4 sierpnia 2022
Połączenie mikrodysekcji laserowej i mikroprzepływowego RT-qPCR zapewnia anatomiczną i biotechniczną specyfikę pomiaru transkryptomu w pojedynczych neuronach i gleju. Zastosowanie kreatywnych metod z systemowym podejściem biologicznym do chorób psychicznych może prowadzić do przełomów w zrozumieniu i leczeniu, takich jak hipoteza neurozapalenia i nagrody w uzależnieniu.
Protokół jest bardzo czuły i umożliwia wysokoprzepustowe przechwytywanie profilu ekspresji genów w rozdzielczości pojedynczej komórki. Technika ta zapewnia zarówno anatomiczną swoistość przestrzenną, jak i molekularną w rozdzielczości pojedynczej komórki. Po pobraniu mózgu, wybraniu pojedynczych komórek i przygotowaniu mRNA, wstrzyknij płyn z linii kontrolnej do chipa qPCR w celu przygotowania.
Włóż chip qPCR do mieszalnika mikroprzepływowego. Wybierz skrypt Prime i uruchom program. Po zakończeniu programu należy wyjąć zagruntowany chip qPCR i odpipetować sześć mikrolitrów reakcji z płytki próbki PCR do odpowiedniego dołka na próbkę w zagruntowanym chipie qPCR.
Teraz odpipetuj sześć mikrolitrów reakcji z płytki testowej PCR do odpowiedniego dołka testowego w zagruntowanym chipie qPCR. Następnie włóż chip do mieszalnika mikroprzepływowego. Wybierz skrypt Load Mix i uruchom program.
Włącz mikroprzepływową platformę RT-qPCR i rozgrzej żarówkę. Wyjmij chip qPCR z mieszalnika mikroprzepływowego i odklej naklejkę ochronną od spodu chipa. Otwórz mikroprzepływową platformę RT-qPCR i załaduj chip qPCR do platformy.
Uruchom oprogramowanie do zbierania danych, klikając Rozpocznij nowy przebieg. Sprawdź kod kreskowy chipa i typ chipa. Następnie kliknij Dalej.
Wybierz plik uruchamiania chipa i przeglądaj lokalizację pliku dla magazynu zbierania danych. Następnie kliknij Typ aplikacji i wybierz Ekspresja genów. Wybierz ROX jako odniesienie pasywne, pojedynczą sondę i EVAGreen jako typ sondy.
Kliknij, aby wybrać program cykli termicznych i wybierz Biomark HD GE:Fast 96x96 PCR+Melt v2. Plik pcl. Pobierz oprogramowanie do analizy danych.
Uruchom oprogramowanie, aby przeanalizować mikroprzepływowy eksperyment RT-qPCR. Kliknij Chip Run i otwórz ChipRun. bml , który został utworzony przez eksperymentatora.
Pojawi się okno wyświetlające szczegóły eksperymentu, w tym pasywne odniesienie, sondę i program termiczny PCR. Na karcie Chip Explorer (Eksplorator wiórów) kliknij opcję Sample Plate Setup (Ustawienia płytki próbki) i utwórz nowy szablon płytki próbki. Skopiuj i wklej przykładowe etykiety do arkusza kalkulacyjnego oprogramowania zgodnie z projektem eksperymentalnym.
Wprowadź nazwę próbki i stężenie RNA używane dla próbek wzorcowych. Teraz zmapuj przykładową konfigurację, klikając mapę w menu zadań i wybierając SBS96-Left.dsp. Następnie wybierz opcję Widoki szczegółów, aby zaktualizować te zmiany w pliku, a następnie kliknij przycisk Analizuj.
Wybierz opcję Detector Plate Setup (Konfiguracja płytki detektora) i utwórz nową płytkę testową. Wybierz odpowiedni typ i format kontenera. Wklej nazwy testów zgodnie z projektem eksperymentalnym i kliknij Analizuj.
W okienku ustawień analizy kliknij opcję Użytkownik i ustaw dopasowanie na automatyczne. Teraz ręcznie przejrzyj każdą reakcję w chipie 96x96. Wizualizacja krzywych amplifikacji i topnienia w celu określenia, czy każda reakcja przebiegała zgodnie z oczekiwanym wzorcem qPCR.
Jeśli krzywa wzmocnienia lub topnienia nie zgadza się z tym, czego się oczekuje, ta reakcja zakończy się niepowodzeniem. Po kontroli jakości wyeksportuj dane, wybierając plik, klikając przycisk eksportuj i zapisując zestaw danych jako plik csv. Ponieważ wyeksportowany plik csv zawiera zarówno macierz niepowodzenia pozytywnego, jak i macierz z nieprzetworzonymi wartościami CT, użyj macierzy niepowodzenia, aby zastąpić wszystkie komórki, które zakończyły się niepowodzeniem, w zestawie danych wartością NA. Pobierz najnowszą wersję oprogramowania Open Source R, a następnie pobierz aplikację R Studio.
