Name: Laparoskopowe pobieranie komórek jajowych i kriokonserwacja podczas waginoplastyki w leczeniu zespołu Mayera-Rokitanskyego-Kustera-Hausera (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-05-10T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 53 s
Description: Poznaj połączoną metodę laparoskopowej waginoplastyki z pobieraniem i kriokonserwacją komórek jajowych u pacjentek z zespołem Mayera-Rokitansky'ego-Kustera-Hausera. To innowacyjne podejście zmniejsza liczbę zabiegów i zachowuje płodność.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Nie otrzymano żadnych konkretnych funduszy na tę pracę.

Lokalna komisja etyczna w centrum referencyjnym dla MRKHS (IRCCS San Raffaele University Hospital, Mediolan, Włochy) została powiadomiona i zatwierdziła protokół przed jego wdrożeniem w lipcu 2017 roku. Wszystkie pacjentki lub opiekunowie wyrazili podpisaną świadomą zgodę na laparoskopowe pobranie komórek jajowych i kriokonserwację podczas waginoplastyki oraz na wykorzystanie anonimowych danych klinicznych/laboratoryjnych do celów naukowych.
1. Skład zespołu
<ol>
	<li>Wyznacz dedykowany zespół, składający się z doświadczonego chirurga laparoskopowego, doświadczonego chirurga dopochwy, eksperta ds. niepłodności, oddanego psychologa i zaangażowanej pielęgniarki.</li>
	<li>Asystuj pacjentowi jako zespół podczas całej konfiguracji i wykonywania zabiegu.</li>
</ol>
2. Diagnostyka i poradnictwo
<ol>
	<li>Wykonaj przezbrzuszną ultrasonografię miednicy i jamy brzusznej u pacjentki w celu wizualizacji jajników i oszacowania liczby pęcherzyków antralnych (AFC). Oceń poziom hormonu anty-Müllera (AMH) we krwi, aby zoptymalizować dawkę początkową gonadotropiny w celu kontrolowanej stymulacji jajników. Wykonaj testy serologiczne w kierunku chorób zakaźnych (HIV-AB, HPV-AB, HPV-Ab, RPR-TPHA) zgodnie z krajowymi/lokalnymi protokołami kriokonserwacji tkanek/gamet.</li>
	<li>Doradzaj pacjentce zarówno w zakresie seksualnych, jak i reprodukcyjnych aspektów MRKHS, w tym niechirurgicznej i chirurgicznej plastyki pochwy, kosztów i przepisów związanych z macierzyństwem zastępczym, perspektywy przeszczepu macicy w kontekście programu eksperymentalnego, różnych dostępnych podejść do pobierania oocytów oraz wydajności kriokonserwacji oocytów pod względem wskaźników żywych urodzeń.</li>
	<li>Zaproponuj pacjentce ocenę psychologiczną, aby wesprzeć ją w trakcie zabiegu i ocenić stabilność emocjonalną oraz zaangażowanie i pragnienie przyszłego macierzyństwa. Uzyskaj podpisaną, świadomą zgodę na jednoczesne laparoskopowe pobranie oocytów, kriokonserwację gamet i laparoskopową plastykę pochwy. W przypadku niepełnoletniego pacjenta należy przeprowadzić ocenę kliniczną w obecności rodziców, którzy również podpisują względną świadomą zgodę.</li>
</ol>
3. Planowanie zabiegu chirurgicznego i kontrolowanej stymulacji jajników
<ol>
	<li>Zaplanuj procedurę jednoczesnego laparoskopowego pobrania komórek jajowych, kriokonserwacji gamet i laparoskopowej waginoplastyki, biorąc pod uwagę dostępność zespołu klinicznego (patrz wyżej), a także personelu laboratoryjnego wykonującego witryfikację oocytów.</li>
	<li>Kontrolowaną stymulację jajników (COS) należy rozpocząć w dniu -14 od dnia operacji, biorąc pod uwagę planowany czas trwania COS wynoszący n = 12 dni oraz 36 godzin potrzebnych między wyzwoleniem owulacji a pobraniem komórek jajowych i witryfikacją.</li>
	<li>W przypadku, gdy COS wymaga innego czasu trwania niż oczekiwany, należy odpowiednio przełożyć operację.</li>
</ol>
4. Kontrolowana stymulacja jajników: dawka początkowa, dostosowanie dawki i monitorowanie, wyzwalanie końcowego dojrzewania oocytów
<ol>
	<li>Rozpocznij COS w dowolnej fazie cyklu jajnikowego, jak to zwykle robi się w kontekście protokołów "losowego startu" w celu zachowania płodności.</li>
