, pobieranie próbek musi być ograniczone do nocy. Protokół opisuje tanią, zautomatyzowaną pułapkę przechwytującą lot, która umożliwia naukowcom pobieranie próbek w zdefiniowanych przez użytkownika okresach ze zwiększoną replikacją.

Tani zautomatyzowany pułap przechwytujący lot do czasowego pobierania próbek owadów latających zwabionych przez sztuczne światło w nocy

Sampling methods are selected depending on the targeted species or the spatial and temporal requirements of the study. However, most methods for passive ...

W badaniu zanieczyszczenia światłem należy pobierać próbki między zmierzchem a świtem. Nasze tanie, zautomatyzowane pułapki przechwytujące lot umożliwiają chwytanie owadów latających w określonych przez użytkownika odstępach czasu. Pobieranie próbek z wielu miejsc jednocześnie może być trudne, ponieważ w każdym miejscu muszą znajdować się badacze, którzy jednocześnie uruchamiają i zatrzymują sprzęt.Pułapka ta może być stosowana w dowolnych badaniach ekologicznych na owadach latających, które wymagają większej rozdzielczości czasowej lub przestrzennej, której nie można skutecznie zapewnić za pomocą innych technik pobierania próbek. Przykładem mogą być okołodobowe lub sezonowe wzorce aktywności. Do zbudowania tej pułapki nie są wymagane żadne specjalistyczne umiejętności.Musisz tylko czuć się komfortowo, korzystając z prostych narzędzi warsztatowych. Zacznij od przycięcia blach dachowych z poliwęglanu za pomocą wyrzynarki. Następnie wytnij ośmiomilimetrowy środkowy rowek w połowie środka każdej szyby.Obie szyby mogą teraz przesuwać się razem, tworząc poprzeczną przegrodę. Wsuń przegrody krzyżowe ciasno w plastikowy otwór lejka. Przymocuj je do lejka za pomocą 20-milimetrowych kątowników ze stali nierdzewnej, wiercąc otwory, gdy wsporniki kątowe są na swoim miejscu.Następnie użyj i nakrętek M4 z podkładkami, aby przymocować przegrody krzyżowe do lejka. Z pozostałych arkuszy wytnij kolejny kawałek folii poliwęglanowej. Wywierć otwory i przymocuj element pod kątem 90 stopni do górnej części przegród krzyżowych, aby utworzyć dach ochronny za pomocą 20-milimetrowych kątowników ze stali nierdzewnej, M4, nakrętek i podkładek.Przytnij wylewkę lejka na długość około 30 milimetrów za pomocą piły do metalu, aby upewnić się, że tace na próbki automatycznego podajnika dla zwierząt będą się obracać bez przeszkód w zaprogramowanych odstępach czasu. Umieść automatyczny dozownik dla zwierząt w plastikowym zbiorniku o pojemności dziewięciu litrów i średnicy 30 milimetrów, aby chronić próbki przed warunkami atmosferycznymi. Wywierć 20-milimetrowy otwór w górnej części dziewięciolitrowej miski i umieść wylewkę lejka w otworze, aby umieścić ją bezpośrednio nad tacą na próbki.Za pomocą wiertarki z końcówką wkrętaka z sześciokątnym przymocuj plastikową umywalkę do 500-milimetrowego kawałka impregnowanego ogrodzenia