-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Precyzyjne edycje Knock-In za pośrednictwem CRISPR-Cas9 w sercach danio pręgowanego
Precyzyjne edycje Knock-In za pośrednictwem CRISPR-Cas9 w sercach danio pręgowanego
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
CRISPR-Cas9-Mediated Precise Knock-In Edits in Zebrafish Hearts

Precyzyjne edycje Knock-In za pośrednictwem CRISPR-Cas9 w sercach danio pręgowanego

Full Text
4,032 Views
06:52 min
September 13, 2022

DOI: 10.3791/64209-v

Kyle E. Simpson1, Shoaib Faizi1, Ravichandra Venkateshappa1, Mandy Yip1, Raj Johal1, Damon Poburko1, Yen May Cheng1, Diana Hunter1, Eric Lin1, Glen F. Tibbits1, Thomas W. Claydon1

1Department of Biomedical Physiology and Kinesiology,Simon Fraser University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for precise knock-in edits using CRISPR-Cas9 in zebrafish embryos, specifically modeling variants associated with Long QT Syndrome. The authors demonstrate a phenotyping pipeline to visualize and assess the success of these genetic modifications.

Key Study Components

Research Area

  • Genetics
  • Developmental biology
  • Molecular biology

Background

  • The importance of CRISPR technology in gene editing.
  • The relevance of zebrafish as a model organism for studying human diseases.
  • Long QT Syndrome and its genetic implications.

Methods Used

  • CRISPR-Cas9 Technology
  • Zebrafish embryos
  • Fluorescent reporter systems for detection

Main Results

  • Successful knock-in of the R56Q variant into the ZKCNH6A gene.
  • Identification of phenotypic changes, including bradycardia and pericardial edema.
  • Validation of precise editing through genotyping and ECG phenotyping.

Conclusions

  • This protocol successfully demonstrates the application of CRISPR-Cas9 for modeling genetic variants in zebrafish.
  • The findings provide insights into the mechanisms of Long QT Syndrome and potential pharmaceutical interventions.

Frequently Asked Questions

What is the significance of using zebrafish in genetic studies?
Zebrafish serve as an excellent model organism due to their transparent embryos and rapid development, allowing for easy observation of phenotypic changes.
How does the CRISPR-Cas9 technology improve gene editing?
CRISPR-Cas9 provides a precise and efficient method for targeting specific gene sequences for editing, enabling the study of gene function and disease models.
What are the potential applications of this research?
This research could facilitate the development of therapeutic strategies for Long QT Syndrome and other genetic disorders.
How is gene editing validated in this protocol?
Gene editing is validated through genotyping and phenotypic assessments, such as ECG recordings and heart rate measurements.
What challenges might researchers face when designing sgRNAs?
Selecting sgRNAs with high specificity and minimal off-target effects is crucial, and researchers must use appropriate design tools to achieve this.
Can this method be adapted for other disease models?
Yes, the protocol can be adapted to study various genetic disorders by targeting different genes and using appropriate phenotyping strategies.
What role does the YFP reporter gene play in this study?
The YFP reporter gene serves as a visual marker to confirm successful integration of the CRISPR edits in zebrafish embryos.

Ten protokół opisuje podejście ułatwiające precyzyjną edycję w zarodkach danio pręgowanego przy użyciu technologii CRISPR-Cas9. Przedstawiono proces fenotypowania, aby zademonstrować możliwość zastosowania tych technik do modelowania wariantu genu związanego z zespołem wydłużonego odstępu QT.

Nasz protokół zapewnia potok zarówno do precyzyjnej integracji, jak i prostego wizualnego wykrywania edycji CRISPR, a także przykład fenotypowania po edycji. Główną zaletą tego podejścia jest łatwość wykrywania edycji CRISPR, pozwalająca na sprawną i uproszczoną identyfikację udanych edycji. Takie podejście pozwala na proste generowanie i charakteryzowanie wariantów związanych z chorobą u danio pręgowanego.

Tutaj badamy zespół wydłużonego odstępu QT. Możliwe jest wówczas przeprowadzenie dalszych badań nad terapiami farmaceutycznymi. Zacznij od zaprojektowania dwóch przewodników sgRNA, aby wyciąć sekwencję miejsca docelowego knock-in, identyfikując ortolog danio pręgowanego dla interesującego genu.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

CRISPR-Cas9 precyzyjne edycje knock-in serca danio pręgowanego przewodniki SgRNA zespół długiego odstępu QT warianty związane z chorobą CRISPOR Danio Rerio szablon HDR żylny gen reporterowy M YFP plazmid PKHR5 modyfikacje klonowania wstrzyknięcie zarodka

Related Videos

Mikroiniekcja do transgenezy i edycji genomu u cierników trójgrzbietowych

08:51

Mikroiniekcja do transgenezy i edycji genomu u cierników trójgrzbietowych

Related Videos

14.7K Views

Mikroiniekcja białka CRISPR/Cas9 do suma kanałowego, Ictalurus punctatus, zarodków do edycji genów

16:08

Mikroiniekcja białka CRISPR/Cas9 do suma kanałowego, Ictalurus punctatus, zarodków do edycji genów

Related Videos

15.7K Views

Wydajna produkcja i identyfikacja nokautów genów generowanych przez CRISPR/Cas9 w systemie modelowym Danio rerio

11:27

Wydajna produkcja i identyfikacja nokautów genów generowanych przez CRISPR/Cas9 w systemie modelowym Danio rerio

Related Videos

23.1K Views

Manipulacja funkcją genów u meksykańskich ryb jaskiniowych

07:01

Manipulacja funkcją genów u meksykańskich ryb jaskiniowych

Related Videos

10K Views

Wyciszanie iskry: edycja genomu CRISPR/Cas9 u ryb o słabym natężeniu elektrycznym

08:00

Wyciszanie iskry: edycja genomu CRISPR/Cas9 u ryb o słabym natężeniu elektrycznym

Related Videos

10.4K Views

Edycja CRISPR/Cas9 genu rbm-3.2 C. elegans przy użyciu markera przesiewowego dpy-10 Co-CRISPR i złożonych kompleksów rybonukleoproteinowych.

07:46

Edycja CRISPR/Cas9 genu rbm-3.2 C. elegans przy użyciu markera przesiewowego dpy-10 Co-CRISPR i złożonych kompleksów rybonukleoproteinowych.

Related Videos

6.5K Views

Określanie roli genów ulegających ekspresji matki we wczesnym rozwoju za pomocą matczynych chrupek

10:08

Określanie roli genów ulegających ekspresji matki we wczesnym rozwoju za pomocą matczynych chrupek

Related Videos

2.6K Views

Badania przesiewowe plemników w celu szybkiej izolacji zmian linii zarodkowej u danio pręgowanego

05:55

Badania przesiewowe plemników w celu szybkiej izolacji zmian linii zarodkowej u danio pręgowanego

Related Videos

1.7K Views

Wydajna edycja bazy bez PAM do modelowania chorób genetycznych człowieka u danio pręgowanego za pomocą zSpRY-ABE8e

07:31

Wydajna edycja bazy bez PAM do modelowania chorób genetycznych człowieka u danio pręgowanego za pomocą zSpRY-ABE8e

Related Videos

1.7K Views

Znakowanie fluorescencyjne w celu wizualizacji białek o niskiej ekspresji u danio pręgowanego

09:38

Znakowanie fluorescencyjne w celu wizualizacji białek o niskiej ekspresji u danio pręgowanego

Related Videos

1.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code