	<li>Należy wybrać dawkę początkową hormonu folikulotropowego (FSH)/ludzkiej gonadotropiny menopauzalnej (hMG) w oparciu o AFC i AMH pacjenta i poinstruować pacjentkę, aby kontynuowała codzienne samodzielnie wykonywane wstrzyknięcia podskórne. Następnie należy dokonać indywidualnego dostosowania dawki w oparciu o odpowiedź jajników.</li>
	<li>Monitoruj odpowiedź jajników za pomocą seryjnego ultrasonografii przezbrzusznej i jednoczesnych pomiarów E2 i P (dzień 1, dzień 6, dzień 8, dzień 10 i dzień 12).</li>
	<li>Wywołać końcowe dojrzewanie oocytów przez podanie podskórne 0,2 ml analogu Gn-RH (tryptoreliny).</li>
</ol>
5. Procedura kliniczna (laparoskopia): pobranie oocytów
<ol>
	<li>Ułóż pacjenta w zmodyfikowanej pozycji litotomii grzbietowej, która umożliwia doskonały jednoczesny dostęp do brzucha i krocza. Wywołaj znieczulenie ogólne i podaj dożylnie 2 g cefazoliny zgodnie z rutynową śródoperacyjną profilaktyką antybiotykową. Umieścić dopęcherzowy cewnik Foleya.</li>
	<li>Ustalić odmę otrzewnową za pomocą igły Veressa okołopępowinowej, umieścić jeden trokar pępowinowy 10 mm do wprowadzenia laparoskopu i dwa trokary 5 mm w prawej i lewej górnej ćwiartce. W przypadku widzenia laparoskopowego należy użyć igły o pojedynczym prześwicie 17 G podłączonej do pompy aspiracyjnej, powszechnie stosowanej do pobierania przezpochwowego, przez prawy i lewy trokar w celu nakłucia odpowiednio prawego i lewego jajnika.</li>
	<li>Podnieś i przytrzymaj jajniki za pomocą laparoskopowych kleszczy, aby ułatwić odsłonięcie mieszków włosowych. Podczas zasysania wielu pęcherzyków, które znajdują się blisko siebie, należy zachować końcówkę igły w jajniku, aby zmniejszyć liczbę przecięć kory jajnika i nieodłączne ryzyko krwawienia.</li>
</ol>
6. Postępowanie kliniczne (laparoskopia): plastyka pochwy
UWAGA: Etapy waginoplastyki pozostają niezmienione w porównaniu do zmodyfikowanej techniki laparoskopowej Dawydowa12.
<ol>
	<li>Wypreparuj otrzewną, podnosząc i nacinając pasmo otrzewnej poprzecznie między dwoma podstawowymi rogami macicy, a następnie przedłużając nacięcie do przodu, na boki i do tyłu.</li>
	<li>Rozpocznij szew sznurkowy z syntetycznie wchłanialnego (PDS) 2-0 włókienki polidioksanonu w każdej półmiednicy, od zmobilizowanej otrzewnej nad pęcherzem, z kolejno transfiksacją więzadła okrągłego, przesmyku jajowodowego, więzadła macicznego i bocznego liścia otrzewnej. Następnie uwzględnij w dwóch szwach boczną część mezorektum i przednią stronę błony surowiczej odbytnicy, bezpośrednio poniżej połączenia odbytniczo-esiczo.</li>
	<li>Odsłoń dołek pochwy na podejściu kroczowym i wykonaj nacięcie w kształcie litery H, a następnie utwórz przestrzeń neopochwową poprzez ostre i rozwarstwienie przestrzeni pęcherzowo-odbytniczej. Następnie pociągnij wypreparowane brzegi otrzewnej do krawędzi przedsionka pochwy. Zakładanie szwów przerwanych w PDS 3-0 dla zespolenia otrzewnowo-przedsionkowego. Na koniec umieść gazę pokrytą parafiną w neopochwie pokrytej otrzewną.</li>
</ol>
7. Laboratorium in vitro: dzień przed pobraniem komórek jajowych
<ol>
	<li>Przygotuj od 2 do 5 okrągłodennych probówek z 9 ml pożywki Quinn's Advantage Medium z HEPES (uzupełnionej 5% albuminą surowicy ludzkiej [HSA]) zgodnie z liczbą oczekiwanych pęcherzyków i inkubuj je przez noc w temperaturze 37 °C.</li>
	<li>Przygotować jedną lub dwie 4-dołkowe potrawy z 0,5 ml/studzienkę pożywki do nawożenia (uzupełnionej 5% HSA), pokrytej 0,5 ml oleju mineralnego do hodowli zarodków i inkubować przez noc w temperaturze 37 °C w kontrolowanej atmosferze (6%CO2, 5%O2).</li>
	<li>Przygotuj jedno naczynie zawierające 9 (30 μl) kropli pożywki z pojedynczą kulturą ciągłą (CSCM) (uzupełnionej 10% suplementem zastępczym surowicy [SSS]) pokrytym 6 ml oleju mineralnego. Inkubować przez noc w temperaturze 37 °C w kontrolowanej atmosferze (6% CO2 , 5 % O2 ).</li>
</ol>
8. Laboratorium in vitro: procedura pobrania komórek jajowych
<ol>
	<li>Przygotować roztwór Quinn's Advantage Medium z HEPES (uzupełniony o 5% HSA) z heparyną o końcowym stężeniu 10 j.m./ml, w którym zostaną pobrane aspiraty pęcherzykowe.</li>