sosnowego za pomocą ocynkowanych z sześciokątnym. Aby ustabilizować całą pułapkę do podnoszenia w powietrze za pomocą lin, przymocuj drewniany kołek do kawałka obrobionego ogrodzenia sosnowego za pomocą kątownika i drutu łączącego. W miejscu pobierania próbek wyjmij automatyczny dozownik karmy dla zwierząt domowych spod plastikowej miski.Następnie otwórz dozownik karmy dla zwierząt i umieść naczynia foliowe zawierające wodę z mydłem lub wybrany środek konserwujący w każdej tacce na żywność. Ustaw godzinę zegara, a następnie zaprogramuj każdą tacę dozownika karmy dla zwierząt domowych, aby ustawić czasy obrotu tacki na żywność, postępując zgodnie ze wskazówkami dostarczonymi z automatycznym dozownikiem karmy dla zwierząt. Umieść dozownik żywności z powrotem pod plastikową miską.Przymocuj umywalkę do drewnianego elementu ogrodzenia za pomocą ocynkowanych z sześciokątnym. Przymocuj linę do górnej części pułapki za pomocą karabińczyka. Następnie podnieś pułapkę na miejsce za pomocą drabiny i zabezpiecz ją pod eksperymentalnymi światłami za pomocą karabinka.Przymocuj drugi drewniany kołek do drzewa za pomocą kątownika, aby ustabilizować pułapkę przy silnym wietrze. Po tym, jak pułapka znajdzie się na szczycie kołka, zabezpiecz ją dwiema długimi opaskami kablowymi. Aby pobrać próbki owadów, opuść pułapki za pomocą liny, wyjmij automatyczny dozownik karmy dla zwierząt domowych spod plastikowej miski, a następnie zdejmij pokrywę dozownika karmy dla zwierząt domowych i wyjmij aluminiowe tace.Na koniec wlej zawartość tacek do wstępnie oznakowanych fiolek z próbkami. Porównanie względnej skuteczności przechwytywania różnych pułapek przechwytujących lot przedstawiono tutaj. W niniejszym badaniu w ciągu trzech dni pobierania próbek w czterech miejscach schwytano łącznie 488 owadów latających.W pracy zbadano dwa rodzaje pułapek. Pułapki umieszczone pod światłami i te bez świateł eksperymentalnych. W sumie zainstalowano 16 pułapek, z których 12 było ze światłami eksperymentalnymi, a cztery bez świateł eksperymentalnych.Liczba dni pułapek, która jest równa liczbie pułapek pomnożonej przez liczbę dni, wynosi 36 dla pułapek ze światłami eksperymentalnymi i 12 dla pułapek bez świateł eksperymentalnych. W związku z tym, aby ocenić skuteczność pułapek, całkowitą liczbę zebranych stawonogów podzielono przez efektywną powierzchnię każdej pułapki i liczbę dni pułapek, w których były one używane. Pułapki działają podobnie do innych wielokierunkowych pułapek z przegrodami pod światłami i bez świateł.W związku z tym pułapki wydają się być tak samo skuteczne jak tradycyjne pułapki przechwytujące lot, ale z dodatkową korzyścią w postaci podpróbkowania w zdefiniowanych przez użytkownika okresach czasu. Każda taca zbiorcza mieści około 330 mililitrów, co pomieści większość zastosowań, ale korzystne byłoby przetestowanie pułapek podczas roju.

