RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/64237-v
Crystal K. Colón Ortiz1, Anna M. Potenski2, Kendra V. Johnson1, Claire W. Chen1, Scott J. Snipas3, Ying Y. Jean1, Maria I. Avrutsky*1, Carol M. Troy*1,4,5
1Department of Pathology & Cell Biology, Vagelos College of Physicians and Surgeons,Columbia University, 2Department of Molecular Pharmacology and Therapeutics, Vagelos College of Physicians and Surgeons,Columbia University, 3NCI-designated Cancer Center,Sanford Burnham Prebys Medical Discovery Institute, 4Department of Neurology, Vagelos College of Physicians and Surgeons,Columbia University, 5The Taub Institute for Research on Alzheimer’s Disease and the Aging Brain, Vagelos College of Physicians and Surgeons,Columbia University
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Prezentowany tutaj jest szczegółowy protokół immunohistochemiczny do identyfikacji, walidacji i celowania w funkcjonalnie istotne kaspazy w złożonych tkankach.
Protokół ten zapewnia szczegółową metodę immunohistochemiczną do identyfikacji, walidacji i celowania w funkcjonalnie istotne kaspazy w złożonych tkankach. Główną zaletą tej techniki jest to, że umożliwia badanie specyficznych dla typu komórki funkcji apoptozy i nieapoptozy kaspazy-9 i może być stosowana do innych złożonych tkanek i kaspaz będących przedmiotem zainteresowania. Zrozumienie funkcji kaspaz może pomóc w poszerzeniu obecnej wiedzy w dziedzinie biologii komórki, a także może być korzystne w identyfikacji potencjalnych celów terapeutycznych ze względu na ich udział w chorobie.
Rozpocznij ilościowe określanie poziomów kaspazy za pomocą obrazów mikroskopii konfokalnej barwionych skrawków siatkówki. Aby to zrobić, przeciągnij pliki obrazów kanałów 405, 470, 555 i 640 do konsoli Fidżi. Kliknij karty obrazu, koloru i scalania kanałów, aby przypisać kolory do plików.
Następnie skompresuj stos Z, klikając stos obrazów i projekt Z. Wybierz typ projekcji jako maksymalną intensywność. Otwórz interfejs kanału, klikając obraz, a następnie narzędzie kanału koloru.
Następnie otwórz interfejs jasności i kontrastu. Aby wybrać parametry dla każdego kanału, przejdź do zakładki kanału i wybierz jeden kanał. Umieść kursor na tle i dodaj adnotację do wartości pikseli.
Następnie umieść kursor na komórce wyrażonej przez kaspazę i dodaj adnotację do wartości piksela. Aby przetestować parametry, przejdź do interfejsu jasności i kontrastu i kliknij wybierz. Podłącz minimalną wyświetlaną wartość lub wartość piksela komórki wyrażonej kaspazą.
Następnie podłącz maksymalną wyświetlaną wartość lub wartość pikseli tła przed kliknięciem OK. Wybierz losowe obrazy z zaślepionej tkanki i powtórz wybór parametrów dla każdego kanału, aby przetestować parametry dla wszystkich kanałów. Po ustawieniu parametrów otwórz pliki obrazów i skompresuj stos Z.
Dodaj parametry jasności i kontrastu dla kanału kaspazy i izolektyny dla kanału znacznika naczyniowego. Użyj narzędzia punktowego i określ ilościowo liczbę dodatnich obszarów naczyniowych za pomocą kolokalizacji markera naczyniowego z ekspresją kaspazy jako odczytem obszarów dodatnich. Następnie, używając haczyków jako markera dodatnich obszarów neuronalnych, określ ilościowo liczbę dodatnich obszarów naczyniowych.
Dodaj adnotacje do wartości w arkuszu kalkulacyjnym dla każdego obrazu i uśrednij wartości według sekcji. Uśrednij wartości przekroju, które będą odczytem na oko. W protokole zidentyfikowano lokalizację komórkową kaspaz i neuronalnych warstw siatkówki, w których kaspazy są wyrażane.
Przekrój poprzeczny siatkówki pozwolił na wizualizację jąder siatkówki w warstwie zwoju siatkówki lub RGL, warstwie międzyjądrowej lub INL oraz zewnętrznej warstwie jądrowej lub ONL w przypadku barwienia haczykami. W przekroju poprzecznym naczynia krwionośne siatkówki wydawały się rozłączone i oddzielone, zaopatrując warstwy splotowate między RGL i INL oraz między INL i ONL. Przekroje poprzeczne siatkówki zidentyfikowały również wysoce regulowaną kaspazę-9, jeden dzień po niedrożności żyły siatkówki.
Hamowanie kaspazy-9 było bardziej skuteczne w zmniejszaniu neuronalnej ekspresji kaspazy-7 u myszy z nokautem komórek śródbłonka, co potwierdziło funkcjonalne znaczenie kaspazy śródbłonka-9. Reprezentatywna analiza wykazała, że hamowanie aktywności kaspazy-9 farmakologicznie blokowało ekspresję kaspazy-7 po niedrożności żyły siatkówki. Sukces tej techniki opiera się na starannym przygotowaniu tkanek, a także na IHC i obrazowaniu mikroskopowym w celu zapewnienia spójności, trafności i wiarygodności danych.
Metodę tę można połączyć z analizą western blot w celu półilościowego porównania sygnalizacji kaspazy. Technika ta pozwoliła na zbadanie skuteczności podejścia terapeutycznego ukierunkowanego na aktywną kaspazę-9 w RVO. Podejście to można również zastosować do innych tkanek, w tym mózgu.
Related Videos
13:56
Related Videos
10.1K Views
03:06
Related Videos
228 Views
08:32
Related Videos
23.7K Views
08:41
Related Videos
12.1K Views
08:47
Related Videos
9.2K Views
08:41
Related Videos
2.9K Views
10:23
Related Videos
3.5K Views
04:36
Related Videos
1.3K Views
06:30
Related Videos
1.2K Views
05:26
Related Videos
15.8K Views