	<li>Podobnie jak w przypadku rutynowego przezpochwowego pobierania oocytów13, należy pobrać aspiraty pęcherzykowe do probówek okrągłodennych o pojemności 10 ml, utrzymać je w cieple (37 °C) w przenośnym inkubatorze i natychmiast przetransportować do laboratorium embriologicznego, przy czasie transportu wynoszącym około 10 minut.</li>
	<li>Zbadaj płyn pęcherzykowy na podgrzanej sterylnej szalce Petriego o średnicy 90 mm w celu zidentyfikowania kompleksów wzgórko-oocytów (COC). Po wykryciu COC opłucz go w naczyniu z centralną studzienką wypełnioną 1 ml podgrzanego podłoża Quinn's Advantage Medium z HEPES (uzupełnionego 5% HSA).</li>
	<li>Po zebraniu wszystkich COC umieść je w 4-dołkowym naczyniu zawierającym pożywkę do nawożenia i oznacz pokrywkę i spód danymi dotyczącymi tożsamości pacjenta.</li>
	<li>Inkubować je w temperaturze 37 °C w kontrolowanej atmosferze (6% CO2 , 5 % O2 ).</li>
	<li>Należy zapewnić, aby procedura została poddana podwójnej kontroli przez drugiego członka personelu laboratorium.</li>
</ol>
9. Denudacja oocytów
<ol>
	<li>Wykonaj usunięcie wzgórków/komórek koronowych w ciągu 38 godzin po wyzwoleniu owulacji.</li>
	<li>Przygotować roztwór pożywki Quinn's Advantage Medium z HEPES (uzupełniony 5% HSA) z hialuronidazą w końcowym stężeniu 10 j.m./ml.</li>
	<li>Przygotuj naczynie z dodzieniem centralnym z 1 ml podgrzanego podłoża Quinn's Advantage Medium z HEPES (uzupełnionego 5% HSA) zawierającego hialuronidazę i drugie z 1 ml podgrzanej pożywki buforowanej HEPES (uzupełnionej 5% HSA).</li>
	<li>Oznacz naczynia do denudacji oocytów danymi identyfikacyjnymi pacjenta.</li>
	<li>Umieść COC w centralnej studzience zawierającej enzym, aby rozproszyć komórki wzgórka za pomocą szklanej pipety Pasteura, delikatnie pipetując roztwór zawierający COC w górę iw dół przez maksymalnie 30 sekund.</li>
	<li>Przenieś oocyty do drugiej płytki z dołkiem centralnym zawierającej tylko pożywkę buforowaną przez HEPES, upewniając się, że wyparła minimalną ilość enzymu.</li>
	<li>Usunąć pozostałe komórki koronowe za pomocą pipet do denudingu o zmniejszających się średnicach wewnętrznych (170-140 μm).</li>
	<li>Oceń etap dojrzewania oocytów, oddzielając oocyty metafazy II (MII), charakteryzujące się wytłaczaniem pierwszego ciała polarnego, od oocytów metafazy I (MI) i pęcherzyków rozrodczych (GV).</li>
	<li>Przenieść oocyty MII na 60-milimetrową szalkę Petriego z hodowlą IVF zawierającą dziewięć (30 μl) kropli pożywki z ciągłą pojedynczą hodowlą (CSCM) (uzupełnionej 10% suplementem zastępczym surowicy [SSS]) pokrytej 6 ml oleju mineralnego.</li>
	<li>Inkubować je w temperaturze 37 °C w kontrolowanej atmosferze (6% CO2 , 5 % O2 ).</li>
</ol>
10. Witryfikacja oocytów
<ol>
	<li>Witryfikację oocytów MII należy wykonać bezpośrednio po denudacji oocytów, zgodnie z protokołem dostarczonym przez producenta zestawu do witryfikacji.</li>
	<li>Doprowadzić do temperatury pokojowej (25-27 °C): roztwór równoważący (ES), roztwór do witryfikacji (VS) i roztwór do przemywania (WS), prawie 30 minut przed zabiegiem. 
	UWAGA: Jak podają producenci, ES zawiera 7,5% DMSO, 7,5% glikolu etylenowego, 20% suplementu surowicy dekstranu (DSS), gentamycynę w pożywce buforowanej M-199 HEPES; VS zawiera 15% DMSO, 15% glikolu etylenowego, 0,5 M sacharozy, 20% DSS, gentamycynę w pożywce buforowanej M-199 HEPES, a WS zawiera 20% DSS, gentamycynę w pożywce buforowanej M-199 HEPES.</li>
	<li>W przypadku urządzenia kriogenicznego użyj Cryotop składającego się z cienkiego paska przezroczystej folii przymocowanego do plastikowego uchwytu.</li>
	<li>Oznacz kriourządzenia imieniem i nazwiskiem pacjenta, datą urodzenia, dowodem osobistym, datą krioprezerwacji i liczbą oocytów załadowanych na dowolne urządzenie.</li>
	<li>Oznacz naczynie do witryfikacji imieniem i nazwiskiem pacjenta oraz jego identyfikatorem.</li>