low-cost-automated-flight-intercept-trap-for-temporal-sub-sampling

Research

JoVE Journal

Environment

Środowisko

Badanie złożonych zachowań lokomocyjnych u Drosophila melanogaster zależy od możliwości ilościowego określenia zmian w ruchu danej muchy. Niniejszy artykuł demonstruje, jak przeprowadzić ten proces przy użyciu wysokorozdzielczego systemu śledzenia.

Wysokorozdzielcze śledzenie wideo lokomocji u dorosłych osobników Drosophila melanogaster

Prezentujemy nowatorską procedurę chirurgiczną polegającą na wszczepieniu elektrod w Manduca sexta podczas jej wczesnych stadiów metamorficznych. Technika ta pozwala na mechanicznie stabilne i elektrycznie niezawodne sprzężenie z tkanką nerwowo-mięśniową w celu badania dynamiki neurofizjologii lotu. Prezentujemy również nowatorską platformę lewitacji magnetycznej do badań ziewania owadów na uwięzi.

Wczesna technologia wprowadzania metamorficznego do monitorowania zachowania owadów w locie

Tutaj opisujemy metodę szybkiego i dokładnego pomiaru wydajności lotu u Drosophila, umożliwiając wysokoprzepustowe badania przesiewowe.

Ulepszona metoda dokładnego i szybkiego pomiaru charakterystyki lotu u Drosophila

Zaproponowaliśmy system, który wykorzystuje niedrogie, nieinwazyjne pseudoakustyczne czujniki optyczne do automatycznego i dokładnego wykrywania, liczenia i klasyfikowania owadów latających na podstawie ich dźwięku lotu.

Wykrywanie i klasyfikacja owadów latających za pomocą niedrogich czujników

Na lot owadów wpływa wiele czynników, a skłonność do rozprzestrzeniania się jest ważną zmienną w zrozumieniu ekologii owadów i strategii kontroli biologicznej. Opisujemy budowę i zastosowanie prostego, stosunkowo niedrogiego i elastycznego młyna zgarniającego do pomiaru parametrów lotu na uwięzi u owadów.

Prosty młyn zgarniający do badania lotu na uwięzi u owadów

Areny do testowania biologicznego przyciągania zdjęć są używane do określenia optymalnego koloru (kolorów) światła, aby zmaksymalizować atrakcyjność owadów; jednak testy biologiczne i metody są specyficzne dla docelowych zachowań i siedlisk owadów. Konfigurowalny sprzęt i modyfikacje są wyjaśnione dla owadów prowadzących nocny lub dzienny tryb życia oraz lądowych lub powietrznych.

Kluczowe elementy testu biologicznego przyciągania zdjęć do badań owadów lub programów monitorowania

Pomiar wzorców pojawiania się owadów wymaga precyzji. Istniejące systemy są tylko częściowo zautomatyzowane, a wielkość próby jest ograniczona. Zajęliśmy się tymi problemami, projektując system wykorzystujący mikrokontrolery do precyzyjnego pomiaru czasu pojawienia się dużej liczby pojawiających się owadów.

Precyzyjny i autonomiczny system wykrywania wzorców pojawiania się owadów

Tutaj opisujemy budowę i wykorzystanie tunelu aerodynamicznego do testów behawioralnych z owadami za pośrednictwem zapachu. Konstrukcja tunelu aerodynamicznego ułatwia uwalnianie źródeł zapachów na kilka sposobów, z bodźcami wizualnymi lub bez. Eksperymenty w tunelu aerodynamicznym są ważnymi metodami identyfikacji behawioralnie aktywnych lotnych substancji chemicznych.

Tunel aerodynamiczny do testów behawioralnych owadów na podstawie zapachu

Ten protokół wprowadza test plamki świetlnej do zbadania fototaktycznego zachowania larw Drosophila. W tym teście plamka świetlna jest generowana jako stymulacja światłem, a proces unikania światła larwalnego jest rejestrowany przez system obrazowania oparty na świetle podczerwonym.

Test punktowy świetlny do analizy fototaksji larw Drosophila

Ten protokół wykorzystuje drukarki trójwymiarowe (3D) i wycinarki laserowe znajdujące się w przestrzeniach twórczych, aby stworzyć bardziej elastyczny projekt młyna lotniczego. Korzystając z tej technologii, naukowcy mogą obniżyć koszty, zwiększyć elastyczność projektowania i generować powtarzalne prace podczas konstruowania młynów do badań nad lotem owadów na uwięzi.

Budowa ulepszonego młyna zgarniającego do badania lotu owadów na uwięzi

Ten protokół przedstawia metody tworzenia, dołączania i śledzenia znaczników radarowych harmonicznych dla owadów.

Harmoniczne znaczniki radarowe do śledzenia owadów: lekkie, tanie i dostępne

Poznaj tani zautomatyzowany pułap przechwytujący lot do badania owadów nocnych zwabionych sztucznym światłem. Ta metoda umożliwia pobieranie próbek w zdefiniowanych interwałach czasowych bez specjalistycznych umiejętności.

Tani zautomatyzowany pułap przechwytujący lot do czasowego pobierania próbek owadów latających zwabionych przez sztuczne światło w nocy (Wideo) | JoVE Journal

Tani zautomatyzowany pułap przechwytujący lot do czasowego pobierania próbek owadów latających zwabionych przez sztuczne światło w nocy

Przeglądaj więcej filmów