23 czerwca 2022
Zakażenie śródmózgowe wirusem mysiego zapalenia mózgu i rdzenia Theilera (TMEV) u myszy C57BL/6 powiela wiele wczesnych i przewlekłych objawów klinicznych wirusowego zapalenia mózgu i późniejszej padaczki u ludzi. W artykule opisano zakażenie wirusem, objawy i histopatologię modelu TMEV.
Model TMEV jest jedną z pierwszych platform eksperymentalnych, które pozwalają na badanie mechanizmów powstawania napadów w wyniku zakażenia OUN. Infekcje OUN znacznie zwiększają ryzyko wystąpienia padaczki. Model ten pomaga zidentyfikować potencjalne cele terapeutyczne i związki dla pacjentów z grupy ryzyka.
Eksperymentatorzy powinni być przeszkoleni w pracy z myszami. Wstrzykiwanie wirusa można bardzo dobrze praktykować, wstrzykując barwnik martwym zwierzętom, aby osiągnąć wystarczającą precyzję i rutynę. Procedurę zademonstruje Laura Bell, doktorantka z mojego laboratorium.
Na początek zdejmij nasadkę strzykawki insulinowej i dodaj rurkę polietylenową jako kołnierz wokół igły, aby zapewnić odpowiednią głębokość wstrzyknięcia 2,5 milimetra. Następnie zanurz strzykawkę w etanolu na 30 minut i umieść strzykawkę w świetle UV na 30 minut. Następnie nałożyć nasadkę z powrotem na igłę i zawinąć strzykawkę w woreczek do sterylizacji.
Zaklej saszetkę taśmą, aby ją zamknąć i oznaczyć datą przygotowania. Aby wykonać wstrzyknięcie wirusa, pobierz porcje szczepu Danielsa TMEV z zamrażarki o temperaturze minus 80 stopni Celsjusza. Rozmrozić wirusa i trzymać go na lodzie.
Następnie załadować do strzykawki zawiesinę wirusa. Następnie wyczyść ławkę środkiem dezynfekującym i pracuj pod pochłaniaczem oparów. Przenieś znieczuloną mysz z pudełka anestezjologicznego pod maskę i sprawdź tolerancję chirurgiczną, wykonując uszczypnięcie palca u nogi.
Następnie należy oczyścić głowę zwierzęcia wacikiem nasączonym alkoholem i lekko przechylić głowę myszy w lewo, tak aby miejsce wstrzyknięcia było skierowane do góry. Pociągnij skórę nieco do tyłu i włóż igłę do głowy. Następnie wstrzyknąć 20 mikrolitrów dordzeniowo na głębokość 2,5 milimetra w obszar skroniowy prawej półkuli.
Pozostawić strzykawkę na miejscu przez pięć do 15 sekund i sprawdzić, czy nie ma wycieków z wstrzyknięcia lub czy widoczne są pęcherzyki powietrza, a następnie przygotować nową strzykawkę. Ostrożnie wyciągając strzykawkę, należy ją lekko obrócić. Następnie przenieś zwierzę do nowej klatki, która jest umieszczana w połowie na poduszce grzewczej podczas rekonwalescencji po znieczuleniu.
I nie zostawiaj zwierząt bez opieki, dopóki nie odzyskają wystarczającej przytomności, aby utrzymać pozycję leżącą mostka. Najpierw przynieś wszystkie klatki na ławkę i obserwuj zwierzęta pod kątem napadów dwa razy dziennie w fazie światła. Oceń aktywność napadową za pomocą zmodyfikowanej skali wyścigowej i podaj liczbę i intensywność napadów.
Następnie przesuń długopis po klatce, aby narobić trochę hałasu i przenieś każde zwierzę do innego pudełka iz powrotem. W przypadku zwierząt, które nie chwyciły się spontanicznie lub po delikatnym potrząśnięciu klatką, wywołaj drgawki poprzez bardziej intensywne obchodzenie się, ostrożnie obracając mysz, obracając ją na ogonie od lewej do prawej. Ponownie obserwuj każde zwierzę pod kątem napadów padaczkowych i powtórz ten proces dla kolejnych klatek.
Napady behawioralne rejestrowano, jeśli wystąpiły podczas wstrzykiwań narkotyków lub podczas kolejnych sesji monitorowania napadów. Zaobserwowane dane zostały przedstawione w postaci mapy cieplnej utworzonej poprzez zobrazowanie etapów napadu w różnych kolorach. Rejestrując EEG, można zidentyfikować różne zdarzenia padaczkowe w fazie przewlekłej, kilka miesięcy po zakażeniu TMEV.
Kwantyfikacja zwyrodnienia hipokampa i myszy zakażonych padaczką TMEV wykazuje znaczne zmniejszenie obszaru hipokampa i odpowiadający mu wzrost obszaru komorowego myszy TMEV w porównaniu z grupą kontrolną. Analiza immunohistologiczna może dostarczyć informacji na temat różnych parametrów, takich jak obecność komórek zapalnych. W tym przypadku skrawki zawierające hipokamp wybarwiono przeciwciałami znakującymi limfocyty T.
Zwierzęta zakażone pozorami nie wykazują infiltracji limfocytów T, podczas gdy umiarkowaną infiltrację zaobserwowano u większości myszy zakażonych TMEV. Niektóre z zakażonych myszy wykazują ciężką infiltrację limfocytów T. Nie wszystkie zwierzęta mają napady padaczkowe podczas każdego okresu obserwacji.
Również największa częstość występowania napadów występuje w piątym i szóstym dniu po szczepieniu. Używamy modelu TMEV do testowania skuteczności nowych leków przeciwpadaczkowych przeciwko napadom wywołanym infekcją. Można również oceniać testy badające współistniejące zmiany behawioralne i zmiany elektrofizjologiczne.
Model TMEV dostarczył społeczności badawczej zajmującej się padaczką pierwszego modelu padaczki skroniowej wywołanego zakażeniem OUN, co pozwoliło na zbadanie mechanizmów leżących u podstaw epileptogenezy po zakażeniu.
Niniejsze badanie analizuje model wirusa zapalenia mózgu myszy Theilera (TMEV) u myszy C57BL/6, który odzwierciedla objawy ludzkiego wirusowego zapalenia mózgu oraz epilepsji. Celem badań jest zrozumienie mechanizmów rozwoju napadów drgawkowych wynikających z infekcji OUN oraz ocena potencjalnych celów terapeutycznych w leczeniu epilepsji.
Modelowanie epilepsji o etiologii infekcyjnej z wykorzystaniem platformy TMEV umożliwia mechanistyczną redukcję ryzyka oraz walidację punktów uchwycenia dla epileptogenezy indukowanej infekcjami OUN. Model ten zwiększa pewność prognostyczną we wczesnych etapach odkrywania leków oraz w badaniach translacyjnych, odtwarzając zarówno ostre, jak i chroniczne fenotypy napadów istotne dla przebiegu choroby u ludzi. Jego zastosowanie ułatwia selekcję projektów oraz priorytetyzację nowych związków przeciwdrgawkowych dla grup pacjentów wysokiego ryzyka.
Model TMEV integruje etapy od wczesnego odkrywania, poprzez identyfikację wiodących związków, aż po walidację przedkliniczną w przypadku epilepsji indukowanej infekcją.