	<li>Upewnij się, że operator będący świadkiem sprawdza prawidłowe dane pacjenta na kriourządzeniach i czaszy.</li>
	<li>Napełnij pojemnik chłodzący do góry świeżym ciekłym azotem i przykryj do czasu użycia, aby zminimalizować dyspersję i parowanie.</li>
	<li>Użyj pipety do pobierania próbek o średnicy wewnętrznej 170 μm, aby uniknąć uszkodzenia oocytów podczas manipulacji.</li>
	<li>Delikatnie wstrząsnąć każdą fiolką ES, VS i WS, aby wymieszać zawartość przed użyciem.</li>
	<li>Przygotuj pokrywkę szalki Petriego o średnicy 60 mm z jedną kroplą 50 μl WS1 (<silna klasa="xfig">Rysunek 1A).</li>
	<li>Umieść krople tuż przed użyciem, aby ograniczyć parowanie medium.</li>
	<li>Wyjąć szalkę z komórek jajowych z inkubatora i przenieść oocyty MII (do 3 na raz) z minimalną objętością pożywki z szalki hodowlanej do 50 μl WS.</li>
	<li>Dozuj 50 μl kropli WS2, ES1 i ES2 w bliskiej odległości i przenieś oocyty z kropli WS1 do kropli WS2 (<silna klasa = "xfig">Ryc. 1B).</li>
	<li>Połącz kroplę ES1 z WS2 i poczekaj 2 minuty na spontaniczne wymieszanie obu roztworów.</li>
	<li>Następnie połącz kroplę ES2 z poprzednio połączonymi kroplami i pozostaw na kolejne 2 minuty.</li>
	<li>Na koniec połącz nową kroplę ES3 o pojemności 100 μl z poprzednio połączonymi kroplami i pozostaw na 1 dodatkową minutę.</li>
	<li>Umieść oocyty w kropli ES4 o objętości 100 μl na 10 minut (<silna klasa = "xfig">Rysunek 1C).</li>
	<li>Dozuj dwie krople VS o pojemności 50 μl i jedną kroplę VS o pojemności 100 μl (<klasa silna = "xfig">Rysunek 1D).</li>
	<li>Przenieś oocyty sekwencyjnie do trzech kropli VS przez 60 s, tak aby oocyty pozostały w każdej kropli przez ~20 s.</li>
	<li>Gdy do końca 60 s inkubacji pozostało około 10 s, umieścić kriourządzenie pod mikroskopem.</li>
	<li>Przenieś oocyty na końcówce pipety i umieść je na kriourządzeniu z minimalną ilością VS.</li>
	<li>Odessać nadmiar VS, pozostawiając oocyty pokryte cienką warstwą VS.</li>
	<li>Zanurz kriourządzenie bezpośrednio w ciekłym azocie i szybko je przesuwaj. Trzymaj urządzenie w ciekłym azocie i przykryj je pokrywą ochronną.</li>
	<li>Przechowuj kriourządzenie w systemie przechowywania (np. visiotube) i umieść je w zbiorniku kriogenicznym. Zapisz dane kriokonserwacji w laboratoryjnej bazie danych i arkuszu.</li>
</ol>
11. Stacjonarna opieka pooperacyjna
<ol>
	<li>Usunąć cewnik moczowy i gazę pokrytą parafiną dopochwową 48 godzin po zabiegu.</li>
	<li>Cyfrowo zbadaj neopochwę pacjentki po usunięciu i poinstruuj pacjentkę, jak przeprowadzić eksplorację cyfrową. Następnie pokryj formę dopochwową (9 cm długości i 2 cm średnicy) żelem estrogenowym (aby sprzyjać nabłonkowi) i poinstruuj pacjentkę, jak wprowadzić i konserwować formę.</li>
	<li>Począwszy od 3 dnia po operacji i każdego następnego dnia, poinstruuj pacjenta, jak ustawić formę i utrzymać ją na miejscu przez co najmniej 2 godziny dziennie.</li>
	<li>Jeśli nie wystąpią żadne komplikacje, wypisz pacjenta w 5-6 dniu po operacji.</li>
</ol>
12. Ambulatoryjna opieka pooperacyjna
<ol>
	<li>Poinstruuj pacjentkę, jak wykonywać rozszerzenie neopochwy przez 2 miesiące za pomocą tej samej formy (9 cm długości i 2 cm średnicy), która była używana podczas pobytu w szpitalu, a następnie większej (11 cm długości i 2,5 cm średnicy).</li>
	<li>Po 3-miesięcznej wizycie pozwól pacjentce rozpocząć aktywność seksualną i poinformuj ją, aby nadal używała pleśni w dniach, w których nie ma stosunku.</li>
</ol>
13. Kontynuacja
<ol>
	<li>Zaplanuj wizyty kontrolne po 1, 3, 6 i 12 miesiącach od zabiegu.</li>
	<li>Na każdej wizycie kontrolnej oceń przestrzeganie ćwiczeń rozszerzających i zapytaj pacjenta, czy doświadczył jakichkolwiek ograniczeń w codziennych czynnościach, bólu, objawów ze strony układu moczowego lub dysfunkcji seksualnych (od wizyty po trzecim miesiącu po operacji). Wykonuj badanie ginekologiczne podczas każdej wizyty kontrolnej, aby zmierzyć szerokość, długość, zawieszenie i ruchomość pochwy.</li>
</ol>