W przypadku wyśrodkowania mediany użyj oprogramowania R, aby obliczyć medianę wartości CT obliczoną na podstawie wszystkich wartości CT dla pojedynczej próbki, a następnie odejmij wszystkie indywidualne wartości CT od tej mediany, aby uzyskać ujemną wartość CT delta. W celu normalizacji genów porządkowych oblicz średnią ekspresję genów porządkowych dla każdej próbki i użyj tej wartości do odjęcia poszczególnych wartości CT. Aby wygenerować ujemną wartość delta delta CT, uruchom kod w oprogramowaniu R.
Przekaż znormalizowany zestaw danych do języka R i przeanalizuj dane przy użyciu funkcji skalowania, wygeneruj skalowane dane, a następnie użyj funkcji mapy cieplnej języka R lub oddzielnego oprogramowania do wygenerowania mapy cieplnej. Aby uporządkować zestaw danych dla innych funkcji, oblicz korelacje Pearsona między każdym genem, po którym następuje funkcja topnienia. Wyeksportuj i prześlij te dane do oprogramowania sieci korelacji genów.
Neurony wykazywały podwyższoną ekspresję NeuN, a próbki mikrogleju wykazywały znaczącą ekspresję markerów mikrogleju Cd34 i Cx3xr1. Próbki neuronów Th+ wykazały znacznie podwyższoną ekspresję Th w porównaniu z próbkami neuronalnymi Th i mikrogleju. Neurony Th wykazywały znaczną ekspresję Gcg, co sugeruje, że próbki neuronów Th są wzbogacone o neurony, które wykorzystują Glp1 jako neuroprzekaźnik.
Liniowa analiza dyskryminująca wykazała, że te trzy typy komórek miały różne profile ekspresji genów we wszystkich 65 genach. Subfenotypy komórkowe próbek neuronów wzbogaconych w Glp1 za pomocą szeregu czasowego odstawienia alkoholu przedstawiono za pomocą map cieplnych. Subfenotyp A, który wykazuje wysoką ekspresję zapalnego klastra genów jeden, zwiększa się w stosunku w ośmiogodzinnym punkcie czasowym odstawienia i osiąga maksimum po 32 godzinach odstawienia.
Podfenotyp zapalny jest normalizowany do kontroli przez 176 godzin odstawienia. Subfenotyp B, który wykazuje wysoką ekspresję drugiego klastra genów receptora GABA, wykazuje ogólne zahamowanie ekspresji tego klastra genów przez warunek odstawienia 176 godzin. Ekspresję genów w poszczególnych próbkach połączono w średnie, tak aby można było zwizualizować ekspresję klastrów genów i lokalizację białka w tym transkryptie genu w całym szeregu czasowym.
Technikę tę można zastosować do dowolnego systemu biologicznego lub tkanki, aby zrozumieć odpowiedź komórkową na chorobę lub zaburzenie. Ma to na celu rozszyfrowanie odpowiedzi molekularnej w rozdzielczości pojedynczej komórki odnoszącej się do przestrzennej i anatomicznej architektury tkanki.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie wykorzystuje laserową mikrodysekcję uchwycenia oraz mikrofluidycyjną technikę RT-qPCR do analizy transkryptomów w pojedynczych neuronach i gleju. Podkreślono wysoką czułość i swoistość tej metody, która może przyczynić się do pogłębienia wiedzy na temat chorób psychiatrycznych związanych z neurozapaleniem, w szczególności w kontekście uzależnień.
Profilowanie ekspresji genów w pojedynczych komórkach z zachowaniem specyficzności anatomicznej umożliwia mechanistyczną redukcję ryzyka w procesie odkrywania celów neuropsychiatrycznych, szczególnie w odniesieniu do szlaków uzależnień i układów antynagrody. Podejście to dostarcza wysokorozdzielczych informacji na temat czynników napędzających procesy neurozapalne, co zwiększa pewność prognostyczną na styku patologii molekularnej i fenotypów behawioralnych. Integracja tych metod z wczesnymi etapami poszukiwania nowych leków usprawnia selekcję projektów w portfolio oraz zapewnia ciągłość translacyjną w rozwoju leków oddziałujących na OUN.
Metoda ta łączy wczesną fazę odkryć z badaniami przedklinicznymi, umożliwiając wysokoprzepustową, anatomicznie precyzyjną analizę ekspresji genów w tkankach OUN.