<ol><li>Committee on Adolescent Health Care. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ACOG+Committee+Opinion+No.+728%3A+M%C3%BCllerian+Agenesis%3A+Diagnosis%2C+Management%2C+And+Treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Obstetrics+and+Gynecology%22%5BJournal%5D)">ACOG Committee Opinion No. 728: Müllerian Agenesis: Diagnosis, Management, And Treatment.</a> Obstetrics and Gynecology. 131 (1), 35-42 (2018).</li>
<li>Reichman, D. E., Laufer, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mayer-Rokitansky-K%C3%BCster-Hauser+syndrome%3A+Fertility+counseling+and+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Fertility+and+Sterility%22%5BJournal%5D)">Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome: Fertility counseling and treatment.</a> Fertility and Sterility. 94 (5), 1941-1943 (2010).</li>
<li>Ben-Rafael, Z., Bar-Hava, I., Levy, T., Orvieto, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simplifying+ovulation+induction+for+surrogacy+in+women+with+Mayer-Rokitansky-Kuster-Hauser+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Simplifying ovulation induction for surrogacy in women with Mayer-Rokitansky-Kuster-Hauser syndrome.</a> Human Reproduction. 13 (6), 1470-1471 (1998).</li>
<li>Beski, S., Gorgy, A., Venkat, G., Craft, I. L., Edmonds, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gestational+surrogacy%3A+a+feasible+option+for+patients+with+Rokitansky+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Gestational surrogacy: a feasible option for patients with Rokitansky syndrome.</a> Human Reproduction. 15 (11), 2326-2328 (2000).</li>
<li>Brännström, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Livebirth+after+uterus+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Livebirth after uterus transplantation.</a> Lancet. 385 (9968), 607-616 (2015).</li>
<li>Sreenivas, K., Campo-Engelstein, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Domestic+and+international+surrogacy+laws%3A+implications+for+cancer+survivors%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Treatment+and+Research%22%5BJournal%5D)">Domestic and international surrogacy laws: implications for cancer survivors.</a> Cancer Treatment and Research. 156, 135-152 (2010).</li>
<li>Soderstrom-Anttila, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surrogacy%3A+outcomes+for+surrogate+mothers%2C+children+and+the+resulting+families-a+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproductive+Update%22%5BJournal%5D)">Surrogacy: outcomes for surrogate mothers, children and the resulting families-a systematic review.</a> Human Reproductive Update. 22 (2), 260-276 (2016).</li>
<li>Wood, E. G., Batzer, F. R., Corson, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ovarian+response+to+gonadotrophins%2C+optimal+method+for+oocyte+retrieval+and+pregnancy+outcome+in+patients+with+vaginal+agenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Ovarian response to gonadotrophins, optimal method for oocyte retrieval and pregnancy outcome in patients with vaginal agenesis.</a> Human Reproduction. 14 (5), 1178-1181 (1999).</li>
<li>Raziel, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surrogate+in+vitro+fertilization+outcome+in+typical+and+atypical+forms+of+Mayer-Rokitansky-Kuster-Hauser+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Surrogate in vitro fertilization outcome in typical and atypical forms of Mayer-Rokitansky-Kuster-Hauser syndrome.</a> Human Reproduction. 27 (1), 126-130 (2012).</li>
<li>Egarter, C., Huber, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+stimulation+and+retrieval+of+oocytes+in+patient+with+Mayer-Rokitansky-K%C3%BCster+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Successful stimulation and retrieval of oocytes in patient with Mayer-Rokitansky-Küster syndrome.</a> Lancet. 1 (8597), 1283(1988).</li>
<li>Candiani, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oocyte+retrieval+during+laparoscopic+vaginoplasty+to+reduce+invasiveness+in+the+treatment+of+Mayer-Rokitansky-K%C3%BCster-Hauser+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Minimally+Invasive+Gynecology%22%5BJournal%5D)">Oocyte retrieval during laparoscopic vaginoplasty to reduce invasiveness in the treatment of Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome.</a> Journal of Minimally Invasive Gynecology. 27 (1), 74-79 (2020).</li>
<li>Fedele, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Creation+of+a+neovagina+by+Davydov%27s+laparoscopic+modified+technique+in+patients+with+Rokitansky+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Obstetrics+and+Gynecology%22%5BJournal%5D)">Creation of a neovagina by Davydov's laparoscopic modified technique in patients with Rokitansky syndrome.</a> American Journal of Obstetrics and Gynecology. 202 (1), 1-6 (2010).</li>
<li>ESHRE Working Group on Ultrasound in ART et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recommendations+for+good+practice+in+ultrasound%3A+oocyte+pick+up%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction+Open%22%5BJournal%5D)">Recommendations for good practice in ultrasound: oocyte pick up.</a> Human Reproduction Open. 2019 (4), (2019).</li>
<li>Callens, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+update+on+surgical+and+non-surgical+treatments+for+vaginal+hypoplasia%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproductive+Update%22%5BJournal%5D)">An update on surgical and non-surgical treatments for vaginal hypoplasia.</a> Human Reproductive Update. 20 (5), 775-801 (2014).</li>
<li>Sönmezer, M., Gülümser, Ç, Sönmezer, M., Sükür, Y. E., Atabekoğlu, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transabdominal+ultrasound+guided+oocyte+retrieval+using+vaginal+ultrasound+probe%3A+Definition+of+the+technique%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Obstetrics+and+Gynaecology+Research%22%5BJournal%5D)">Transabdominal ultrasound guided oocyte retrieval using vaginal ultrasound probe: Definition of the technique.</a> The Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 47 (2), 800-806 (2021).</li>
<li>Raju, G. A., Haranath, G. B., Krishna, K. M., Prakash, G. J., Madan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+pregnancy+with+laparoscopic+oocyte+retrieval+and+in+vitro+fertilization+in+Mullerian+agenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Singapore+Medicine+Journal%22%5BJournal%5D)">Successful pregnancy with laparoscopic oocyte retrieval and in vitro fertilization in Mullerian agenesis.</a> Singapore Medicine Journal. 47 (4), 329-331 (2006).</li>
<li>Liszewska-Kapłon, M., Strózik, M., Kotarski, Ł, Bagłaj, M., Hirnle, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mayer-Rokitansky-K%C3%BCster-Hauser+syndrome+as+an+interdisciplinary+problem%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Clinical+and+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome as an interdisciplinary problem.</a> Advances in Clinical and Experimental Medicine. 29 (4), 505-511 (2020).</li>
<li>Wagner, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+management+during+the+adolescent+transition+period+of+girls+and+young+women+with+Mayer-Rokitansky-K%C3%BCster-Hauser+syndrome+%28MRKHS%29%3A+A+systematic+literature+review%5BTitle%5D)+AND+%22Orphanet+Journal+of+Rare+Diseases%22%5BJournal%5D)">Treatment management during the adolescent transition period of girls and young women with Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome (MRKHS): A systematic literature review.</a> Orphanet Journal of Rare Diseases. 11 (1), 152(2016).</li>
<li>Bean, E. J., Mazur, T., Robinson, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mayer-Rokitansky-K%C3%BCster-Hauser+syndrome%3A+sexuality%2C+psychological+effects%2C+and+quality+of+life%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pediatric+and+Adolescent+Gynecology%22%5BJournal%5D)">Mayer-Rokitansky-Küster-Hauser syndrome: sexuality, psychological effects, and quality of life.</a> Journal of Pediatric and Adolescent Gynecology. 22 (6), 339-346 (2009).</li>
</ol>

Autorzy nie mają żadnych konfliktów interesów, które mogliby ujawnić.

Protokół ten zmniejsza inwazyjność w leczeniu MRKHS poprzez połączenie procedur waginoplastyki i pobrania komórek jajowych. W tym celu kluczowe jest wyznaczenie dedykowanego zespołu, który zadba o to, aby czas COS, zabiegu chirurgicznego i witryfikacji oocytów był zaplanowany sprawnie.
Pacjenci z MRKHS, dla których ta skojarzona metoda laparoskopowa ma być najbardziej korzystna, to ci, u których pobranie przezpochwowe byłoby uważane za technicznie trudne lub niewykonalne ze względu na jajniki ...

Z częstością występowania około 1 na 4-10 000 kobiet, MRKHS jest przyczyną 15% pierwotnych przypadków braku miesiączki. MRKHS charakteryzuje się wrodzonym brakiem górnego odcinka pochwy i macicy, podczas gdy anomalie dróg moczowych i szkieletu są ze sobą powiązane w różny sposób. Mówiąc dokładniej, zwykle występuje sklepienie pochwy o głębokości 1-2 cm i można znaleźć dwa szczątkowe rogi macicy1.
W przeszłości, głównym zainteresowaniem medycznym MRKHS było umożliwienie normalnego stosunku płciowego, co zazwyczaj wymaga budowy neovagina za pomocą metod niechirurgicznych lub chirurgicznych2. Jednak postępy w medycynie reprodukcyjnej pozwalają obecnie na genetyczne macierzyństwo u pacjentek z MRKHS, przez macierzyństwo zastępcze3,4 lub-niedawno-przeszczep macicy5. Chociaż przeszczepienie macicy jest nadal procedurą eksperymentalną, macierzyństwo zastępcze jest dostępne w wielu krajach na całym świecie6, a zgłoszone wyniki położnicze i psychospołeczne są porównywalne ze standardowymi wynikami zapłodnienia in vitro i dawstwa oocytów7.
Zarówno macierzyństwo zastępcze, jak i przeszczep macicy wymagają pobrania oocytów i zapłodnienia in vitro, ale nie ma zgody co do sposobu pobierania komórek jajowych u pacjentów z MRKHS. Podejście przezpochwowe może być niewykonalne z powodu niewystarczającej elastyczności pochwy8 nawet po plastyce pochwy, nietypowej lokalizacji jajników9 lub nadmiernej odległości między jajnikami a mankietem pochwy4,10. W takich przypadkach laparoskopowe pobranie komórek jajowych stanowi optymalne podejście pod względem dostępu chirurgicznego. Jednakże, ponieważ większość pacjentek z MRKHS przechodzi obecnie laparoskopową neowaginoplastykę, sugerujemy wykonanie laparoskopowego pobrania oocytów w czasie operacji w celu plastyki waginoplastyki11, a następnie kriokonserwację oocytów do wykorzystania w przyszłości, minimalizując w ten sposób inwazyjność, łącząc leczenie funkcji seksualnych i rozrodczych pacjentek z MRKHS.
Dane demograficzne pacjentów 
Do tej pory leczenie tym protokołem poddano dwudziestu trzem pacjentom z MRKH. Wyniki anamnestyczne, instrumentalne i laboratoryjne pacjentów podsumowano w Tabeli 1. O ile nie określono tego w tabeli 1, nie stwierdzono żadnych powiązanych wad wrodzonych.

<table><tbody><tr><td>Procedura pobierania oocytów</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sprzęt</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CO2 Inkubator O2 Inkubator</td><td>Sanyo</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kaptur z przepływem laminarnym</td><td>Cooper Surgical</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Przenośny inkubator</td> Stereoskopowy <td>mikroskop chirurgiczny</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Cooper Nikon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Materiały eksploatacyjne</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>14 mL Polistyrenowa rurka okrągłodenna</td><td>Falcon</td><td>352057</td><td></td></tr><tr><td>4-dołkowa szalka</td><td>Nunc</td><td>144444</td><td></td></tr><tr><td>60 mm szalka Petriego</td><td>FA9150270</td><td></td><td></td></tr><tr><td>90 mm Petri danie</td><td>Nunc</td><td>FA9150360</td><td></td></tr><tr><td>Albumina surowicy ludzkiej 100 mg / ml w soli fizjologicznej (5%)</td><td>Origio</td><td>3001</td><td></td></tr><tr><td>Olej mineralny do hodowli zarodków</td><td>Origio</td><td>4008</td><td></td></tr><tr><td>Naczynie One Well Oosafe</td><td></td><td>OOPW-CW05</td><td></td></tr><tr><td>Quinn' s Advantage Podłoże nawozowe SAGE</td><td>Origio</td><td>1020</td><td></td></tr><tr><td>Quinn' s Advantage pożywka z HEPES</td><td>Origio</td><td>1024</td><td></td></tr><tr><td>Sterylne szklane</td><td></td><td></td><td></td> pipety Pasteura</tr><tr><td><mocne> denudacja oocytów</mocne></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sprzęt</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CO2 O2 Inkubator</td><td>Sanyo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Flexipet regulowany uchwyt zestaw</td><td>Cook</td><td>G18674</td><td></td></tr><tr><td>Inkubator</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kaptur z przepływem laminarnym</td><td>Cooper Stereomikroskop chirurgiczny</td> Stereoskop chirurgiczny <td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Nikon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Materiały eksploatacyjne</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>4-dołkowe</td><td>Nunc</td><td>144444</td><td></td></tr><tr><td>CSCM (pojedyncza hodowla Continuos) podłoże</td><td>Fujifilm irvine Scientific</td><td>90165</td><td></td></tr><tr><td>Albumina ludzka 100 mg/ml w soli fizjologicznej (5%)</td><td>Origio</td><td>3001</td><td></td></tr><tr><td>Hialuronidaza</td><td>Fujifilm Irvine Scientific</td><td>90101</td><td></td></tr><tr><td>Kultura IVF 60 mm szalka Petriego</td><td>Nunc</td><td>FA9150270</td><td></td></tr><tr><td>Olej mineralny do hodowli zarodków</td><td>Origio</td><td>4008</td><td></td></tr><tr><td>Naczynie One Well</td><td>Oosafe</td><td>OOPW-CW05</td><td></td></tr><tr><td>Quinn' s Advantage medium z HEPES</td><td>Origio</td><td>1024</td><td></td></tr><tr><td>Suplement zastępczy surowicy</td><td>Fujifilm irvine Scientific</td><td>99193</td><td></td></tr><tr><td>Sterylne szklane pipety Pasteura</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Końcówki do pipet do zdejmowania izolacji (140 &mu; m)</td> <td>Cook</td><td>K-FPIP-1140-10BS-5</td><td></td></tr><tr><td>Końcówki do pipet do zdejmowania izolacji (170 &mu; m)</td> <td>Cook</td><td>K-FPIP-1170-10BS-5</td><td></td></tr><tr><td>Witryfikacja oocytów</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>35 mm szalka Petriego</td><td>NUNC</td><td>150255</td><td></td></tr><tr><td>60 mm szalka Petriego</td><td>NUNC</td><td>150270</td><td></td></tr><tr><td>90 mm szalka Petriego</td><td>NUNC</td><td>150360</td><td></td></tr><tr><td>Pojemnik do stojaka chłodzącego</td><td>Kitazato</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cryodevice/cryotop</td><td>Kitazato</td><td>81111</td><td></td></tr><tr><td>Elektroniczny timer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Flexipet</td><td>COOK</td><td>K-1000</td><td></td></tr><tr><td>Gilson Pipetman</td><td>Gilson</td><td>F123601</td><td></td></tr><tr><td>Drukarka laboratoryjna LabXpert</td><td>Brady</td><td>XSL-86-461</td><td></td></tr><tr><td>Końcówki 20-200 i mikro; L</td><td>Thermo Scientific</td><td>2160G</td><td></td></tr><tr><td>Końcówki 2-20 i mikro; L</td><td>Thermo Scientific</td><td>2139-HR</td><td></td></tr><tr><td>Visotubes</td><td>Cryo Bio System</td><td>20</td><td></td></tr><tr><td>Zestaw do zamrażania witryfikacji</td><td>Fujifilm Irvine Scientific</td><td>90133-SO</td><td></td></tr><tr><td>Zestaw do rozmrażania witryfikacji</td><td>Fujifilm Irvine Scientific</td><td>90137-SO</td><td></td></tr></tbody></table>

laparoskopowe pobieranie komórek jajowych i kriokonserwacja podczas waginoplastyki w leczeniu zespołu mayera-rokitansky'ego-kustera-hausera

Laparoscopic Oocyte Retrieval and Cryopreservation during Vaginoplasty for Treatment of Mayer-Rokitansky-Kuster-Hauser Syndrome

U pacjentek z zespołem Mayera-Rokitansky'ego-Kustera-Hausera (MRKHS), które są zaplanowane do laparoskopowej plastyki pochwy i mają pragnienie biologicznego macierzyństwa, proponujemy przeprowadzenie jednoczesnego laparoskopowego pobrania oocytów w celu kriokonserwacji. Pobranie komórek jajowych przeprowadza się na początku laparoskopii. Ustawia się prawe i lewe trokary 5 mm, przez które do nakłuwania odpowiednio prawych i lewych jajników używa się igły aspiracyjnej 17 G. Aby ułatwić odsłonięcie pęcherzyków, jajniki są mobilizowane i przytrzymywane kleszczami laparoskopowymi.
Podczas zasysania wielu pęcherzyków blisko siebie, końcówka igły jest zatrzymywana w jajniku, aby zmniejszyć liczbę przypadków uszkodzenia kory jajnika i ze względu na nieodłączne ryzyko krwawienia. Kolejne etapy pozostają niezmienione w porównaniu z laparoskopową zmodyfikowaną techniką laparoskopową Dawydowa do plastyki pochwy. Przed zabiegiem chirurgicznym przeprowadza się kontrolowaną stymulację jajników za pomocą protokołu antagonistycznego hormonu uwalniającego hormony gonadotropiny (Gn-RH), a jednoczesny zabieg pobrania komórek jajowych i waginoplastyki jest zaplanowany na 36 godzin po ostatecznym wyzwalaczu dojrzewania pęcherzyków. Płyn pęcherzykowy jest pobierany do tych samych sterylnych probówek o pojemności 10 ml, które są używane podczas przezpochwowego pobierania komórek jajowych i przenoszony w bloku rozgrzewającym (37 °C) do laboratorium wspomaganego rozrodu, gdzie dojrzałe oocyty (metafaza II) są witryfikowane.
W tym przypadku, seria 23 kobiet z MRKH, oocyty zostały pomyślnie pobrane i kriokonserwowane u wszystkich pacjentek; plastyka pochwy została następnie przeprowadzona bez modyfikacji, a stacjonarna i ambulatoryjna opieka pooperacyjna (dzień usunięcia cewnika moczowego, dzień wypisu ze szpitala, użycie rozszerzacza i komfort podczas obserwacji) pozostała nienaruszona. Jedno powikłanie pooperacyjne wystąpiło u jednego pacjenta (gorączka rozwijająca się w 5. dobie po operacji i wykrycie płynu otrzewnowego w USG przezbrzusznym) i ustąpiło po leczeniu zachowawczym. Zamiast wykonywać chirurgiczną plastykę pochwy i opóźniać pobranie komórek jajowych u pacjentek z MRKH, podejście to łączy obie procedury w jednej laparoskopii, minimalizując w ten sposób inwazyjność chirurgiczną i ryzyko anestezjologiczne.

Tabela 2 zawiera dane dotyczące stymulacji jajników u pacjentek, natomiast główne wyniki chirurgiczne i funkcjonalne opisano w Tabeli 3. Współistniejące laparoskopowe procedury pobrania oocytów oraz waginoplastyki zostały pomyślnie wykonane u wszystkich pacjentek. Średnio pobrano 11,4 ± 5,4 (średnia ± SD) oocytów, a kriokonserwacji poddano 9,6 ± 4,3 oocytów w stadium MII (Tabela 3). W naszym doświadczeniu z kriokonserwacją oocytów u pacjentek poddawanych ART, przeżywalno...

Dedykowany zespół może zaoferować pacjentkom Mayer-Rokitansky-Kuster-Hauser możliwość przeprowadzenia kontrolowanej stymulacji jajników i kriokonserwacji oocytów podczas laparoskopowej plastyki pochwy.

Laparoskopowe pobieranie komórek jajowych i kriokonserwacja podczas waginoplastyki w leczeniu zespołu Mayera-Rokitansky'ego-Kustera-Hausera

In Mayer-Rokitansky-Kuster-Hauser Syndrome (MRKHS) patients who are scheduled for laparoscopic vaginoplasty and have a desire for biological motherhood, ...

Nasze podejście pozwala zminimalizować chorobę inwazyjną w leczeniu zespołu Mayera-Rokitansky'ego-Kustera-Hausera poprzez połączenie laparoskopowej plastyki pochwy i pobrania komórek jajowych w przyszłych metodach leczenia niepłodności. Głównymi zaletami naszego podejścia są wymóg pojedynczego znieczulenia i przezwyciężenie niewykonalności przezpochwowego pobrania komórek jajowych u młodszych pacjentek z chorobą Rokitansky. Procedura zostanie zademonstrowana przez Dianę Delprato, starszego ginekologa z naszego oddziału leczenia niepłodności oraz przez Alessandrę Alteri i Gretę Cermisoni, dwie starsze embriologi kliniczne z naszego laboratorium wspomaganego rozrodu.Kontrolowaną stymulację jajników należy rozpocząć w 14. dniu od dnia operacji. Monitoruj odpowiedź jajników za pomocą seryjnego ultrasonografu przezbrzusznego i jednoczesnych pomiarów estradiolu i progesteronu. Ustal odmę otrzewnową techniką otwartą.Umieść jeden 10-milimetrowy trokar pępowinowy do wprowadzenia laparoskopu i trzy pięciomilimetrowe trokary w środkowym, prawym i lewym dolnym kwadrancie. W przypadku widzenia laparoskopowego należy użyć igły o pojedynczym prześwicie o rozmiarze 17 połączonych z pompą aspiracyj

laparoscopic-oocyte-retrieval-cryopreservation-during-vaginoplasty

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Dojrzewanie in vitro (IVM) przed operacją ginekologiczną (OP-IVM) łączy IVM po pobraniu oocytów z rutynową operacją ginekologiczną i służy jako rozszerzenie konwencjonalnych zastosowań IVM dla zachowania płodności.

OP-IVM: Połączenie dojrzewania in vitro po pobraniu komórek jajowych z chirurgią ginekologiczną

Kriokonserwacja oocytów jest uznawana przez kilka międzynarodowych towarzystw naukowych za złoty standard zachowania płodności u kobiet po okresie dojrzewania. Odpowiednie strategie kliniczne i laboratoryjne zapewniają maksymalną skuteczność, efektywność i bezpieczeństwo zabiegów zachowujących płodność.

Zachowanie płodności poprzez witryfikację oocytów: perspektywy kliniczne i laboratoryjne

Prezentujemy szczegóły procedur laboratoryjnych dla bezlekowej aktywacji in vitro (IVA) pęcherzyków jajnikowych u pacjentek z ciężką dysfunkcją jajników. Metoda ta może zwiększyć liczbę możliwych do pobrania oocytów na hiperstymulację jajników i korzystnie wpłynąć na zachowanie płodności u tych pacjentek.

Zachowanie płodności u pacjentek z ciężką dysfunkcją jajników

Obecny protokół opisuje metodę oceny rezerwy jajnikowej u pacjentek poniżej 25 roku życia, które wymagają zachowania płodności poprzez krioprezerwację tkanki jajnika. Metoda ta obejmuje: (1) ocenę histologiczną rezerwy jajnikowej w próbkach korowych, (2) porównanie z referencyjnym zbiorem danych oraz (3) obliczenie wskaźników Z.

Z-score do oceny rezerwy jajnikowej u młodych pacjentek poddawanych zabiegowi zachowania płodności

Przedstawiono protokół witryfikacji tkanki jajnikowej, jako alternatywną metodę kriokonserwacji do powszechnie stosowanego protokołu powolnego zamrażania.

Witryfikacja tkanki kory jajnika w celu uzyskania szklistego stanu agregacji

Tutaj prezentujemy zoptymalizowaną metodę natychmiastowego usuwania części kompleksów cumulus-oocyt po pobraniu komórek jajowych, aby przyspieszyć proces obserwacji IVF, skracając czas potrzebny na usunięcie komórek ziarnistych, minimalizując narażenie oocytów na czynniki zewnętrzne i nie utrudniając rozwoju zarodka, ostatecznie poprawiając efektywność procedur laboratoryjnych IVF.

Natychmiastowe częściowe usunięcie kompleksów cumulus-oocyty: wyrafinowane podejście do szybkiej obserwacji zapłodnienia in vitro

Opisujemy protokół izolacji i hodowli ludzkich komórek nabłonka owodni (hAEC) przy użyciu odczynników wolnych od produktów zwierzęcych, zgodnie z aktualnymi wytycznymi dobrej praktyki produkcyjnej (cGMP).

Izolacja, kriokonserwacja i hodowla ludzkich komórek nabłonka owodni do zastosowań klinicznych

Tutaj prezentujemy protokół przezpachowej resekcji pierwszego żebra w leczeniu zespołu ujścia klatki piersiowej spowodowanego uciskiem splotu ramiennego, żyły podobojczykowej i tętnicy.

Przezpachowa resekcja pierwszego żebra w leczeniu zespołu ujścia klatki piersiowej

Tutaj prezentujemy protokół zwiększający pole widzenia operacji chirurgicznej i zmniejszający trudność całkowitej operacji nefrouretanektomii laparoskopowej poprzez wstępne przecięcie więzadła pępkowego przed leczeniem końcowego moczowodu.

Modyfikacja końcowa moczowodu podczas całkowitej laparoskopowej nefroureterektomii z powodu raka urotelialnego górnych dróg moczowych

Ten protokół przedstawia techniki laparoskopowego wycinania endometrioma jajnika, wykonywania adhezjolizy z oszczędnym zastosowaniem elektrochirurgicznym oraz stosowania śródoperacyjnej chromopertubacji do oceny drożności dróg rodnych. To systematyczne podejście ułatwi optymalne leczenie endometriozy, pokieruje towarzyszącymi operacjami przydatków i poprawi wyniki płodności pooperacyjnej.

Techniki chirurgiczne optymalizujące rezerwę jajnikową podczas laparoskopowej cystektomii z powodu endometrioma jajnika

Poznaj połączoną metodę laparoskopowej waginoplastyki z pobieraniem i kriokonserwacją komórek jajowych u pacjentek z zespołem Mayera-Rokitansky'ego-Kustera-Hausera. To innowacyjne podejście zmniejsza liczbę zabiegów i zachowuje płodność.

Laparoskopowe pobieranie komórek jajowych i kriokonserwacja podczas waginoplastyki w leczeniu zespołu Mayera-Rokitanskyego-Kustera-Hausera (Wideo) | JoVE Journal

Laparoskopowe pobieranie komórek jajowych i kriokonserwacja podczas waginoplastyki w leczeniu zespołu Mayera-Rokitansky'ego-Kustera-Hausera

Przeglądaj więcej filmów